李建周,陳曉華,羅思詩
(衡陽師范學(xué)院生命科學(xué)與環(huán)境學(xué)院,湖南衡陽421008)
豆渣中水不溶性膳食纖維的提取及性質(zhì)研究
李建周,陳曉華*,羅思詩
(衡陽師范學(xué)院生命科學(xué)與環(huán)境學(xué)院,湖南衡陽421008)
以豆渣為原料,采用酶法提取豆渣中水不溶性膳食纖維(IDF),并對IDF的性質(zhì)進(jìn)行初步研究。其中由單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)得出豆渣IDF酶法提取的最佳提取工藝為:蛋白酶酶解溫度50℃、時(shí)間5 h、用量25mg/g,α-淀粉酶酶解溫度70℃、時(shí)間1 h、用量6mg/g,糖化酶酶解溫度50℃、時(shí)間30min、用量5mg/g,此工藝條件下提取率為80.13%。酶法提取豆渣IDF成品的功能特性較好,其持水力為9.66g/g,溶脹性為4.94mL/g,持油力為4.92 g/g。
豆渣;水不溶性膳食纖維;酶解
膳食纖維是指不被人體消化的多糖類碳水化合物和木質(zhì)素的總稱[1],可分為水溶性膳食纖維和水不溶性膳食纖維兩大類。膳食纖維目前被認(rèn)為是“第七大營養(yǎng)素”[2],持水性和溶脹性好,具有調(diào)節(jié)膽固醇、降低血壓、預(yù)防膽結(jié)石、防止便秘、腸憩室癥及腸道癌的作用[3-5]。
豆渣是豆腐、豆奶、豆干等豆制品加工中的主要副產(chǎn)物[6],約占全豆干重的15%~20%,富含油脂(12.4%)、蛋白質(zhì)(19.32%)、纖維素(51.8%)。中國大豆產(chǎn)量高,豆制品加工業(yè)發(fā)達(dá),但副產(chǎn)物豆渣利用率非常低。目前,豆渣只是作為飼料或者廢棄物丟掉,其富含的營養(yǎng)素沒有得到充分利用,這不僅浪費(fèi)資源,還造成環(huán)境污染[7]。豆渣中富含膳食纖維,其水溶性膳食纖維含量比較低,是一種十分理想的纖維素源。目前,提取膳食纖維的方法有化學(xué)法、酶法、膜分離法及生物發(fā)酵法[8]等。其中,酶法提取膳食纖維反應(yīng)條件溫和,對產(chǎn)品的破壞性小。本項(xiàng)目利用酶法提取豆渣中水不溶性膳食纖維,旨在為豆渣中膳食纖維在食品中的應(yīng)用提供依據(jù)。
1.1 材料與儀器
1.1.1 試驗(yàn)原料
新鮮豆渣:家用作坊生產(chǎn)豆腐后的豆渣。
1.1.2 酶制劑
α-淀粉酶(酶活力為10 000U/g)、糖化酶(酶活力為100 000U/g)、堿性蛋白酶(酶活力為200 000U/g):江蘇銳陽生物科技有限公司。
1.1.3 儀器與設(shè)備
FA2204B分析天平、YP1002N電子天平:上海精密科學(xué)儀器有限公司;DHG-9240電熱鼓風(fēng)干燥箱、HH-(S)6恒溫水浴鍋:金壇市安普實(shí)驗(yàn)儀器廠;KC-100高速粉碎機(jī):北京開創(chuàng)同和科技發(fā)展有限公司;DL-7LM低速冷凍離心機(jī):湖南星科科學(xué)儀器有限公司;PB-10酸度計(jì):長沙康源科技開發(fā)有限公司;SHBIII真空抽濾機(jī):鄭州長城科工貿(mào)有限公司;YHB-NZD-Z電熱蒸餾水器:上海博訊實(shí)業(yè)有限公司。
1.2 干豆渣粉的制備
將選好的新鮮豆渣稱取50 g,用水分活度計(jì)測量水分活度Aw,再將其放入80℃的干燥箱里烘干至恒重后粉碎,密封儲(chǔ)存?zhèn)溆?,?jīng)測定豆渣水分含量為85.3%,水分活度(Aw)為0.92。
1.3 膳食纖維的提取
1.3.1 酶法提取豆渣中膳食纖維
1)準(zhǔn)確稱取10 g干豆渣粉,置于500mL燒杯中,編號(hào)。
2)在每個(gè)燒杯中加入250mL 60℃的熱水,用玻璃棒攪拌直到樣品完全分散。
3)α-淀粉酶處理:調(diào)pH至6.0~7.0,加入30U/g中溫α-淀粉酶溶液6mg/g,充分?jǐn)嚢韬笥帽ur膜密封,放入60℃水浴鍋中酶解1 h。
4)糖化酶處理:調(diào)pH至4.0~4.5,加入40 U/g糖化酶溶液4mg/g,充分?jǐn)嚢韬笥帽ur膜密封,放入60℃水浴鍋中酶解1 h。
5)蛋白酶處理:調(diào)pH至8.5~10.0,加入25mg/g的堿性蛋白酶,充分?jǐn)嚢韬笥帽ur膜密封,放入50℃~60℃的水浴鍋中酶解3 h。
6)離心脫水:將酶處理后的豆渣溶液離心,倒掉上清液,沉淀物用去離子水洗滌至中性。
7)干燥、稱重:將處理后的沉淀物放入75℃干燥箱中干燥4 h左右,即得水不溶性膳食纖維。
1.3.2 酶法提取豆渣中水不溶性膳食纖維的工藝優(yōu)化
1.3.2.1 單因素試驗(yàn)
研究3種酶的溫度、時(shí)間、濃度對水不溶性膳食纖維的提取率影響,單因素試驗(yàn)時(shí)按照1.3.1的提取工藝,只改變其中的一個(gè)因素,其他因素不變。在最佳條件選出來后,根據(jù)最佳條件研究下一個(gè)影響因素,因素范圍的選擇根據(jù)商品酶推薦的最佳條件設(shè)定。單因素研究的范圍如下:
1)α-淀粉酶:溫度梯度50、60、70℃;時(shí)間梯度0.5、1、1.5 h;濃度梯度5、6、7mg/mL。
2)糖化酶:溫度梯度50、60、70℃;時(shí)間梯度0.5、1、1.5 h;濃度梯度3、4、5mg/mL。
3)蛋白酶:溫度梯度50、60、70℃;時(shí)間梯度3、4、5 h;濃度梯度25、26、27mg/mL。
1.3.2.2 正交試驗(yàn)
在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,考察α-淀粉酶加酶量、酶解時(shí)間、溫度三因素對豆渣中水不溶性膳食纖維提取率的影響,采用L9(34)正交表,因素水平見表1。
表1 α-淀粉酶提取豆渣中IDF工藝優(yōu)化正交試驗(yàn)因素水平Table1 Levelsof the factorsof orthogonal testwith alpha-starch enzym e
1.4 豆渣中水不溶性膳食纖維的理化性質(zhì)研究
1.4.1 提取率的測定
IDF含量的測定根據(jù)GB 5009.88-2014《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品中膳食纖維的測定》的方法進(jìn)行。
水不溶性膳食纖維提取率/%=[水不溶性膳食纖維的質(zhì)量(g)/原料豆渣的質(zhì)量(g)]×100
1.4.2 持水力測定
稱取0.5 g(m0)水不溶性膳食纖維樣品放入離心管中,稱其質(zhì)量得m1,加入30mL去離子水,振蕩混合5min,以3 000 r/min離心10min后,棄去上清液,擦干離心管內(nèi)外壁附著的水分,再稱離心管和其中物質(zhì)的總質(zhì)量得m2,按下列公式計(jì)算持水力(g/g):
1.4.3 溶脹性測定
稱取水不溶性膳食纖維樣品1.0 g(m0),放入量筒中,測干物質(zhì)體積(V1)。再向其中加入10mL去離子水,振蕩均勻后靜置24 h,得到充分吸水膨脹后膳食纖維的體積(V2),按下列公式計(jì)算溶脹性(mL/g):
1.4.4 持油力的測定
稱取0.5 g(m0)水不溶性膳食纖維樣品放入離心管中稱其質(zhì)量得m1,加入30mL玉米油,振蕩混合10min,以4 000 r/min離心15min后,棄去上清液,擦干離心管內(nèi)外壁附著的油,再稱離心管和其中物質(zhì)的總質(zhì)量得m2,按下列公式計(jì)算持油力(g/g):
2.1 酶法提取豆渣IDF工藝優(yōu)化
2.1.1 單因素試驗(yàn)
根據(jù)所買商品酶上推薦的最適酶解溫度、時(shí)間和用量范圍設(shè)定試驗(yàn)因素梯度。
2.1.1.1 酶解溫度的選擇
固定α-淀粉酶酶解時(shí)間為1 h,用量為5mg/g;糖化酶酶解時(shí)間為1 h,用量為5mg/g,蛋白酶酶解時(shí)間為3 h,用量為25mg/g。溫度范圍為50℃~70℃測定3種酶不同溫度下IDF提取率,如圖1所示。
圖1 3種酶不同溫度下IDF提取率Fig.1 Theextraction rateof IDFwith the threeenzymesin different tem peratures
由圖1可知,隨著蛋白酶酶解溫度的增加,豆渣IDF粗提取率降低,故蛋白酶的酶解溫度選50℃為最佳溫度,此時(shí)豆渣IDF粗提取率為(61.47±0.91)%;同理,分別控制除α-淀粉酶和糖化酶酶解溫度以外的因素不變,由圖1得出,α-淀粉酶酶解最佳溫度為60℃,此時(shí)豆渣IDF粗提取率為(65.73±0.69)%;糖化酶酶解最佳溫度為50℃,此時(shí)豆渣IDF粗提取率為(59.46±0.78)%。
2.1.1.2 酶解時(shí)間的選擇
1)α-淀粉酶和糖化酶
固定蛋白酶酶解時(shí)間為3 h,用量為25mg/g,酶解溫度為50℃;糖化酶酶解溫度為50℃,用量為5mg/g;α-淀粉酶酶解溫度為60℃,用量為5mg/g。酶解時(shí)間范圍為0.5 h~1.5 h,測定不同時(shí)間下IDF提取率,如圖2所示。
圖2 α-淀粉酶和糖化酶不同時(shí)間下IDF提取率Fig.2 Theextraction rateof IDFwith thealpha-starch enzyme and saccharifying enzyme in different times
由圖2可知,隨著α-淀粉酶酶解時(shí)間的增加,豆渣IDF粗提取率提高,當(dāng)時(shí)間為1.5 h時(shí),達(dá)最高點(diǎn),故α-淀粉酶酶解時(shí)間選1.5 h為最佳時(shí)間,此時(shí)豆渣IDF粗提取率為(64.5±0.04)%。同理,控制其他因素不變,糖化酶的酶解時(shí)間范圍為0.5 h~1.5 h,由圖2得出,糖化酶酶解時(shí)間為0.5 h時(shí),豆渣IDF粗提取率最高,此時(shí)豆渣IDF粗提取率為(61.33±0.86)%,即糖化酶的最佳酶解時(shí)間為0.5 h。
2)蛋白酶
固定α-淀粉酶酶解時(shí)間為1.5h,酶解溫度為60℃,用量為5mg/g;糖化酶酶解時(shí)間為0.5 h,酶解溫度為50℃,用量為5mg/g;蛋白酶酶解溫度為50℃,用量為25mg/g,酶解時(shí)間范圍為3 h~5 h,測定不同時(shí)間下IDF提取率,如圖3所示。
圖3 蛋白酶不同時(shí)間下IDF提取率、Fig.3 Theextraction rateof IDFwith thep rotease in different tim es
由圖3可知,隨著時(shí)間的增加,豆渣IDF粗提取率不斷提高,當(dāng)時(shí)間為5 h時(shí),粗提取率達(dá)最高,為(64.13± 0.88)%,即蛋白酶的最佳酶解時(shí)間為5 h。
2.1.1.3 加酶量的選擇
1)蛋白酶
固定α-淀粉酶酶解時(shí)間為1.5 h,溫度為60℃,用量為5mg/g;糖化酶酶解時(shí)間為0.5 h,溫度為50℃,用量為5mg/g;蛋白酶酶解時(shí)間為5 h,溫度為50℃,用量范圍為24mg/g~27mg/g,測定不同蛋白酶用量下的IDF提取率,如圖4所示。
圖4 蛋白酶不同用量下IDF提取率Fig.4 Theextraction rateof IDFWith indifferentprotein concentrations
由圖4可看出,當(dāng)?shù)鞍酌傅挠昧繛?5mg/g時(shí),達(dá)最高點(diǎn),此時(shí)豆渣IDF粗提取率為(63.84±0.81)%,即蛋白酶最佳酶解用量為25mg/g。
2)α-淀粉酶
固定蛋白酶的酶解時(shí)間為5 h,用量為25mg/g,溫度為50℃,糖化酶的酶解時(shí)間為0.5 h,溫度為50℃,用量為5mg/g,α-淀粉酶的酶解時(shí)間為1.5 h,溫度為60℃,用量范圍為5mg/g~8mg/g,測定不同α-淀粉酶用量下IDF提取率,如圖5所示。
圖5 α-淀粉酶不同用量下IDF提取率Fig.5 Theextraction rateof IDFWith indifferentalpha-starch enzyme concentrations
由圖5可看出,隨著用量增加,粗提取率提高,當(dāng)用量為6mg/g時(shí),達(dá)最高點(diǎn),之后隨著用量的增加,粗提取率逐漸降低,最高點(diǎn)時(shí)豆渣IDF粗提取率為(69.17±0.79)%,所以α-淀粉酶用量選6mg/g為最佳用量。
3)糖化酶
固定α-淀粉酶酶解時(shí)間為1.5h,酶解溫度為60℃,用量為6mg/g;蛋白酶酶解時(shí)間為5 h,用量為25mg/g,酶解溫度為50℃;糖化酶酶解時(shí)間為0.5 h,酶解溫度為50℃,用量范圍為3mg/g~6mg/g,測定不同糖化酶用量下IDF提取率,如圖6所示。
圖6 糖化酶不同用量下IDF提取率Fig.6 Theextraction rateof IDFwith indifferent saccharifying enzym e concentrations
由圖6可看出,隨著糖化酶用量增加,粗提取率逐漸提高,當(dāng)用量為5mg/g時(shí),達(dá)最高點(diǎn),之后隨著用量的增加,粗提取率降低,最高點(diǎn)時(shí)豆渣IDF粗提取率為(64.18±0.48)%,即糖化酶量選5mg/g為最佳用量。
綜上所述,提取豆渣中水不溶性膳食纖維的最佳條件為:蛋白酶的酶解溫度為50℃、時(shí)間為5 h、用量為25mg/g;α-淀粉酶的酶解溫度為60℃、時(shí)間為1.5h、用量為6mg/g;糖化酶的酶解溫度為50℃、時(shí)間為0.5h、用量為5mg/g。同時(shí)可以看出α-淀粉酶各因素的變化對豆渣IDF粗提取率影響最大,故對α-淀粉酶進(jìn)一步工藝優(yōu)化。
2.1.2 單因素試驗(yàn)最優(yōu)條件下酶法提取豆渣IDF工藝研究
本試驗(yàn)為蛋白酶、α-淀粉酶、糖化酶影響因素(溫度、時(shí)間、用量)達(dá)到最優(yōu)值時(shí)所進(jìn)行的試驗(yàn),即蛋白酶酶解溫度為50℃、時(shí)間為5 h、用量為25mg/g;α-淀粉酶酶解溫度為60℃、時(shí)間為1.5 h、用量為6mg/g;糖化酶酶解溫度為50℃、時(shí)間為30min、用量為5mg/g。結(jié)果表明此條件下豆渣中水不溶性膳食纖維的提取率為73.59%??梢?,控制好酶反應(yīng)的影響因素,豆渣IDF的提取率也隨之提高。
2.1.3 正交試驗(yàn)(α-淀粉酶最佳工藝參數(shù)的確定)
在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,α-淀粉酶各因素的變化對豆渣IDF粗提取率影響最大,因此通過優(yōu)化α-淀粉酶用量可進(jìn)一步提高豆渣IDF提取率。正交試驗(yàn)蛋白酶和糖化酶均采用單因素試驗(yàn)的最佳條件,以α-淀粉酶的用量、時(shí)間、溫度為影響因素,對豆渣IDF的提取率進(jìn)行正交試驗(yàn)分析。豆渣IDF的提取工藝正交試驗(yàn)結(jié)果與分析見表2。
表2 L9(34)正交試驗(yàn)結(jié)果與分析Table2 The resultsof orthogonalexperiment
由表2極差分析可知,α-淀粉酶水解各因素對豆渣中水不溶性膳食纖維提取率的影響順序?yàn)锳>C>B,即加酶量>溫度>時(shí)間。最優(yōu)工藝為A2C3B2,即當(dāng)α-淀粉酶用量為6mg/g、反應(yīng)時(shí)間為1 h、反應(yīng)溫度為70℃時(shí),獲得最高提取率,此時(shí)豆渣IDF提取率為80.13%。
2.2 酶法提取的豆渣IDF的性質(zhì)分析
豆渣IDF的感官品質(zhì)見表3。
表3 豆渣IDF的感官品質(zhì)Table3 The sensory evaluation of IDF
由表3以看出,酶法提取豆渣IDF的提取率約80%,所得豆渣IDF基本沒有什么不良?xì)馕?,顏色為黃棕色,含膠狀物質(zhì)較少。
豆渣IDF的物理特性見表4。
表4 豆渣IDF的物理特性Table4 Thephysicalpropertiesof IDF
由表4以看出,酶法所得豆渣IDF的持水力、溶脹性和持油力都比較高,由于酶解比較溫和,保持了膳食纖維的結(jié)構(gòu),得到的IDF形成膠狀物質(zhì)較少,用做食品添加劑大有可為。
本試驗(yàn)以豆渣為原料,利用酶法提取豆渣IDF,并通過單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)進(jìn)行工藝優(yōu)化。由單因素試驗(yàn)確定豆渣IDF的最佳提取工藝為:蛋白酶的酶解溫度為50℃、時(shí)間為5 h、用量為25mg/g;α-淀粉酶的酶解溫度為60℃、時(shí)間為1.5 h、用量為6mg/g;糖化酶的酶解溫度為50℃、時(shí)間為30min、用量為5mg/g,此時(shí)的豆渣IDF提取率為73.59%。通過正交試驗(yàn)對α-淀粉酶的酶解條件進(jìn)行研究,得出α-淀粉酶的最佳酶解條件為α-淀粉酶用量為6mg/g,酶解時(shí)間為1 h,酶解溫度為70℃,此時(shí)豆渣IDF提取率為80.13%。
酶法提取豆渣IDF成品的功能特性較好,其持水力達(dá)到9.66(g/g),溶脹性達(dá)4.94(mL/g),持油力達(dá)4.92(g/g),且無不良?xì)馕?,呈黃棕色粉末狀。這些性質(zhì)表明豆渣IDF具有保持水分、穩(wěn)定食品形態(tài)、改善食品口感的作用,是一種很有潛力的食品添加劑。
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Study on the Extraction and Properties of Water-insoluble Dietary Fiber from Bean Dregs
LIJian-zhou,CHENXiao-hua*,LUOSi-shi
(Collegeof Life Scienceand Enviroment,Hengyang NormalUniversity,Hengyang421008,Hunan,China)
This research studied on theextraction and propertiesofwater-insoluble dietary fiber(IDF)from bean dregs.The best extraction technology was obtained by themethods of single factor experiment and orthogonal test.The extraction technologywas that the protease ofwater bath temperaturewas50℃for 5 h with concentration of25mg/g,alpha-starch enzyme ofwater bath temperaturewas70℃for 1 h with concentration of6mg/g and glucoamylasewater bath temperaturewas50℃for 30min with concentration of5mg/g.In this condition, the extraction ratewas up to 80.13%.The propertiesof IDFwerewellwith water holding capacity of9.66 g/g, theexpansion of4.94mL/gand oilholding capacity of4.92 g/g.
bean dregs;water-insolubledietary fiber;enzymolysis
10.3969/j.issn.1005-6521.2017.07.007
2016-07-16
湖南省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(2015JJ6012);湖南省教育廳資助科研項(xiàng)目(15B034);糧油深加工與品質(zhì)控制湖南省2011協(xié)同創(chuàng)新項(xiàng)目資助;衡陽市科技發(fā)展計(jì)劃項(xiàng)目(2014KN54)
李建周(1979—),男(漢),助理工程師,碩士研究生,研究方向:食品分析檢測。
*通信作者:陳曉華(1981—),女(漢),講師,博士,研究方向:食品生物技術(shù)。