張文琴,王曉燕,宋高林
(山西省醫(yī)藥與生命科學(xué)研究院,山西 太原,030006)
黃刺玫果為薔薇科薔薇屬野生落葉叢狀灌木黃刺玫(RosaxanthinaLindl)的成熟果實(shí),廣泛分布于我國北方各省的山區(qū)和丘陵地帶[1]。黃刺玫野生資源豐富,僅山西省年產(chǎn)鮮果約24~40 t。黃刺玫果在民間食用歷史悠久,果中含有脂肪、蛋白質(zhì)、糖類、含量高達(dá)83~97 mg/100g的VC、VE、18種氨基酸、17種微量元素,以及多肽、花青素、多酚、鞣質(zhì)、黃酮類[2-3]等活性成分,且安全無毒[4]。
成熟的黃刺玫果呈紅紫色,酸甜可口。但籽多肉少并覆蓋絨毛,食用不便。經(jīng)提取后制成果粉不僅可以使其營養(yǎng)成分得以保留,還可擴(kuò)大應(yīng)用范圍,延長保質(zhì)期。另外黃刺玫果色澤紅紫鮮艷,花色苷含量較高,果粉也可以作為一種天然的水溶性紅色素,應(yīng)用到食品、化妝品中。目前,果蔬粉制備技術(shù)主要有噴霧干燥、熱風(fēng)干燥、真空冷凍干燥、微波干燥等方式[5],其加熱方式、脫水原理的不同會導(dǎo)致果蔬粉理化性質(zhì)、營養(yǎng)成分等的差異。現(xiàn)已有火龍果[6]、桑葚果[7]、楊梅果[8]、棗[9]等多種果蔬不同干燥方式制得的果粉進(jìn)行了分析比較,但黃刺玫果干燥制粉未見相關(guān)報道。另外一般對果蔬粉的品質(zhì)評價多用單個指標(biāo)的直觀評價,鮮有對果蔬粉考察的多指標(biāo)的客觀綜合評價。而綜合指數(shù)法可以對同組或不同組指標(biāo)值進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)處理,使不同計量單位、性質(zhì)的指標(biāo)值標(biāo)準(zhǔn)化,最后轉(zhuǎn)化成一個綜合指數(shù),以準(zhǔn)確地評價干燥方式的綜合水平。綜合指數(shù)值越大,綜合水平越好。
本研究對果粉加工中最常見的方式:熱風(fēng)干燥(hot air drying,HA)、噴霧干燥(spray drying,SD)、真空冷凍干燥(vacuum freeze-drying,VF)等3種不同干燥方式獲得的黃刺玫果粉理化性質(zhì)和有效成分進(jìn)行分析和比較,并采用綜合指數(shù)法:變異系數(shù)法確定各指標(biāo)權(quán)重,極差標(biāo)準(zhǔn)化法對各指標(biāo)進(jìn)行無量綱化處理,對3種果粉品質(zhì)的17項指標(biāo)進(jìn)行了綜合評價。
黃刺玫鮮果,采摘于山西省左權(quán)縣大堡巖。
GZX-9140MBE型電熱鼓風(fēng)干燥箱,上海博訊;SD-06型噴霧干燥器英國Labplant公司,Pilo FD8-15.6V型中試型真空冷凍干燥箱,西盟國際公司;Winner2308激光粒度分析儀,濟(jì)南微鈉顆粒儀器股份有限公司,F(xiàn)W100高速萬能粉碎機(jī),天津市泰斯特儀器有限公司;UV757CRT型紫外可見分光光度計,上海精密科學(xué)儀器公司;FA1004型電子分析天平,上海捷徽電子科技公司;LYNX6000型離心機(jī),美國Thermo公司;RE52CS-1型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器,上海亞榮生化儀器廠;LABONCE-120型藥用穩(wěn)定試驗箱,北京蘭貝石恒溫技術(shù)有限公司;CR-400型手持色差儀,日本SEMSING。
1.3.1 黃刺玫果粉的制備工藝流程
黃刺玫鮮果→清洗→破碎→體積分?jǐn)?shù)70%乙醇提取1.0 h→濃縮至料液比為60%→6 000 r/min離心15 min→添加助干劑(與固形物質(zhì)量比1∶1的DE 8-10麥芽糊精)→干燥→粉碎(高速萬能粉碎機(jī)中粉碎制粉,過80目篩備用)
1.3.2 黃刺玫果粉的不同干燥工藝
HA:溫度60 ℃,干燥時間20 h;VF:冷肼溫度為-45 ℃,真空度為0.1 kPa,干燥時間34 h;SD:進(jìn)口溫度150 ℃,進(jìn)樣速度8.1 mL/min,風(fēng)扇速度4.3 m/s。
1.4.1 黃刺玫果粉得率的計算
(1)
式中:m1干燥前可溶性固形物質(zhì)量(包括可溶性固形物和加入的輔料),g;m2干燥后果粉質(zhì)量,g。
1.4.2 溶解性的測定
稱取1.0 g果粉于燒杯中,加入100 mL的蒸餾水,高速攪拌5 min,3 000 r/min離心5 min,取上清液25 mL于105 ℃烘箱中烘干至恒重,計算上清液中干物質(zhì)含量所占的比例。
1.4.3 色澤的測定
色澤:采用全自動色差儀測定[10],用L、a、b值來表示,L代表明度指數(shù),L值從0到100表示從黑暗到明亮的變化;a值從(-a)到(+a)代表顏色從綠色到紅色的變化;b值從(-b)到(+b)代表顏色從藍(lán)色到黃色的變化。ΔE表示被測物體的色澤(L、a、b)與標(biāo)準(zhǔn)白板色澤(L*、a*、b*)的色差值。ΔE計算方法如式(2)所示。
(2)
1.4.4 水分含量的測定,105℃干燥法。
1.4.5 吸濕率
在相對濕度為75%,溫度為25 ℃的恒溫恒濕箱中保存24 h,測定果粉吸濕增重百分率[11]。
1.4.6 臨界相對濕度
精密稱取2.0 g三種干燥方式所得的黃刺玫果粉,平鋪于72個已恒重的扁型稱量瓶(每組3個)中,然后置于8個相對濕度分別為11%、23%、33%、40%、50%、60%、70%和80%的試驗箱或飽和溶液的干燥器中進(jìn)行試驗,于25 ℃保存24 h,測定吸濕百分率,以吸濕百分率為縱坐標(biāo),相對濕度為橫坐標(biāo)作圖,得出果粉的臨界相對濕度(critical relative humidity,CRH)[12]。
1.4.7 粒度分布和比表面積
利用激光粒度分析儀測定[13]。用體積分?jǐn)?shù)70%乙醇做分散介質(zhì)。
1.4.8 堆積密度的測定
稱取20 g黃刺玫果粉,置于100 mL的量筒中,振實(shí)至量筒內(nèi)果粉體積不再發(fā)生變化[14],讀取果粉體積。
(3)
式中:m2:果粉和量筒的質(zhì)量,g;m1:量筒的質(zhì)量,g;V:果粉振實(shí)后的體積,mL。
1.4.9 流動性的測定
休止角注入法:將漏斗固定在試管架上,漏斗下端距桌面距離為8 cm,取150 mL黃刺玫果粉置于漏斗中使其自由下落形成錐形[15]。測定果粉堆積圓錐的半徑r與圓錐的高度h,以h與r的比值作為正切值來計算休止角:
(4)
1.5.1 黃刺玫果粉中花色苷含量的測定
(1)精密稱取矢車菊-3-O-葡萄糖苷標(biāo)準(zhǔn)品,溶解于pH值為1.5的甲醇溶液中(HCl),定容到10 mL容量瓶中。測定不同濃度的矢車菊-3-O-葡萄糖苷標(biāo)準(zhǔn)品溶液在530 nm[16]處的吸光值,所得標(biāo)準(zhǔn)曲線為:Y=0.052 7X+0.004 1,r2=0.999 9。
(2)取1.0 g果粉,加入5.0 mL蒸餾水,超聲溶解10 min,再加入15 mL甲醇和乙醇的混合溶液超聲10 min,離心,取上清液進(jìn)行含量測定。
1.5.2 黃刺玫果粉中多酚含量的測定
果粉中多酚含量的測定,采用FOLIN-CIOCALTEU法[17]。用沒食子酸為標(biāo)準(zhǔn)品,在748 nm處測定吸光度值,測得的標(biāo)準(zhǔn)曲線為:Y=0.004 9X+0.012 2,r2=0.999 6。果粉測定前處理方法同1.5.1中的(2)。
1.5.3 黃刺玫果粉中黃酮含量的測定
果粉中黃酮含量的測定,采用NaNO2-AlCl3法[18],用蘆丁為標(biāo)準(zhǔn)品,在510 nm處測定吸光度值,測得的標(biāo)準(zhǔn)曲線為:Y=0.012 2X-0.006 6,r2=0.998 1。果粉測定前處理方法同1.5.1中的(2)。
1.5.4 黃刺玫果粉中蛋白質(zhì)含量的測定
果粉中蛋白含量的測定,采用考馬斯亮藍(lán)法[19],用牛血清蛋白為標(biāo)準(zhǔn)品,在595 nm處測定吸光度值,測得的標(biāo)準(zhǔn)曲線為:Y=0.006 3X+0.041 4,r2=0.997 5。果粉測定前處理方法同1.5.1中的(2)。
黃刺玫鮮果的體積分?jǐn)?shù)70%乙醇提取液進(jìn)行過濾,所得濾液按照1.5中有關(guān)花色苷、多酚、黃酮及蛋白質(zhì)的測定方法進(jìn)行含量的測定,以黃刺玫鮮果的重量進(jìn)行含量計算。
綜合指數(shù)法采用變異系數(shù)法確定上述各項指標(biāo)的權(quán)重系數(shù),將數(shù)據(jù)利用極值標(biāo)準(zhǔn)化法處理后,采用加權(quán)平均的方法確定不同干燥方式制得黃刺玫果粉的綜合評分。
研究3種不同干燥方式所得果粉,每種果粉評價指標(biāo)17個,Xij表示第i種干燥方式所得果粉第j個評價指標(biāo)的測定值,i=1,2,3…n,n=3;j=1,2,3……m,m=17。
第j個指標(biāo)的權(quán)重為:
(5)
為消除不同數(shù)據(jù)水平和變量單位對結(jié)果的影響,采用極值標(biāo)準(zhǔn)化法將各項指標(biāo)的數(shù)據(jù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化處理,
(6)
(7)
由于b值、ΔE值、水分含量、吸濕率、粒徑、休止角的數(shù)據(jù)為越小越好,因此為逆指標(biāo),標(biāo)準(zhǔn)化后將正負(fù)號對調(diào)[9]。將各指標(biāo)權(quán)重分別與標(biāo)準(zhǔn)化后的數(shù)值相乘后,計算總和,得到3種干燥方式果粉的綜合評分。
指標(biāo)測定均重復(fù)3次,結(jié)果取平均值。采用Orgin 9.0作圖,SPSS 20.0進(jìn)行ANOVA單因素方差分析和Ducan’s多重檢驗,圖中相同小寫字母表示無顯著差異,不同小寫字母表示存在顯著差異(p<0.05)。
2.1.1 不同干燥方式對黃刺玫果粉得率、溶解性的影響
如圖1所示,HA、VF黃刺玫果粉得率高達(dá)96%以上,SD所得果粉得率為77.5%;3種不同干燥方式的黃刺玫果粉溶解性良好,大小順序為SD>HA>VF,且3種果粉溶解性沒有顯著性差異(p>0.05)。
圖1 不同干燥方式對黃刺玫果粉得率、溶解性的影響Fig.1 Yield and solubility of powder prepared by different drying methods
2.1.2 不同干燥方式對黃刺玫果粉色澤的影響
如圖2所示,干燥方式對果粉色澤有顯著影響(p<0.05),其色差值為:VF>HA>SD。HA方式所得果粉的L、a值最小,b值最大,果粉顏色偏褐黃,不同于其他2種干燥方式,是因為果粉中的還原糖、氨基酸等成分因加熱時間過長、溫度過高發(fā)生了美拉德反應(yīng)[20];VF、SD兩種方式所得的果粉b值均很小,L、a值較大,所以果粉色澤紅紫,鮮亮。
圖2 不同干燥方式對黃刺玫果粉色澤的影響Fig.2 Color parameters of fruit powder prepared by different drying methods
2.1.3 不同干燥方式對黃刺玫果粉水分含量、吸濕率、CRH的影響
如圖3果粉水分含量的大小依次為SD>HA>VF,無顯著性差異,但含水量均小于5.0%。3種果粉的CRH由圖4的吸濕曲線可得。吸濕率和CRH大小順序相反,即吸濕率小的,CRH較大。VF和SD所得果粉較HA更容易吸潮,故需要密封保存??赡芘c果粉表面存在空隙且顆粒間疏散,易吸附水分有關(guān),也可能與果粉中糖類[21]有關(guān),還需要進(jìn)一步的驗證。
圖3 不同干燥方式對黃刺玫果粉含水率、吸濕率、CRH的影響Fig.3 Moisture content, hygroscopicity and CRH of powder prepared by different drying methods
圖4 果粉的吸濕曲線(25℃)Fig.4 The moisture absorption curve of powder
2.1.4 不同干燥方式對黃刺玫果粉粒徑、堆積密度、休止角的影響
由表1可知,不同干燥方式的果粉粒徑大小順序為VF>HA>SD,因為HA、VF兩種方式的果粉是通過粉碎方式所得,且HA方式處理溫度較高,時間較長,物料表面急劇收縮,組織緊密,所以果粉的粒徑遠(yuǎn)大于SD。果粉的流動性主要取決于粉末粒徑的大小和粉末表面特性。休止角越小,果粉的流動性越好。休止角的大小順序為SD>VF>HA,SD所得果粉流動性較差,是因為SD所得果粉粒徑小,顆粒比表面積大,表面聚合力和黏著力也相應(yīng)增大,顆粒發(fā)生團(tuán)聚致使流動性變差[22]。SD果粉比表面積為0.771 m2/g顯著大于HA、VF。另外,顆粒比表面積越大,粉體表面聚合力也越大,亦可作為功能性原料吸附在食品表面[23]。3種干燥方式所得果粉堆積密度存在顯著差異,大小順序為HA>VF>SD。干燥溫度和干燥時間對果粉堆積密度影響較大,HA加熱溫度最高且時間久,堆積密度為0.99 g/mL;VF加熱溫度較低,堆積密度為0.79 g/mL,低于HA方式。另外,粉的堆積密度越大,越有利于制成壓片產(chǎn)品。SD所得果粉堆積密度為0.37 g/mL,是因為SD方式為瞬時受熱,果粉顆粒粒徑小、比表面積大,表面疏松多孔,且顆粒間含有大量的空隙[24],導(dǎo)致其堆積密度較低。
表1 不同干燥方式對果粉粒徑、堆積密度、休止角及比表面積的影響Table 1 Particle size, bulk density, angle of repose andspecific surface area of powder prepared by differentdrying methods
2.2.1 不同干燥方式對黃刺玫果粉花色苷含量的影響
花色苷具有強(qiáng)抗氧化、保護(hù)肝臟、預(yù)防心血管疾病等[25]生理活性。不同干燥方式對果粉花色苷的含量影響較大,如圖5所示。
圖5 不同干燥方式對果粉花色苷含量的影響Fig.5 Anthocyanin of powder prepared by different drying methods
HA的果粉發(fā)生非酶褐變,可能因為長時間高溫使花色苷結(jié)構(gòu)已經(jīng)發(fā)生降解[26],果粉中已檢測不到花色苷。鮮果中的花色苷含量最高,是因為黃刺玫果提取液未經(jīng)過濃縮及干燥過程中的加熱,花色苷結(jié)構(gòu)降解有限。SD所得果粉中的花色苷含量略高于VF,可能是因為SD加熱屬于瞬時受熱,果粉受熱均一[27],溫度對果粉的色澤影響較小。
2.2.2 不同干燥方式對黃刺玫果粉多酚含量的影響
多酚類物質(zhì)具有較強(qiáng)的抗氧化、抗輻射、抗衰老等[28]功能。如圖6所示,3種不同干燥方式所得的果粉中多酚含量都遠(yuǎn)高于鮮果中多酚含量,多達(dá)28 mg/g以上,是因為黃刺玫果70%乙醇提取物的浸膏率為10%~11%,通過提取、過濾、干燥等的制備對黃刺玫鮮果中的多酚進(jìn)行了富集。多酚在多酚氧化酶的作用下發(fā)生氧化反應(yīng),會導(dǎo)致多酚含量的減少[29],VF方式由于加熱溫度和加熱時間的影響,對黃刺玫果粉中多酚損失要高于HA、SD。
圖6 不同干燥方式對果粉多酚含量的影響Fig.6 Polyphenol of powder prepared by different drying methods
2.2.3 不同干燥方式對黃刺玫果粉黃酮含量的影響
黃刺玫中黃酮類化合物對預(yù)防和治療高血壓、血栓引起的心腦血管疾病有顯著療效[18]。如圖7所示,3種干燥方式所得的果粉中黃酮含量遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于鮮果中的黃酮含量,是因為通過對黃刺玫果的提取、干燥,對黃刺玫果中所含的有效成分進(jìn)行了富集。但黃酮類物質(zhì)受熱時易發(fā)生酚類氧化反應(yīng)而分解[9],所以HA方式可能因為加熱溫度較高所得果粉黃酮較低,SD方式對黃酮損失最少,含量大小順序為SD>VF>HA>鮮果。SD所得果粉中黃酮含量顯著高于其他兩種干燥方式。
圖7 不同干燥方式對果粉黃酮含量的影響Fig.7 Flavonoids of powder prepared by different drying methods
2.2.4 不同干燥方式對黃刺玫果粉蛋白質(zhì)含量的影響
如圖8所示,3種干燥方式所得果粉中蛋白質(zhì)含量高于鮮果中蛋白含量,可能是因為黃刺玫提取液很好的保留了刺玫果中的蛋白質(zhì),通過干燥對蛋白質(zhì)進(jìn)行了富集。另外加熱溫度較低時,蛋白結(jié)構(gòu)比較穩(wěn)定[30],HA方式對蛋白質(zhì)保留最好,大小依次為HA>SD>VF,差異顯著。
圖8 不同干燥方式對果粉蛋白質(zhì)含量的影響Fig.8 Protein of powder prepared by different drying methods
計算3種干燥方式獲得的黃刺玫果粉的17項指標(biāo)所占的權(quán)重,以及與各種干燥方式果粉檢測指標(biāo)極值標(biāo)準(zhǔn)化數(shù)值乘積,最后可得各種干燥方式的綜合評分,見表2。
表2 黃刺玫果粉品質(zhì)評價Table 2 Quality evaluation of of Rosa xanthina Lindlpowder
由表2可知,通過比較HA、VF、SD三種方式所制得果粉的品質(zhì)指標(biāo),根據(jù)各種干燥方式的綜合評分可得,果粉品質(zhì)的由高到低的順序為SD>VF>HA。
3種干燥方式對黃刺玫果粉的理化性質(zhì)及有效成分有顯著影響。HA所得果粉溶解性好、得率高、流動性較好、堆積密度大,但是色澤褐黃,果粉中已檢測不到花色苷這一有效成分。VF所得果粉溶解性好、得率高、色澤鮮亮、有效成分花色苷、黃酮、多酚、蛋白質(zhì)含量保留較高,但是粉的粒徑較大、流動性較差、易吸潮。SD所得果粉雖然得率較低77.51%,流動性也較差;但果粉色澤粉紫鮮亮,水溶性良好,粒徑微小僅約7.71 μm,花色苷、多酚、黃酮含量基本最高。綜合指數(shù)法對果粉3種干燥方式的17項指標(biāo)進(jìn)行了綜合評分,得出VF、SD均優(yōu)于HA,SD所得果粉評分最高。
就實(shí)際工業(yè)生產(chǎn),雖然VF方式對果粉品質(zhì)影響較小,但因成本過高、耗時長及處理量有限等因素,目前不適合工業(yè)化生產(chǎn)。SD對果粉品質(zhì)影響最小,果粉中有效成分含量最高,同時噴霧干燥技術(shù)在食品、醫(yī)療領(lǐng)域的大范圍的應(yīng)用,因此噴霧干燥是制備黃刺玫果粉的最好選擇。