鄭國沛,賈小婷,彭 聰,賀智敏(廣州醫(yī)科大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院腫瘤研究所,廣東廣州510095)
miR-205通過靶向調(diào)控TBX18抑制神經(jīng)膠質(zhì)瘤細胞的侵襲能力*
鄭國沛,賈小婷,彭聰,賀智敏△
(廣州醫(yī)科大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院腫瘤研究所,廣東廣州510095)
[摘要]目的:探討微小RNA-205 ( miR-205)在神經(jīng)膠質(zhì)瘤組織中的表達模式及其在膠質(zhì)瘤細胞侵襲中的作用及可能機制。方法:用real-time PCR檢測配對神經(jīng)膠質(zhì)瘤組織中miR-205的表達,同時用免疫組化方法檢測配對組織中TBX18蛋白的表達量;用脂質(zhì)體將miR-205模擬物( miR-205 mimics)、miR-205抑制物( miR-205 inhibitor)以及相應(yīng)對照( control)導(dǎo)入U251膠質(zhì)瘤細胞后,Transwell實驗檢測細胞的侵襲能力變化;生物信息學(xué)分析結(jié)合螢光素酶報告基因?qū)嶒炗^察miR-205對TBX18的靶向調(diào)控作用;采用RNA干擾技術(shù)下調(diào)U251細胞中TBX18的表達,用Transwell實驗檢測細胞侵襲能力變化。結(jié)果: miR-205在82. 6%所檢測的神經(jīng)膠質(zhì)瘤組織中表達下調(diào),而TBX18在神經(jīng)膠質(zhì)瘤組織中表達上調(diào),兩者表達呈負相關(guān);過表達miR-205使U251細胞的侵襲細胞數(shù)下降( P<0. 01),抑制miR-205表達后U251侵襲細胞數(shù)增加( P<0. 01) ; miR-205在U251膠質(zhì)瘤細胞中能直接靶向抑制TBX18的表達,干擾TBX18的表達亦使U251細胞的侵襲細胞數(shù)下降( P<0. 01)。結(jié)論: miR-205在神經(jīng)膠質(zhì)瘤中表達下調(diào),miR-205可能通過靶向調(diào)控TBX18影響膠質(zhì)瘤細胞的侵襲能力,這將為完善膠質(zhì)瘤侵襲的分子機制及開發(fā)新治療策略以提高膠質(zhì)瘤治療效果提供有力的理論依據(jù)。
[關(guān)鍵詞]神經(jīng)膠質(zhì)瘤;微小RNA-205;腫瘤侵襲; TBX18蛋白
神經(jīng)膠質(zhì)瘤是最常見的原發(fā)性顱內(nèi)惡性腫瘤,其發(fā)病率高、治愈率低,嚴重危害人類健。膠質(zhì)瘤的高侵襲性極大地限制了其綜合治療效果的提高[1],因此,進一步探討膠質(zhì)瘤侵襲的分子機制,尋找相應(yīng)的治療靶標(biāo)具有重要意義。越來越多的研究表明microRNAs在腫瘤發(fā)生發(fā)展中及治療轉(zhuǎn)歸中的重要作用[2],其中微小RNA-205 ( microRNA-205,miR-205)在乳腺癌[3]、前列腺癌[4]及腎癌[5]等多種惡性腫瘤中存在異常表達并發(fā)揮重要功能,然而miR-205在神經(jīng)膠質(zhì)瘤中的作用有待研究。本課題將從組織及細胞水平探討miR-205神經(jīng)膠質(zhì)瘤中的作用及可能機制。
1細胞與試劑
U251人膠質(zhì)瘤細胞系購于中國科學(xué)院細胞庫。23例膠質(zhì)瘤及配對組織miRNAs的cDNA文庫由本室保存。DMEM培養(yǎng)基和胎牛血清購于Gibco; miR-205及U6特異性引物、miRNA實時定量PCR試劑、miR-205模擬物( miR-205 mimics)及相應(yīng)對照( mimics-control)購自QIAGEN; Trizol、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、realtime PCR檢測試劑及Oligofectamine購自Invitrogen; PCR引物及DNA片段由上海英濰捷基公司合成; Transwell試劑盒購自BD; TBX18 siRNA及相應(yīng)control、鼠抗人TBX18及β-actin的I抗和羊抗鼠IgGHRP II抗為Santa Cruz產(chǎn)品。
2方法
2.1細胞培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染U251細胞在37℃、5% CO2的條件下于含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液中常規(guī)培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染前1天將U251細胞接種于6孔板,當(dāng)細胞長到50%~70%融合后,更換為無血清DMEM培養(yǎng)基,按照操作說明用Lipofectamine 2000將miR-126 mimics及其相應(yīng)對照,或TBX18 siRNA及其相應(yīng)對照轉(zhuǎn)染入U251細胞,轉(zhuǎn)染5 h后,將無血清培養(yǎng)基更換為含10%胎牛血清的常規(guī)DMEM培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)48 h后,抽提RNA或蛋白以檢測相關(guān)分子的表達變化,或行Transwell實驗檢測細胞侵襲能力變化。
2.2Real-time PCRTrizol一步法提取細胞總RNA,取2 μg總RNA,按照Fermentas Revert Aid逆轉(zhuǎn)錄試劑盒操作步驟說明進行逆轉(zhuǎn)錄cDNA,再以cDNA為模板進行PCR擴增目的基因,用于real-time PCR擴增的內(nèi)參照基因GAPDH上、下游引物序列分別為5’-GAAGGTGAAGGTCGGAGTC-3’和5’-GAAGATGGTGATGGGATTTC-3’; TBX18上、下游引物序列分別為5’-TTCTGGCGACCATCACTACG-3’和5’-ACGCCATTCCCAGTACCTTG-3’;行miRNA的real-time PCR時以U6為內(nèi)參照,結(jié)果以2-ΔΔCt方法分析數(shù)據(jù),計算表達差異,實驗重復(fù)3次。
2.3Transwell實驗將包裝有Transwell小室的包裝盒從-20℃中取出放置室溫復(fù)溫,取出小室放入24孔板中,分別向小室的上、下室加入0. 5 mL已在細胞培養(yǎng)箱中預(yù)暖的培養(yǎng)基后,放置于細胞培養(yǎng)箱中進行水化2 h,水化后,小心吸棄上、下室里的液體。消化細胞制備5×107/L的細胞懸液。吸取0. 5 mL的完全培養(yǎng)基于24孔板內(nèi),將水化后的小室小
心轉(zhuǎn)移到含有完全培養(yǎng)基的24孔板內(nèi),避免產(chǎn)生氣泡。吸取0. 5 mL的細胞懸液于小室內(nèi),于細胞培養(yǎng)箱中孵育24 h后,吸棄上、下室里的液體,用棉簽小心擦凈Transwell膜上室面的細胞,用PBS洗滌3次,將遷移到膜下室面的細胞用冰預(yù)冷的甲醇固定30分鐘,用1%結(jié)晶紫被染色10 min,于流動水中漂洗,直至多余的結(jié)晶紫洗干凈,晾干后于顯微鏡下觀察并拍照記錄結(jié)果。
2.4Western blot實驗細胞用冰預(yù)冷的PBS漂洗3遍,加入含cocktail蛋白酶抑制劑的RAPI蛋白裂解液,置于冰上裂解30 min;吸取裂解混合液,4℃、12 000 r/min離心30 min,取上清即為細胞總蛋白。測定總蛋白濃度后按每孔40 μg進行10% SDSPAGE凝膠電泳分離蛋白,電轉(zhuǎn)移至PVDF膜后以5%脫脂奶粉室溫封閉2 h;加入稀釋后的TBX18 ( 1∶1 000)和β-actin( 1∶3 000) I抗,4℃孵育過夜,PBST洗滌后加HRP標(biāo)記的II抗室溫孵育1 h,ECL底物顯色。
2.5報告基因?qū)嶒瀸⒑铣珊蠸pe I和Hind III酶切位點及miR-205結(jié)合位點的TBX18-3’UTR正、反鏈DNA片段,以及缺失miR-205結(jié)合位點的正、反鏈DNA片段退火形成雙鏈后克隆入pMir-Report報告基因載體,分別獲得野生型報告基因載體( pMir-Wt)和突變型報告基因載體( pMir-Mut),野生型正、反鏈DNA序列分別為: 5’-ctagtTATAAAATGTACATATAATAGAAAATGAAGGCTCACTGGGTTTTTTGACTTTATa-3’和5’-agcttATAAAGTCAAAAAACCCAGTGAGCCTTCATTTTCTATTATATGTACATTTTATAa-3’;突變型正、反鏈DNA序列分別為: 5’-ctagtTATAAAATGTACATATAATAGAAA……CTCACTGGGTTTTT -TGACTTTA Ta-3’和5’-agcttATAAAGTC-AAAAAACCCAGTGA……TTTCTATTATATGTAC-ATT-TTATAa-3’。按每孔5 000個把U251細胞接種于96孔板,待細胞貼壁后,將miR-205 mimics和control分別與野生型或突變型報告基因載體及pRL-TK用Lipofectamine 2000共轉(zhuǎn)染U251細胞,轉(zhuǎn)染48 h后,用雙螢光素酶報告系統(tǒng)檢測試劑盒( Promega)于多功能酶標(biāo)儀上檢測螢光素酶的活性,每組3個復(fù)孔,以pRL-TK活性為內(nèi)對照標(biāo)化pMir-Report的活性,其中control和野生型報告基因組得到的值設(shè)為100,實驗重復(fù)3次。
2.6免疫組化實驗將23例膠質(zhì)瘤及配對組織石蠟切片放入60℃烘箱中烘烤2~4 h,二甲苯10 min 2次,無水乙醇10 min,95%乙醇10 min,75%乙醇10 min,50%乙醇10 min,ddH2O 10 min。3%的H2O2孵育10 min,ddH2O 3 min 3次,PBS浸泡5 min。將切片浸入0. 01 mol/L枸櫞酸緩沖液進行抗原熱修復(fù),PBS 5 min 3次。5% BSA室溫封閉20 min,孵育TBX18抗體( 1∶150) 4℃過夜。PBS 3 min 3次,滴加生物素標(biāo)記的II抗,37℃孵育1 h。PBS 3 min 3次。DAB顯色,蘇木素復(fù)染2 min,自來水沖洗。50%乙醇5 min,75%乙醇5 min,95%乙醇5 min,100%乙醇5 min,二甲苯10 min 2次。樹膠封片,顯微鏡下觀察。由2位病理醫(yī)生獨立判斷結(jié)果。
3統(tǒng)計學(xué)處理
采用SPSS 17. 0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)處理,計數(shù)資料采用χ2檢測,計量數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差( mean± SD)表示,兩組獨立樣本采用t檢驗,以P<0. 05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
1 miR-205抑制神經(jīng)膠質(zhì)瘤細胞的侵襲能力
為了探討miR-205是否參與神經(jīng)膠質(zhì)瘤的發(fā)生發(fā)展,檢測了23例神經(jīng)膠質(zhì)瘤組織及配對正常腦組織的miR-205的表達情況,發(fā)現(xiàn)相比于正常配對組織,miR-205在19例神經(jīng)膠質(zhì)瘤組織中表達下調(diào)2倍以上,即miR-205在82. 6%所檢測膠質(zhì)瘤組織中表達下調(diào)( P<0. 01)。既然miR-205在膠質(zhì)瘤組織中表達下調(diào),為了觀察miR-205在膠質(zhì)細胞中的作用,通過將miR-205的mimics導(dǎo)入U251膠質(zhì)瘤細胞,相比于control,mimics轉(zhuǎn)染后miR-205的表達上調(diào)了7. 48倍( P<0. 01),同時發(fā)現(xiàn)miR-205過表達明顯抑制了U251細胞的侵襲能力,miR-205過表達使U251細胞的侵襲細胞數(shù)下降( P<0. 01)。轉(zhuǎn)染miR-205 inhibitor至U251膠質(zhì)瘤細胞,與對照組相比,miR-205的表達量下調(diào)72. 35%( P<0. 01),Transwell實驗顯示抑制miR-205表達后U251侵襲細胞數(shù)增加( P<0. 01),見圖1。
Figure 1.Downregulation of miR-205 was observed in the glioma tissues and miR-205 inhibited glioma cell invasion.Mean±SD.n = 3.*P<0. 05,**P<0. 01 vs normal;##P<0. 01 vs mimics-control;△△P<0. 01 vs inhibitor-control.圖1 miR-205在膠質(zhì)瘤組織中低表達且抑制膠質(zhì)瘤細胞的侵襲轉(zhuǎn)移能力
2miR-205直接靶向調(diào)控TBX18的表達
miRNAs一般通過調(diào)控其靶基因的表達來實現(xiàn)生物學(xué)功能,通過生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn)TBX18 mRNA 3’UTR的116~122位置有一個在物種間保守的miR-205種子區(qū)結(jié)合位點。在配對膠質(zhì)瘤組織和正常組織中檢測TBX18的表達量,免疫組化實驗顯示TBX18在膠質(zhì)瘤組織中的表達量顯著高于其在配對正常組織中的表達量。同時發(fā)現(xiàn)將miR-205 mimics導(dǎo)入U251細胞后,TBX18的表達在mRNA水平無明顯改變,而在蛋白水平明顯下調(diào)。為了提供miR-205通過其種子區(qū)與TBX18的3’UTR互補結(jié)合而在轉(zhuǎn)錄后調(diào)控TBX18表達的直接證據(jù),報告基因?qū)嶒灠l(fā)現(xiàn),U251細胞中,相比于對照,miR-205能明顯抑制含有野生型結(jié)合位點報告基因的活性,使報告基因的活性下降了約63. 6%,而缺失結(jié)合位點的突變型則能取消miR-205對報告基因活性的抑制作用,提示TBX18是miR-205的直接調(diào)控靶標(biāo),見圖2。
Figure 2.miR-205 directly targeted TBX18 in the U251 cells.A: schematic of predicted miR-205 binding site in the 3'UTR of human TBX18 mRNA,which was broadly conserved among vertebrates; B: immunohistochemical assay showed that TBX18 was significantly overexpressed in the glioma tissues compared with the normal tissues; C: restoring miR-205 expression with miR-205 mimics repressed TBX18 expression at protein level but not at mRNA level; D: miR-205 suppressed the activity of luciferase linked by the 3'UTR of TBX18.Mean±SD.n =3.**P<0. 01 vs normal;##P<0. 01 vs mimics control;△△P<0. 01 vs pMir-Wt.圖2 miR-205在U251細胞中直接靶向調(diào)控TBX18
3下調(diào)TBX18表達抑制膠質(zhì)瘤細胞的侵襲能力
為了觀察TBX18是否參與了膠質(zhì)瘤細胞的侵襲,我們通過siRNA技術(shù)下調(diào)TBX18的表達,發(fā)現(xiàn)3 號siRNA-TBX18( si-3#)能明顯下調(diào)U251細胞中TBX18的蛋白表達,故在后續(xù)實驗中將采用si-3#干擾TBX18的表達。干擾TBX18表達后,U251細胞的侵襲能力明顯降低,侵襲細胞數(shù)下降( P<0. 01),見圖3。
Figure 3.TBX18 was upregulated in the glioma tissues,and downregulation of TBX18 inhibited U251 glioma cells invasion.Mean± SD.n =3.**P<0. 01 vs control.圖3 TBX18在膠質(zhì)瘤組織中高表達且下調(diào)其表達將抑制U251細胞的侵襲轉(zhuǎn)移能力
神經(jīng)膠質(zhì)瘤作為最常見的顱內(nèi)惡性腫瘤,其發(fā)病率約為5/100 000,膠質(zhì)瘤呈浸潤性生長,在腫瘤周圍2 cm以內(nèi)的正常腦組織中均可能有腫瘤細胞生長,因而惡性腦膠質(zhì)瘤形成的早期就具有很強的彌散能力,所以即使手術(shù)幾乎全切強化瘤組織后,仍不能避免其在術(shù)腔邊緣的復(fù)發(fā),手術(shù)很難完全切除,化療和放療既不能高度特異性地殺傷膠質(zhì)瘤細胞,治療效果差,又可能產(chǎn)生中樞神經(jīng)系統(tǒng)的毒、副作用。所以即便采用綜合治療,其預(yù)后仍很差,中位生存期仍極不理想[6],上述情況在近30年的臨床實踐中未得到根本改善,因此腦膠質(zhì)瘤仍是神經(jīng)外科領(lǐng)域的難治性疾病,闡明其發(fā)病機理、尋找新的有效的治療靶點仍然是神經(jīng)外科的熱點與難點。
miRNA是近年來生命科學(xué)界研究的熱點,越來越多的證據(jù)表明,miRNA作為表觀遺傳調(diào)控的方式之一,很可能在人類腫瘤的發(fā)生、發(fā)展和預(yù)后中起到了重要作用,從而為腫瘤等疾病的基因診斷與治療提供了新的突破口[2],尤其是在腫瘤的侵襲轉(zhuǎn)移方面具有非常重要的診治價值[7]。至于miRNAs在神經(jīng)膠質(zhì)瘤中作用,目前亦有所報道,如miR-106b-5p通過靶向調(diào)控多個抑癌基因而促進神經(jīng)膠質(zhì)瘤的成瘤能力[8],miR-195靶向抑制cyclin D1和cyclin E1而抑制神經(jīng)膠質(zhì)瘤細胞的增殖[9]。本課題研究發(fā)現(xiàn)miR-205在神經(jīng)膠質(zhì)瘤組織中的表達明顯低于配對正常組織,過表達miR-205則能明顯抑制膠質(zhì)瘤細胞的侵襲能力,提示miR-205在神經(jīng)膠質(zhì)瘤中可能起著抑癌基因的功能。miR-205基因位于染色體1q32. 2,自從發(fā)現(xiàn)與腫瘤的關(guān)系以來,由于在特定腫瘤中miR-205能靶向特定的基因表達,既能靶向癌基因,又能靶向抑癌基因,故顯示出了抑癌或促癌的雙重功能[10]。盡管發(fā)現(xiàn)在小鼠乳腺上皮細胞中miR-205靶向抑癌基因PTEN可能促進了腫瘤的起始[11],然而更多報道指出miR-205在三陰性乳腺癌和轉(zhuǎn)移性乳腺癌細胞或組織中表達明顯下調(diào),通過靶向調(diào)節(jié)HER3、ZEB1及ZEB2等的表達而抑制乳腺癌的增殖和侵襲轉(zhuǎn)移[12],提示了miR-205在乳腺癌中作用的具有細胞或組織特異性;目前為此,大部分報道m(xù)iR-205在前列腺癌細胞和組織中表達下調(diào),miR-205能通過維持基底膜和抑制MAPK信號通路而抑制前列腺癌的起始、進展和侵襲轉(zhuǎn)移,并且與預(yù)后呈負相關(guān)[4]。本課題首次發(fā)現(xiàn)了miR-205在神經(jīng)膠質(zhì)瘤侵襲中的作用,至于其作用機制,發(fā)現(xiàn)miR-205能直接靶向調(diào)控TBX18的蛋白表達,干擾下調(diào)神經(jīng)膠質(zhì)瘤細胞中TBX18的表達亦能明顯抑制膠質(zhì)瘤細胞的侵襲能力,顯示出與過表達miR-205相似的效果。
TBX18作為轉(zhuǎn)錄因子,目前的研究主要集中于心臟的發(fā)育。Wu等[13]的研究報道TBX18在前心外膜細胞中高表達,控制著冠狀血管發(fā)育的早期步驟,Takeichi等[14]的研究發(fā)現(xiàn)TBX18通過上調(diào)心外膜細胞中Slug的表達而誘導(dǎo)心外膜細胞的EMT(上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化)進程增加細胞遷移能力而進入心臟,在小鼠模型中發(fā)現(xiàn)TBX18在成年小鼠心外膜細胞中呈現(xiàn)低表達,而當(dāng)心臟損傷后,心外膜細胞中TBX18的表達明顯上調(diào),動員心外膜細胞分化心肌細胞等參與心臟的損傷修復(fù)[15],這些研究成果驗證了TBX18在心臟發(fā)育中的重要作用。根據(jù)文獻報道參與早期發(fā)育的細胞進程或基因與腫瘤的發(fā)生發(fā)展有著密切聯(lián)系,如EMT進程及其相關(guān)調(diào)節(jié)基因,本課題首次發(fā)現(xiàn)了TBX18參與神經(jīng)膠質(zhì)瘤細胞的侵襲作用,而至于其具體分子機制,如是否參與調(diào)節(jié)膠質(zhì)瘤細胞的EMT進程有待進一步研究。
綜上所述,本課題研究發(fā)現(xiàn)miR-205在神經(jīng)膠質(zhì)瘤組織中表達下調(diào),上調(diào)miR-205的表達能明顯抑制神經(jīng)膠質(zhì)瘤細胞的侵襲能力,在膠質(zhì)瘤細胞中TBX18是miR-205的直接靶基因且下調(diào)TBX18表達亦能明顯抑制膠質(zhì)瘤細胞的侵襲能力。本課題的研究將為完善神經(jīng)膠質(zhì)瘤侵襲的分子機制及以miR-205/TBX18軸為靶的分子干預(yù)以提高膠質(zhì)瘤治療效果的治療策略開發(fā)提供理論依據(jù)和基礎(chǔ)。
[參考文獻]
[1]Onishi M,Ichikawa T,Kurozumi K,et al.Angiogenesis and invasion in glioma[J].Brain Tumor Pathol,2011,28 ( 1) : 13-24.
[2]Kong YW,F(xiàn)erland-McCollough D,Jackson TJ,et al.microRNAs in cancer management[J].Lancet Oncol,2012,13( 6) : e249-e258.
[3]Radojicic J,Zaravinos A,Vrekoussis T,et al.MicroRNA expression analysis in triple-negative ( ER,PR and Her2/ neu) breast cancer[J].Cell Cycle,2011,10( 3) : 507-517.
[4]Hagman Z,Haflidadóttir BS,Ceder JA,et al.miR-205 negatively regulates the androgen receptor and is associated with adverse outcome of prostate cancer patients[J].Br J Cancer,2013,108( 8) : 1668-1676.
[5]Gottardo F,Liu CG,F(xiàn)erracin M,et al.Micro-RNA profiling in kidney and bladder cancers[J].Urol Oncol, 2007,25( 5) : 387-392.
[6]Hetschko H,Voss V,Horn S,et al.Pharmacological inhibition of Bcl-2 family members reactivates TRAIL-induced apoptosis in malignant glioma[J].J Neurooncol,2008,86( 3) : 265-272.
[7]Zhang J,Ma L.MicroRNA control of epithelial-mesenchymal transition and metastasis[J].Cancer Metastasis Rev,2012,31( 3-4) : 653-662.
[8]Liu F,Gong J,Huang W,et al.MicroRNA-106b-5p boosts glioma tumorigensis by targeting multiple tumor suppressor genes[J].Oncogene,2014,33( 40) : 4813-4822.
[9]Hui W,Yuntao L,Lun L,et al.MicroRNA-195 inhibits the proliferation of human glioma cells by directly targeting cyclin D1 and cyclin E1[J].PLoS One,2013,8( 1) : e54932.
[10]Wang D,Zhang Z,O’Loughlin E,et al.MicroRNA-205 controls neonatal expansion of skin stem cells by modulating the PI( 3) K pathway[J].Nat Cell Biol,2013,15 ( 10) : 1153-1163.
[11]Greene SB,Gunaratne PH,Hammond SM,et al.A putative role for microRNA-205 in mammary epithelial cell progenitors[J].J Cell Sci,2010,123( Pt 4) : 606-618.
[12]Iorio MV,Casalini P,Piovan C,et al.microRNA-205 regulates HER3 in human breast cancer[J].Cancer Res,2009,69( 6) : 2195-2200.
[13]Wu SP,Dong XR,Regan JN,et al.Tbx18 regulates development of the epicardium and coronary vessels[J].Dev Biol,2013,383( 2) : 307-320.
[14]Takeichi M,Nimura K,Mori M,et al.The transcription factors Tbx18 and Wt1 control the epicardial epithelialmesenchymal transition through bi-directional regulation of Slug in murine primary epicardial cells[J].PLoS One,2013,8( 2) : e57829.
[15]Zhou B,Honor LB,He H,et al.Adult mouse epicardium modulates myocardial injury by secreting paracrine factors[J].J Clin Invest,2011,121( 5) : 1894-1904.
miR-205 inhibits invasion of glioma cells via targeting TBX18
ZHENG Guo-pei,JIA Xiao-ting,PENG Cong,HE Zhi-min
( Cancer Research Center,Affiliated Tumor Hospital of Guangzhou Medical University,Guangzhou 510095,China.E-mail: hezhimin2005@ yahoo.com)
[ABSTRACT]AIM: To explore the expression pattern of microRNA-205 ( miR-205) in glioma tissues and its role in the invasion of glioma cells.METHODS: The expression of miR-205 and TBX18 was detected by real-time PCR and immunohistochemical observation,respectively.Transwell assay was used to examine the invasion change of U251 glioma cells after miR-205 overexpression via miR-205 mimics or decrease in miR-205 expression by miR-205 inhibitor.The target of miR-205 was searched by bioinformatics analysis combined with experimental analysis.The protein level of TBX18 was determined by Western blotting after siRNA transfection and Transwell assay was conducted.RESULTS: miR-205 expression was downregulated in 82. 6% of detected glioma tissues and TBX18 was significantly overexpressed in glioma tissues compared with normal tissues.miR-205 overexpression remarkably inhibited the invasion potential of U251 glioma cells with a decrease in the invasive cells ( P<0. 01),while inhibition of miR-205 significantly enhanced the invasion ability of U251 cells.Mechanically,miR-205 directly targeted TBX18 and downregulation of TBX18 also significantly inhibited the invasion potential of U251 cells with a decrease in the invasive cells ( P<0. 01).CONCLUSION: miR-205 expression is decreased in glioma,and miR-205 inhibits glioma cell invasion via targeting TBX18.Our research contributes to the mechanisms responsible for glioma invasion and provides theoretical base for developing new therapeutic strategy to treat glioma.
[KEY WORDS]Glioma; MicroRNA-205; Neoplasm invasion; TBX18 protein
通訊作者△Tel: 020-66673666; E-mail: hezhimin2005@ yahoo.com
*[基金項目]2014年廣州市屬高校科研項目( No.1201430498)
[收稿日期]2015-03-16[修回日期]2015-05-08
[文章編號]1000-4718( 2015)07-1219-06
[中圖分類號]R730. 23
[文獻標(biāo)志碼]A
doi:10.3969/j.issn.1000-4718.2015.07.012