摘要：目的 探討巢蛋白-1（NID1）在腎透明細(xì)胞癌（ccRCC）中的表達(dá)變化及對血管生成的影響。方法 利用腫瘤基因圖譜數(shù)據(jù)庫、細(xì)胞系和臨床樣本分析NID1在ccRCC中的表達(dá)，分析NID1與血管生成標(biāo)志物CD31的關(guān)系。通過轉(zhuǎn)染慢病毒構(gòu)建穩(wěn)定敲低NID1的786-O細(xì)胞系，獲取培養(yǎng)上清液作為條件培養(yǎng)基處理人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞（HUVEC）。HUVEC分為DMEM組、空白組、NID1空載組、NID1敲低組，采用CCK-8法檢測細(xì)胞增殖能力，成管實(shí)驗(yàn)檢測細(xì)胞血管形成能力，劃痕實(shí)驗(yàn)檢測細(xì)胞遷移能力。構(gòu)建右旋糖酐水凝膠空載/敲低NID1腫瘤細(xì)胞復(fù)合物培養(yǎng)體系小鼠模型，分為NID1空載組和NID1敲低組，采用免疫組化染色檢測CD31表達(dá)。結(jié)果 生物信息學(xué)分析顯示ccRCC中NID1表達(dá)增高，與NID1升高呈正相關(guān)的500個(gè)差異表達(dá)基因主要富集在血管生成，且癌組織中NID1和CD31表達(dá)呈正相關(guān)。經(jīng)過條件培養(yǎng)基處理后，與NID1空載組相比，NID1敲低組HUVEC遷移和成管能力減弱（P＜0.05），增殖能力無變化（P＞0.05）。在裸鼠模型中，與NID1空載組相比，NID1敲低組CD31表達(dá)明顯減少（P＜0.05）。結(jié)論 NID1在ccRCC中表達(dá)增高，同時(shí)對血管生成有促進(jìn)作用。

關(guān)鍵詞：癌，腎細(xì)胞；細(xì)胞外基質(zhì)；細(xì)胞增殖；血管新生

中圖分類號(hào)：R692.9 文獻(xiàn)標(biāo)志碼：A DOI：10.11958/20240301

Role of NID1 in angiogenesis of clear cell renal cell carcinoma

SUN Chuangxin， LI Gang△

1 Department of Urology， the Second Hospital of Tianjin Medical University， Tianjin 300211， China

△Corresponding Author E-mail： 797980@sina.com

Abstract： Objective To explore the expression of nestin-1 （NID1） in clear cell renal cell carcinoma （ccRCC） and its effect on angiogenesis. Methods The expression of NID1 in ccRCC was analyzed using data from the TCGA database， cell lines and clinical samples. Additionally， the relationship between NID1 and the angiogenesis marker CD31 was investigated. A stable knockdown 786-O cell line with reduced NID1 expression was generated through lentiviral transfection. The conditioned medium obtained from these cells was used to treat human umbilical vein endothelial cells （HUVECs）. HUVEC cells were divided into four groups： the DMEM group， the blank group， the NID1 empty vector group and the NID1 knockdown group. Cell proliferation ability was assessed using CCK-8 method， while tube formation ability and migration ability were evaluated through tube formation test and scratch test respectively. A mouse model of dextran hydrogel unloaded/NID1 knockdown tumor cell complex culture system was established and divided into the unloaded NID1 group and the NID1 knockdown group. Immunohistochemical staining was performed to detect the expression of CD31. Results Bioinformatics analysis revealed an increased expression of NID1 in ccRCC tissue. Furthermore， 500 differentially expressed genes positively correlated with elevated levels of NID1 were primarily enriched in angiogenesis-related processes. The results showed a positive correlation between the expression of NID1 and CD31 in cancer tissue. After treatment with conditioned medium derived from the knockdown group， HUVEC cells exhibited weakened migration and tube formation abilities in the empty vector control group （P＜0.05）， while their proliferation ability remained unchanges compared to the empty vector control group （P＞0.05）. In vivo experiments using a nude mouse model， the expression of CD31 demonstrated significantly lower levels in the NID1 knockdown group" （P＜0.05）. Conclusion The expression of NID1 is increased in ccRCC， and it can promote angiogenesis.

Key words： carcinoma， renal cell; extracellular matrix; cell proliferation; angiogenesis

腎透明細(xì)胞癌（clear cell renal cell carcinoma，ccRCC）是腎細(xì)胞癌（RCC）中最常見并且最嚴(yán)重的一種，占RCC的75%～80%［1-2］。ccRCC具有高度的血管生成能力，一些促血管生成因子，如血管內(nèi)皮生長因子（vascular endothelial growth factor，VEGF）和血小板源性生長因子（platelet-derived growth factor，PDGF）在ccRCC中始終過表達(dá)，導(dǎo)致ccRCC中大量新生血管形成［3］。這種異常的血管生成能夠?yàn)槟[瘤提供足夠的氧氣和營養(yǎng)物質(zhì)，從而促進(jìn)腫瘤的生長和進(jìn)展。巢蛋白1（nidogen-1，NID1）是基底膜主要組成蛋白，能夠與層黏連蛋白-1和Ⅳ型膠原形成三元復(fù)合體，穩(wěn)定基底膜網(wǎng)絡(luò)［4］。研究發(fā)現(xiàn)，在肝癌、結(jié)直腸癌、乳腺癌以及黑色素瘤等腫瘤中，NID1表達(dá)升高并且與轉(zhuǎn)移關(guān)系密切［5-7］。但是NID1在ccRCC的表達(dá)及相關(guān)功能尚不清楚。本研究通過數(shù)據(jù)庫分析、臨床樣本檢測以及體外細(xì)胞實(shí)驗(yàn)和體內(nèi)動(dòng)物模型，旨在探討NID1在ccRCC中的表達(dá)和功能，以期為ccRCC的診斷和治療提供參考。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

1.1.1 細(xì)胞系與動(dòng)物 人腎皮質(zhì)近曲小管上皮細(xì)胞HK-2，人ccRCC細(xì)胞786-O、OSRC-2、769-P、CAKI-1、ACHN，人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞（HUVEC）購自中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所細(xì)胞中心。5只SPF級(jí)5周齡雄性BALB/c-nu小鼠（體質(zhì)量18～20 g）購自北京華阜康生物科技股份有限公司，動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào)：SCXK（京）2020-0004，質(zhì)量合格證號(hào)110322241100244132。BALB/c-nu小鼠實(shí)驗(yàn)前適應(yīng)性飼養(yǎng)1周，溫度（22±2）℃，相對濕度60%±5%，光照條件設(shè)定為明暗各12 h循環(huán)交替，自由飲水、攝食，動(dòng)物實(shí)驗(yàn)經(jīng)過南開大學(xué)倫理委員會(huì)批準(zhǔn)（批準(zhǔn)號(hào)：2023-SYDWLL-000613）。

1.1.2 臨床樣本 選取天津醫(yī)科大學(xué)第二醫(yī)院2023年9—12月收治的10例ccRCC患者的癌組織。其中男8例，女2例，年齡43～68歲，平均（59.7±7.1）歲；病理WHO/ISUP分級(jí)：Ⅰ—Ⅱ級(jí)4例、Ⅱ—Ⅲ級(jí)4例、Ⅲ級(jí)1例、Ⅲ—Ⅳ級(jí)1例。納入標(biāo)準(zhǔn)：（1）經(jīng)病理學(xué)檢查確診為ccRCC。（2）均為初治患者，術(shù)前未接受放療、化療等。排除標(biāo)準(zhǔn)：（1）合并自身免疫系統(tǒng)疾病者。（2）合并嚴(yán)重泌尿系統(tǒng)疾病者。（3）臨床資料不完整者。本研究經(jīng)醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)（批準(zhǔn)編號(hào)：KY2024K244），患者及家屬簽署知情同意書。

1.1.3 主要試劑與儀器 空載（nc）和敲低（sh）NID1慢病毒購自吉?jiǎng)P基因；DMEM-1640培養(yǎng)基和胎牛血清購自上海逍鵬生物科技有限公司；胰蛋白酶、蛋白Marker、青/鏈霉素和DMSO購自賽默飛世爾科技公司；Puromycin、蛋白裂解液（RIPA）購自默克公司；CCK-8購自上海同仁化學(xué)公司；Matrigel基質(zhì)膠購自康寧生命科學(xué)有限公司；ECL化學(xué)發(fā)光底物購自默克密理博公司；鼠抗人β-actin購自上海圣克魯斯生物技術(shù)有限公司；鼠抗人CD31購自武漢三鷹生物技術(shù)有限公司；兔抗人NID1購自上海艾博抗貿(mào)易有限公司；山羊抗小鼠二抗購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司；CO2恒溫培養(yǎng)箱、酶標(biāo)儀購自賽默飛世爾科技公司；十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳（SDS-PAGE）電泳儀購自上海伯樂生命醫(yī)學(xué)產(chǎn)品有限公司；全自動(dòng)發(fā)光成像分析儀購自上海天能科技公司。

1.2 方法

1.2.1 ccRCC生物信息學(xué)分析 在癌癥和腫瘤基因圖譜（TCGA）數(shù)據(jù)庫（https：//portal.gdc.cancer.gov/）下載533例ccRCC患者相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)和臨床數(shù)據(jù)，其中72例患者有癌旁組織數(shù)據(jù)。533例患者中Ⅰ期267例，Ⅱ期57例，Ⅲ期123例，Ⅳ期83例，3例分期信息缺失；無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移422例，有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移79例，32例淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移信息缺失。使用RStudio對數(shù)據(jù)進(jìn)行整理，提取并計(jì)算NID1基因的表達(dá)數(shù)據(jù)，使用DAVID Functional Annotation Tools在線網(wǎng)站（https：//david.ncifcrf.gov/tools.jsp）對NID1相關(guān)差異表達(dá)基因進(jìn)行生物學(xué)過程（biological process，BP）富集。

1.2.2 Western blot檢測NID1和CD31表達(dá) 提取10例ccRCC患者癌組織總蛋白和各細(xì)胞系總蛋白。二喹啉甲酸（BCA）法測定各樣品蛋白質(zhì)濃度，采用10%的SDS-PAGE分離蛋白并轉(zhuǎn)移到PVDF膜。含5%脫脂奶粉的TBST室溫封閉1 h，洗膜后根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康募尤隢ID1（1∶1 000）、CD31（1∶5 000）、""""" β-actin（1∶1 000）一抗4 ℃孵育過夜，次日二抗（1：5 000）室溫下孵育1 h。ECL試劑顯色，多功能成像系統(tǒng)拍照，以β-actin為內(nèi)參，Image J軟件分析目的蛋白條帶的灰度值并計(jì)算相對表達(dá)量。

1.2.3 nc/sh NID1穩(wěn)定細(xì)胞系構(gòu)建 將40 μL HiTransG P感染液、50 μL nc/sh NID1基因慢病毒加入已在6孔板中貼壁且融合度約為30%的786-O細(xì)胞中，培養(yǎng)72 h后進(jìn)行傳代，并用含3 000 μg/L Puromycin的完全培養(yǎng)基進(jìn)行藥物篩選。待未感染病毒的細(xì)胞全部死亡，而感染病毒的細(xì)胞再無死亡后，對細(xì)胞進(jìn)行傳代處理。之后提取ncNID1 786-O、shNID1 786-O細(xì)胞蛋白并檢測NID1敲低效率。

1.2.4 條件培養(yǎng)基收集和分組 取正常培養(yǎng)、ncNID1 786-O、shNID1 786-O細(xì)胞，使用DMEM基礎(chǔ)培養(yǎng)基饑餓處理24 h后收集上清液作為條件培養(yǎng)基并檢測NID1表達(dá)。HUVEC分為4組：DMEM組、空白組（正常培養(yǎng)的786-O細(xì)胞上清液）、NID1空載組（ncNID1 786-O細(xì)胞上清液）、NID1敲低組（shNID1 786-O細(xì)胞上清液），并進(jìn)行相應(yīng)處理。

1.2.5 CCK-8法檢測HUVEC活性 96孔板每孔接種約1×104個(gè)HUVEC，每組3個(gè)復(fù)孔，每孔使用100 μL不同條件培養(yǎng)基處理24 h，隨后加入10 μL的CCK-8試劑，并置于37 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中孵育2 h，多功能酶標(biāo)儀測定各孔450 nm波長處光密度（OD）值。

1.2.6 劃痕實(shí)驗(yàn)檢測HUVEC遷移能力 HUVEC傳代后接種于12孔板，接種密度為2×105個(gè)/孔。培養(yǎng)24 h后，用1 mL槍頭在孔中央劃出1條直線，將劃痕中細(xì)胞沖洗掉，于顯微鏡下采集細(xì)胞圖像，用Image J軟件定量各組劃痕面積并記為S1，然后分組處理細(xì)胞24 h，再次測量各組劃痕面積并記為S2，計(jì)算各組細(xì)胞遷移愈合率。遷移愈合率=（S1-S2）/S1×100%。

1.2.7 成管實(shí)驗(yàn)檢測HUVEC血管形成能力 將胰酶消化后的HUVEC重懸計(jì)數(shù)，吸取50 μL含3×104個(gè)細(xì)胞與100 μL不同條件培養(yǎng)基混合，將50 μL細(xì)胞懸液加入到基質(zhì)膠中，設(shè)置3個(gè)復(fù)孔。在細(xì)胞培養(yǎng)箱中放置4 h后取出，在鏡下觀察拍照并計(jì)數(shù)成管數(shù)。

1.2.8 水凝膠復(fù)合體系裸鼠模型構(gòu)建及標(biāo)本采集 ncNID1 786-O、shNID1 786-O細(xì)胞傳代后計(jì)數(shù)，并配制25 μL含1×107個(gè)細(xì)胞的細(xì)胞懸液，與125 μL右旋糖酐水凝膠復(fù)合物混合，將其注射至5只BALB/c小鼠背側(cè)皮下。小鼠左側(cè)注射ncNID1 786-O復(fù)合物（NID1空載組），右側(cè)注射shNID1 786-O復(fù)合物（NID1敲低組），注射后觸摸到小鼠背側(cè)皮下有黃豆大小堅(jiān)硬腫塊即表示模型構(gòu)建成功。繼續(xù)喂養(yǎng)小鼠21 d后，頸椎脫臼處死小鼠，剪開背側(cè)皮膚，小心剝離出凝膠組織塊，用PBS清洗并拍照，之后放入4%多聚甲醛中。

1.2.9 免疫組化染色檢測凝膠組織塊中CD31表達(dá) 將多聚甲醛中固定48 h的標(biāo)本石蠟包埋，制備切片（4 μm），脫蠟后免疫組化染色CD31，脫水封片后在電子顯微鏡下觀察染色情況并拍照計(jì)數(shù)。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用GraphPad Prism 8.0進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計(jì)量資料以[[x] ±s

]表示，2組間采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)，多組間比較采用單因素方差分析，多重比較采用LSD-t法，相關(guān)性分析采用Pearson法。P＜0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 NID1在ccRCC組織和細(xì)胞中的表達(dá) 數(shù)據(jù)庫分析結(jié)果顯示，與癌旁組織相比，ccRCC癌組織中NID1表達(dá)增高（52.62±45.01 vs. 149.50±108.00，t=7.519，P＜0.01）。在不同分期（Ⅰ期156.12±102.68，Ⅱ期127.65±92.76，Ⅲ期144.72±97.50，Ⅳ期150.59±144.48，F(xiàn)=1.195）和有無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移患者（149.38±144.98 vs. 150.66±99.31，t=0.097）中NID1表達(dá)差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P＞0.05）。細(xì)胞NID1檢測結(jié)果顯示，與HK-2細(xì)胞相比，ACHN、786-O、CAKI-1、OSRC-2腎癌細(xì)胞系中NID1表達(dá)均增高，其中786-O細(xì)胞中表達(dá)最高，見圖1，選取786-O細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

]

2.2 NID1在ccRCC中的主要功能 通過對ccRCC中與NID1表達(dá)升高相關(guān)性最強(qiáng)的500個(gè)差異基因（Cor＞0.5，P＜0.05）進(jìn)行富集，顯示這些基因的生物學(xué)功能主要富集在血管生成，見圖2A。Western blot結(jié)果顯示，臨床標(biāo)本癌組織中NID1與血管生成標(biāo)志物CD31表達(dá)呈正相關(guān)（r=0.706，P＜0.05），見圖2B、C。

2.3 786-O細(xì)胞中NID1轉(zhuǎn)染效率驗(yàn)證 shNID1 786-O組細(xì)胞中NID1表達(dá)明顯低于ncNID1 786-O組（0.31±0.06 vs. 1.10±0.07，t=14.310，P＜0.01）。相較于正常培養(yǎng)組（0.80±0.06）和ncNID1 786-O組（0.81±0.07），shNID1 786-O組（0.34±0.01）細(xì)胞上清液中NID1分泌明顯減少（n=3，F(xiàn)=75.380，P＜0.01），見圖3。

2.4 敲低NID1表達(dá)對HUVEC增殖、成管和遷移能力的影響 CCK-8結(jié)果顯示，4組細(xì)胞增殖能力差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。與DMEM相比，空白組和NID1空載組HUVEC形成血管數(shù)目增多，遷移愈合率升高（P＜0.05）；與NID1空載組相比，NID1敲低組形成血管數(shù)目減少，遷移愈合率下降（P＜0.05），見表1，圖4、5。

2.5 NID1表達(dá)對裸鼠體內(nèi)血管生成的影響 模型動(dòng)物組織標(biāo)本CD31免疫組化染色結(jié)果顯示，NID1敲低組較NID1空載組CD31陽性細(xì)胞數(shù)明顯減少（個(gè)/視野：105.20±60.03 vs. 227.80±62.21，n=5，t=3.171，P＜0.05），敲低NID1后血管生成減少，見圖6。

3 討論

ccRCC具有高度的血管生成能力，在大多數(shù)ccRCC中，抑癌基因VHL經(jīng)常發(fā)生突變或缺失［8］。VHL可作為E3泛素連接酶復(fù)合物的識(shí)別組分，負(fù)責(zé)低氧誘導(dǎo)因子（hypoxia inducible factor，HIF）的識(shí)別，通過用泛素標(biāo)記蛋白質(zhì)來靶向蛋白質(zhì)進(jìn)行蛋白酶體降解［9-10］。VHL蛋白異常或缺失會(huì)導(dǎo)致HIF-1降解減少，表達(dá)水平增高，使其下游基因，如VEGF、PDGF等蛋白的表達(dá)增加，從而產(chǎn)生大量的新生血管［11］。而腫瘤血管生成是腫瘤細(xì)胞持續(xù)存活和發(fā)育所必需的，在其生長、侵襲和轉(zhuǎn)移中起著重要作用［12-13］。因此，除了針對早期ccRCC的手術(shù)治療外，抗血管生成治療已成為了晚期和復(fù)發(fā)轉(zhuǎn)移性ccRCC患者的有效治療手段［14］。靶向血管生成的治療藥物，特別是酪氨酸激酶抑制劑（TKI），如舒尼替尼和帕唑帕尼能夠改善患者預(yù)后，已成為轉(zhuǎn)移性ccRCC的一線治療藥物［15］。但是對TKI的耐藥在臨床上很常見，特別是在長期治療后。其耐藥機(jī)制可能與促血管生成信號(hào)通路、腫瘤微環(huán)境改變有關(guān)［16］。因此找到新的治療靶點(diǎn)或許能夠提高ccRCC的治療效果。

NID1是基底膜的重要組成部分，主要是維持基底膜的穩(wěn)定和細(xì)胞的正常生長［17］。NID1還能夠與層黏連蛋白、膠原蛋白、蛋白聚糖和細(xì)胞表面受體相互連接，控制細(xì)胞極化、遷移和侵襲［7］。有報(bào)道稱NID1可通過靶向肌球蛋白-10降低內(nèi)皮細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)的黏附，增強(qiáng)內(nèi)皮細(xì)胞的遷移和血管形成能力［18］。另有研究發(fā)現(xiàn)，NID1表達(dá)異常與腫瘤發(fā)生發(fā)展關(guān)系密切，高表達(dá)的NID1能夠通過提高肝細(xì)胞癌［5］和唾液腺樣囊性癌［19］細(xì)胞的遷移和侵襲能力，從而促進(jìn)腫瘤的轉(zhuǎn)移。本研究結(jié)果顯示，NID1在ccRCC中表達(dá)增高，但是與轉(zhuǎn)移和分期關(guān)系不大，主要與血管新生功能有關(guān)。動(dòng)物模型結(jié)果也顯示，沉默NID1能夠抑制體內(nèi)的血管形成。新生的血管主要是由內(nèi)皮細(xì)胞增殖和遷移形成［20］。本研究細(xì)胞結(jié)果顯示，沉默NID1可以抑制HUVEC的遷移和成管，但是對其增殖能力沒有影響。因此筆者推測，NID1對ccRCC血管生成的促進(jìn)作用可能是通過增強(qiáng)血管內(nèi)皮細(xì)胞的遷移來實(shí)現(xiàn)的。

綜上所述，NID1在ccRCC中表達(dá)升高，能夠促進(jìn)ccRCC中的血管形成，其機(jī)制可能與改變血管內(nèi)皮細(xì)胞的遷移能力有關(guān)。本研究為NID1在ccRCC的表達(dá)和血管新生中的影響提供了理論基礎(chǔ)和實(shí)驗(yàn)依據(jù)。但是本研究僅通過體內(nèi)體外實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證了NID1對ccRCC血管生成的促進(jìn)作用，具體的作用機(jī)制尚不清楚，還需要進(jìn)一步研究。

參考文獻(xiàn)

［1］"""" RIZZO M，CALIò A，BRUNELLI M，et al. Clinico-pathological implications of the 2022 WHO renal cell carcinoma classification［J］. Cancer Treat Rev，2023，116：102558. doi：10.1016/j.ctrv.2023.102558.

［2］"""" CHEN Y W，WANG L，PANIAN J，et al. Treatment landscape of renal cell carcinoma［J］. Curr Treat Options Oncol，2023，24（12）：1889-1916. doi：10.1007/s11864-023-01161-5.

［3］"""" CHOUEIRI T K，KAELIN W G Jr. Targeting the HIF2-VEGF axis in renal cell carcinoma［J］. Nat Med，2020，26（10）：1519-1530. doi：10.1038/s41591-020-1093-z.

［4］"""" KUAN M I，CARUSO L B，ZAVALA A G，et al. Human cytomegalovirus utilizes multiple viral proteins to regulate the basement membrane protein nidogen 1［J］. J Virol，2022，96（20）：e0133622. doi：10.1128/jvi.01336-22.

［5］"""" MAO X，TEY S K，YEUNG C，et al. Nidogen 1-enriched extracellular vesicles facilitate extrahepatic metastasis of liver cancer by activating pulmonary fibroblasts to secrete tumor necrosis factor receptor 1［J］. Adv Sci（Weinh），2020，7（21）：2002157. doi：10.1002/advs.202002157.

［6］"""" ALE?KOVI? M，WEI Y，LEROY G，et al. Identification of nidogen 1 as a lung metastasis protein through secretome analysis［J］. Genes Dev，2017，31（14）：1439-1455. doi：10.1101/gad.301937.117.

［7］"""" ROKAVEC M，JAECKEL S， HERMEKING H. Nidogen-1/NID1 function and regulation during progression and metastasis of colorectal cancer［J］. Cancers（Basel），2023，15（22）：5316. doi：10.3390/cancers15225316.

［8］"""" JONASCH E，DONSKOV F，ILIOPOULOS O，et al. Belzutifan for renal cell carcinoma in von hippel-lindau disease［J］. N Engl J Med，2021，385（22）：2036-2046. doi：10.1056/NEJMoa2103425.

［9］"""" BERGQVIST C，EZZEDINE K. Vitiligo：a review［J］. Dermatology，2020，236（6）：571-592. doi：10.1159/000506103.

［10］""" KIM H，SHIM B Y，LEE S J，et al. Loss of Von hippel-lindau（VHL） tumor suppressor gene function： VHL-HIF pathway and advances in treatments for metastatic renal cell carcinoma（RCC）［J］. Int J Mol Sci，2021，22（18）：9795. doi：10.3390/ijms22189795.

［11］""" KAELIN W G Jr. Von Hippel-Lindau disease： insights into oxygen sensing， protein degradation， and cancer［J］. J Clin Invest，2022，132（18）：e162480. doi：10.1172/JCI162480.

［12］""" TELEANU R I，CHIRCOV C，GRUMEZESCU A M，et al. Tumor angiogenesis and anti-angiogenic strategies for cancer treatment［J］. J Clin Med，2019，9（1）：84. doi：10.3390/jcm9010084.

［13］""" JIANG X，WANG J，DENG X，et al. The role of microenvironment in tumor angiogenesis［J］. J Exp Clin Cancer Res，2020，39（1）：204. doi：10.1186/s13046-020-01709-5.

［14］""" YANG J，WANG K， YANG Z. Treatment strategies for clear cell renal cell carcinoma： Past， present and future［J］. Front Oncol，2023，13：1133832. doi：10.3389/fonc.2023.1133832.

［15］""" ANGULO J C，SHAPIRO O. The changing therapeutic landscape of metastatic renal cancer［J］. Cancers（Basel），2019，11（9）：1227. doi：10.3390/cancers11091227.

［16］""" ASTORE S，BACIARELLO G，CERBONE L，et al. Primary and acquired resistance to first-line therapy for clear cell renal cell carcinoma［J］. Cancer Drug Resist，2023，6（3）：517-546. doi：10.20517/cdr.2023.33.

［17］""" ZHOU S，CHEN S，PEI Y A，et al. Nidogen： a matrix protein with potential roles in musculoskeletal tissue regeneration［J］. Genes Dis，2022，9（3）：598-609. doi：10.1016/j.gendis.2021.03.004.

［18］""" CHENG P，CAO T，ZHAO X，et al. Nidogen1-enriched extracellular vesicles accelerate angiogenesis and bone regeneration by targeting myosin-10 to regulate endothelial cell adhesion［J］. Bioact Mater，2022，12：185-197. doi：10.1016/j.bioactmat.2021.10.021.

［19］""" HAN N，LI X，WANG Y，et al. HIF-1α induced NID1 expression promotes pulmonary metastases via the PI3K-AKT pathway in salivary gland adenoid cystic carcinoma［J］. Oral Oncol，2022，131：105940. doi：10.1016/j.oraloncology.2022.105940.

［20］""" LEE H W，XU Y，HE L，et al. Role of venous endothelial cells in developmental and pathologic angiogenesis［J］. Circulation，2021，144（16）：1308-1322. doi：10.1161/CIRCULATIONAHA.121.054071.

（2024-03-12收稿 2024-06-13修回）

（本文編輯 胡小寧）

基金項(xiàng)目：天津市自然科學(xué)基金項(xiàng)目（21JCYBJCO1690）

作者單位：天津醫(yī)科大學(xué)第二醫(yī)院泌尿外科（郵編300211）

作者簡介：孫創(chuàng)新（1996），男，碩士在讀，主要從事泌尿外科方面研究。E-mail：sunchuangxin@tmu.edu.cn

△通信作者 E-mail：797980@sina.com

細(xì)胞與分子生物學(xué)