楊秋萍，閻彥霏，張 艷，曹晨陽，盛煥精，崔生輝，楊保偉*

（1 西北農林科技大學食品科學與工程學院 陜西楊凌 712100 2 富平縣檢驗檢測中心（陜西省羊乳產品質量監(jiān)督檢驗中心） 陜西富平 711700 3 中國食品藥品檢定研究院 北京 100050）

克羅諾桿菌（Cronobacter，原稱阪崎腸桿菌）是一種食源性條件致病菌，可導致各年齡段人群感染，尤其是新生兒、早產兒、老年人和免疫力低下的人群。感染后可引起敗血癥、神經炎、腦脊髓炎、腦膿腫、腦積水和壞死性小腸結腸炎[1-2]。目前，已報道在嬰幼兒配方乳粉和谷類輔助食品、奶酪、蔬菜、谷物等食品中檢出克羅諾桿菌[3-4]。食品污染克羅諾桿菌后會對人體健康構成危害，然而，不是所有克羅諾桿菌都可導致人患病。研究發(fā)現(xiàn)，阪崎克羅諾桿菌（Cronobacter Sakazakii）、丙二酸鹽陽性克羅諾桿菌（Cronobacter malonaticus）和蘇黎世克羅諾桿菌（Cronobacter turicensis）是引起新生兒和嬰兒腦膜炎、敗血癥和壞死性小腸結腸炎的常見類型[5-7]。攝入被阪崎克羅諾桿菌污染的嬰幼兒配方乳粉是導致新生兒和嬰兒感染的主要原因[8]，感染引起的死亡率為40%～80%[9-10]。對嬰兒配方乳粉中阪崎克羅諾桿菌進行檢測和追溯，對保障新生兒和嬰兒食品安全至關重要。

對致病菌分型是追溯其來源的關鍵。應用于阪崎克羅諾桿菌的分型方法主要有表型和分子分型，其中分子分型技術被認為是追溯微生物來源的最有力工具。目前已有脈沖場凝膠電泳（Pulse field gel electrophoresis，PFGE）、隨機擴增多態(tài)性DNA （Random amplified polymorphic DNA，RAPD）、多位點序列分型 （Multilocus sequence typing，MLST）、多位點可變數(shù)目串聯(lián)重復序列分析（Multiple locus variable-number tandem repeat analysis，MLVA）、腸桿菌間保守重復序列PCR（Enterobacterial repetitive intergenic consensus-PCR，ERIC-PCR）和全基因測序（Whole genome sequencing，WGS）等分型方法被用于阪崎克羅諾桿菌分型[6，11]，然而，不同方法有著各自的特點和局限。PFGE 分辨率高，是細菌分型的“金標準”，也是流行病爆發(fā)調查和食源性病原菌監(jiān)測中最為常用的方法[12]。然而，PFGE 不能對基因組上缺乏XbaⅠ等限制性內切酶酶切位點的菌株進行分型，也不能用于阪崎克羅諾桿菌鑒定，不能確切反映菌株間的系統(tǒng)發(fā)育關系等缺陷[6]。MLST 分型重復性好、分辨率高，可根據(jù)fusA 等管家基因對克羅諾桿菌進行鑒定，分型結果也可以上傳至MLST數(shù)據(jù)庫（http：//pubmlst.org/cronobacter/），進行長期流行學研究，然而，MLST 分型方法不適用于管家基因序列高度一致的菌株[6，11]。ERIC-PCR 具有快速、簡便、廉價的特點，可用于管家基因序列相似及不同克羅諾桿菌菌株的流行病學和遺傳多樣性研究[13]。

分型方法分型能力的高、低對病原菌溯源和流行病學調查有著重要意義。本研究分別采用PFGE、MLST 和ERIC-PCR 分型方法對分離于不同地區(qū)，不同品牌嬰幼兒配方乳粉、米粉和輔食中的阪崎克羅諾桿菌進行分型，比較3 種分型方法的分型能力，以確定更適于阪崎克羅諾桿菌的分型方法。

1 材料與方法

1.1 菌株來源

供試阪崎克羅諾桿菌共37 株，分離于2010年7月至2012年7月間采集自陜西省寶雞市、蔡家坡、楊凌、西安市、眉縣、岐山縣、周至縣、扶風縣、武功縣、興平市和乾縣部分超市、母嬰專賣店的嬰幼兒配方乳粉、米粉和輔食（表1）。

1.2 試劑與儀器

1.2.1 培養(yǎng)基和試劑 Luria-Bertani（LB）營養(yǎng)瓊脂、Luria-Bertani （LB） 肉湯、胰蛋白大豆瓊脂（Tryptic Soy Agar，TSA）購自北京陸橋技術股份有限公司。

Taq DNA 聚合酶、ExTaq DNA 聚合酶、dNTPmix、10×PCR 緩沖液、DL2000 DNA Ladder、蛋白酶K（含緩沖液）和限制性內切酶XbaⅠ均購于寶生物工程（大連）有限公司（TaKaRa）；DNA 提取試劑盒購于北京康為試劑科技有限公司；十二烷基磺酸鈉（SDS）、三羥甲基氨基甲烷鹽酸（Tris-HCl）、乙二胺四乙酸 （EDTA）、苯甲基磺酰氟（PMSF） 等均購自Sigma 公司；PFGE 專用低熔點瓊脂糖（SeaKem Gold Agarose）購自美國Cambrex Bio Science 公司。

1.2.2 主要儀器與設備 GelDocXR 凝膠成像系統(tǒng)、170-3672 脈沖場凝膠電泳系統(tǒng)、MyCyclerPCR儀，Bio-Rad 公司；超NU-425-400E 凈工作臺，蘇州凈化設備有限公司；GNP-9080 隔水式恒溫培養(yǎng)箱，北京科偉實驗儀器有限公司；MDF-U5411 高壓滅菌鍋，上海申安高壓儀器設備有限公司。

1.3 試驗方法

1.3.1 PFGE 分型 PFGE 分型方法主要按照美國疾病預防控制中心 （the Centers for Disease Control and Prevention，CDC）頒布的應用于食源性疾病監(jiān)測網PulseNet 中的PFGE 標準方法。400 μL 菌懸液中加入20 μL 蛋白酶K 后與400 μL 含SDS 的Seakem Gold 瓊脂糖快速混勻、冷卻凝固。加入5 mL 細胞裂解緩沖液 （Cell lysis buffer，CLB）和25 μL 蛋白酶K 裂解細菌，于54 ℃、150～175 r/min 恒溫水浴搖床中裂解1.5～2 h。用無菌超純水和TE 緩沖液洗滌裂解細胞后，用200 μL 含有限制性內切酶XbaⅠ及其緩沖液的混合液于37℃恒溫水浴中孵育1.5～2 h。吸出酶切混合液，加入200 μL 0.5×TBE 緩沖液，終止反應。PFGE 電泳結束后，溴化乙錠染色30 min；去離子水洗劑2 次，TE 緩沖液洗劑3 次，每次15 min。脫色的瓊脂糖凝膠用凝膠成像系統(tǒng)拍照。利用BioNumerics 3.0軟件對PFGE 結果進行聚類分析。

1.3.2 MLST 分型 用基因組DNA 提取試劑盒抽提阪崎克羅諾桿菌基因組DNA 作為模板，參考克羅諾桿菌MLST 分型官方數(shù)據(jù)庫（http：//pubmlst.org/cronobacter/）公布的阪崎克羅諾桿菌MLST 分型用管家基因atpD、fusA、glnS、gltB、gyrB、infB 和pps 種類、擴增和測序引物序列進行PCR 擴增和測序。PCR 擴增反應總體系為50 μL，包括5 μL 10×Pfu 緩沖液，5 μL dNTP Mix（2 mmol/L），1 μL Pfu DNA 聚合酶，引物各0.5 μL（10 μmol/L），36 μL 超純水，2 μL 模板DNA；反應條件為94 ℃10 min；94 ℃1 min，60 ℃1 min，72 ℃1 min，35 個循環(huán)；72 ℃10 min。除gltB 擴增的退火溫度為63℃外，其余6 個基因均為60 ℃。PCR 產物由上海桑尼生物技術有限責任公司純化后測序，測序結果與克羅諾桿菌PubMLST 數(shù)據(jù)庫（http：//pubmlst.org/cronobacter/）比對獲得Sequence Type（ST）型。

1.3.3 ERIC-PCR 分型 用1.3.2 節(jié)中抽提的基因組DNA 作為模板，上游引物：5'-ATGTAAGCTCCTGGGGATTCAC-3'，下游引物：5'-AAGTAAGTGACTGGGGTGAGCG-3'，PCR 擴增總體系為25 μL，包括13.15 μL 超純水，1.5 μL Mg-Cl2（25 mmol/L），2 μL dNTP（2.5 mmol/L），2.5 μL 10×PCR 緩沖液，引物各0.3 μL（50 pmol/L），0.25 μL Taq DNA 聚合酶，5 μL 模板。PCR 擴增條件為95 ℃ 5 min；94 ℃ 45 s，52 ℃ 1 min，72 ℃ 5 min，35 個循環(huán)；72 ℃10 min。PCR 擴增后取5 μL PCR 產物進行瓊脂糖凝膠電泳，使用凝膠成像系統(tǒng)照相。采用“1”“0”記帶法，同一位點有擴增帶的記為“1”，無擴增帶記為“0”。使用R 軟件包（版本3.4.4）和Pheatmap 軟件包（版本3.0.1）進行聚類分析。

1.4 辛普森多樣性指數(shù)（DI 值）

根據(jù)辛普森多樣性指數(shù)方程計算3 種分子分型方法的DI 值，根據(jù)DI 值判斷分型方法分辨率高低。DI 值越大，分型能力越強[14]。

式中，N——菌株總數(shù)；S——被描述的類型總數(shù)；nj——j 型的菌株總數(shù)。

2 結果與分析

2.1 阪崎克羅諾桿菌PFGE 分型

PFGE 分型結果如圖1所示。37 株阪崎克羅諾桿菌可被分為35 個PFGE 帶型，分別命名為PT01～PT35，其中PT28 包含3 株菌，其余34 個PT型各含1 株菌。菌株PFGE 帶譜相似度范圍為92%～100%，分型后沒有明顯的優(yōu)勢帶譜。菌株14-4（2）和14-4（1）分離于陜西省興平市同一品牌的嬰幼兒配方乳粉，菌株12-12（2）分離于陜西省西安市的嬰兒輔食奶糕粉，3 株菌帶譜相同，為PT28 型。菌株15-17（2）、15-8（2）和菌株14-20（2）PFGE 帶譜相似性為99%，其中15-17 （2）和15-8（2）來源于同一地區(qū)采集的米粉，而14-20（2）來自其它地區(qū)的嬰幼兒配方奶粉。PFGE 分型方法分型能力較高，可對不同來源的菌株進行相似性和溯源分析。

圖1 阪崎克羅諾桿菌PFGE 分型及聚類分析Fig.1 PFGE typing and cluster analysis of Cronobacter sakazakii

2.2 阪崎克羅諾桿菌MLST 分型

MLST 分型結果表明，37 株菌株可被分為23種ST 型，其中ST1、ST4、ST93 型菌株各有4 株，ST444 型3 株菌，ST12、ST451 和ST449 各2 株，其余16 種ST 型各1 株。23 種ST 型中，有13 個ST型（ST441、ST442、ST443、ST444、ST445、ST446、ST447、ST448、ST449、ST450、ST451、ST452 和ST453）為克羅諾桿菌MLST 數(shù)據(jù)庫沒有記錄的ST 型。2-9（1）、35-15-1、36-8-1、6-16（1）為與新生兒腦膜炎相關的ST4 型。其中，36-8-1 或6-16（1）分別來源于同一地區(qū)的米粉和嬰幼兒配方奶粉，2-9（1）、35-15-1 和6-16（1）為來源于不同地區(qū)的嬰幼兒配方奶粉，且35-15-1 和6-16（1）是為同一品牌。MLST 方法也具有較高的分型能力，可用于追溯食品中阪崎克羅諾桿菌污染源（表1，圖2）。

圖2 阪崎克羅諾桿菌MLST 分型結果及聚類分析Fig.2 MLST subtyping and cluster analysis of Cronobacter sakazakii

表1 阪崎克羅諾桿菌來源及MLST 分型結果Table 1 The source and MLST sutyping of Cronobacter sakazakii

2.3 阪崎克羅諾桿菌ERIC-PCR 分型

ERIC-PCR 分型后，各菌株擴增得到的DNA條帶數(shù)目為2～6 條，擴增片段長度均在100～2 000 bp 之間。37 株菌株可被分為28 個亞型，分別命名為ET01～ET28。其中，ET28 型有4 株菌，ET27 型有3 株菌，ET4、ET10、ET14 和ET25 各有2 株菌，其余ET 型均有1 株菌。同屬ET28 型的4株菌分離于不同地區(qū)采集的米粉。23-11（1）、12-18 （1） 和21-7-2 的ERIC-PC 分型結果為ET27型，菌株23-11（1）和21-7-2 分離于陜西楊凌采集嬰幼兒配方奶粉和米粉，12-18（1）分離于西安采集米粉。ERIC-PCR 分型結果聚類分析表明，分離于不同地區(qū)不同食品的阪崎克羅諾桿菌可能具有相同基因型，可用于阪崎克羅諾桿菌溯源分析。

圖3 ERIC-PCR 結果聚類分析Fig.3 Cluster analysis of ERIC-PCR results

2.4 PFGE、MLST 和ERIC-PCR 分型比較

對37 株菌的PFGE 和MLST 分型結果進行比較，以相似度100%為臨界值，PFGE 和MLST 的DI 值分別為99.55%和96.40%。DI 值越高，對菌株的鑒別能力越強，因此PFGE 的分型能力高于MLST 分型?？傮w而言，PFGE 與MLST 分型結果相似，具有相同ST 型菌株的PFGE 分型相似度不低于94%。菌株14-4（2）、14-4（1）和12-12（2）MLST分型為ST93，PFGE 帶型為PT28。然而，也有菌株具有相同ST 型而PFGE 分型略有差異的情況，如菌株14-20 （2） 和15-17 （2）MLST 型為ST449，PFGE 圖譜相似度為98%；菌株2-9（1）、35-15-1、36-8-1 和6-16（1）為ST4 型，PFGE 條帶也存在差異。

以相似性100%為臨界值，PFGE 和ERICPCR 分型的DI 值分別為99.55%和98.05%，PFGE對阪崎克羅諾桿菌分辨率略高于ERIC-PCR。ERIC-PCR 分型中菌株32-18-2 和33-15-2 同為ET04 型，而PFGE 分型相似性為92%；菌株15-17（2）與14-20（2）同為ET14 型，PFGE 分型相似性為99%。菌株14-4（2）、14-4（1）和12-12（2）PFGE分型為PT28，ERIC-PCR 電泳圖譜存在一定差異，這表明PFGE 和ERIC-PCR 對阪崎克羅諾桿菌均有較高分型能力，2 種方法分型結果略有差異。

MLST 和ERIC-PCR 分別將37 株菌分為23個ST 型和28 個不同的類群，且ERIC-PCR 的DI值大于MLST 分型，表明ERIC-PCR 對阪崎克羅諾菌的分型能力強于MLST 分型。ERIC-PCR 與MLST 分型結果間存在一定的相似性，如菌株18-21（2）和18-15（1）均為ST444，ERIC-PCR 指紋圖譜也相同。然而兩種分型結果也存在差異，如菌株36-8-1、3-10（1）、29-3-2 和11-1（1）的ERICPCR 分型相似性為100%，而ST 型各不相同。

3 討論與結論

傳統(tǒng)的表型分型方法如血清學分型不利于對菌株進行親緣性分析和溯源，基于細菌DNA 的分子分型技術則在研究菌株間關系、確定感染源等方面表現(xiàn)出明顯的優(yōu)勢，在食品安全檢測和病原菌分型研究中起到關鍵作用。本研究通過比較PFGE、ERIC-PCR 和MLST 3 種分子分型方法對分離于嬰幼兒食品源的37 株阪崎克羅諾桿菌的分型能力，以確定3 種分型方法在食源性阪崎克羅諾桿菌風險監(jiān)測和溯源中的優(yōu)勢和局限。

PFGE 分型是針對菌株基因組，通過不同的限制性內切酶將細菌基因組酶切為不同片段，再外加變化的電場，從而產生不同的基因指紋圖譜，以分析菌株相似性和親緣關系[15]。周厚德等[4]采用PFGE 將24 株來源于市售嬰幼兒食品的克羅諾桿菌分成22 個PFGE 基因指紋圖譜PFGE 型別高度多樣性。張彩霞等[16]對68 株食品源阪崎克羅諾桿菌進行PFGE 分型，可分為58 個PFGE 帶型，且?guī)洼^分散。本研究的37 株嬰幼兒食品源阪崎克羅諾桿可分為35 個PFGE 帶型，且DI 值為99.55%，表明PFGE 對阪崎克羅諾桿菌具有較高的分型能力。PFGE 分辨率高的優(yōu)勢，有利于菌株之間的親緣性分析和溯源，從而快速分析出感染源，減少致病菌造成的危害。然而，由于PFGE具有較低的重現(xiàn)性、無法識別酶切位點外的差異和不具備鑒定菌株的能力[6]，因此不利于長期的流行病學監(jiān)測或研究菌株之間的進化和種系關系。

ERIC-PCR 是以腸桿菌間保守重復序列設計引物，PCR 擴增后產生不同的DNA 圖譜，從而對細菌進行分型和遺傳分析。Babak 等[17]采用ERICPCR 對從364 個嬰幼兒配方奶粉樣品中分離的25 株阪崎克羅諾桿菌進行分子分型，菌株被分為8 種不同的類型且具有高度的遺傳多樣性。Ye等[18]利用ERIC-PCR 分型方法將22 株來源于嬰兒配方奶粉的阪崎腸桿菌分為16 個ERIC-PCR指紋圖譜，且DI 值為93.3%，表明ERIC-PCR 具有較高的區(qū)分能力，并顯示了阪崎腸桿菌的遺傳多樣性，同時作者認為ERIC-PCR 分型方法可用于追蹤食物鏈中阪崎腸桿菌的來源。本研究中37株阪崎克羅諾桿菌具有28 種ERIC-PCR 指紋圖譜，DI 值為98.05%，這也表明ERIC-PCR 同樣具有較強的分型能力。此外，ERIC-PCR 具有快捷、簡便等優(yōu)勢可使其迅速分析菌株之間遺傳多樣性和親緣性，從而可快速展開流行病學調查，然而PCR 擴增結果影響因素多，需不斷優(yōu)化試驗。

MLST 是通過擴增菌株的管家基因，比較管家基因的核苷酸序列差異從而對菌株進行分型，已廣泛用于即食食品、嬰幼兒配方奶粉、奶粉等食品中分離阪崎克羅諾桿菌分型[19-20]。同時，已有研究發(fā)現(xiàn)阪崎克羅諾桿菌ST 型與特定感染相關，如ST4 型與新生兒腦膜炎有關[21]。本研究中37 株阪崎克羅諾桿菌具有23 個ST 型，DI 值為96.04%，表明MLST 同樣具有較高的分辨率，其中有4 株阪崎克羅諾桿菌為ST4 型，對嬰幼兒健康造成威脅。MLST 分型可用于評估菌株潛在致病性。此外，已建立在線數(shù)據(jù)庫可實現(xiàn)數(shù)據(jù)的全球共享和比對，有利于長期流行病學調查。

PFEG、MLST 和ERIC-PCR 3 種分子分型方法均有較高的分型能力，已有文獻比較這3 種分型方法對空腸彎曲菌和大腸桿菌的分型能力，結果也表明3 種方法均有高度的辨識度，其中PFGE分辨率最高，其次是ERIC-PCR 和MLST[22]。然而，目前未有文獻比較這3 種分型方法對阪崎克羅諾桿菌的分型能力。本研究結果表明PFGE 對阪崎克羅諾桿菌的分型能力最強，而MLST 分型的能力相對最弱，這與已報道PFGE 分型方法對阪崎克羅諾桿菌、阪崎腸桿菌、氣單胞菌、大腸埃希菌、空腸彎曲菌、沙門氏菌、李斯特菌和銅綠假單胞菌等菌株的分型能力均略強于ERIC-PCR 結果一致[23-28]。此外，目前雖尚未有研究比較MSLT 和ERIC-PCR 2 種分型方法對阪崎克羅諾桿菌的分型效果，但ERIC-PCR 對肺炎克雷伯菌、空腸彎曲菌等致病菌的分型能力高于MLST[29-30]。根據(jù)對菌株的分型能力而言，3 種分型方法中PFGE 分辨率最高。

細菌分型在食品安全監(jiān)控和流行病學調查中發(fā)揮著重要作用，傳統(tǒng)的表型方法和基于特定基因序列的分子分型方法已不能滿足對菌株的精準溯源分析?；诩毦蚪M分型技術可進一步對菌株進行精準分型，且具有重復性好、穩(wěn)定等優(yōu)點，同時隨著基因組測序技術的發(fā)展以及測序費用降低，該技術可在風險監(jiān)測和溯源中廣泛應用。