馬江,文鵬程,羅俏俏,曹磊,朱艷,楊敏,張衛(wèi)兵*,張忠明*
1(甘肅農(nóng)業(yè)大學 食品科學與工程學院,甘肅 蘭州,730070)2(甘肅農(nóng)業(yè)大學 理學院,甘肅 蘭州,730070)
牦牛曲拉是藏族牧民將牦牛乳脫脂、自然發(fā)酵、脫水、干燥等工藝制備得到的一種發(fā)酵乳制品[1-2]。有研究報道,我國曲拉總產(chǎn)量約3萬t,其中1/3的留作牧民食用[3-4]。與新鮮牛乳相比,曲拉中蛋白質(zhì)含量高達75.0%以上,脂肪含量為4.0%~7.0%,營養(yǎng)價值極高[5],同時也具有調(diào)節(jié)人體腸道微生物和改善人體腸道菌群的作用[6]。甘南地區(qū)的曲拉是以牧民家庭自制為主,其制作環(huán)境相對開放,其中含有多種真菌資源。
目前,有關乳制品中真菌資源的報道較多。張曉旭[7]通過傳統(tǒng)培養(yǎng)法從新疆和內(nèi)蒙古曲拉中分離出91株酵母菌,對其生物學特性和發(fā)酵特性進行比較,結(jié)果表明,地域不同的同種酵母亦表現(xiàn)不同的特性;楊俊俊[8]從牦牛曲拉中鑒定出畢赤酵母、釀酒酵母、乳酸克魯維酵母等為主要優(yōu)勢菌群;李先勝等[9]對西藏地區(qū)11份曲拉進行分離篩選,Saccharomycescerevisiae、Kluyveromycesmarxianus、Debaryomyceshansenii、Candidazeylanoides和Torulasporadelbrueckii為曲拉樣品中的優(yōu)勢屬,且不同樣品之間菌落差異較大;次頓等[10]通過變性梯度凝膠電泳法(polymerase chain reaction-denaturing gradient gel electrophoresis,PCR-DGGE)從拉薩酥油中鑒定出優(yōu)勢真菌菌群為假絲酵母屬、亞羅酵母屬和畢赤酵母;烏仁圖雅[11]和張冬蕾[12]通過焦磷酸測序技術(shù)對傳統(tǒng)牦牛酸奶中真菌多樣性進行研究,結(jié)果表明,牦牛酸奶中優(yōu)勢門均為子囊菌門。以上研究采用的方法主要為傳統(tǒng)培養(yǎng)法、變性梯度凝膠電泳、454焦磷酸測序等,具有通量低、操作復雜和準確率低等缺陷。新興的Illumina高通量測序技術(shù)[13-14]具有操作簡單、成本較低的優(yōu)勢,并且采用邊合成邊測序原理,結(jié)果可信度高。因此,通過Illumina高通量測序技術(shù)能夠全面而準確地了解研究對象中微生物種類組成和結(jié)構(gòu)。
本研究采用Illumina高通量測序技術(shù)對采自甘肅省甘南藏族自治州的曲拉樣品中真菌多樣性進行分析,以期全面解析曲拉中的真菌組成及群落結(jié)構(gòu),為曲拉的安全生產(chǎn)提供理論指導,同時為適合曲拉發(fā)酵微生物的篩選奠定基礎。
E.Z.N.A.Soil DNA試劑盒,美國OMEGA公司;Qubit2.0 DNA檢測試劑盒,美國Invitrogen公司;Q5高保真DNA聚合酶,美國New England Biolabs公司;凝膠回收試劑盒,美國AXYGEN公司;TruSeq Nano DNA LT Library Prep Kit,美國Illumina公司。
Pico-21型臺式離心機,Thermo Fisher;DYY-6C型電泳儀、DYCZ-21型電泳槽,北京市六一儀器廠;凝膠成像系統(tǒng),美國UVP公司;Q32866型Qubit 2.0分光光度計,Invitrogen公司;T100TM Thermal Cyeler型PCR儀,BIO-RAD公司;MiSeq System SY-410-1003高通量測序儀,美國Illumina公司。
1.3.1 曲拉樣品的采集
曲拉樣品于2017年9月采自甘肅省甘南藏族自治州合作市那吾鄉(xiāng)塔瓦(S01、S02、S03)、加拉(S61、S62、S63)和瑪崗村(S121、S122、S123)3個村莊的9個不同牧民家庭,將所有樣品裝進自封袋中,置于冷藏箱中運輸至實驗室以備試驗。
1.3.2 曲拉微生物總DNA的提取
曲拉樣品中微生物總DNA提取采用E.Z.N.A.Soil DNA Kit D5625-01試劑盒,按照使用說明從樣品中提取DNA。
1.3.3 PCR擴增及測序
使用真菌特異性引物對曲拉樣品所提取的DNA的ITS區(qū)域進行擴增,ITS區(qū)擴增引物分別為ITS5F(GGAAGTAAAAGTCGTAACAAGG)和ITS1R(GCTGCGTTCTTCATCGATGC)。PCR條件如下:預變性為95 ℃、5 min,然后95 ℃、30 s、56 ℃、30 s、72 ℃、30 s共25個循環(huán),72 ℃退火10 min,最后保存在4 ℃條件下。通過瓊脂糖凝膠電泳對PCR產(chǎn)物進行檢測,然后用試劑盒進行回收進行質(zhì)量檢測并建庫。最后由上海派森諾生物科技股份有限公司在MiSeq測序平臺進行雙端測序。
1.3.4 高通量測序數(shù)據(jù)處理
MiSeq測序得到的數(shù)據(jù)采用Mothur(V.1.31.2)和QIIME(V.1.7.0)軟件進行處理及分析[15-16]。首先采用滑動窗口法對FASTQ格式的雙端序列逐一進行質(zhì)量篩選,然后利用FLASH軟件(v1.2.7)對質(zhì)量初篩的雙端序列進行配對連接。將連接后的序列識別分配對應樣本,從而獲得有效序列。在測序過程中會產(chǎn)生一些錯誤或疑問序列,因此采用QIIME軟件(v1.8.0)[17]識別疑問序列。通過QIIME軟件(v1.8.0)調(diào)用USEARCH(v5.2.236)檢查并剔除嵌合體序列[18-21]。使用QIIME軟件,調(diào)用UCLUST算法進行序列聚類,以97%的序列相似度進行歸并和OTU[22]劃分。測序數(shù)據(jù)在NCBI數(shù)據(jù)庫中的收錄編號為PRJNA431342(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/bioproject/431342)。
1.3.5 群落多樣性和統(tǒng)計分析
利用Mothur(V.1.31.2)軟件進行Alpha多樣性分析,并在不同的分類水平上對群落結(jié)構(gòu)進行了統(tǒng)計分析;
使用R軟件對Weighted的UniFrac距離矩陣分別進行NMDS分析,通過二維排序圖描述群落樣本的結(jié)構(gòu)分布;
使用QIIME軟件進行UPGMA聚類分析和Adonis/PERMANOVA多元方差分析;
使用Mothur軟件,計算優(yōu)勢屬之間的Spearman等級相關系數(shù),對其中rho>0.6且P<0.01的相關優(yōu)勢屬構(gòu)建關聯(lián)網(wǎng)絡,并導入軟件進行可視化。
利用Excel 2010和Origin 2018軟件進行數(shù)據(jù)處理分析并作圖。
9份不同曲拉樣品真菌Alpha多樣性指數(shù)如表1所示,通過真菌的ITS區(qū)測序,9份樣品共產(chǎn)生高質(zhì)量序列663 037條,將所有序列按97%的相似度進行OTU聚類,得到1 667個OTU。由序列數(shù)及OTU聚類可以看出,曲拉中真菌種類繁多,物種豐富,且不同家庭手工制作的曲拉樣品中存在一定差異。
表1 測序結(jié)果及真菌Alpha多樣性指數(shù)表Table 1 Sequencing results and fungal Alpha diversity index
Shannon指數(shù)和Simpson指數(shù)是綜合衡量物種多樣性的指數(shù),其值越高,物種多樣性越豐富,反之物種多樣性越少。9個樣品中指數(shù)最高的分別為S63(3.53)和S01(0.86),表明樣品S63和S01中真菌OTU的多樣性較高;S62的指數(shù)值最低,分別為1.20和0.37,反映了S62中真菌多樣性較低;Chao1指數(shù)和ACE指數(shù)主要側(cè)重于體現(xiàn)稀有群落的豐富度,指數(shù)越大,表明群落的豐富度越高。而曲拉樣品中Chao1指數(shù)和ACE指數(shù)最高的均為S63,分別為254.22和255.77,并且OTU也是最多的(391)??梢钥闯觯瑯悠返腃hao1指數(shù)和ACE指數(shù)大小與OTU數(shù)呈正相關,而群落多樣性與群落豐富度之間不存在相關性。
9份不同曲拉樣品的香濃指數(shù)稀疏曲線如圖1所示。由圖1可知,不同樣品的香濃指數(shù)隨著測序量的增加而呈現(xiàn)上升趨勢,說明在此測序水平下,樣品中真菌微生物的多樣性較高,并且樣品中還有較多的物種還沒有被檢測到;當測序量較高時,香濃曲線逐漸與X軸接近平行,說明在此測序水平下,樣品中真菌的群落多樣性已能夠充分的展現(xiàn)。
圖1 香濃指數(shù)稀疏分析圖Fig.1 The sparse analysis diagram of Shannon index
9份不同曲拉樣品的豐度等級曲線(rank-abundance curve)如圖2所示。由圖2可知,9個樣品的曲線趨勢相似。在水平方向,各樣品曲線寬度反映豐富度,在橫軸上的寬度,體現(xiàn)出不同樣品的物種豐度可能有較大的差異,其中S63豐富度最高,S62、S123豐富度最低。另外,曲線的形狀反映樣品的均勻度,曲線越平緩,群落組成的均勻度越高,曲線越陡峭,則群落中各OTU間的豐度差異越大,均勻度越低。圖2中S63均勻度最高,群落中各OTU間的差異最小。
圖2 豐度等級曲線圖Fig.2 The diagram of rank abundance curve
圖3為9份曲拉樣品從門的分類水平進行鑒定。在曲拉樣品中共檢測出6個門,分屬于子囊菌門(Ascomycota)、擔子菌門(Basidiomycota)、接合菌門(Zygomycota)、壺菌門(Chytridiomycota)、球囊菌門(Glomeromycota)和羅茲菌門(Rozellomycota)。由圖2可知,子囊菌門為9份樣品的共有優(yōu)勢門(相對豐度>1%),平均相對豐度為96.544%;擔子菌門在S01、S02、S03、S63、S121、S122和S123樣品中為優(yōu)勢屬(相對豐度大于1%),平均相對豐度為3.025%;接合菌門、壺菌門、球囊菌門在9份樣品中的豐度很低,為樣品中非優(yōu)勢門;另外,還有一些在門水平上未鑒定出。
子囊菌門為優(yōu)勢菌門這一結(jié)果與新疆地區(qū)傳統(tǒng)發(fā)酵酸牛乳、對韓國酒精飲料和中國白酒中的真菌多樣性研究結(jié)果一致[23-25]。另外,在新疆阿圖什和烏什傳統(tǒng)發(fā)酵酸奶[26]中均檢出擔子菌門、接合菌門、壺菌門、球囊菌門和羅茲菌門,并且壺菌門、球囊菌門和羅茲菌門均為非優(yōu)勢門。
圖3 各樣品門水平菌群分布相對豐度Fig.3 The relative abundance of horizontal flora distributionin phylum level of each sample
圖4為9份不同曲拉樣品從屬的分類水平進行鑒定,共檢測出123個屬。從屬分類水平來看,9份曲拉樣品中畢赤酵母屬(Pichia)和雙足囊菌屬(Dipodascus)為共有優(yōu)勢屬,平均相對豐度分別為26.635%和11.393%;解脂耶式酵母屬(Yarrowia)在樣品S02、S03、S121、S122和S123中為優(yōu)勢屬,平均相對豐度為24.634%;念珠菌屬(Candida)和曲霉屬(Aspergillus)在樣品S01、S02、S03和S63中為優(yōu)勢屬,平均相對豐度分別為4.179%和3.640%;毛孢子菌屬(Trichosporon)在S121、S122和S123中為優(yōu)勢屬,平均相對豐度為1.711%;Archaeorhizomyces在樣品S01和S02中占優(yōu)勢,馬拉色霉菌屬(Malassezia)、絲孢畢赤氏酵母屬(Hyphopichia)和莖點霉屬(Phoma)僅在S63中占優(yōu)勢:Phaeoacremonium只在S01中為優(yōu)勢屬。
這是由于曲拉主要以家庭作坊式生產(chǎn)為主,發(fā)酵過程易受奶源、制作方法、海拔、地理環(huán)境、氣候環(huán)境、發(fā)酵溫度、發(fā)酵時間等影響[27]。另外,樣品中還包含許多在屬水平上未鑒定的屬,未鑒定出屬也具有較高的豐度,其豐度值在7.363%~55.276%,平均豐度值為23.818%。
畢赤酵母、解耶氏酵母和曲霉屬也在西藏曲拉檢測到,這是由于這些酵母是酸凝乳[28]干酪中最常見的菌,能夠利用發(fā)酵乳糖產(chǎn)生乳酸,使凝乳的pH有所升高,有助于發(fā)酵乳制品的成熟。
莖點霉屬在我國屬于檢疫性病菌[29],這是由于制作的環(huán)境存在安全隱患,并且在發(fā)酵豆醬中也檢測到該菌[30],目前未有危害報道。
圖4 各樣品屬水平菌群分布相對豐度Fig.4 The relative abundance of horizontal flora distribution in genus level of each sample
圖5是基于加權(quán)UniFrac距離的NMDS分析,由圖5可知,9份不同來源的曲拉樣品在NMDS1和NMDS2維度上有明顯的聚集和分離趨勢,樣品S01、S02和S03聚為第一類(A),S61、S62和S63聚為第二類(B),S121、S122和S123聚為第三類(C)。A和C樣本中各點分布比較緊密,表明樣品個體間差異性較小,微生物群落結(jié)構(gòu)相似;B樣本中各點分布疏散,樣品個體間差異性較大。原因可能是曲拉是自然狀態(tài)下發(fā)酵并且制作工藝比較粗放。這與李偉程等對傳統(tǒng)發(fā)酵乳制品中微生物多樣性研究結(jié)果一致[31]。
圖5 加權(quán)UniFrac NMDS分析的樣本二維排序圖Fig.5 UniFrac NMDS analysis of two-dimensional sorting in samples
聚類分析主要是以等級樹的形式展示樣品之間的相似度,通過聚類樹的分枝長度衡量聚類效果的好壞。圖6為基于加權(quán)UniFrac距離的曲拉樣品的聚類圖,由圖6可知,不同來源的樣品聚集到不同的類別,說明不同來源的樣品微生物多樣性存在一定的差異性。在S121、S122和S123曲拉樣品之間,其分枝長度最短,樣本之間相似度最高;其次為S01、S02和S03,最后為S61、S62和S63曲拉樣品。
圖6 基于加權(quán)UniFrac距離矩陣的飛加權(quán)組平均法聚類分析圖Fig.6 UPGMA cluster analysis graph based on nweightedUniFrac distance matrix
基于置換的PERMANOVA(permutational multivariate analysis of variance)[32]分析借鑒了ANOVA方差分析多組間差異的統(tǒng)計檢驗思路,通過對距離矩陣進行置換檢驗,從而評價原始樣本組間差異的大小及其統(tǒng)計學顯著性。表2為基于加權(quán)UniFrac距離的Adonis/PERMANOVA分析,由表可知,F(xiàn)=MSt/MSe=16.34,根據(jù)df1=2,df2=6查F檢驗表可得,F(xiàn)0.01(2,6)=10.92,而F>F0.01(2,6),P<0.01,表明不同來源的樣品之間差異極顯著。而“Pr(>F)”是通過999次置換檢驗獲得的P值,P值越小組間差異性就越強。本研究中不同組間的樣品真菌組差異極顯著(P=0.001)。
表2 加權(quán)UniFrac距離的置換多元方差分析Table 2 PERMANOVA analysis of Weighted UniFrac distance
注:“***”代表差異極顯著(P<0.001)
關聯(lián)網(wǎng)絡基于微生物成員之間相互關系,對不同群落成員之間進行分析,推斷不同微生物類群之間的的相互作用[33]。本研究使用Spearman等級相關系數(shù)計算牦牛曲拉樣品中屬之間的關系,并通過Cytoscape[34]軟件可視化。圖7為豐度在前50位的優(yōu)勢屬關聯(lián)網(wǎng)絡圖,由圖7可知,網(wǎng)絡圖由46個節(jié)點和106個邊組成。正相關和負相關之比為105∶1,Aspergillus、Penicillium、Neurospora、Rasamsonia、Apodospora、Placopsis、Chaetosphaeria、Leccinum、Mycosphaerella、Talaromyces、Exophiala、Wardomyces、Gyrophanopsis、Coriolopsis和Russula是網(wǎng)絡的中樞屬(每個節(jié)點≥6個邊)。第1優(yōu)勢屬畢赤酵母屬與優(yōu)勢屬毛孢子菌屬呈負相關,曲霉屬與Archaeorhizomyces、Guehomyces、Wallemia、Penicillum、Phaeoacremonium、Simplicillium呈正相關。而解脂耶式酵母、雙足囊菌屬和念珠菌與其他屬之間沒有相關性。
圖7 優(yōu)勢屬的關聯(lián)網(wǎng)絡圖Fig.7 Diagram of the associated network of dominant genus注:節(jié)點代表各優(yōu)勢屬,以不同的顏色標識,節(jié)點之間的連接表明兩個屬之間存在相關性,紅線表明正相關,綠線表明負相關。通過某節(jié)點的連接越多,表明該屬與菌群中其他成員的關聯(lián)越多
本研究基于Illumina MiSeq高通量測序平臺分析甘南牦牛乳曲拉樣品中真菌群落結(jié)構(gòu)及多樣性。結(jié)果表明,不同來源的曲拉樣品中的微生物多樣性存在差異性。曲拉中真菌群落組成分析表明,曲拉樣品中共有優(yōu)勢菌門為子囊菌門(Ascomycota);共有優(yōu)勢屬為畢赤酵母屬(Pichia)和雙足囊菌屬(Dipodascus);Beta多樣性結(jié)果表明真菌群落組成在不同來源的樣品中存在差異。Adonis/PERMANOVA多元方差分析表明,不同組間的樣品真菌組差異極顯著(P=0.001)。Spearman關聯(lián)網(wǎng)絡圖表明,真菌群落之間正相關占主導地位。