劉夢(mèng)蝶,李彩云,李 潔,2,3,,嚴(yán)守雷,2,3,王清章,2,3
(1.華中農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,湖北 武漢 430070;2.環(huán)境食品學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北 武漢 430070;3.湖北省水生蔬菜保鮮加工工程技術(shù)研究中心,湖北 武漢 430070)
蓮藕(Nelumbo nucifera Gaertn.)是我國(guó)最具特色、栽培面積最大的水生經(jīng)濟(jì)作物,目前,蓮藕已成為我國(guó)重要的出口創(chuàng)匯蔬菜之一。蓮藕水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)高達(dá)78%,營(yíng)養(yǎng)成分豐富,貯運(yùn)過程中易于褐變和腐敗,成為制約其出口的主要因素[1-2]。實(shí)驗(yàn)室前期研究發(fā)現(xiàn),尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporum)為蓮藕采后的主要腐敗菌[3]。
空氣放電保鮮法是通過采用非均電場(chǎng)無聲放電或電暈放電使空氣電離產(chǎn)生放電生成氣,主要是臭氧(ozone,O3)和負(fù)離子(negative air ion,NAI)(包括O2-、H2O-、O3-等),用一定濃度的放電生成氣對(duì)果品進(jìn)行短期處理或長(zhǎng)期貯藏使環(huán)境中保持一定濃度的放電生成氣,從而抑制果實(shí)呼吸,減少果品腐爛,延長(zhǎng)果蔬貯藏期的保鮮技術(shù)[4-5]??諝夥烹姳ur技術(shù)具有能耗低、操作簡(jiǎn)便、安全環(huán)保等特點(diǎn),針對(duì)空氣放電的大部分研究集中在以果品貯藏保鮮為代表的保鮮技術(shù)的應(yīng)用,對(duì)空氣放電生成氣抑菌機(jī)理的研究相對(duì)而言較少,本實(shí)驗(yàn)研究空氣放電處理對(duì)蓮藕采后的腐敗菌尖孢鐮刀菌的抑菌作用。
空氣放電技術(shù)的抑菌作用主要體現(xiàn)在臭氧和負(fù)離子都有很高的氧化活性,其作用于細(xì)胞壁,能夠影響甚至破壞細(xì)胞壁(膜)結(jié)構(gòu)和功能,影響細(xì)胞內(nèi)酶的活性,造成細(xì)胞正常生理紊亂,從而抑制和殺滅病原菌[2,6]。利用本實(shí)驗(yàn)室已獲專利授權(quán)的空氣放電裝置[7]對(duì)蓮藕采后主要腐敗菌尖孢鐮刀菌進(jìn)行抑菌實(shí)驗(yàn),結(jié)果顯示空氣放電處理能顯著抑制該菌菌絲生長(zhǎng)和孢子萌發(fā),對(duì)其細(xì)胞結(jié)構(gòu)具有明顯的破環(huán)作用[8-9]。微生物細(xì)胞膜的保護(hù)及傳遞信息的功能與整個(gè)細(xì)胞生命活動(dòng)息息相關(guān),本實(shí)驗(yàn)將從物質(zhì)代謝和能量代謝角度研究空氣放電處理對(duì)尖孢鐮刀菌生理代謝的影響,并在此基礎(chǔ)上研究空氣放電處理對(duì)尖孢鐮刀菌細(xì)胞膜完整性、流動(dòng)性等生理功能的影響,從細(xì)胞水平闡明空氣放電處理對(duì)尖孢鐮刀菌的影響,為空氣放電處理抑制蓮藕腐敗及其在果蔬保鮮中的應(yīng)用提供科學(xué)依據(jù)。
尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporum)為蓮藕貯藏期病原菌,經(jīng)本實(shí)驗(yàn)室分離、純化、鑒定后保存?zhèn)溆谩?/p>
馬鈴薯葡萄糖培養(yǎng)基(potato dextrose agar,PDA)北京陸橋責(zé)任技術(shù)有限公司;馬鈴薯葡萄糖液體培養(yǎng)基(potato dextrose broth,PDB) 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;ATP檢測(cè)試劑盒 上海碧云天生物技術(shù)有限公司;碘化丙啶(propidium iodide,PI) 上海貝博生物科技有限公司;1,6-二苯基-1,3,5-己三烯(1,6-diphenyl-1,3,5-hexatriene,DPH)、DiBAC4(3) 美國(guó)Sigma公司。
QT2SVP500一體化臭氧發(fā)生器 深圳市松野電器有限公司;MIC-03臭氧變送器 深圳市藍(lán)月測(cè)控技術(shù)有限公司;TFB-YA278負(fù)離子發(fā)生器 天長(zhǎng)市創(chuàng)普電子有限公司;DM-3000熒光顯微鏡 德國(guó)Leica公司;guava easyCyte 8流式細(xì)胞儀 美國(guó)Merck Millipore公司;Oxygraph液相氧電極 英國(guó)Hansatech公司。
1.3.1 實(shí)驗(yàn)分組及處理
F. oxysporum在PDA平板上培養(yǎng)7 d后,在菌落邊緣打出直徑6 mm的菌餅移至新的PDA平板中央,當(dāng)密閉空氣放電設(shè)備內(nèi)ozone和NAI生成氣達(dá)到設(shè)定濃度后將樣品放入:ozone組(濃度6.87 mg/m3)、NAI組(濃度5×106ions/cm3)、ozone+NAI組(6.87 mg/m3ozone+5×106ions/cm3NAI同時(shí)處理),每組均處理18 h,重復(fù)3 皿,以不做任何處理為對(duì)照(CK組)。各處理組分別取4 個(gè)菌餅移至100 mL PDB培養(yǎng)基中,搖瓶培養(yǎng)5 d(26 ℃、120 r/min),抽濾得菌絲真空冷凍干燥后保存。
1.3.2 能源物質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測(cè)定
1.3.2.1 總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測(cè)定
參照吳方麗[10]的方法進(jìn)行測(cè)定。精確稱取不同處理的干菌絲0.25 g,加蒸餾水50 mL、濃硫酸7.5 mL,煮沸5 min。冷卻至室溫,用3 mol/L NaOH溶液中和至中性。定容至250 mL,過濾。取濾液10 mL置于三角瓶中,然后加入斐林試劑a、b液各5 mL,微沸2 min后加次甲基藍(lán)指示劑2 滴。在沸騰狀態(tài)下用質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%葡萄糖溶液滴定至藍(lán)色正好褪去,記錄葡萄糖溶液的消耗量,按式(1)計(jì)算總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)。
式中:V0為空白實(shí)驗(yàn)消耗的葡萄糖溶液體積/mL;V為樣品消耗的葡萄糖溶液體積/mL;m為樣品質(zhì)量/g。
1.3.2.2 蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測(cè)定
參照杜亞楠[11]的方法進(jìn)行測(cè)定。精確稱取不同處理的干菌絲0.05 g,分別放入干燥的三角瓶中。然后在各瓶中分別加入5 mL 0.05 mol/L的NaOH溶液濕潤(rùn),之后再加入20 mL雙縮脲試劑,漩渦振蕩5 min,室溫靜置反應(yīng)30 min,在540 nm波長(zhǎng)處測(cè)定上清液吸光度。蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)按式(2)計(jì)算。
式中:m1為從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得的蛋白質(zhì)量/mg;m2為樣品質(zhì)量/mg。
1.3.2.3 脂肪質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測(cè)定
參照張憲利等[12]的方法進(jìn)行測(cè)定。精確稱取不同處理的干菌絲0.45 g用定量濾紙包好,置于索氏脂肪抽提器中。連接已恒質(zhì)量的抽脂瓶,加入無水乙醚。55 ℃水浴加熱提取14 h左右。提取完畢后,水浴蒸去殘留乙醚,再于100~105 ℃烘箱中干燥8 h至恒質(zhì)量。脂肪質(zhì)量分?jǐn)?shù)按式(3)計(jì)算。
式中:m3為提取后殘留樣品干質(zhì)量/mg;m4為樣品干質(zhì)量/mg。
1.3.3 菌絲能量代謝的分析
1.3.3.1 呼吸作用的測(cè)定
將培養(yǎng)7 d的PDA平板放入空氣放電設(shè)備中處理:ozone(濃度6.87 mg/m3)組、NAI(濃度5×106ions/cm3)組、ozone(6.87 mg/m3)+NAI同時(shí)處理(5×106ions/cm3)組每組各處理3 h后,輕輕刮下菌絲,準(zhǔn)確稱取0.05 g,放入含2 mL蒸餾水的反應(yīng)杯中。參考Clark型氧電極的極譜法測(cè)定菌絲體的呼吸作用[13]。呼吸影響率按式(4)計(jì)算,正值表示促進(jìn),負(fù)值表示抑制。
式中:R為處理組耗氧速率/(nmol/(min·mg));R0為對(duì)照組耗氧速率。
1.3.3.2 ATP含量的測(cè)定
F. oxysporum空氣放電處理同1.3.1節(jié),不同處理組的平板在26 ℃生化培養(yǎng)箱避光培養(yǎng)7 d后將菌絲輕輕刮下,加入2 mL裂解液冰上研磨勻漿裂解,然后4 ℃ 12 000×g離心5 min,取上清液備用。按照體積比1∶9的比例用稀釋液稀釋ATP檢測(cè)試劑得工作液,加100 μL ATP檢測(cè)工作液到檢測(cè)孔,室溫放置3~5 min,以使本底性的ATP全部被消耗掉。再向孔內(nèi)加上20 μL樣品或標(biāo)準(zhǔn)品,3~5 s后置于熒光酶標(biāo)儀中檢測(cè)化學(xué)發(fā)光。
1.3.4 空氣放電處理對(duì)尖孢鐮刀菌細(xì)胞膜的損傷
PDA平板菌絲培養(yǎng)及處理同1.3.1節(jié),取不同組的平板,將其產(chǎn)生的分生孢子用無菌水潤(rùn)洗下,離心收集孢子(4 ℃、1 000×g、5 min),磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)懸浮。在接種菌餅后的PDA平板中插入滅菌蓋玻片同1.3.1節(jié)中空氣放電處理,培養(yǎng)7 d后,輕輕取出爬好菌絲的蓋玻片。
1.3.4.1 細(xì)胞膜完整性的測(cè)定
孢子染色:取洗滌后的孢子細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度約為107個(gè)/mL,取100 μL細(xì)胞懸液,加入5 μL PI染液,輕輕混勻,室溫避光染色10 min,制作玻片置于熒光顯微鏡觀察[14]。
菌絲染色:用PBS將PI染色液20 倍稀釋,取出爬好菌絲的蓋玻片,加適量染色液于玻片上,室溫避光染色10 min,用PBS洗滌玻片2 次,吸水紙小心擦干,置于熒光顯微鏡下觀察[15]。
1.3.4.2 細(xì)胞內(nèi)容物滲出的測(cè)定
F. oxysporum在PDA平板上培養(yǎng)7 d后,在菌落邊緣打出直徑6 mm的菌餅取4 塊移至滅菌后的100 mL PDB培養(yǎng)基中,搖瓶培養(yǎng)3 d(26 ℃、120 r/min),經(jīng)3 層無菌紗布過濾沖洗收集菌絲,加入100 mL PBS(0.05 mol/L、pH 7.0)搖勻,移取10 mL至直徑9 cm培養(yǎng)皿,輕輕搖晃使其攤勻在培養(yǎng)皿中,處理組將皿移至空氣放電設(shè)備內(nèi)各不同處理的濃度同1.3.1節(jié),分別處理6 h和12 h,每個(gè)處理重復(fù)3 皿,以不做任何處理為對(duì)照。
胞內(nèi)電解質(zhì)的滲出:收集菌液,測(cè)其電導(dǎo)率[16]。
胞內(nèi)大分子物質(zhì)的滲出:收集處理后的菌液,12 000×g離心2 min,取上清液在260 nm波長(zhǎng)處測(cè)其吸光度[17]。
1.3.4.3 細(xì)胞膜流動(dòng)性的測(cè)定
取6.97 mg DPH溶于四氫呋喃得3 mmol/L DPH染色母液4 ℃冷藏備用。稀釋得濃度為1×107個(gè)/mL的孢子懸液,用體積分?jǐn)?shù)0.37%甲醛溶液固定30 min,PBS洗滌后加入DPH染色液使其終濃度為0.3 mmol/L,室溫染色45 min,PBS洗滌后置于熒光分光光度計(jì)檢測(cè)。激發(fā)波長(zhǎng)為361 nm,發(fā)射波長(zhǎng)為443 nm[18]。
1.3.4.4 細(xì)胞膜電位的測(cè)定
取DiBAC4(3)染料25 mg溶于PBS配制成0.1 mg/mL的母液,4 ℃冷藏備用。PBS稀釋得50 μg/mL的DiBAC4(3)染色液,適量孢子細(xì)胞重懸于500 μL染色液中濃度為1×106個(gè)/mL,避光孵育1 h,PBS洗滌2 次,置于流式細(xì)胞儀檢測(cè),激發(fā)波長(zhǎng)488 nm,收集綠色熒光[19]。
所有實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次,使用DPS 7.05統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理。采用Tukey法和LSD法多重比較各處理組之間的差異性。采用Origin 8.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和圖表制作,流式細(xì)胞儀圖像由Flowjo 7.6軟件進(jìn)行處理。
圖 1 空氣放電對(duì)尖孢鐮刀菌能源物質(zhì)代謝的影響Fig. 1 Effect of air discharge on energy metabolism of F. oxysporum
糖、脂和蛋白質(zhì)是微生物主要的能源物質(zhì),對(duì)生物體的生長(zhǎng)發(fā)育至關(guān)重要??諝夥烹娞幚砗?,圖1A中菌絲總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)顯著高于CK組(P<0.05),并且ozone+NAI處理組顯著高于ozone和NAI單獨(dú)處理組(P<0.05);對(duì)于菌絲蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù),ozone+NAI處理組和ozone單獨(dú)處理組顯著高于CK組(P<0.05),且ozone+NAI處理組作用效果最為明顯(圖1B);由圖1C可以看出,空氣放電處理對(duì)菌絲脂肪質(zhì)量分?jǐn)?shù)無顯著影響。
空氣放電處理后菌絲糖和蛋白質(zhì)產(chǎn)生積累,初步斷定是由于分解代謝受到抑制[10-11]。脂肪作為后備能源物質(zhì),在糖類物質(zhì)供給不足的情況下才加以利用,處理組本身糖類含量充足,故脂肪含量未發(fā)生變化[10]。
由圖2可知,NAI、ozone和ozone+NAI 3 種不同處理顯著抑制菌絲的呼吸作用(P<0.05),且呼吸抑制率分別為14.74%、54.65%、58.47%,ozone+NAI處理組和ozone單獨(dú)處理組作用效果顯著優(yōu)于NAI單獨(dú)處理組(P<0.05),空氣放電處理顯著抑制了尖孢鐮刀菌菌絲體的呼吸作用,ozone的抑制效果強(qiáng)于NAI。
圖 2 空氣放電對(duì)尖孢鐮刀菌呼吸作用的影響Fig. 2 Effect of air discharge on respiration of F. oxysporum
圖 3 空氣放電對(duì)尖孢鐮刀菌ATP相對(duì)含量的影響Fig. 3 Effect of air discharge on relative ATP content of F. oxysporum
3 種不同處理后菌絲內(nèi)ATP含量均顯著減少(P<0.05),ozone和ozone+NAI對(duì)ATP合成的抑制效果顯著強(qiáng)于NAI處理組(P<0.05)。線粒體是細(xì)胞有氧呼吸合成ATP的主要場(chǎng)所,呼吸耗氧量(圖2)及能量(圖3)減少,說明菌絲線粒體功能受到破壞。
空氣放電處理導(dǎo)致菌絲細(xì)胞糖和蛋白質(zhì)含量增多,呼吸強(qiáng)度減弱,結(jié)合處理后菌絲生長(zhǎng)受到抑制,判定空氣放電處理抑制了菌絲的分解代謝,而呼吸作用正是物質(zhì)氧化分解、釋放能量的過程,與處理后菌絲ATP含量顯著減少的結(jié)果相互印證。
PI是一種DNA結(jié)合性染料,其激發(fā)和發(fā)射波長(zhǎng)分別為488 nm和630 nm,產(chǎn)生紅色熒光,但無膜通透性,不能透過活細(xì)胞膜,只能染死細(xì)胞。在熒光顯微鏡下觀察,紅色熒光越強(qiáng),則說明細(xì)胞膜損傷越嚴(yán)重。
由圖4可見,暗場(chǎng)中觀察,CK組孢子細(xì)胞PI染色熒光強(qiáng)度微弱,處理組(NAI、ozone和ozone+NAI)中細(xì)胞熒光強(qiáng)度明顯增強(qiáng),其中ozone+NAI處理組熒光最強(qiáng),說明空氣放電處理破壞了細(xì)胞膜的完整性。已有研究運(yùn)用相同染色方法發(fā)現(xiàn)一些抗菌劑及重金屬離子對(duì)細(xì)菌的細(xì)胞膜也存在不同程度的損傷[20-21]。
圖 4 尖孢鐮刀菌PI染色結(jié)果Fig. 4 PI staining of F. oxysporum
圖 5 空氣放電處理對(duì)胞內(nèi)電解質(zhì)滲出的影響Fig. 5 Effect of air discharge on electrolyte release
由圖5可見,3 個(gè)處理組中,ozone處理組和ozone+NAI處理組在不同處理時(shí)間菌液電導(dǎo)率均顯著高于CK組(P<0.05),而NAI處理組無明顯變化。處理12 h時(shí),ozone+NAI復(fù)合處理作用效果優(yōu)于ozone單獨(dú)處理(P<0.05)。說明ozone和ozone+NAI處理對(duì)F. oxysporum的細(xì)胞膜有顯著的破壞作用,導(dǎo)致小分子電解質(zhì)滲出,致使細(xì)胞外液電導(dǎo)率顯著增加。
由圖6可見,ozone處理組和ozone+NAI處理組在不同處理時(shí)間菌液在260 nm波長(zhǎng)處的吸光度均顯著高于CK組(P<0.05),說明核酸和蛋白質(zhì)等大分子物質(zhì)透過細(xì)胞膜從菌體滲出行為顯著增加,且ozone+NAI復(fù)合處理作用效果強(qiáng)于ozone單獨(dú)處理(P<0.05),而NAI處理組吸光度無明顯變化。此結(jié)果與前述空氣放電處理對(duì)胞內(nèi)電解質(zhì)滲出的影響趨勢(shì)一致。進(jìn)一步證明空氣放電處理可破壞尖孢鐮刀菌細(xì)胞膜完整性,這與空氣處理破壞蓮藕采后腐敗菌鐮刀菌M4細(xì)胞膜,導(dǎo)致電解、核酸和蛋白質(zhì)等大分子物質(zhì)滲出的結(jié)論一致[16]。
圖 6 空氣放電處理對(duì)胞內(nèi)大分子物質(zhì)滲出的影響Fig. 6 Effect of air discharge on release of intracellular macromolecules
細(xì)胞膜由磷脂雙分子層和貫穿、鑲嵌在其中及吸附在其表面的蛋白質(zhì)組成。膜的流動(dòng)性主要指膜脂肪酸鏈部分及膜蛋白的運(yùn)動(dòng)狀態(tài)。熒光探針DPH可以輕松地與細(xì)胞質(zhì)膜中磷脂的脂烴鏈區(qū)結(jié)合而不破壞細(xì)胞膜的完整性,結(jié)合后由于介質(zhì)黏度增加,順反異構(gòu)化受到抑制而成為唯一能發(fā)光的全反構(gòu)型[22]。DPH標(biāo)記成功后,熒光強(qiáng)度增強(qiáng)。
圖 7 空氣放電對(duì)尖孢鐮刀菌細(xì)胞膜流動(dòng)性的影響Fig. 7 Effect of air discharge on cell membrane fluidity of F. oxysporum
DPH熒光強(qiáng)度降低表明結(jié)構(gòu)有序性低或細(xì)胞膜流動(dòng)性高[18,23]。由圖7可知,與CK組相比,3 個(gè)處理組DPH熒光強(qiáng)度均顯著增強(qiáng)(P<0.05),表明空氣放電處理導(dǎo)致細(xì)胞膜流動(dòng)性顯著降低,與弱磁場(chǎng)促使樟芝菌絲體細(xì)胞膜流動(dòng)性增加的作用不同[22]。細(xì)胞膜上不飽和脂肪酸組分的過氧化是引起膜流動(dòng)性下降的主要因素[24],細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)受損,通透性增強(qiáng),可能導(dǎo)致膜孔的產(chǎn)生,影響膜正常的流動(dòng)性[25],結(jié)合空氣放電處理后,F(xiàn). oxysporum細(xì)胞膜中不飽和脂肪酸與飽和脂肪酸比值顯著降低[8],通透性增強(qiáng)(圖5),表明膜結(jié)構(gòu)的破壞導(dǎo)致膜功能的喪失。
DiBAC4(3)是一種細(xì)胞膜電位敏感的親脂性陰離子熒光染料,進(jìn)入細(xì)胞與胞漿內(nèi)的蛋白質(zhì)結(jié)合后才發(fā)出熒光,細(xì)胞膜電位降低時(shí)熒光染料DiBAC4(3)內(nèi)流增加,從而可以檢測(cè)到熒光強(qiáng)度的增加,反之亦然[26-27]。
圖 8 空氣放電對(duì)尖孢鐮刀菌細(xì)胞膜電位的影響Fig. 8 Effect of air discharge on membrane potential of F. oxysporum
如圖8A所示,與CK組相比,處理組細(xì)胞DiBAC4(3)熒光強(qiáng)度顯著減弱(P<0.05),表明空氣放電處理促使細(xì)胞內(nèi)的電位降低,誘導(dǎo)細(xì)胞超極化。這可能與細(xì)胞膜磷脂雙分子層結(jié)構(gòu)被破壞,通透性增強(qiáng),金屬離子外流有關(guān)[28]。
染色細(xì)胞分布圖8B中,相對(duì)于CK組,處理組染色細(xì)胞分布曲線均發(fā)生一定程度的左移,細(xì)胞整體熒光強(qiáng)度減弱,與圖8A中結(jié)果一致。
空氣放電主要是發(fā)揮臭氧和負(fù)離子的抑菌作用。臭氧的抑菌活性源于對(duì)細(xì)胞重要組分的氧化作用。臭氧已被證明攻擊細(xì)菌的許多成分,包括蛋白質(zhì)、細(xì)胞膜上的不飽和脂肪酸和呼吸酶,細(xì)胞質(zhì)內(nèi)的肽聚糖、酶和核酸,以及孢衣和病毒衣殼上蛋白質(zhì)和肽聚糖[29]。對(duì)于真菌殺滅的機(jī)理可能為臭氧破壞了真菌的細(xì)胞壁,進(jìn)而破壞了細(xì)胞膜,使得細(xì)胞內(nèi)容物滲出,細(xì)胞裂解,最終導(dǎo)致真菌的徹底死亡[30]??諝夥烹娺^程中產(chǎn)生的負(fù)離子在空氣中形成的電荷密度可能會(huì)改變細(xì)胞表面電荷,影響細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)和功能,進(jìn)而破壞細(xì)胞膜的完整性[8]。
細(xì)胞膜是細(xì)胞抵御外界刺激的首道屏障,發(fā)揮著維持細(xì)胞完整性、物質(zhì)運(yùn)輸、受體和信息傳遞等重要作用,其完整性(通透性)和流動(dòng)性的改變,與維持細(xì)胞的正常代謝和生理功能密切相關(guān)。本實(shí)驗(yàn)在空氣放電處理對(duì)尖孢鐮刀菌具有抑制作用的基礎(chǔ)上研究發(fā)現(xiàn)空氣放電處理后尖孢鐮刀菌正常代謝活動(dòng)紊亂,包括菌絲物質(zhì)代謝平衡被破壞、呼吸強(qiáng)度減弱、耗氧量降低、ATP合成減少等;同時(shí)尖孢鐮刀菌細(xì)胞膜完整性受到破壞,通透性增大、流動(dòng)性降低、膜電位增加,證明細(xì)胞膜是空氣放電發(fā)揮抑菌作用的靶點(diǎn)之一。結(jié)果還表明臭氧與負(fù)離子之間具有協(xié)同作用,與單獨(dú)處理相比,ozone+NAI處理組更能有效破壞尖孢鐮刀菌細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)。