吳永祥,吳麗萍,胡曉倩,金泰完*
(1.黃山學(xué)院生命與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,安徽 黃山 245041;2.安東國立大學(xué)食品科學(xué)與生物技術(shù)學(xué)院,韓國 慶尚北道 安東 760749)
蕨菜(Pteridium aquilinum (Linn.) Kuhn var.latiusculum (Desv.) Underw.)又稱拳頭菜、龍爪菜、蕨兒菜、如意菜等,屬鳳尾蕨科多年生的草本植物。蕨菜廣泛分布于我國東北、西北、華北、西南等,蘊(yùn)藏量豐富,營養(yǎng)價(jià)值高,是我國優(yōu)質(zhì)的綠色天然健康食品,被譽(yù)為“山菜之王”。蕨菜作為藥食兩用植物,有很高的藥用價(jià)值,有清熱解毒、消腫、利水、安神、潤腸通便等功效,可用于治療高血壓、糖尿病、風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎等癥狀[1-2]?,F(xiàn)代藥理研究表明:蕨菜含有多糖[3]、多酚類[4]、黃酮類[5-6]、萜類[7]等多種生物活性物質(zhì),具有抑菌[8]、抗氧化[9-10]、降血脂[11]、抗腫瘤[11]及增強(qiáng)機(jī)體免疫[12]等功效。
真菌固體發(fā)酵是指以藥(食)用真菌為發(fā)酵菌株,以具有活性成分的植物原料為藥用基質(zhì),在雙向發(fā)酵過程中,藥用基質(zhì)為真菌生長提供所需營養(yǎng),真菌對藥用基質(zhì)進(jìn)行分解與再合成,從而產(chǎn)生新的功效成分,提高藥效[13-14]。目前已有多篇文獻(xiàn)利用木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌3 種功能真菌進(jìn)行固體發(fā)酵的報(bào)道:Son等[15]以靈芝菌株對茵陳蒿葉進(jìn)行固體發(fā)酵,有效提高了活性成分,顯著增強(qiáng)了其抗炎癥作用;Kim等[16]利用靈芝菌株對人參進(jìn)行固體發(fā)酵,顯著提升了人參的免疫調(diào)節(jié)作用;Neifar等[17]利用木蹄層孔菌對橄欖油餅進(jìn)行了固體發(fā)酵,使油餅中纖維素含量降低、蛋白質(zhì)含量提高,從而大大提高了油餅的營養(yǎng)價(jià)值;鄔建國等[18]利用裂褶菌對葛根渣進(jìn)行固體發(fā)酵,異黃酮含量提升了70%以上。由此可見,利用3 種功能真菌進(jìn)行固體發(fā)酵,不僅可以改善食品風(fēng)味、增強(qiáng)營養(yǎng)價(jià)值,而且可能會提高活性成分含量或產(chǎn)生新的功效成分,從而提高藥效。然而,目前尚鮮有關(guān)于蕨菜發(fā)酵工藝的研究,本實(shí)驗(yàn)以藥食同源的蕨菜為藥用基質(zhì),采用木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌進(jìn)行固體發(fā)酵,對發(fā)酵前后蕨菜的主要活性物質(zhì)總酚、總黃酮含量進(jìn)行測定,對其抗氧化和抗炎癥作用進(jìn)行比較,以探討真菌固體發(fā)酵對蕨菜活性成分及藥理作用的影響,以期為蕨菜進(jìn)一步的開發(fā)利用提供科學(xué)依據(jù),并作為一個例證,為3 種真菌固體發(fā)酵在食品加工中應(yīng)用提供新思路。
蕨菜,2015年5月于安徽省黃山市采集;木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌 韓國微生物培養(yǎng)中心;RAW264.7細(xì)胞株 美國模式培養(yǎng)物集存庫。
1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)、2,2-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(2,2’-azinobis-(3-ethylbenzthiazoline-6-sulphonate),ABTS)、VC、丹寧酸、Folin-Ciocalteu試劑、四甲基偶氮唑藍(lán)(methyl thiazolyl tetrazolium,MTT)、脂多糖(lipopolysaccharides,LPS)、Griess試劑美國Sigma公司;Dulbecco’s modified eagle medium(DMEM)培養(yǎng)液、胰蛋白酶、胎牛血清及其他細(xì)胞培養(yǎng)試劑 美國Gibco公司。
SpectraMax-190型全波長酶標(biāo)儀 美國Molecular Devices公司;EV341型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 北京萊伯泰科儀器有限公司;CP-ST50A 型CO2培養(yǎng)箱 長沙長錦科技有限公司;DL-CJ-1N型超凈工作臺 北京東聯(lián)哈爾儀器制造有限公司;IX51型倒置顯微鏡 日本Olympus公司。
1.3.1 菌種活化和菌懸液的制備
將保藏的木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌分別接種于馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)斜面培養(yǎng)基上,于25 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)7 d后再轉(zhuǎn)接于PDA平板培養(yǎng)基上。待菌種長滿平板后,在無菌操作臺內(nèi)用打孔器(d=6 mm)打取已活化好的菌種接種到PDA液體培養(yǎng)基中,于25 ℃、180 r/min搖瓶培養(yǎng)7 d。培養(yǎng)后,10 000 r/min高速攪拌10 s,即得到均勻的菌懸液[13,19]。
1.3.2 真菌固體發(fā)酵蕨菜
將蕨菜洗凈晾干并切成均勻條狀,于60 ℃烘干,加水混合,使其充分吸收水分,再進(jìn)行高壓濕熱滅菌。在超凈工作臺上取滅菌后的蕨菜于培養(yǎng)皿中,分別接種5%的木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌的菌懸液,于25 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)7 d。
1.3.3 固體發(fā)酵前后蕨菜醇提物的制備
將固體發(fā)酵前后的蕨菜冷凍干燥,粉碎過40 目篩,得蕨菜粉末。稱取蕨菜粉末50.0 g,10 倍體積分?jǐn)?shù)70%乙醇溶液振蕩提取3 次,每次4 h。提取液過濾后合并,減壓濃縮后真空干燥成粉末,即得固體發(fā)酵前后的蕨菜醇提物。按式(1)計(jì)算各醇提物提取率:
式中:T為各醇提物提取率/%;MS為各提取物濃縮干燥后的質(zhì)量/g;M0為各原料的質(zhì)量,50.0 g。
1.3.4 總酚含量的測定
總酚含量的測定參考Folin-Ciocalteu法[20-21]并修改如下:取50 μL固體發(fā)酵前后的蕨菜醇提物和50 μL Folin-Ciocalteu試劑(0.25 mol/L),充分搖勻,靜置3 min后加入1.0 mL 0.7 mol/L的Na2CO3溶液,室溫靜置1 h顯色,于波長750 nm處測定吸光度。同時Folin-Ciocalteu試劑換成去離子水作為樣品空白對照組。按同法用單寧酸標(biāo)準(zhǔn)品作質(zhì)量濃度-吸光度的標(biāo)準(zhǔn)曲線:Y=0.002X-0.005(R2=0.997),其中總酚含量以醇提物中單寧酸當(dāng)量計(jì)(mg/g)。
1.3.5 總黃酮含量的測定
總黃酮含量的測定參考鋁鹽顯色法[22]并略作改動。取300 μL固體發(fā)酵前后的蕨菜醇提物和300 μL 2% AlCl3試劑,充分混合,室溫靜置1 h顯色,于波長420 nm處測定吸光度。同時AlCl3試劑換成無水乙醇作為樣品空白對照組。按同法用槲皮素標(biāo)準(zhǔn)品作質(zhì)量濃度-吸光度的標(biāo)準(zhǔn)曲線:Y=0.009X+0.020(R2=0.995),其中總黃酮含量以醇提物中槲皮素當(dāng)量計(jì)(mg/g)。
1.3.6 清除DPPH自由基能力的測定
參考文獻(xiàn)[23]略作改動,取100 μL不同質(zhì)量濃度固體發(fā)酵前后的蕨菜醇提物(0.0、0.5、1.0、2.0、5.0 mg/mL),分別加入50 μL 0.2 mmol/L DPPH-乙醇溶液,混勻,避光反應(yīng)10 min,于517 nm波長處測定樣品組吸光度。以VC為陽性對照,每樣重復(fù)3 次,取平均值,并按式(2)計(jì)算DPPH自由基清除率:
式中:I為DPPH自由基清除率/%;AS為樣品組吸光度;ASB為100 μL醇提物與50 μL 99.9%乙醇溶液的吸光度;AC為100 μL 70%乙醇與50 μL DPPH溶液的吸光度;ACB為100 μL 70%乙醇與50 μL 99.9%乙醇溶液的吸光度。
1.3.7 清除ABTS+·能力的測定
參考文獻(xiàn)[24]的方法,配制ABTS混合溶液,由7 mmol/L的ABTS溶液和2.45 mmol/L過硫酸鉀溶液避光反應(yīng)16 h。取50 μL不同質(zhì)量濃度固體發(fā)酵前后的蕨菜醇提物(0.0、0.5、1.0、2.0、5.0 mg/mL),分別加入100 μL ABTS混合溶液,混勻,避光反應(yīng)5 min,于734 nm波長處測定樣品組吸光度。以VC為陽性對照,每樣重復(fù)3 次,取平均值,并按式(3)計(jì)算ABTS+·清除率:
式中:I為ABTS+·清除率/%;AS為樣品組吸光度;ASB為50 μL醇提物與100 μL 99.9%乙醇溶液的吸光度;AC為50 μL 70%乙醇溶液與100 μL ABTS溶液的吸光度;ACB為50 μL 70%乙醇溶液與100 μL 99.9%乙醇溶液的吸光度。
1.3.8 RAW264.7細(xì)胞的培養(yǎng)與傳代
以含10%的胎牛血清作為基礎(chǔ)培養(yǎng)基,將RAW264.7細(xì)胞置于37 ℃、5% CO2且相對飽和濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),根據(jù)細(xì)胞生長的情況,2 d換液1次。待細(xì)胞生長至80%時,用細(xì)胞刮將細(xì)胞刮下,離心后吹打分離細(xì)胞,進(jìn)行傳代培養(yǎng)。
1.3.9 MTT法檢測RAW264.7細(xì)胞的活性
取對數(shù)生長期的RAW264.7細(xì)胞,以1×105個/mL接種于96 孔板中,每孔100 μL。待細(xì)胞完全貼壁良好后(約24 h),更換含不同質(zhì)量濃度固體發(fā)酵前后蕨菜醇提物(0.0、0.05、0.1、0.2 mg/mL)的培養(yǎng)基。培養(yǎng)24 h后,每孔加入MTT溶液10 μL,繼續(xù)培養(yǎng)3 h,然后去除孔內(nèi)的液體,每孔中加入200 μL二甲基亞砜使紫色結(jié)晶充分溶解,于570 nm波長處測各孔的吸光度[25]。設(shè)置不加樣品的孔為空白對照組,其中每樣重復(fù)3 次,取平均值,并按式(4)計(jì)算細(xì)胞相對存活率:
式中:I為細(xì)胞相對存活率/%;AS為樣品組吸光度;AC為空白對照組的吸光度。
1.3.10 固體發(fā)酵前后蕨菜醇提物對LPS誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞NO含量的影響
取對數(shù)生長期的RAW264.7細(xì)胞,以1×106個/mL接種于96 孔板中,每孔200 μL。待細(xì)胞完全貼壁良好后,更換含不同質(zhì)量濃度固體發(fā)酵前后蕨菜醇提物(0.0、0.05、0.1、0.2 mg/mL)的培養(yǎng)基,孵育1 h后加入20 μL 1 μg/mL LPS進(jìn)行誘導(dǎo)。設(shè)未誘導(dǎo)對照組、LPS組和LPS+樣品組,每樣重復(fù)3次,培養(yǎng)18 h后,用Griess法檢測細(xì)胞上清液中NO含量[26]。按式(5)計(jì)算細(xì)胞上清液中NO的相對含量:
式中:I為細(xì)胞上清液中NO相對含量/%;AS為樣品組吸光度;ALPS為LPS組的吸光度。
所得數(shù)據(jù)以 ±s表示,運(yùn)用SPSS 18.0軟件對實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析(One-way ANOVA),利用鄧肯式多重比較對差異顯著性進(jìn)行比較分析,P<0.05,差異顯著。
圖1 接種量對總黃酮含量的影響Fig. 1 Effect of different inoculum amounts on total flavonoid content
為確定真菌固體發(fā)酵蕨菜最佳的接種量,參考文獻(xiàn)[16,27],以質(zhì)量分?jǐn)?shù)2.5%、5%、10%接種于蕨菜,于25 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)7 d,由圖1可知,木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌3 種功能真菌接種量與蕨菜發(fā)酵后總黃酮含量的變化有很大關(guān)系。3 種真菌接種量在2.5%時,總黃酮含量有所增加,但增加效果不顯著,且過低接種量會使菌株生長緩慢,發(fā)酵周期延長,也使得染菌機(jī)率增大。當(dāng)接種量在5%時,總黃酮含量顯著增加。當(dāng)接種量在10%時,相對于接種量5%,總黃酮含量增加不顯著,且有降低的趨勢,這可能與過高接種量造成菌株生長過快,引起培養(yǎng)基溫度上升,影響菌株的正常代謝有關(guān)[28]。結(jié)果表明木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌接種量為5%時,總黃酮含量較高,故選定5%為菌種最適接種量。
由表1可知,木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌固體發(fā)酵后蕨菜醇提物的提取率顯著高于未發(fā)酵蕨菜(P<0.05),其提取率分別為24.14%、22.45%、26.63%,而未發(fā)酵蕨菜的提取率為17.56%。木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌固體發(fā)酵后蕨菜醇提物的總酚含量明顯降低,從未發(fā)酵時的(48.50±0.62)mg/g分別減少到(18.61±2.29)、(32.18±0.37)、(38.84±0.58)mg/g,表示在真菌發(fā)酵過程中分解利用了蕨菜中的總酚物質(zhì),并較少或不合成多酚類化合物。已有研究顯示,微生物發(fā)酵能顯著影響原料中總酚的含量,總酚含量的變化與發(fā)酵菌種、發(fā)酵方式以及發(fā)酵時間有關(guān),即不同菌種不同發(fā)酵時間不同發(fā)酵的方式產(chǎn)生酶的種類、量和活力是有很大差異的,既可以提高總酚含量也可以破壞多酚類物質(zhì)的結(jié)構(gòu),這些差異造成了發(fā)酵前后總酚含量的不同[29-30]。
表1 發(fā)酵前后蕨菜醇提物的提取率及總酚與黃酮的含量Table 1 Extraction yields, total phenolic and flavonoid contents of native and fermented PAEE
如表1所示,不同真菌固體發(fā)酵對蕨菜中總黃酮含量的影響不同。木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌固體發(fā)酵后蕨菜醇提物的總黃酮含量較發(fā)酵前均顯著性增加(P<0.05),從未發(fā)酵時的(4.78±0.84)mg/g分別增加到(7.06±0.05)、(8.32±0.59)、(8.95±1.23)mg/g,分別提高了47.7%、74.1%、87.2%。表明3 種真菌對蕨菜進(jìn)行固體發(fā)酵,可以明顯提高總黃酮的含量,這可能與真菌在發(fā)酵過程中對蕨菜中的某些成分進(jìn)行了轉(zhuǎn)化,形成了新的黃酮類化合物;真菌在發(fā)酵過程中產(chǎn)生豐富的初生或次生代謝產(chǎn)物,這些代謝產(chǎn)物與蕨菜中某些物質(zhì)發(fā)生了反應(yīng)形成了新的黃酮類化合物[19]。另有研究表明真菌在發(fā)酵過程中能夠產(chǎn)生較高活性的水解酶,如纖維素酶、果膠酶、淀粉酶以及蛋白酶,這些水解酶能夠降解植物纖維素,降低淀粉等高分子對活性成分的包裹作用,有利于黃酮類物質(zhì)的溶出[31-32]。這些結(jié)果與本研究所得的結(jié)果相一致。
表2 發(fā)酵前后蕨菜醇提物對DPPH自由基的清除作用Table 2 DPPH radical scavenging activity of native and fermented PAEE
由表2可知,固體發(fā)酵前后蕨菜醇提物對DPPH自由基清除能力均表現(xiàn)出明顯的量效效應(yīng),即隨樣品質(zhì)量濃度增加,DPPH自由基清除能力隨之增加。其中裂褶菌發(fā)酵的蕨菜醇提物質(zhì)量濃度(X)與清除率(Y)間的回歸方程為:Y=36.54X+19.65(R2=0.978);未發(fā)酵蕨菜醇提物質(zhì)量濃度(X)與清除率(Y)間的回歸方程為:Y=80.64X-6.462(R2=0.995);VC質(zhì)量濃度(X)與清除率(Y)間的回歸方程為:Y=1 229X-0.257(R2=0.999)。木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌固體發(fā)酵后蕨菜醇提物清除DPPH自由基能力較發(fā)酵前均有所下降,對DPPH自由基清除作用的IC50值分別為(1.74±0.04)、(0.92±0.03)、(0.83±0.04)mg/mL,而陽性對照VC、未發(fā)酵蕨菜醇提物的IC50值分別為(0.04±0.001)、(0.70±0.01)mg/mL。真菌發(fā)酵后蕨菜醇提物DPPH自由基清除能力的下降,與發(fā)酵過程中總酚含量的降低有關(guān),說明蕨菜中的總酚可能是其發(fā)揮清除DPPH自由基作用的主要活性物質(zhì)。
表3 發(fā)酵前后蕨菜醇提物對ABTS+·的清除作用Table 3 ABTS radical scavenging activity of native and fermented PAEE
由表3可知,固體發(fā)酵前后蕨菜醇提物對ABTS+·均有顯著的清除作用,并呈現(xiàn)明顯的量效關(guān)系。3 種真菌固體發(fā)酵后蕨菜醇提物清除ABTS+·能力較發(fā)酵前均有所下降。ABTS+·清除能力排序?yàn)殛栃詫φ战MVC>未發(fā)酵組>裂褶菌發(fā)酵組>靈芝發(fā)酵組>木蹄層孔菌發(fā)酵組,其對ABTS+·清除作用的IC50值分別為(0.05±0.001)、(0.51±0.02)、(0.92±0.01)、(1.20±0.14)、(2.69±0.01)mg/mL。結(jié)果表明,固體發(fā)酵前后蕨菜醇提物對ABTS+·清除能力的變化規(guī)律與對DPPH自由基清除能力的變化規(guī)律一致,說明蕨菜的抗氧化能力可能來自于蕨菜中的總酚物質(zhì)。
由圖2可知,在0.05~0.2 mg/mL質(zhì)量濃度條件下,固體發(fā)酵前后蕨菜醇提物對RAW264.7細(xì)胞活性無顯著影響,且無劑量效應(yīng)。當(dāng)質(zhì)量濃度達(dá)到0.2 mg/mL時,未發(fā)酵組及木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌固體發(fā)酵后蕨菜醇提物的細(xì)胞存活率分別為103.94%、103.48%、106.84%、102.92%,與對照組相比,無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05)。以上說明,固體發(fā)酵前后蕨菜醇提物在0.2 mg/mL質(zhì)量濃度內(nèi),對RAW264.7細(xì)胞無明顯毒性作用,可用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)的研究。
圖2 發(fā)酵前后蕨菜醇提物對RAW264.7細(xì)胞活性的影響Fig. 2 Effects of native and fermented PAEE on cell viability in RAW264.7 cells
圖3 發(fā)酵前后蕨菜醇提物對LPS誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞釋放NO抑制作用的影響Fig. 3 Inhibitory effects of native and fermented PAEE on LPS-induced NO production in RAW264.7 cells
由圖3可知,未誘導(dǎo)對照組的RAW264.7細(xì)胞上清液中只含有少量的NO,給予LPS誘導(dǎo)后,細(xì)胞上清液中NO含量較未誘導(dǎo)對照組顯著提高(P<0.05),表明體外RAW264.7細(xì)胞炎癥模型建立成功。固體發(fā)酵前后蕨菜醇提物對LPS誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞NO的含量均有明顯的抑制作用,且隨著樣品濃度增加,細(xì)胞模型中NO的含量逐漸減少,與LPS組比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌固體發(fā)酵后蕨菜醇提物抑制NO生成的作用較發(fā)酵前顯著增強(qiáng),當(dāng)質(zhì)量濃度達(dá)到0.2 mg/mL時,對NO生成的抑制率分別為58.61%、63.57%、69.46%,而未發(fā)酵蕨菜醇提物的抑制率為27.09%??寡装Y作用排序?yàn)榱疡蘧l(fā)酵組>靈芝發(fā)酵組>木蹄層孔菌發(fā)酵組>未發(fā)酵組,說明3 種真菌對蕨菜進(jìn)行固體發(fā)酵,可以明顯提高其抗炎癥作用,這可能與發(fā)酵過程中這3 種真菌的代謝活動使蕨菜的總黃酮含量升高有關(guān)。有大量研究顯示,黃酮類物質(zhì)能夠抑制LPS誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞NO的釋放,具有良好的抗炎癥作用[33-34]。
表4 發(fā)酵前后蕨菜醇提物的總酚、總黃酮含量與體外抗氧化、抗炎癥活性的相關(guān)性分析Table 4 Correlation analysis between total phenolic and total flavonoid contents and antioxidant and anti-inflammatory activities of native and fermented PAEE
目前很多研究表明,植物中的化學(xué)成分含量與其生物活性之間存在著良好的相關(guān)性。陳瑋玲等[35]研究表明青錢柳葉不同提取物中總酚、總黃酮含量與DPPH自由基清除能力、還原能力之間呈正相關(guān),與總抗氧化能力呈顯著負(fù)相關(guān)。黃士淇等[29]研究不同真菌發(fā)酵對墨江紫米多酚及其抗氧化性的影響,結(jié)果表明發(fā)酵前后墨江紫米的抗氧化性與總酚含量有關(guān),而與總花色苷含量變化不相關(guān)。由表4可知,發(fā)酵前后蕨菜醇提物的總酚含量與ABTS+·清除能力具有較好的相關(guān)性,其次為DPPH自由基清除能力,與體外抗炎癥作用無顯著相關(guān)性,其中總酚含量與ABTS+·、DPPH自由基清除能力的相關(guān)系數(shù)分別為0.980、0.955。相關(guān)性分析顯示,發(fā)酵前后蕨菜醇提物的總黃酮含量與ABTS+·、DPPH自由基清除能力無顯著相關(guān)性,但與體外抗炎癥作用呈顯著正相關(guān),相關(guān)性系數(shù)為0.954。
本研究結(jié)果表明,經(jīng)過木蹄層孔菌、靈芝和裂褶菌3 種功能真菌的固體發(fā)酵,蕨菜醇提物的總酚含量、總黃酮含量以及體外抗氧化、抗炎癥作用均受到顯著的影響。發(fā)酵后蕨菜醇提物的總酚含量較發(fā)酵前明顯下降,總黃酮含量顯著增加,抗氧化能力降低,抗炎癥作用得到有效提高。發(fā)酵前后蕨菜醇提物的總酚含量與其抗氧化能力有較好的相關(guān)性,總黃酮含量與抗炎癥作用呈顯著正相關(guān)。發(fā)酵前后蕨菜的總酚、總黃酮物質(zhì)種類繁多,需進(jìn)一步分離純化,以篩選出更加明確有效的抗氧化和抗炎癥活性成分。本研究結(jié)果為進(jìn)一步開發(fā)和利用蕨菜資源提供科學(xué)理論依據(jù)。