邵 馨,王 爽,宋 揚,吳 凡,王麗穎*
(1西安交通大學口腔醫(yī)院陜西省顱頜面精準醫(yī)學研究重點實驗室,西安 710004;2西安交通大學口腔醫(yī)院正畸科;3空軍第九八六醫(yī)院口腔科;4空軍第九八六醫(yī)院心臟外科;*通訊作者,E-mail:710808434@qq.com)
牙周膜干細胞(periodontal ligament stem cells,PDLSCs)是由牙周組織分離培養(yǎng)的間充質(zhì)干細胞,特定誘導條件下,可以分化為牙周膜組織、骨組織、血管組織和神經(jīng)組織等[1]。由于PDLSCs特定的組織來源,以及明確的向牙周組織分化的潛能,自2004年一經(jīng)發(fā)現(xiàn),就被認為是最有牙周再生潛質(zhì)的成體干細胞[2-4],目前利用PDLSCs修復牙周組織缺損已經(jīng)進入臨床試驗階段[5,6]。
研究表明炎癥、高糖等原因會造成PDLSCs骨向分化能力下降,進一步損害PDLSCs牙周缺損修復功能[7,8]。研究中常利用無功能的智齒或正畸牙培養(yǎng)PDLSCs,但原代培養(yǎng)可獲取的細胞數(shù)量有限(平均1 250個細胞),因此體外傳代PDLSCs是十分重要的[9]。采用傳代的方式可達到細胞數(shù)量的需求,但長期體外傳代會引起間充質(zhì)干細胞干性降低,這可能導致細胞再生治療的療效下降[10],因此本研究聚焦于多次傳代培養(yǎng)對PDLSCs成骨分化以及牙周修復潛能的影響。
長鏈非編碼RNAs(long noncoding RNAs, lncRNAs)是一類長度大于200個核苷酸的不編碼任何蛋白質(zhì)的RNA,在調(diào)控細胞生物學功能方面發(fā)揮重要作用。很多研究都闡述了lncRNA在調(diào)控PDLSCs成骨分化方面的作用[11,12]。本課題組前期研究證實,牙周炎癥來源牙周膜干細胞成骨相關(guān)lncRNA(osteogenesis impairment-related of lncRNA periodontal mesenchymal stem cells from periodontitis patients, lncRNA POIR)與PDLSCs成骨分化有關(guān),可以通過miR-182調(diào)控成骨相關(guān)靶基因FoxO1來修復炎癥PDLSCs受損的成骨分化能力,在體內(nèi)和體外均可促進PDLSCs的骨形成[13]。但lncRNA POIR是否參與調(diào)控多次傳代后PDLSCs牙周再生潛能,尚無相關(guān)研究。本課題通過研究lncRNA POIR對多次傳代后PDLSCs成骨分化功能的影響,以期提高多次傳代PDLSCs牙周缺損修復能力。
α-MEM培養(yǎng)基、胎牛血清、青鏈霉素(Gibco,美國),0.25%胰蛋白酶、I型膠原酶(Sigma,美國),中性蛋白酶(Roche Diagnostics Gmbh,德國),Vario免疫磁珠分選器(MASC,德國),Stro-1抗體(Rnd,美國),成骨誘導液(Cyagen,美國),堿性磷酸酶(alkaline phosphatase, ALP)染色試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司),ALP檢測試劑盒(中生北控生物科技股份有限公司),茜素紅染液(陜西中暉赫彩生物醫(yī)藥科技有限公司),sh-lncRNA POIR質(zhì)粒、sh-NC質(zhì)粒(上海吉凱基因有限公司),Trizol試劑盒(Invitrogen,美國),SYBR Green PCR試劑盒、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Takara,日本),抗人矮小相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子2(runt-related transcription factor 2, Runx2)、ALP、骨鈣素(osteocalcin, OCN)、β-肌動蛋白(β-actin)抗體(Abcam,美國)。
取西安交通大學口腔醫(yī)院15~25歲患者因正畸需要或阻生齒拔除的無齲病、慢性牙周疾病的正畸牙或第三磨牙,本研究經(jīng)西安交通大學醫(yī)學部生物醫(yī)學倫理委員會批準(No.2020398),所有患者均知情同意。在超凈臺內(nèi)分離牙根中部的牙周膜組織,用3 mg/ml Ⅰ型膠原酶和4 mg/ml中性蛋白酶消化分離的組織1 h,離心后棄上清,加入含20% FBS、1%青鏈霉素的α-MEM培養(yǎng)基重懸,接種于25T培養(yǎng)瓶,于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每3 d換液1次,待細胞生長至80%左右融合率時用胰蛋白酶消化,按照1 ∶2或1 ∶3比例傳代培養(yǎng),記為第1代細胞。選取第2代細胞與stro-1抗體在4 ℃環(huán)境下反應20~30 min,PBS洗滌,二抗4 ℃環(huán)境下孵育20~30 min,PBS洗滌2遍。將LD管置于Vario免疫磁珠分選器中,在4 ℃條件下分離stro-1陽性細胞,即hPDLSCs細胞。取第3代、第15代、第30代細胞進行后續(xù)成骨分化相關(guān)研究,包括ALP染色、ALP活性、茜素紅染色和RT-PCR,檢測細胞代數(shù)對細胞成骨分化能力的影響。
1.3.1 ALP染色 將處于對數(shù)生長期PDLSCs以5×104/孔的密度接種于12孔板,待細胞生長至70%左右融合率時,棄去原培養(yǎng)基,用成骨誘導培養(yǎng)基進行培養(yǎng),每3 d換液1次。細胞成骨誘導培養(yǎng)7 d去除原培養(yǎng)基,PBS漂洗后4%多聚甲醛固定30 min,再次漂洗后用ALP染色試劑盒染色,漂洗后鏡下觀察。通過Image J軟件檢測染色所占面積并計算面積百分比,染色面積占比越大說明細胞ALP表達量越高,細胞成骨分化能力越強。
1.3.2 ALP活性 按1×103/孔的比例將細胞接種到96孔板,24 h開始成骨誘導,7 d倒掉培養(yǎng)液,PBS清洗3次,配置ALP活性測定工作液,添加工作液至96孔板,37 ℃環(huán)境中孵育30 min,加入顯色液。酶聯(lián)免疫檢測儀在560 nm波長條件下檢測,記錄數(shù)據(jù)。吸光度越高說明細胞ALP表達量越高,細胞成骨分化能力越強。
1.3.3 茜素紅染色 將處于對數(shù)生長期PDLSCs以5×104/孔的密度接種于12孔板,待細胞生長至70%左右融合率時,棄去原培養(yǎng)基,用成骨誘導培養(yǎng)基進行培養(yǎng),每3 d換液1次。細胞成骨誘導培養(yǎng)21 d去除原培養(yǎng)基,PBS漂洗后4%多聚甲醛固定30 min,再次漂洗后用茜素紅染液染色,漂洗后鏡下觀察,礦化結(jié)節(jié)紅染。觀察后進行茜素紅染色定量,將0.5 mol/L HCl、5% SDS加入12孔板,每孔0.5 ml,室溫作用30 min,吸取0.15 ml加入96孔板中,檢測吸光度(405 nm)。吸光度越高說明細胞礦化結(jié)節(jié)形成越多,細胞成骨分化能力越強。
用Trizol試劑盒提取第3代、第15代、第30代PDLSCs的總RNA,用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒進行總RNA反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。以cDNA為模板鏈,采用RT-PCR試劑盒進行擴增,分析比較lncRNA POIR隨PDLSCs代數(shù)增加的變化趨勢。lncRNA POIR和β-actin引物序列見表1。
表1 引物序列
將第30代PDLSCs以5×104/孔的密度接種于12孔板,待細胞生長至60%左右融合率時將細胞分為空白對照組(不經(jīng)任何處理)、無義序列轉(zhuǎn)染對照組(轉(zhuǎn)染sh-NC質(zhì)粒)和lncRNA POIR下調(diào)組(轉(zhuǎn)染sh-lncRNA POIR質(zhì)粒)。將sh-NC質(zhì)粒、sh-lncRNA POIR質(zhì)粒分別和Lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染試劑(Invitrogen)混勻,室溫靜置20 min分別加入無義序列轉(zhuǎn)染對照組細胞和lncRNA POIR下調(diào)組細胞中,在37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h用于后續(xù)成骨分化相關(guān)研究,包括ALP染色、ALP活性、茜素紅染色和RT-PCR、Western blot,檢測lncRNA POIR對細胞成骨分化功能的影響,并用于RT-PCR檢測lncRNA POIR對miR-214的作用。sh-lncRNA POIR質(zhì)粒序列:5′-CTCCCTCCATGAAGGTTTAAT-3′;sh-NC質(zhì)粒序列:5′-TTCTCCGAACGTGTCACGT-3′。
取空白對照組、無義序列轉(zhuǎn)染對照組、lncRNA POIR下調(diào)組對數(shù)生長期的PDLSCs進行ALP染色、ALP活性和茜素紅染色試驗,具體方法見1.3中所述。
用Trizol試劑盒提取lncRNA POIR下調(diào)組、空白對照組、無義序列轉(zhuǎn)染對照組PDLSCs的總RNA,用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。以cDNA為模板鏈,采用RT-PCR試劑盒進行擴增,分析比較各組PDLSCs中Runx2、ALP、OCN表達水平。Runx2、ALP、OCN、β-actin引物序列見表1。
取下調(diào)組、空白對照組、無義序列轉(zhuǎn)染對照組PDLSCs,加入蛋白裂解液提取總蛋白,BCA法測定蛋白濃度。各取20 μg總蛋白加熱變性,依次將各個蛋白樣本加入SDS-聚丙烯酰胺凝膠中電泳分離蛋白并將蛋白轉(zhuǎn)膜封閉,加入一抗兔抗Runx2(稀釋比1 ∶1 000)、ALP(稀釋比1 ∶1 000)、OCN(稀釋比1 ∶1 500)、β-actin(稀釋比1 ∶2 000),4 ℃環(huán)境下過夜培養(yǎng),室溫環(huán)境下加入和辣根過氧化氫酶偶聯(lián)的羊抗兔二抗(稀釋比1 ∶2 000),孵育2 h,加入ECL進行顯影曝光,β-actin作為對照。
應用生物信息學工具對lncRNA POIR的靶基因進行預測,分析lncRNA POIR和miR-214是否存在相似的結(jié)合位點。
用Trizol試劑盒提取lncRNA POIR下調(diào)組、空白對照組、無義序列轉(zhuǎn)染對照組PDLSCs的總RNA,用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。以cDNA為模板鏈,采用RT-PCR試劑盒進行擴增,分析比較各組PDLSCs中miR-214表達水平。miR-214和β-actin引物序列見表1。
茜素紅染色檢驗成骨分化的最終產(chǎn)物—礦化結(jié)節(jié),是體外實驗檢測成骨分化能力相對有力的證據(jù)。茜素紅染色結(jié)果顯示:第30代PDLSCs成骨結(jié)節(jié)形成量明顯少于第15代和第3代,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05,見圖1)。ALP是成熟成骨細胞的標志性酶,其在細胞中的表達量反映成骨細胞的分化程度和功能狀態(tài)。ALP染色結(jié)果顯示:第30代PDLSCs的ALP染色面積占比明顯低于第15代和第3代,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01,見圖1)。ALP活性結(jié)果顯示:第30代PDLSCs的ALP活性明顯低于第15代和第3代,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01,見圖1)。RT-PCR檢測結(jié)果顯示:lncRNA POIR的表達水平隨細胞代數(shù)增加呈現(xiàn)逐漸下降趨勢,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01,見圖1)。
與第3代細胞比較,#P<0.05,##P<0.01;與第15代細胞比較,*P<0.05,**P<0.01圖1 多次傳代后PDLSCs成骨分化能力和lncRNA POIR表達水平Figure 1 The osteogenic differentiation ability and lncRNA POIR expression level of PDLSCs after multiple passages
茜素紅染色結(jié)果顯示:用shRNA質(zhì)粒下調(diào)lncRNA POIR表達水平后,與空白對照組和無義序列轉(zhuǎn)染對照組比較,lncRNA POIR下調(diào)組PDLSCs成骨結(jié)節(jié)形成明顯減少(P<0.01,見圖2)。ALP染色結(jié)果顯示:lncRNA POIR下調(diào)組的ALP染色面積占比明顯低于空白對照組和無義序列轉(zhuǎn)染對照組(P<0.01,見圖2)。ALP活性結(jié)果顯示:lncRNA POIR下調(diào)組的ALP活性明顯低于空白對照組和無義序列轉(zhuǎn)染對照組(P<0.05,見圖2)。
與空白對照組和無義序列轉(zhuǎn)染對照組比較,*P<0.05,**P<0.01圖2 lncRNA POIR下調(diào)后PDLSCs成骨分化能力Figure 2 The osteogenic differentiation ability of PDLSCs after down-regulation of lncRNA POIR
RT-PCR和Western blot結(jié)果顯示:用shRNA質(zhì)粒下調(diào)lncRNA POIR表達水平后,與空白對照組和無義序列轉(zhuǎn)染對照組比較,lncRNA POIR下調(diào)組PDLSCs中Runx2、ALP、OCN表達水平明顯降低,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05,見圖3)。
與空白對照組和無義序列轉(zhuǎn)染對照組比較,*P<0.05,**P<0.01圖3 lncRNA POIR下調(diào)后PDLSCs中成骨相關(guān)基因、蛋白表達水平Figure 3 Expression of osteogenic genes and proteins in PDLSCs after down-regulation of lncRNA POIR
生物信息學分析結(jié)果顯示:lncRNA POIR與miR-214存在結(jié)合位點(見圖4)。為進一步確定lncRNA POIR與miR-214之間調(diào)控關(guān)系,利用shRNA質(zhì)粒下調(diào)PDLSCs中l(wèi)ncRNA POIR的表達,RT-PCR結(jié)果顯示:與空白對照組和無義序列轉(zhuǎn)染對照組比較,lncRNA POIR下調(diào)組的miR-214的表達水平明顯升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01,見圖4)。
與空白對照組和無義序列轉(zhuǎn)染對照組比較,**P<0.01圖4 lncRNA POIR下調(diào)后PDLSCs中miR-214表達水平Figure 4 Expression of miR-214 in PDLSCs after down-regulation of lncRNA POIR
牙周炎是一種廣泛存在的疾病,其特征是炎癥引起的牙齒支持結(jié)構(gòu)的進行性損傷,直到牙齒脫落,牙周組織中缺失或受損的支持組織(包括牙槽骨、牙周膜和牙骨質(zhì))的再生是牙周再生治療的一個重要目標[14]。在牙周再生的過程中,硬組織再生是研究的重點和難點,而干細胞的成骨分化能力是評價其向牙周組織分化能力的主要指標。
已有相關(guān)研究顯示干細胞的多次傳代對其分化功能的影響。Zaim等[15]探究骨髓間充質(zhì)干細胞(hMSCs)體外傳代對神經(jīng)向轉(zhuǎn)分化能力的影響,發(fā)現(xiàn)長期傳代是影響干細胞分化能力的關(guān)鍵系數(shù),來自成年供體的hMSCs是在連續(xù)體外傳代過程中失去其干細胞特性。Tan等[16]研究發(fā)現(xiàn),長期的體外傳代會導致PDLSCs衰老,可觀察到衰老相關(guān)蛋白在長期傳代后增加,隨著傳代數(shù)量增加,細胞成骨分化功能降低。本研究結(jié)果顯示,相對于第3代PDLSCs,第15代和第30代PDLSCs成骨分化功能明顯下降,與上述研究結(jié)論一致。
lncRNA可以參與調(diào)控PDLSCs成骨分化。Gu等[17]對比了PDLSCs成骨分化前后差異表達的lncRNA,發(fā)現(xiàn)共有960個lncRNA差異表達。He等[18]進一步研究證實,lncRNA TUG1通過調(diào)節(jié)靶基因Lin28A進而調(diào)控PDLSCs成骨分化。本課題組[13]前期研究顯示lncRNA POIR與PDLSCs成骨分化相關(guān),該lncRNA可以在健康微環(huán)境下和炎癥微環(huán)境下正向調(diào)控PDLSCs的骨形成能力。本研究探討了lncRNA POIR與多次傳代后PDLSCs成骨分化的關(guān)系,利用質(zhì)粒下調(diào)lncRNA POIR的表達。茜素紅染色、ALP染色、RT-PCR和Western blot結(jié)果顯示,與對照組相比,lncRNA POIR下調(diào)組PDLSCs成骨結(jié)節(jié)以及ALP活性均減少,骨形成標志物RunX2、ALP、OCN表達水平下降,說明成骨分化能力確實存在進一步下降。根據(jù)以上結(jié)果推測,多次傳代會降低PDLSCs中l(wèi)ncRNA POIR表達水平,從而抑制PDLSCs成骨分化和牙周修復潛能,通過上調(diào)lncRNA POIR可以修復損傷的功能,但這一結(jié)果仍需動物體內(nèi)實驗加以證實。
miR-214是一類序列高度保守的microRNA,在細胞成骨分化過程中發(fā)揮十分重要的作用。Wang等[19]研究發(fā)現(xiàn),在生理和病理條件下,成骨細胞中的miR-214都是骨形成的重要抑制劑。該研究顯示,敲除miR-214基因后,去勢小鼠骨質(zhì)疏松癥狀明顯改善,骨形成能力提高。Cao等[20]研究發(fā)現(xiàn),miR-214在PDLSCs成骨分化過程中顯著下調(diào),抑制miR-214可促進PDLSCs的分化。根據(jù)生物信息學分析結(jié)果,lncRNA POIR與miR-214存在結(jié)合位點。利用質(zhì)粒下調(diào)lncRNA POIR的表達,miR-214在PDLSCs中的表達明顯升高,說明lncRNA POIR通過降低miR-214表達水平調(diào)控PDLSCs成骨分化,但仍需進一步實驗證實。
綜上所述,多次傳代會降低PDLSCs的成骨分化水平并抑制lncRNA POIR表達,lncRNA POIR調(diào)控PDLSCs傳代過程中的成骨分化功能,以上研究可以為臨床應用多次傳代后PDLSCs修復牙周缺損提供參考。