楊柳 劉建華 張智潔 劉勇 秦曉松
(中國醫(yī)科大學附屬盛京醫(yī)院檢驗科,沈陽 110004)
肺炎克雷伯菌是寄居于人體呼吸道及腸道的條件致病菌,為革蘭陰性腸桿菌科細菌,常造成嚴重的院內感染,如敗血癥、尿路感染、腹腔內感染等。隨著抗生素的廣泛使用,細菌耐藥現(xiàn)象日益嚴重。碳青霉烯類抗生素,即亞胺培南、美羅培南等,具有抗菌活性強、抗菌譜廣、對超廣譜β-內酰胺酶(extended spectrum β-lactamases,ESBLs)穩(wěn)定等特點,常用來治療多重耐藥肺炎克雷伯菌導致的嚴重感染。然而,自從碳青霉烯酶的發(fā)現(xiàn),使這些細菌對幾乎除了替加環(huán)素(tigecycline,TIG)及多黏菌素外的所有抗生素高度耐藥,因此,替加環(huán)素引起了學者的高度重視,被認為是治療耐碳青霉烯肺炎克雷伯菌(carbapenem-resistantKlebsiella pneumoniae,CRKP)感染的最后一道防線[1]。
替加環(huán)素是為抵抗四環(huán)素類抗生素耐藥而對米諾環(huán)素進行修飾而成的衍生物,是一種新型的甘氨酰環(huán)素類抗生素。2005年,美國食品與藥品監(jiān)督管理局(Food and Drug Administration,FDA)批準替加環(huán)素治療復雜的腹腔感染、復雜的皮膚和軟組織感染以及社區(qū)獲得性細菌性肺炎[2]。2012年在我國批準上市。但目前,我國所采用的美國臨床和實驗室標準協(xié)會(Clinical and Laboratory Standards Institute,CLSI)制定的標準中尚無替加環(huán)素的體外藥敏試驗的操作指南及結果判定標準,并且替加環(huán)素的理化性質不穩(wěn)定,進行體外藥敏試驗時對環(huán)境要求較高,因此,臨床實驗室常采用的藥敏方法在對替加環(huán)素耐藥性評估方面往往會出現(xiàn)偏差。為了向臨床合理應用替加環(huán)素治療CRKP感染提供可靠的依據(jù),評價替加環(huán)素對CRKP不同體外藥敏試驗的方法學尤為重要。
本研究共收集遼寧省內多家大型三甲醫(yī)院分離的CRKP 269株,分別采用微量肉湯稀釋法、KB紙片擴散法、Vitek-2儀器法及E試驗法檢測其對替加環(huán)素的耐藥表型,比較檢測結果的差異性,對不同體外藥敏試驗的方法學進行評價,且本研究首次對國產(chǎn)藥敏紙片及E試驗藥敏試驗條進行評估,旨在初步了解遼寧地區(qū)CRKP對替加環(huán)素的耐藥情況,更嚴謹?shù)貫榕R床合理用藥提供依據(jù)。
收集遼寧省多家大型三甲醫(yī)院自2011年1月—2016年12月住院患者非重復CRKP共269株,其中中國醫(yī)科大學附屬盛京醫(yī)院41株、遼寧省人民醫(yī)院144株、大連醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院38株、大連市中心醫(yī)院20株、中國醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院10株、中國人民解放軍第202醫(yī)院9株、遼陽市中心醫(yī)院5株、本溪市中心醫(yī)院1株、遼寧中醫(yī)藥大學附屬醫(yī)院1株。在受試菌株中,46.5%(125/269)來源于重癥監(jiān)護病房,11.2%(31/269)來源于呼吸內科,9.7%(26/269)來源于急診科,5.2%(14/269)來源于神經(jīng)外科,4.8%(13/269)來源于神經(jīng)內科。受試菌株標本類型包括:痰液66.9%(180/269),血液11.9%(32/269),尿液7.1%(19/269),其他14.1%(38/269)。標準質控菌株為大腸埃希菌ATCC25922。
Vitek-2全自動細菌鑒定與藥敏分析儀及革蘭陰性細菌藥物敏感性卡AST-N335(法國Bio-Merieux公司),替加環(huán)素標準品(Toronto Research Chemicals),替加環(huán)素藥敏紙片及替加環(huán)素E試驗法藥敏試驗條(溫州市康泰生物科技有限公司),M-H肉湯(英國Oxoid公司),MH瓊脂培養(yǎng)基(沈陽彥程生物制品有限公司)。紙片擴散法、E-試驗法及微量肉湯稀釋法所用M-H瓊脂或96孔板均需置于37℃恒溫孵箱,避光培養(yǎng)16~18h后讀取藥敏結果,判讀實驗結果時質控菌株ATCC25922抑菌圈直徑范圍應為20~27mm,MIC值范圍應為0.0~0.25μg/mL以證明在控[3]。
本研究參照FDA腸桿菌科標準及歐洲藥敏試驗委員會(European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing,EUCAST)標準[4-5]對結果進行判讀(表1)。
以微量肉湯稀釋法為金標準,比較KB紙片擴散法、Vitek-2儀器法及E試驗法的一致性。基本一致率(essential agreement,EA):被評估方法所得MIC值與金標準MIC值相同或者相差±1個稀釋度的菌株百分比。分類一致率(categorical agreement,CA):被評估方法藥敏試驗結果(敏感、中介、耐藥)與金標準一致的菌株百分比。小誤差(minor error,mE):被評估方法將中介判定為敏感或耐藥。大誤差(major error,ME):被評估方法將敏感判定為耐藥。重大誤差(very major error,VME):被評估方法將耐藥判定為敏感。根據(jù)CLSI要求,可接受誤差范圍為:EA和CA≥90%,VME≤1.5%,ME≤3%,mE≤10%[6]。
269株CRKP經(jīng)微量肉湯稀釋法測得替加環(huán)素MIC50和MIC90分別為0.5和1μg/mL,E試驗法的MIC50和MIC90較微量肉湯稀釋法均低1個稀釋度(0.25和0.5μg/mL),而Vitek-2法的MIC90較微量肉湯稀釋法高出2個稀釋度。按照FDA及EUCAST判定標準,E試驗法敏感率最高,分別為100%(269/269)、98.9%(266/269);Vitek-2法耐藥率最高,分別為8.6%(23/269)、13.4%(36/269);紙片擴散法的中介率最高,分別為11.9%(32/269)、46.5%(125/269)。4種藥敏試驗方法測定CRKP對替加環(huán)素的敏感性分布見表2。
表1 替加環(huán)素對肺炎克雷伯菌藥敏判定標準Tab.1 Interpretation criteria of tigecycline for Klebsiella pneumoniae
以微量肉湯稀釋法為參考方法,E試驗法的EA為90.0%(242/269),多數(shù)菌株MIC值較微量肉湯稀釋法低1~2個稀釋度。按FDA判定標準,E試驗法的CA最高,為97.4%(262/269),Vitek-2法和紙片擴散法的CA較低,分別為87.4%(235/269)、85.9%(231/269),但均未出現(xiàn)VME。Vitek-2法的EA較低,為61.7%(166/269)且ME最高,為6.3%(17/269)。按EUCAST判定標準,E試驗法CA仍最高,為92.9%(250/269),而紙片擴散法CA最低,僅為46.5%(125/269)。E試驗法VME最高,為1.9%(5/269),E試驗法、Vitek-2法、紙片擴散法的ME分別為0%(0/269)、7.4%(20/269)、5.6%(15/269),見表3。
微量肉湯稀釋法測定替加環(huán)素MIC<2μg/mL的CRKP,即較敏感的菌株共251株,E試驗法測得絕大多數(shù)MIC值與微量肉湯稀釋法相同或相差±1個稀釋度,MIC值低于微量肉湯稀釋法2個稀釋度的占5.6%(14/251);Vitek-2法測得大多數(shù)MIC值高于微量肉湯稀釋法,其中高于微量肉湯稀釋法1~3個稀釋度的分別占40.2%(101/251)、27.5%(69/251)和10.4%(26/251)。微量肉湯稀釋法測定替加環(huán)素MIC≥2μg/mL的CRKP,即較耐藥的菌株共18株,E試驗法測得所有結果均低于微量肉湯稀釋法,其中低于微量肉湯稀釋法1~4個稀釋度的分別占33.3%(6/18)、50%(9/18)、11.1%(2/18)和5.6%(1/18);Vitek-2法測大多數(shù)MIC值高于微量肉湯稀釋法,其中高于微量肉湯稀釋法1~2個稀釋度的分別占33.3%(6/18)和44.4%(8/18),見表4。
表2 4種藥敏試驗方法測定CRKP對替加環(huán)素的敏感性分布[%(株)]Tab.2 Comparison of interpretative results and MIC50 and MIC90 of CRKP to tigecycline by susceptibility testing methods [%(No.)]
表3 E試驗法、Vitek-2法、紙片擴散法與微量肉湯稀釋法檢測結果比較[%(株)]Tab.3 Incidence of errors for selected testing methods [%(No.)]
表4 E試驗法、Vitek-2法與微量肉湯稀釋法MIC值比較[%(株)]Tab.4 Comparison of MIC values between E-test method,Vitek-2 method and broth microdilution method [%(No.)]
目前,由CRKP引起的感染的治療并未標準化,且通常取決于臨床微生物學實驗室提供的藥敏試驗結果。替加環(huán)素越來越多地應用于這些感染的治療,評估其對CRKP的抗菌活性十分重要,因此,確保臨床常用藥敏試驗方法的準確性是尤為必要的。
本研究中,微量肉湯稀釋法結果顯示,替加環(huán)素對CRKP保持較高的抗菌活性,MIC50和MIC90分別為0.5和1μg/mL;E試驗法的敏感率最高,為100%/98.9%(FDA/EUCAST判定標準),且無耐藥菌株產(chǎn)生,此法較微量肉湯稀釋法MIC值普遍低1~2個稀釋度;Vitek-2法的耐藥率最高,為8.6%/13.4%(FDA/EUCAST判定標準),多數(shù)菌株檢測MIC結果明顯高于微量肉湯稀釋法,此結果與相關研究報道相符[7-8]。紙片擴散法的中介率和耐藥率都較高,分別為11.9%/46.5%和2.6%/10%(FDA/EUCAST判定標準)。
E試驗法、Vitek-2法、紙片擴散法與微量肉湯稀釋法檢測結果比較發(fā)現(xiàn),E試驗法的EA與CA均符合CLSI標準,即大于90%,無ME,但存在VME,可能是由于E試驗法所測MIC值稀釋度普遍低于微量肉湯稀釋法,尤其是耐藥性較高的CRKP,出現(xiàn)VME的可能性更大。Vitek-2法為國內微生物實驗室常用的藥敏檢測方法,但本研究結果顯示,其EA與CA均較低,EA僅為61.7%,顯著低于CLSI參考標準,無VME,但ME較高,為6.3%/7.4%(FDA/EUCAST判定標準)。類似的研究報道表明[9],Vitek-2法適合檢測對替加環(huán)素敏感的大腸埃希菌,但對MIC>2μg/mL的菌株,Vitek-2法測得的替加環(huán)素的敏感率會顯著低于微量肉湯稀釋法。紙片擴散法的CA最低,為85.9%/46.5%(FDA/EUCAST判定標準),按FDA標準,紙片擴散法的mE、ME均在參考范圍內,且無VME。但紙片擴散法易受多種因素影響,如預溫育時間、接種菌含量、抗生素含量及其擴散能力、瓊脂厚度、紙片保存條件等等,因此,此法仍需大量臨床樣本加以驗證。
微量肉湯稀釋法測得MIC值≥2μg/mL的CRKP共18株,其中E試驗法經(jīng)反復復核后,測得MIC值低于微量肉湯稀釋法1~4個稀釋度的分別占33.3%(6/18)、50%(9/18)、11.1%(2/18)和5.6%(1/18),而微量肉湯稀釋法測得MIC值<2μg/mL的251株CRKP中,絕大部分菌株E試驗法測得的MIC值相同或降低1個稀釋度??梢?,對于耐藥性越高的CRKP,E試驗法與微量肉湯稀釋法的一致性越低,VME較高,對臨床用藥的指導意義也隨之減低;而微量肉湯稀釋法測得MIC值≥2μg/mL的18株CRKP中,Vitek-2法測定MIC值中≥8μg/mL的CRKP高達14株,對于微量肉湯稀釋法測得MIC值為1μg/mL的25株CRKP中,Vitek-2法測定仍有14株MIC值≥4μg/mL??梢姡瑢τ诿舾行栽礁叩腃RKP,Vitek-2法所測結果與微量肉湯稀釋法的一致性越低,ME較高,而對于非敏感的CRKP,Vitek-2法與微量肉湯稀釋法的一致性較高。總之,類似研究同樣可發(fā)現(xiàn)當微量肉湯稀釋法測得CRKP敏感率較高時,E試驗法與微量肉湯稀釋法的一致性較高[10];當微量肉湯稀釋法測得CRKP耐藥率較高時,Vitek-2法的結果與微量肉湯稀釋法一致性較高[11]。因此,微生物實驗室應嚴格監(jiān)測醫(yī)院及地區(qū)的耐藥趨勢,必要時采用微量肉湯稀釋法進一步確認。
綜上所述,微量肉湯稀釋法是目前被認為檢測替加環(huán)素體外藥物敏感性的金標準方法,但操作較繁瑣且對藥物及培養(yǎng)基等要求較高,我國已有明確的替加環(huán)素體外藥敏試驗的專家共識[2],操作時應嚴格遵照執(zhí)行;紙片擴散法測定結果錯誤率較高,并不適合單獨用于臨床樣本檢測;E試驗法雖然與微量肉湯稀釋法的一致性較高,但對于替加環(huán)素耐藥的CRKP,其測定MIC值顯著偏低,可見,國產(chǎn)藥敏紙片及E試驗條均需要進一步驗證;Vitek-2法ME較高,其測定MIC值顯著高于微量肉湯稀釋法。因此,CRKP對替加環(huán)素耐藥性檢測的幾種常用藥敏試驗方法均有其局限性,可考慮聯(lián)合檢測,對于結果不一致的情況,均應參考微量肉湯稀釋法。
本次研究收集了遼寧省內多家大型三甲醫(yī)院的CRKP,藥敏試驗結果發(fā)現(xiàn),絕大多數(shù)CRKP對替加環(huán)素仍保持較高的敏感性,可見,替加環(huán)素對于臨床治療CRKP感染仍是一個重要的手段。