高春霞，劉俊義，謝從坤，鄧 紅，李 涵，袁 莉

（陜西師范大學食品工程與營養(yǎng)科學學院，陜西西安 710062）

0 引言

異葒草素（Isoorientin），又名3',4',5,7-四羥基-6-吡喃葡萄糖基黃酮，是一種天然的黃酮類物質，其結構式如圖1，因最早從葒草中分離發(fā)現(xiàn)而得名[1]。異葒草素主要存在于玉米、黑蕎麥、竹筍、苦菜、山楂、百香果、西番蓮等食物中[2-3]。研究發(fā)現(xiàn)，異葒草素具有清除自由基[4]、抑制癌細胞增殖[5-6]、抗氧化[7-8]、抗炎[9-10]、保肝[11-13]、調(diào)節(jié)免疫能力[14]等生物活性。天然抗菌成分一般為多酚或黃酮類物質，提取物己經(jīng)廣泛用于抑菌劑[15]，異葒草素作為一種水溶性黃酮，其對微生物的作用至今鮮有報道。試驗以鼠傷寒沙門氏菌為供試菌，通過研究異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌的抑菌效果、抑菌圈大小、最小抑菌濃度、生長曲線、蛋白質含量、細胞膜通透性及核酸含量等方面的變化來闡述異葒草素的抑菌效果及作用機制，為開發(fā)高效低毒的抗菌藥物提供理論依據(jù)。

異葒草素結構式見圖1。

圖1 異葒草素結構式

1 材料與方法

1.1 試驗菌株

鼠傷寒沙門氏菌（Salmonella typhimurium），陜西師范大學食品微生物專業(yè)實驗室提供。

1.2 主要試劑

異葒草素，江蘇永健醫(yī)藥科技有限公司提供，含量99%；NA培養(yǎng)基：蛋白胨、牛肉膏、氯化鈉、瓊脂粉分析純試劑，均購于西安晶博化玻儀器供應站；AO，EB雙染試劑盒，購于上海七海復泰生物科技有限公司；考巴斯亮藍G-250，購于西安晶博化玻儀器供應站。

1.3 主要儀器

GHP-9270型隔水式恒溫培養(yǎng)箱，上海申賢恒溫設備廠產(chǎn)品；THZ-C型恒溫振蕩器，江蘇省太倉市實驗設備廠產(chǎn)品；Multiskan Go型全波長酶標儀，美國熱電公司產(chǎn)品；DDSJ-308A型電導率儀、超凈工作臺，哈爾濱東聯(lián)電子技術開發(fā)有限公司產(chǎn)品；BS-224-S型電子分析天平，賽多利斯科學儀器有限公司產(chǎn)品；LDZX-50KB型上海申安立式滅菌器、DF-101S型恒溫磁力攪拌器，鞏義市予華儀器有限責任公司產(chǎn)品；徠卡Leica AF6000型熒光顯微鏡系統(tǒng)。

1.4 試驗方法

1.4.1 異葒草素抑菌效果的測定

采用濾紙片擴散法[16-17]進行測定。準確吸取100 μL受試菌懸液注入到冷凝培養(yǎng)基平板表面，并在平板表面等距貼放4～5個濾紙片（121℃，30 min滅菌），中間濾紙片添加無菌水為空白，兩邊濾紙片分別添加5 μL的一定濃度異葒草素溶液，于37℃條件下恒溫培養(yǎng)24 h。用十字交叉法測量抑菌圈直徑，重復3次，結果用mm表示。抑菌率的計算公式為：

1.4.2 異葒草素對菌體生長曲線的影響

采用分光光度法測定異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌生長速度的影響[18-19]。其方法為：取出處于對數(shù)生長期的細菌，并分別加入異葒草素使其終濃度為1 mmol/L，以轉速180 r/min搖床37℃的條件恒溫培養(yǎng)，每隔2 h取樣測量OD600，連續(xù)測定24 h，以時間為橫坐標，以OD600值為縱坐標，用蒸餾水代替異葒草素溶液作為對照試驗，繪制出異葒草素作用下鼠傷寒沙門氏菌的生長曲線。

1.4.3 異葒草素對菌體細胞膜通透性的影響

通過相對電導率法[20]和AO-EB染色法[21]測定電導率，從而測定異葒草素對菌體細胞膜通透性的影響。

（1） 測定相對電導率。用PBS清洗活化后的菌體并使之混勻。并分別加入異葒草素使其終濃度為1 mmol/L。取3 mL，以轉速3 000 r/min離心15 min，取上清液待用。菌懸液置于37℃，120 r/min的搖床中，每隔2 h取1次，離心，取上清液3 mL測此時電導率；然后100℃熱死處理，離心測定上清液的電導率值，以蒸餾水替代異葒草素溶液作為空白對照[17]。

其相對滲透率的計算公式為：

式中：K——某時間電解質相對滲透率，%；

J0——零時間電導率，ms/cm；

J1——某時刻的電導率，ms/cm；

J2——煮沸20 min，冷卻至室溫后電導率，ms/cm。

（2） AO-EB染色法。PBS清洗活化后處于生長期的菌體，取5 mL，以轉速3 000 r/min離心5 min，取上清，PBS重懸，重復2次；并分別加入異葒草素使其終濃度為1 mmol/L，混勻；放入培養(yǎng)箱中37℃振蕩保存6 h；取出后離心，棄PBS，各加入10 μL AO、EB染液，取10 μL樣品置于載玻片，蓋上蓋玻片，置于熒光顯微鏡下觀察并采集圖片。以蒸餾水代替異葒草素溶液作為空白對照。

1.4.4 異葒草素對菌體可溶性蛋白質的影響

用考馬斯亮藍比色法[22]測定異葒草素對受試菌菌體可溶性蛋白質含量的影響[18]。其方法為：菌體活化后用PBS清洗3次，混勻。加入并分別加入異葒草素，使其終濃度為1 mmol/L。菌懸液置于37℃，120 r/min的搖床中培養(yǎng)，每隔2 h取樣，離心，取上清液，加入考馬斯亮藍試劑于595 nm處測樣品管的吸光值，通過標準曲線（圖2）查得待測樣品的蛋白質含量。以時間為橫坐標，蛋白含量為縱坐標，繪制蛋白含量變化曲線，以蒸餾水作為空白對照。

蛋白質標準曲線見圖2。

圖2 蛋白質標準曲線

1.4.5 異葒草素對鼠傷寒總核酸泄露的影響

用PBS清洗活化后處于生長期的受試菌株，并分別加入異葒草素使其終濃度為1 mmol/L，混勻，37℃，100 r/min環(huán)境下恒溫培養(yǎng)。每2 h取樣1次，將取樣液3 000 r/min離心15 min，取上清液加入96孔板用酶標儀測量260 nm下的吸光度并記錄數(shù)據(jù)，以蒸餾水作對照組，每組平行3次，取平均值[23]。

2 結果與討論

2.1 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌抑菌效果的測定結果

異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌抑菌效果見圖3，異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌DIZ的檢測結果（X±s，n=5） 見表 1。

圖3 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌抑菌效果

表1 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌DIZ的檢測結果（X±s，n=5）

由表1可知，異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌有一定的抑制效果，且隨著異葒草素濃度的增加，抑菌效果有一定的增強。當異葒草素的濃度增加到30 mmol/L時，抑菌圈直徑和抑菌率達到最大，抑菌圈直徑為15.5±0.41 mm，抑菌率為91.36%。這說明異葒草素有著一定的抑菌能力，且高濃度的異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌有著較強的抑制作用。

2.2 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌菌體生長曲線影響的結果

按照分光光度法測定異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌生長速度的影響。

異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌生長曲線的影響見圖4。

由圖4可以看出，隨著時間的增加，空白和加藥組的吸光度值都是不斷增加的，但增加的速度有所差別，空白組在0～14 h內(nèi)，吸光值不斷增加，在14～26 h內(nèi)吸光值趨于平穩(wěn)，說明在有限的生存空間和營養(yǎng)條件下，細菌的數(shù)量已經(jīng)達到了最大值。而加藥組，在0～2 h內(nèi)，細菌生長速度與空白組相差不大，在2～18 h內(nèi)吸光度值不斷升高，但細菌生長速度遠遠低于空白組，這說明異葒草素破壞了細菌正常的生長周期和細菌的細胞分裂；18～26 h內(nèi)，吸光度值趨于平穩(wěn)，在16～26h內(nèi)空白組與加藥組的吸光度值之差逐漸減小。加藥組與空白組相比結果可以說明異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌的的菌體生長周期及細胞分裂有一定的抑制作用[24]，且隨著抑菌時間的增加，抑制作用逐漸降低。

圖4 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌生長曲線的影響

2.3 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌菌體細胞膜通透性的影響結果

按照相對電導率法進行試驗，異葒草素對受試菌電導率的影響試驗。

異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌電導率的影響見圖5。

圖5 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌電導率的影響

由圖5可以看出，加入異葒草素的受試菌體細胞的相對滲透率明顯高于對照組。隨著異葒草素對菌體作用時間的延長，受試菌體細胞的相對滲透率持續(xù)增加，且處理2 h后受試菌體細胞的相對滲透率變化的速率明顯升高，說明經(jīng)過異葒草素處理的菌體細胞隨著作用時間的延長，細胞內(nèi)K+，Na+等電解質的滲出量不斷增大，這些離子的丟失導致細胞內(nèi)穩(wěn)定的環(huán)境被破壞、細胞膜的流動性降低、多種代謝途徑受阻和多種酶的活性受到影響，以及細胞內(nèi)外滲透壓的調(diào)節(jié)能力下降，使細胞失水或吸脹，從而起到抑菌作用[25]。8 h后相對滲透率逐漸持平，達到穩(wěn)定狀態(tài)。

AO-EB熒光染色結果見圖6。

圖6 AO-EB熒光染色結果

吖啶橙（AO）能透過胞膜完整的細胞，嵌入細胞核DNA，使之發(fā)出明亮的綠色熒光。溴乙錠（EB） 僅能透過胞膜受損的細胞，嵌入核DNA，發(fā)橘紅色熒光。因此，可以根據(jù)AO/EB熒光標記觀察細胞形態(tài)和膜完整性。異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌形態(tài)的影響如圖6所示。對照組菌體呈綠色，具有完整的膜結構；異葒草素處理組部分菌體呈橘紅色熒光，該結果可進一步證明，異葒草素處理可通過破壞細菌的細胞膜完整性，進而抑制細菌生長。

2.4 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌菌體可溶性蛋白質的影響測定結果

按照考馬斯G250法測定，異葒草素對菌體可溶性蛋白質的影響測定結果。

異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌蛋白的影響見圖7。

圖7 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌蛋白的影響

菌體內(nèi)的可溶性蛋白主要是參與代謝的各種酶類，菌體在生長過程中會產(chǎn)生分泌性蛋白，這些蛋白會通過滲透作用穿過細胞膜進入到菌液中，測量其含量可了解菌體細胞內(nèi)總代謝的變化[26-27]。由圖7可知，經(jīng)異葒草素處理后，受試菌液中可溶性蛋白質含量下降。處理2 h后可溶性蛋白質含量下降較為明顯，處理8 h后，受試菌液中可溶性蛋白質含量基本保持不變，其原因可能為隨著處理時間的增加異葒草素的抑菌效果降低，同時有部分菌體繼續(xù)生長代謝產(chǎn)生可溶性蛋白。研究表明，異葒草素可抑制受試菌體中蛋白質的合成，進而產(chǎn)生抑菌作用，當處理時間為8 h時抑制效果最為明顯。

2.5 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌總核酸泄露的影響測定結果

異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌總核酸的影響見圖8。

圖8 異葒草素對鼠傷寒沙門氏菌總核酸的影響

由圖8可以看出，空白組菌液中核酸含量相當且始終保持不變，而異葒草素處理組菌液中吸光度值逐漸增加，且在作用后2 h達到最大值，之后趨于穩(wěn)定。結果表明，異葒草素作用可嚴重破壞細菌細胞膜通透性和完整性，使細菌內(nèi)部的核酸穿過細胞膜進入到細菌外部菌液中。

3 結論

濾紙片法試驗結果表明，異葒草素鼠傷寒沙門氏菌有較強的抑制效果，且異葒草素濃度與對鼠傷寒沙門氏菌的抑菌效果有正相關關系。通過測定菌體生長曲線、電導率、生長代謝、細胞膜通透性、菌體蛋白質含量和菌體總核酸的泄露，初步弄清了異葒草素對菌體細胞的抑制機制。異葒草素不僅使菌體蛋白質合成的速度受到抑制，菌體總核酸泄露嚴重，還使菌體細胞膜的通透性發(fā)生變化，最終導致受試菌體內(nèi)電解質滲漏，細菌增殖被抑制，菌體死亡。

[1]竇妍，翟延君，佟苗苗，等.HPLC測定不同采收期葒草中葒草素、異葒草素的含量 [J].中國實驗方劑學雜志，2012，18 （2）：62-64.

[2]Tunalier Z，Kosar M，Kupeli E，et al.Antioxidant，antiinflammatory，anti-nociceptive activities and composition of Lythrum salicaria L.extracts[J].Ethnopharmacol，2007（3）：539-547.

[3]Yong-Chun J L，Y Yuan K.A novel high-performance liquid chromatography fingerprint approach to discriminate Phyllostachys pubescens from China[J].Pharmacogn Mag，2012（8）：42-48.

[4]Zeraik M L，Yariwake J H，Wauters J N，et al.Analysis of passion fruit rinds （passiflora edulis）：isoorientin quantification by hptlc and evaluation of antioxidant（radical scavenging） capacity[J].Quimica Nova，2012，35 （3）：541-545.

[5]Yuan L，Wang J，Wu W Q，et al.Effect of isoorientin on intracellular antioxidant defence mechanisms in hepatoma and liver cell lines[J].Biomedicine&Pharmacotherapy，2016 （5）：356-362.

[6]Yuan L，Wang J，Xiao H F，et al.MAPK signaling path－ways regulate mitochondrial-mediated apoptosis induced by isoorientin in human hepatoblastoma cancer cells[J].Food and Chemical Toxicology，2013，53 （3）：62-68.

[7]Deepha V，Praveena R，Sadasivam K.DFT studies on antioxidant mechanisms， electronic properties， spectroscopic（FT-IR and UV） and NBO analysis of C-glycosyl flavone，an isoorientin[J].Journal of Molecular Structure，2015 （10）：131-142.

[8]Lim J H，Park H S，Choi J K，et al.Isoorientin induces Nrf2 pathway-driven antioxidant response through phosphatidylinositol 3-kinase signaling[J].Archives of Pharmacal Research，2007，30（12）：1 590-1 598.

[9]Lee W，Ku S K，Bae J S.Vascular barrier protective effects of orientin and isoorientin in LPS-induced inflammation in vitro and in vivo[J].Vascular Pharmacology，2014，62 （1）：3-14.

[10]Sumalatha M，Munikishore R，Rammohan A，et al.Soorientin， a selective inhibitor of Cyclooxygenase-2 （COX-2）from the tubers of Pueraria tuberosa[J].Natural Product Communications，2015，10 （10）：1 703-1 704.

[11]Huang Q F，Zhang S J，Zheng L，et al.Protective effect of isoorientin-2''-O-alpha-L-arabinopyranosyl isolated from Gypsophila elegans on alcohol induced hepatic fibrosis in rats[J].Food and Chemical Toxicology， 2012， 50（6）：1 992-2 001.

[12]Lin X，Chen Y X，Lv S J， et al.Gypsophila elegans isoorientin attenuates CCl4-induced hepatic fibrosis in rats via modulation of NF-kappa B and TGF-beta 1/Smad signaling pathways[J].International Immunopharmacology，2015，28 （1）：305-312.

[13]Yuan L，Han X，Li W F，et al.Isoorientin prevents hyperlipidemia and liver injury by regulating lipid meta-bolism，antioxidant capability，and inflammatory cytokine release in high-fructose-fed mice[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry，2016，64 （13）：2 682-2 689.

[14]Alonso-Castro A J，Zapata-Bustos R，Gomez-Espinoza G，et al.Isoorientin Reverts TNF-alpha-Induced Insulin Resistance in adipocytes activating the insulin signaling pathway[J].Endocrinology，2012 （11）：5 222-5 230.

[15]陸至科.竹葉生物活性成分提取分離及其抗菌活性研究[D].株洲：中南林學院，2004.

[16]劉曉莉，姜少娟.陳艾抑菌活性的初步研究 [J].安徽農(nóng)業(yè)科學，2010，38（35）：20 023-20 024.

[17]唐金花.苦參等中草藥的抑菌作用、機制研究及對雞大腸桿菌病的防治效果分析 [D].遼寧：遼寧師范大學，2006.

[18]黃聰華.芒萁抑菌有效成分的提取及抑菌機理研究 [D].廣州：廣東工業(yè)大學，2013.

[20]Li L，Song X，Yin Z.Q，et al.The antibacterial activity and action mechanism of emodin from Polygonum cuspidatum against Haemophilus parasuis in vitro[J].Microbiological Research，2016（5）：139-145.

[21]張新虎，何靜，沈慧敏.蒼耳提取物對番茄灰霉病菌的抑制作用及抑菌機理初探 [J].草業(yè)學報，2008，17（3）：99-104.

[22]劉偉.姜酚抑菌作用及姜醋-殼聚糖復合膜性質與應用研究 [D].北京：中國農(nóng)業(yè)大學，2015.

[23]涂璇，薛秀園，涂國全.紅谷霉素對金黃色葡萄球菌抑菌機制的研究 [J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā)，2011，23（1）：153-158.

[24]侯媛媛.大黃和黃芩抑菌活性物質追蹤及其抑菌機理研究 [D].上海：上海海洋大學，2015.

[25]蒲忠慧.青刺果體外抑菌活性及其活性物質的分離純化與作用機制研究 [D].雅安：四川農(nóng)業(yè)大學，2009.

[26]劉笑宇.肉桂精油的抑菌作用、抑菌機理及其在醬牛肉防腐中的應用 [D].上海：上海應用技術學院，2015.

[27]云寶儀，周磊，謝鯤鵬，等.黃芩素抑菌活性劑其機制的初步研究 [J].藥學學報，2012，47（12）：1 587-1 592.◇