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        痰熱清注射液抑制HepG2細胞的研究

        2013-10-17 05:27:42李永偉楊躍武陸慧瓊
        中國醫(yī)藥導(dǎo)報 2013年15期
        關(guān)鍵詞:膽酸綠原細胞周期

        李永偉 楊躍武 陸慧瓊

        中山大學(xué)附屬第三醫(yī)院中醫(yī)科,廣東廣州 510630

        痰熱清注射液屬國家新藥中藥二類,方中以黃芩為君藥,熊膽粉、山羊角為臣藥,金銀花為佐藥,連翹為使藥[1],具有清熱、解毒、化痰等功效,主治急性支氣管炎、急性肺炎(早期)出現(xiàn)的痰熱阻肺癥狀,但其主要藥物如黃芩、熊膽粉、山羊角俱為歸于肝膽經(jīng)的藥物,其中,綠原酸對肝癌還具有顯著的抑制作用[2],但未見痰熱清復(fù)方注射液用于治療肝癌的相關(guān)文獻報道。中山大學(xué)附屬第三醫(yī)院臨床采用痰熱清注射液治療中醫(yī)證型辨證為肝膽濕熱的肝炎、肝硬化和肝癌在內(nèi)的多種肝臟疾病,結(jié)果顯示可減少肝癌介入栓塞術(shù)后綜合征,如發(fā)熱、腹痛、嘔吐等癥狀[3]。本研究初步觀察了痰熱清注射液對肝癌細胞株HepG2生長及細胞周期的影響,現(xiàn)報道如下:

        1 材料與方法

        1.1 材料

        DMEM 培養(yǎng)基(GIBCO 公司),MTT(Sigma公司),胎牛血清(杭州四季青公司),96孔、6孔培養(yǎng)板及25 cm2培養(yǎng)瓶(COSTER 公司),酶標(biāo)儀(BIO-RAD、Model450 MICRoPLATE READER),痰熱清注射液由上海凱寶藥業(yè)有限公司生產(chǎn),批準(zhǔn)文號:國藥準(zhǔn)字Z20030054。

        1.2 細胞抑制率檢測

        采用MTT法。

        1.2.1 細胞培養(yǎng)及藥物濃度設(shè)定 收集復(fù)蘇后培養(yǎng)傳代5代以內(nèi)對數(shù)生長期細胞,調(diào)整細胞懸液濃度,96孔板中每孔加入200 μL鋪板,使待測細胞密度調(diào)至5000個/孔。細胞生長48 h后,根據(jù)多次預(yù)實驗結(jié)果,將痰熱清注射液按原藥物濃度用DMEM倍比稀釋成8個濃度梯度:40、20、10、5、2.5、1.25、0.625、0.3125 mg/L,并設(shè)空白對照組,每組設(shè)4個復(fù)孔,實驗重復(fù)3次。

        1.2.2 細胞抑制率測定 加入藥物后培養(yǎng)48 h,先棄去培養(yǎng)液,用磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗 3遍后,每孔加入 20 μL MTT溶液(5 mg/mL),加培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)4 h后吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液,每孔加入150 μL二甲基亞砜,置搖床上低速振蕩10 min,在酶聯(lián)免疫檢測儀OD 490 nm處測量各孔的吸光值。檢測時設(shè)置調(diào)零孔(培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜)、對照孔(細胞、相同濃度的藥物溶解介質(zhì)、培養(yǎng)液、MTT、二甲基亞砜),并另設(shè)不加MTT的對照孔(即細胞、相同濃度的藥物、培養(yǎng)液、二甲基亞砜),實驗孔吸光值減去不加MTT的對照孔值為矯正后的實驗孔值。細胞抑制百分率(%)=(細胞對照組平均A值-實驗組平均A值)/細胞對照組平均A值×100%;細胞半數(shù)有毒濃度(TC50)=antilog[B+(50-B)/(AB)×C];A=log(>50%藥物含量);B=log(<50%藥物含量);C=log(稀釋倍數(shù))[4]。

        1.3 細胞周期檢測

        采用凱基細胞DNA含量(細胞周期)即時檢測試劑盒。

        1.3.1 細胞培養(yǎng)及分組 將HepG2細胞鋪于6孔板,細胞調(diào)密度至1×105/孔,采用DMEM混合培養(yǎng)液(含10%胎牛血清 ),置5%CO2培養(yǎng)箱中37℃培養(yǎng),48 h后按照 TC50加入濃度分別為2.5、1.25、0.625 mg/L的痰熱清注射液,并加培養(yǎng)液至2 mL,再培養(yǎng)48 h后收集細胞行流式細胞儀檢測,每組3個復(fù)孔,同時設(shè)立空白對照組。

        1.3.2 細胞周期檢測 收集106個細胞,用1 mL PBS重新懸浮,離心后棄上清;加入0.5 mL Solution Buffer懸浮細胞,離心棄上清;再加入0.5 mL Solution Buffer懸浮細胞,離心棄上清;加入 250 μL Solution A,25℃孵育 10 min;加入200 μL Solution B,25℃孵育 10 min;最后加入 200 μL Solution C,4℃避光10 min;上機檢測,記錄激發(fā)波長488 nm處紅色熒光。取各劑量組均數(shù)計算細胞增殖指數(shù),細胞增殖指數(shù)=(S+G2/M)/(G0/G1+S+G2/M)。

        1.4 統(tǒng)計學(xué)方法

        采用SPSS 16.0統(tǒng)計學(xué)軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,采用Probit分析計算TC50,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 痰熱清注射液對HepG2細胞增殖的抑制情況

        痰熱清注射液對HepG2細胞增殖的抑制實驗結(jié)果顯示,不同濃度的痰熱清對HepG2細胞均有不同程度的抑制作用,隨著藥物濃度增高,抑制作用逐漸增強。痰熱清注射液對HepG2細胞的TC50為3.62 mg/L。痰熱清注射液作用48 h后對HepG2細胞的生長抑制情況見圖1。

        2.2 痰熱清注射液對HepG2細胞周期的影響

        結(jié)果顯示,2.5 mg/L組痰熱清注射液使細胞阻滯于G0/G1期,該期細胞比率明顯高于其他組(P<0.01),其他各組間G0/G1期細胞比率比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);各組G2/M期細胞比率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);2.5 mg/L組S期細胞比率明顯低于其他組(P<0.01),1.25 mg/L組S期細胞比率亦明顯低于空白對照組(P<0.05);2.5 mg/L組細胞增殖指數(shù)明顯低于其他組(P<0.01);各組細胞均未見明顯的凋亡峰。見表1、圖2。

        表1 痰熱清注射液對HepG2細胞周期及增殖指數(shù)的影響(±s)

        表1 痰熱清注射液對HepG2細胞周期及增殖指數(shù)的影響(±s)

        注:與 2.5 mg/L 組比較,*P < 0.01;與空白對照組比較,¤P < 0.05;PI:增殖指數(shù)

        組別 G0/G1期(%) S期(%) G2/M期(%) PI空白對照組0.625 mg/L組1.25 mg/L組2.5 mg/L組55.02±0.19*59.05±0.67*57.64±0.25*68.27±2.01 29.28±1.21*26.86±0.14*26.05±0.1*¤19.21±0.39 15.71±1.4 14.9±0.77 15.5±0.4 12.53±1.6 44.98±0.19*40.95±0.68*42.36±0.26*31.74±2.03

        3 討論

        痰熱清注射液中4種主要成分為綠原酸、黃芩苷、熊去氧膽酸和鵝去氧膽酸,鵝去氧膽酸為需要限量的毒性成分[5],前三者均具有利膽作用,且值得注意的是,這三種成分均有抑制腫瘤作用的報道。熊去氧膽酸對HepG2細胞株具有抑制作用,可促使其凋亡,阻滯細胞增殖周期于G0/G1期。動物實驗結(jié)果顯示,熊去氧膽酸可以預(yù)防實驗大鼠肝癌的發(fā)生,明顯減少大鼠肝癌結(jié)節(jié)的數(shù)量[6]。黃芩苷可抑制肝癌HepG2細胞增殖,誘導(dǎo)細胞凋亡,使多數(shù)細胞阻滯于S期[7]。痰熱清注射液中綠原酸含量約為6.0 g/mL[8],綠原酸可通過抑制細胞生長、調(diào)節(jié)細胞周期、誘導(dǎo)凋亡等途徑產(chǎn)生抗癌作用[9]。在肝癌細胞系Hep3B中,綠原酸的半數(shù)有效抑制濃度(IC50)只需達到30~50 nmol/L即可產(chǎn)生良好的抗金屬蛋白酶9(MMP-9)的功效,因此,其可能具有抑制肝癌轉(zhuǎn)移的作用。甲基四氮鹽實驗研究表明,綠原酸無細胞毒性[10]。動物實驗顯示,綠原酸可抑制化學(xué)物質(zhì)對肝臟的致癌作用[11]。痰熱清注射液含有上述三種具有抑癌作用的成分,但因痰熱清注射液各批次成分含量差異[5],因此,其抑癌作用結(jié)果需要多次重復(fù)實驗。

        本研究結(jié)果顯示,痰熱清注射液8個濃度梯度對肝癌細胞均有抑制作用,并隨劑量的增加抑制作用增強,其機制可能與痰熱清注射液將細胞阻滯于G0/G1期,致細胞DNA合成減少有關(guān),前者與熊去氧膽酸作用類似,但用于細胞周期檢測的3個濃度并未顯示出促凋亡的作用,因此,需要進一步研究該復(fù)方注射液的抗癌機制。雖然痰熱清導(dǎo)致細胞DNA合成減少,但已合成DNA的細胞仍可進入有絲分裂,導(dǎo)致各組細胞有絲分裂期的結(jié)果差異無統(tǒng)計學(xué)意義。

        用于檢測細胞增殖活力的CCK-8法較MTT法有突破性的改變,如MTT被還原成的甲臜需要二甲亞砜溶解,而CCK-8不需要加入后者;CCK-8中酚紅和血清對測定無明顯影響,不必去上清洗滌細胞,更加簡便,也使結(jié)果數(shù)據(jù)更準(zhǔn)確及穩(wěn)定。但對于本身為棕紅色透明液體的痰熱清會影響吸光度值,即使不加MTT和細胞,也與實驗孔的吸光度值相近,甚至高于實驗孔。因此,本研究仍采用了MTT法檢測細胞增殖情況,PBS沖洗細胞3次,并設(shè)計了矯正后的實驗孔值以消除藥物本身的影響。

        [1]高益民,王忠山.對痰熱清注射液臨床藥學(xué)初步評價[J].首都醫(yī)藥,2004,11(12):44.

        [2]王麗萍,郭棟,王果,等.中藥綠原酸的研究進展[J].時珍國醫(yī)國藥,2011,22(4):961-963.

        [3]李永偉,楊宏志,王擁澤,等.痰熱清注射液治療原發(fā)性肝癌TACE術(shù)后栓塞綜合征的研究[J].中華臨床醫(yī)師雜志:電子版,2013,7(3):1081-1084.

        [4]趙艷玲,肖小河,廖慶文,等.生物熱力學(xué)法觀察板藍根不同提取部位對小鼠淋巴細胞的影響[J].中國中藥雜志,2006,31(7):590-593.

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        [6]韓國慶.熊去氧膽酸對肝癌預(yù)防作用的實驗研究[D].濟南:山東大學(xué),2005.

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