李季++黃天帶++華玉偉++黃華孫

摘 要 啟動子陷阱技術是一種報告基因的隨機整合技術，現已成為基因功能研究中的重要手段。從啟動子陷阱技術的原理、啟動子陷阱報告基因的種類、啟動子陷阱在植物中的應用及在應用過程中存在的問題等方面進行綜述，并針對有關問題進行討論和展望。

關鍵詞 啟動子陷阱 ；T-DNA ；報告基因 ；功能研究

分類號 Q75

Application of Promoter-trap in Promoter Cloning Research of Plants

LI Ji HUANG Tiandai HUA Yuwei HUANG Huasun

（Rubber Research Institute， CATAS /

Key Laboratory of Rubber Biology， Ministry of Agriculture， Danzhou， Hainan 571737）

Abstract Promoter-trap is a random integration of a reporter gene constructs， which provides extremely powerful tools for gene functional research. In this review， the cloning method of promoter， the principle of promoter trap， the choice of reporter gene， and the applications and the questions of promoter-trap were described in detail， In the end， the related problems with prospect were discussed.

Keywords promoter-trap ； T-DNA ； reporter gene ； functional research

啟動子是RNA聚合酶能夠識別并與之結合，從起始基因轉錄的一段DNA序列，通常位于基因的上游。目前常用的啟動子克隆方法有利用啟動子探針載體篩選啟動子[1]、PCR法克隆啟動子[2-3]及啟動子陷阱技術[4-6]等。雖然啟動子探針法不需知道具體的基因序列，并且能獲得大量的啟動子片段，但整個過程工作量大，費時費力。PCR法克隆啟動子操作簡單、便捷，但必須以已知的基因序列或基因片段為前提。啟動子陷阱方法依賴于報告基因的表達來鑒定基因及其啟動子，因此不需要已知突變表型和基因序列，廣泛應用于細菌、酵母、動物和植物中[7-10]。通過建立高效穩(wěn)定的啟動子捕獲系統(tǒng)，構建包含報告基因隨機插入整個基因組的個體突變體庫，已成為當前未知序列基因啟動子克隆的常用方法之一。

1 啟動子陷阱技術的原理

啟動子陷阱（Promoter-trap）是將一個無啟動子的報告基因隨機插入到基因組DNA的外顯子上，一旦發(fā)現其與細胞基因組中的基因被共同轉錄或表達，則表明該報告基因附近有啟動子，從而起到以之為誘餌、發(fā)現啟動子的目的。報告基因與被插入的基因及其調控序列緊密連鎖，這樣通過載體上的序列就很容易分離相應的啟動子，而報告基因的表達模式也就反映出被插入基因所具有調控序列的特性[11]，該技術的利用依賴于報告基因的高頻率、多模式表達，為在限制細胞類型表達的基因或在發(fā)育過程中短暫時間表達的基因鑒定和克隆提供了強有力的工具[9，12]。啟動子陷阱的構建需要建立報告基因插入基因組的個體突變庫，主要采取T-DNA和轉座子系統(tǒng)2種方式[13-14]，而T-DNA介導的遺傳轉化是主要方法。構建啟動子陷阱載體時，一般優(yōu)先將無啟動子的報告基因與T-DNA的右邊界相鄰，研究結果發(fā)現，具有功能的轉錄基因融合頻率為54%，而翻譯融合頻率為1.6%[15]，左邊界的無啟動子gusA基因在不同植物中的表達頻率不同[4]。轉座子系統(tǒng)中目前只有Ac/Ds可用于基因陷阱的構建，該系統(tǒng)同樣利用T-DNA介導的遺傳轉化將Ac（活化因子）插入到植物基因組中，Ac/Ds轉座子具有偏好向鄰近連鎖位置進行轉座的特性[16]，因此，不僅增加了構建突變庫的工作量，而且不適合雜交困難的植物。

2 啟動子陷阱的報告基因

啟動子陷阱中常用的報告基因有GUS（β-葡萄糖醛酸酶）、luc（熒光素酶）、GFP（綠色熒光蛋白）和Lc（花青素調節(jié)基因）等。目前，GUS基因是最常用的報告基因，GUS蛋白相當穩(wěn)定且靈敏，但底物價格較貴，且其在染色和脫色的過程中會破壞組織，不能在活體組織中進行分析[17]，這就限制了其在多種植物大規(guī)模篩選中的應用。luc或GFP作為一種非破壞性的報告基因已成為基因捕獲系統(tǒng)中常見的報告基因[18-19]，其無需反應底物和輔助因子，直接通過適當的光源進行熒光檢測，可在活細胞中進行多次非破壞性的檢測，對植物本身無傷害，但某些植物體內具有高水平的自發(fā)熒光[20]，且當GFP蛋白含量較高時，轉化細胞的再生能力下降，使GFP基因在用于篩選轉基因植物時受到局限[21]，同時需借助熒光顯微鏡或激光共聚焦顯微鏡等比較昂貴的大型設備才能準確的檢測。Lc作為玉米Myc-like轉錄因子的R基因家族成員之一，調控花青素的生物合成，該報告基因不需要昂貴的底物，并且不具有破壞性，在大規(guī)模、田間栽培植物中更加具有應用前景，但高表達Lc編碼的轉錄因子會造成表型的影響[22]。

3 啟動子陷阱技術的應用

起初啟動子陷阱技術主要應用于動物與微生物的基因或啟動子克隆方面[23-24]，也取得了較大進展[25]。而在植物中起步相對較晚，早期主要是以克隆新的基因為主。Topping等[26]利用啟動子陷阱載體研究早代胚胎發(fā)生的基因，其中鑒定了一個株系對應的cDNA，表明這個標簽序列被轉錄。隨后，Topping等[27]為研究擬南芥胚和籽苗中建立的極性構成機制，利用啟動子陷阱鑒定了在根尖頂端至基部表達的3個分子標記。Eastmond等[28]通過啟動子陷阱成功的分離了一個新的擬南芥?；o酶A氧化酶基因AtACX3，在acx3突變體籽苗中，中鏈的酰基輔酶A氧化酶活性降低了95%，長鏈及短鏈的活性未改變。Meissner等[29]利用玉米的Ac/Ds轉座子系統(tǒng)獲得了番茄的Ds因子轉座并穩(wěn)定的家系，為高通量分析番茄中的功能基因和啟動子的分離鑒定奠定基礎，與此同時，利用熒光素酶基因作為報告基因優(yōu)化了啟動子陷阱載體。Tanaka等[30]從NASC提供的啟動子陷阱系中重新分離了一個N35株系，其GUS報告基因在下胚軸表達，并且表現為依賴于遠紅外光處理。分析結果發(fā)現，報告基因插入到擬南芥同源的大豆GH3基因，RNA blot分析進一步證實，該基因確實對光照存在反應。

與此同時，利用啟動子陷阱技術克隆有功能的植物自身啟動子的策略是可行的[31]。Jeon等[32]嘗試用無啟動子的GUS基因構建在T-DNA上，通過T-DNA的隨機插入，來分離水稻中的啟動子。Bade等[33]將一個無啟動子的gus：：nptII陷阱載體轉化甘藍型油菜，選擇3個T-DNA插入單拷貝的株系進行了啟動子的分離，通過瞬時和穩(wěn)定的GUS活性檢測證明這些新的序列具有啟動子活性。Alvarado等[18]利用攜帶有無啟動子的luc報告基因的啟動子陷阱載體pTluc轉化擬南芥，獲得具有組成型、組織特異型和脅迫誘導型的熒光素酶表達模式的轉基因株系。Jin等[5]研究結果初步證明啟動子陷阱技術在棉花功能基因組學研究中的可行性，并提出建立的啟動子陷阱系統(tǒng)中GUS基因高頻率、多模式和時空特異性表達，這為分離基因及其調控序列，開展棉花功能基因組學奠定研究基礎。Santos等[19]設計并應用一種高通量的real-time結合熒光素酶依賴的啟動子陷阱載體的體外篩選平臺，鑒定和分離香蕉低溫誘導表達的啟動子，該系統(tǒng)或類似的系統(tǒng)可成功的應用于具有較好體外再生體系的物種。魏小慧等[34]利用啟動子捕獲技術建立了橡膠樹炭疽病菌的遺傳轉化體系，提出啟動子捕獲技術更適合開展植物病原菌致病分子生物學的研究。同時抗性宿主基因型中類似轉錄激活效應子識別位點最常用策略為利用啟動子陷阱調取與執(zhí)行類型抗性基因（E基因）相結合的啟動子，如水稻的Xa27基因和胡椒的Bs3基因[6]。在木本植物橡膠樹中，也首次通過啟動子陷阱技術初步獲得了1個組成型表達啟動子和1個根特異性表達啟動子[35]。

4 啟動子陷阱在基因組學研究中的問題及展望

4.1 問題

4.1.1 啟動子或基因的確定較困難且耗時較長

通過啟動子陷阱載體可挖掘相應的啟動子或基因，但通過克隆和篩選融合轉錄物獲融合蛋白費時費力。目前較為常見的是通過Tail-PCR方法來獲得其插入的側翼序列，然后通過生物信息學分析獲得啟動子或基因，但Tail-PCR方法在反應過程中需要較多的引物組合。由于AD（Arbitrary degenerate，隨機簡并）引物存在有限的結合位點，對個別的側翼序列，即便用不同的簡并引物也難以擴增到陽性結果。目前提出用RAPD引物替代AD引物的觀點，由于RAPD引物數量很多，所以可解決AD引物存在有限的結合位點的不足問題，此外，Tail-PCR法對引物和模板純度的要求較高且擴增的片段為高度重復序列時，該方法無法步移。

4.1.2 可導致基因的失活或報告基因表型喪失

啟動子陷阱載體要求插入在一個基因的外顯子上，可能會導致基因失活。啟動子捕獲載體具有DNA插入的偏向性，且只能捕獲有轉錄活性的基因[36]。其需要插入的方向正確，而在T-DNA的左右兩側分別插入1個無啟動子的報告基因，是否可能會避免由于T-DNA插入方向的不正確造成報告基因無法表達的問題還有待于進一步驗證[35]。若報告基因未按預期加以整合，或者報告基因被剪接時整個被切除，都有可能使報告基因的表型喪失[37]。

4.1.3 依賴于轉基因體系的建立

啟動子陷阱技術成功應用的先決條件是具備有效的植物轉化機制。目前T-DNA介導的轉化仍是常用方法，模式植物的遺傳轉化體系比較成熟，但木本植物的轉化起步較晚，其遺傳轉化體系還不夠完善，轉化效率較低，這對于由啟動子陷阱的遺傳轉化獲得陽性植株帶來一定的困難。

4.1.4 多拷貝植株分析的復雜性

利用T-DNA介導的遺傳轉化技術轉化啟動子陷阱載體，在獲得的轉化植株中，通?？蓹z測到一個位點包含多個T-DNA插入或者多個位點包含有多個插入，甚至發(fā)生T-DNA的正向或反向重復，以及與比鄰的染色體發(fā)生重排等，這些都給后期的分子分析帶來較大的復雜性，增加了啟動子的分離難度[9，38]。

4.2 展望

自啟動子陷阱技術出現后，用其進行啟動子及基因的克隆一直受到研究者的青睞。傳統(tǒng)遺傳學方法并不是對所有的重要功能基因都能進行研究，其中包括低水平表達的、在發(fā)育各個階段均發(fā)揮重要作用的重要基因，突變后可能會導致在早期致死或高度多效性及在實驗室條件下功能上融合表達，基因缺失后，成為表型變化不明顯的功能冗余基因。而啟動子陷阱技術可很好的解決上述基因的研究，提高標記基因插入基因組的機率，并不需要產生可見的功能缺失突變體，可很好的分離特異性表達的基因，具有更為廣泛的應用前景。其次，利用啟動子陷阱技術構建的突變體庫也將為利用反向遺傳學研究基因功能奠定基礎，獲得的突變體將為分子生物學研究提供良好材料。近期的研究結果表明，內源啟動子與受體系統(tǒng)兼容性較好，在目的基因高效、穩(wěn)定及持久表達等方面較外源啟動子更具優(yōu)勢[39]。而啟動子陷阱技術是挖掘內源啟動子強有力的工具，將會對內源組成型啟動子、組織特異型啟動子或誘導型啟動子的挖掘等方面研究發(fā)揮更大的作用。

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