楊焱,胡九菊,李林霖,趙勛能,張健*
(1.天津科技大學生物工程學院,工業(yè)發(fā)酵微生物教育部重點實驗室,天津 300457;2.北京金王健康科技有限公司,北京 100269)
蜂王漿(royal jelly)又名蜂皇漿、王漿,是由青年工蜂發(fā)達的下咽頭腺和上顎腺等腺體共同分泌的乳白色或淡黃色漿狀物,具有抗衰老、抗菌、抗疲勞、抗炎、抗氧化、抗腫瘤、抗糖尿病和抗突變等多種生理功能[1-2]。蜂王漿的質量和生理功能由其成分決定,但蜂王漿成分復雜,且易受季節(jié)、產地、蜜源、蜂種和貯存條件等影響[3],很難明確其成分與質量或生理功能之間的相關性。盡管如此,人們發(fā)現(xiàn)新鮮蜂王漿的生理功能遠高于貯存后的蜂王漿,且貯存時間越久,生理功能越低??梢姺渫鯘{極易變質,其品質和生理功效易受貯存條件的影響,若貯存條件不當,則蜂王漿的物理性狀、化學組成和生理功效均會發(fā)生顯著變化。
為有效地評價蜂王漿的質量,從而建立蜂王漿的分級和定價標準,以及改良銷售、流通各環(huán)節(jié)的貯存方法,科研人員進行了大量試驗,試圖找到一些有價值的蜂王漿新鮮度評價指標,已報道的指標包括色度[4]、糠氨酸[5]、糠醛[6]、游離氨基酸[7]、57 ku 蛋白[8]和三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)及其降解產物[9-10]、酶類物質(超氧化物歧化酶、葡萄糖氧化酶)[3,11]等,然而受各種因素的制約,目前仍沒有一種蜂王漿新鮮度評價指標被世界公認。
超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)是一種能直接地、特異性地猝滅超氧化自由基的抗氧化酶,能顯著降低超氧陰離子對細胞的毒性作用,具有抗衰老、抗腫瘤和抗輻射等生理功能。袁耀東等[12]研究表明了蜂王漿中含有0.403 ng/g的SOD;龐紅金[11]、張映等[13]、張娟等[14]和唐朝忠等[15]分別研究了不同貯存溫度和時間條件下蜂王漿中SOD活性的變化,發(fā)現(xiàn)反復冷凍、解凍對蜂王漿SOD活性影響很大;蜂王漿中SOD活性隨貯存時間的延長而降低,且貯存溫度越高失活速度越快。在-18℃下貯存一個月,蜂王漿中SOD活性基本穩(wěn)定;在4℃下貯存10 d,SOD活性略有下降,但變化亦不顯著;在25℃下貯存10 d后SOD活性消失。
上述報道中,除張娟等[14]采用黃嘌呤氧化酶法測定SOD活性,其他研究均采用鄰苯三酚自氧化法測定SOD活性。相比而言,黃嘌呤氧化酶法具有更好的靈敏度,檢測更為快速,干擾更少,更適合用于科研和仲裁[16]。蜂王漿成分復雜,基質干擾對SOD活性的測定影響很大,必須對蜂王漿預處理除去干擾物,才能保證SOD測定結果的準確,而現(xiàn)有的文獻在測定SOD時對蜂王漿的預處理卻鮮有報道。
本試驗采用黃嘌呤氧化酶法測定蜂王漿中SOD活性,優(yōu)化了蜂王漿的預處理方法,測定了蜂王漿在不同貯存時間和溫度下SOD活性變化,以及不同生產工藝和蜜源對SOD活性的影響,評價了SOD活性作為新鮮度指標的可行性。
蜂王漿:北京金王健康科技有限公司。試驗中所使用蜂王漿包括以下幾種:粗品蜂王漿為采集后直接罐裝,含有雜質的待加工原材料,包含以荊花、椴樹花、槐花為蜜源的新鮮蜂王漿;純品蜂王漿為以槐花為蜜源的新鮮蜂王漿,根據(jù)不同的加工方法,分為正常工藝(普通)、全鏈條低溫保存及速凍工藝(速凍)和過度加工(加工)3種。
總超氧化物歧化酶(total superoxide dismutase,TSOD)測試盒(羥胺法):南京建成生物工程研究所;冰乙酸(分析純):天津市永大化學試劑公司;氯化鈉(分析純):天津市北方天醫(yī)試劑公司。
XMTD-204數(shù)顯式電熱恒溫水浴鍋:上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠;UV-3100型紫外可見分光光度計:上海美譜達儀器有限公司;H1650R臺式高速冷凍離心機:湖南湘儀動力測試儀器有限公司;QL-902渦旋振蕩儀:海門市其林貝爾儀器制造有限公司。
1.3.1 SOD粗提液的制備
將蜂王漿從-18℃冰箱中取出,于4℃下解凍2 h,無冰碴即可用于后續(xù)試驗。以將蜂王漿3倍稀釋為例,首先在EP管內加入生理鹽水2 mL,緩慢加入蜂王漿,直至液面漲至3 mL,加入玻璃珠后,置于渦旋振蕩儀上渦旋混勻。離心取上清液在同樣條件下再次離心,上清液即為SOD粗提液。
1.3.2 酶活測定
本試驗使用T-SOD測試盒檢測酶活,試劑盒采用黃嘌呤氧化酶法(羥胺法)測定SOD活性,具體測定方法參照南京建成總超氧化物歧化酶(T-SOD)測試盒說明書進行。通過黃嘌呤及黃嘌呤氧化酶反應系統(tǒng)產生超氧陰離子自由基(O2-·),后者氧化羥胺形成亞硝酸鹽,在顯色劑的作用下呈現(xiàn)紫紅色,用紫外可見分光光度計測其吸光度[16]。因酶的百分抑制率與酶的活力呈拋物線關系,故在確定稀釋倍數(shù)時,應取百分抑制率在45%~55%的樣本濃度作為最佳取樣濃度。通過公式(1)可計算出吸光度抑制率,根據(jù)抑制率通過公式(2)計算可求出被測樣品中的SOD活性。
式中:R1為氧化抑制率,%;A0為對照管吸光度;A1為對照管吸光度。
式中:U1為總 SOD 活性,U/mL;R1為氧化抑制率,%;V1為反應液總體積,mL;V2為測定樣品體積,mL;n為樣品測試前的稀釋倍數(shù)。
1.3.3 單因素試驗設計
以粗品槐花蜂王漿為原料,優(yōu)化的因素包括研磨時間、稀釋倍數(shù)、稀釋液成分、離心次數(shù)、離心轉速。根據(jù)預試驗的結果,以在4℃下,使用蒸餾水對樣品進行2倍稀釋,研磨時間控制在20 s,以6 000 r/min進行1次離心,單次離心時間20 min,作為基礎反應條件。單一改變基礎反應條件中的變量,分別測定研磨時間為 0、10、20、60 s時;稀釋倍數(shù)為 2、3、4、5 倍時;稀釋液為蒸餾水、生理鹽水時;轉速為6 000 r/min,離心1次或2次時;離心1次,轉速為6 000 r/min或12 000 r/min時,蜂王漿樣品粗提液SOD的活性。每個水平測定3次取平均值,每個因素均以酶活力最高的水平為100%計,其它水平實際酶活與最高水平實際酶活的比值的百分數(shù)即為該水平下的相對酶活力,以相對酶活力反映試驗效果。
1.3.4 不同溫度和存放時間對蜂王漿SOD活性的影響
以粗品和純品的槐花蜂王漿為原料,其中純品槐花蜂王漿以正常工藝制備。采用優(yōu)化后的預處理方法提取蜂王漿中SOD,黃嘌呤氧化酶法測定SOD活性。分別考察新鮮蜂王漿在4℃和25℃下不同貯存時間的SOD相對酶活力,每2 d測定一次,以每個因素中酶活力最高者為100%計。
1.3.5 不同蜜源對蜂王漿SOD活性的影響
采用優(yōu)化后的預處理方法提取蜂王漿中SOD,黃嘌呤氧化酶法測定SOD活性。測定荊花、椴樹花、槐花蜜源的新鮮粗品蜂王漿中的SOD相對活性,以活性最高者為100%計。
1.3.6 蜂王漿不同生產工藝對蜂王漿SOD酶活力的影響
采用優(yōu)化后的預處理方法提取蜂王漿中SOD,黃嘌呤氧化酶法測定SOD活性??疾觳煌a工藝的純品槐花蜂王漿中SOD活性,以酶活力最高者為100%。
1.3.7 統(tǒng)計方法
每組數(shù)據(jù)均平行3次,采用Origin 2018進行繪圖;差異的顯著性通過采用Graphpad Prism 8.0.1中單因素方差分析(one-way ANOVA)進行數(shù)據(jù)分析,結果用平均值±標準差表示。
觀察發(fā)現(xiàn)粗品槐花蜂王漿樣品中含有結晶狀顆粒物,為使其完全溶解,提高SOD提取收率,采用研缽對其進行研磨,考察研磨時間對SOD活性的影響,結果見圖1。
圖1 研磨時間對SOD活性的影響Fig.1 Effect of grinding time on SOD enzyme activity
由圖1可知,60 s內研磨時間對酶活性無明顯影響。王粉琴等[17]認為蜂王漿中結晶狀顆粒物為10-羥基-2-癸烯酸晶體,它是王漿中很重要的一種脂肪酸,析出程度隨蜂王漿新鮮度以及品質的不同而變化。既然該物質不影響SOD測定,此步驟可以省略。
粗品槐花蜂王漿樣品濃稠且黏度較高,為取抑制率在45%~55%的樣本濃度作為最佳取樣濃度,故對樣品梯度稀釋;考慮到蛋白質的鹽溶作用,故比較生理鹽水與蒸餾水作為稀釋劑的效果,以提高SOD提取收率,考察樣品不同稀釋液和稀釋倍數(shù)下的抑制率,結果見圖2和圖3。
圖2 不同稀釋液和稀釋倍數(shù)對抑制率的影響Fig.2 Effects of different diluents and dilution times on inhibition rates
使用生理鹽水和蒸餾水3倍稀釋后抑制率可分別達46.78%和47.84%,與龐紅金[11]、唐朝忠等[15]試驗結果相似,由圖2可知,生理鹽水作為稀釋劑效果更好。其原因可能是鹽溶作用促進SOD在水中的溶解,或與酶活性中心的金屬離子發(fā)生拮抗作用[18],由圖3可知,對3倍稀釋樣品SOD相對酶活力計算,在測定新鮮蜂王漿SOD活性時采用生理鹽水3倍稀釋最佳。
圖3 稀釋3倍樣品中SOD相對活性Fig.3 Relative activity of SOD in samples diluted 3 times
在預試驗中,發(fā)現(xiàn)離心后上清液中可能有干擾酶活測定的顆粒物質,故嘗試提高離心轉速或增加離心次數(shù)以除去干擾物質,測定轉速或離心次數(shù)對SOD活性的影響,結果分別見圖4a和圖4b。
圖4 離心對測定SOD活性的影響Fig.4 Effect of centrifugation on the determination of SOD activity
由圖4a可知,12 000 r/min離心后SOD相對酶活力降低,可能是因為SOD離心損失所致,于是仍然維持原有6 000 r/min的轉速,將離心后的上清液在相同條件下重復離心1次,測定離心次數(shù)對SOD活性的影響。由圖4b可知,離心1次相對酶活力僅為88.14%,離心2次相對酶活力明顯提高,說明該條件下檢測靈敏度更高,故在后續(xù)試驗中將蜂王漿在6 000 r/min下離心2次后測定酶活。
酶是生物活性物質,不同貯存條件會影響其活性,本試驗探究蜂王漿在不同溫度下貯存不同時間后SOD活性的變化,結果見圖5a和圖5b。
圖5 存放時間對蜂王漿SOD活性的影響Fig.5 Effect of storage time on SOD activity of royal jelly
由圖5 a和圖5 b可知,不同蜂王漿隨著貯存時間的延長,SOD的活性逐步降低,且純品蜂王漿中SOD的相對酶活比粗品中失活更快。在4℃下貯存時,貯存時間8 d時,純品槐花蜂王漿中SOD的相對酶活力接近于0%;在25℃下貯存時,相對酶活力在2 d內急劇下降;貯存時間4 d時,純品槐花蜂王漿中SOD的相對酶活接近于0%。有報道蜂王漿中SOD活性隨貯存時間的延長而下降,且貯存溫度越高失活越快[11,13,15,19-20]。與本試驗結果相似。
蜂王漿中的多種生物活性成分大部分來源于蜜蜂食物中的蛋白質,因此,王漿的質量和生物活性成分受蜜源的影響非常顯著[21]??疾觳煌墼磳OD活性的影響,結果見圖6。
圖6 不同蜜源對蜂王漿SOD活性的影響Fig.6 Effect of different honey plant on the SOD enzyme activity of royal jelly
由圖6可知,飼喂荊花蜜蜂所產蜂王漿SOD活性最高,與其它蜜源蜂王漿SOD活性有顯著差異(P≤0.05),而飼喂椴樹花或槐花蜜蜂所產蜂王漿中SOD活性無明顯差異。由于本研究蜂王漿均為北京金王健康科技有限公司提供,樣品有限且產地單一,在后續(xù)研究中將進一步擴大蜂王漿樣品產地范圍和數(shù)量,以排除其它潛在因素對SOD活性的影響。
鮮蜂王漿容易受外界光、熱等因素的影響[22],因此加工生產工藝會對SOD活性產生較大影響。對正常工藝(普通)、全鏈條低溫保存及速凍工藝(速凍)和過度加工(加工)3種工藝條件下生產的純品槐花蜂王漿中SOD活性進行檢測,結果見圖7。
圖7 不同生產工藝對蜂王漿SOD活性的影響Fig.7 Effect of different production processes on the SOD enzyme activity of royal jelly
由圖7可知,速凍工藝與正常工藝生產的蜂王漿中SOD活性有顯著差異(p≤0.01),與過度加工工藝生產的蜂王漿中SOD活性有高度顯著差異(p≤0.01),而正常工藝和過度加工工藝生產的蜂王漿中SOD活性無明顯差異,使用速凍工藝生產的蜂王漿中SOD活性最高。這說明蜂王漿中SOD在加工過程中易失活,而冷凍可以抑制其失活,如果條件允許,采漿后迅速冷凍可以有效保持蜂王漿中SOD活性。
本試驗優(yōu)化了黃嘌呤氧化酶法(羥胺法)檢測蜂王漿中SOD活性時的預處理方法,為使用生理鹽水對樣品進行3倍稀釋,4℃下以6 000 r/min對樣品2次離心,單次離心20 min。采用該方法,測定蜂王漿在不同貯存時間和溫度下SOD活性變化,隨著貯存時間的增長,貯存溫度的上升,蜂王漿中SOD活性有非常明顯的降低。速凍生產工藝能最大程度保持蜂王漿中SOD活性,荊花蜜源的蜂王漿SOD活性最高。
本試驗首次優(yōu)化了蜂王漿樣品的預處理方法,提高了試劑盒法檢測蜂王漿SOD活性的靈敏度,這對于準確檢測SOD活性至關重要。采用本研究優(yōu)化的方法,驗證了前人的研究成果,證明SOD在蜂王漿貯存過程中極易失活;加工方法和蜜源會影響蜂王漿中SOD活性。事實上,其它諸如蜂王漿產地和蜂種等因素也會影響蜂王漿中的SOD活性,這將在以后繼續(xù)研究。蜂王漿在25℃下貯存6 d后SOD已經(jīng)基本失活,但據(jù)文獻報道[23-25],很多生理功能在如此短的貯存時間內并未失活,因此,SOD指標只適合在其完全失活前評價同種蜂王漿新鮮度。