邱冰峰 徐方明 徐湯舟 徐 騏 郗健偉浙江省舟山市舟山醫(yī)院消化科,浙江舟山 316000
膽汁淤積性肝病大鼠肝臟及其膽管上皮細胞轉化生長因子β的表達
邱冰峰徐方明徐湯舟徐騏郗健偉
浙江省舟山市舟山醫(yī)院消化科,浙江舟山316000
目的 探究膽汁淤積性肝病大鼠肝臟及其膽管上皮細胞轉化生長因子β(TGF-β)的表達。方法 將60只6~8周齡健康雌性SPF級SD大鼠分為對照組(d0組)、膽總管結扎術后7 d組(d7組)、膽總管結扎術后14 d組(d14組)及膽總管結扎術后21 d組(d21組),各15只,其中d0組大鼠開腹后輕觸膽總管后即關腹。運用Knodell組織學活動指數(shù)(HAI)評分來評價各組大鼠肝臟組織學改變,以PCR方法測量各組大鼠肝臟組織和膽管上皮細胞中TGF-βmRNA的表達情況,使用比色法測算細胞培育后4 d內膽管上皮細胞的數(shù)量,觀察TGF-β1對膽管上皮細胞的增殖作用。結果 肝臟Knodell HAI評分隨著術后時間的延長而提高(P<0.05);肝臟組織和膽管上皮細胞中TGF-β1、TGF-β2及TGF-β3的mRNA表達水平隨著膽汁淤積時間的延長而顯著上調(P<0.05);體外研究顯示,TGF-β1可抑制膽管上皮細胞增殖。結論 在膽總管結扎導致的膽汁淤積性肝病中,肝臟的受損以及TGF-β的mRNA表達水平也會隨著膽汁淤積的時間延長而增加,機體TGF-β1水平與膽汁淤積性肝病的發(fā)生發(fā)展有著密切關系,隨著增生的膽管上皮細胞中TGF-β1表達增高,膽汁淤積性肝臟纖維化發(fā)生率也會相應增加。[關鍵詞]膽汁淤積性肝??;膽管上皮細胞;轉化生長因子β
據(jù)研究試驗證實,轉化生長因子β(TGF-β)包括TGF-β1、TGF-β2、TGF-β3三種同分異構體,其細胞作用機制與功能可概括為以下幾點:①參與機體的免疫調節(jié)功能;②參與機體正常細胞增生、分化與凋亡等一系列變化;③對細胞外基質的形成產生一定的刺激作用;④促進誘發(fā)組織器官逐漸發(fā)生纖維化[1-3]。膽汁淤積性肝病作為臨床上一類較為常見的消化系統(tǒng)疾病,具有較多的誘發(fā)原因,大量臨床研究資料顯示,該病在發(fā)生發(fā)展期間常伴隨不同程度的肝內膽管增生,隨著增生的不斷加重最終可導致膽汁淤積性肝纖維化,從而對肝功能造成不可逆的影響,而此一系列變化都是由TGF-β參與完成的[4-7]。即在膽汁淤積性肝病中,肝內膽汁淤積、肝內膽管上皮細胞增生、TGF-β表達水平上升可以導致肝纖維化,這些病理與生理狀態(tài)之間存在著緊密的聯(lián)系[8-10]。由此可見,在膽管上皮細胞中高度表達TGF-β在淤膽性肝病發(fā)病機制中起著重要作用。因此,本研究提高制作大鼠肝內膽汁淤積的模型及永生化的小鼠膽管上皮細胞株(immortalized mouse intrahepatic biliary epithelial cell line,mIBEC),探究膽汁淤積性肝病發(fā)展不同時期膽管上皮細胞增生與TGF-β表達之間的關系,以及TGF-β對膽管上皮細胞的作用。現(xiàn)總結報道如下:
1.1實驗動物與分組
6~8周齡健康雌性SPF級SD大鼠[購于浙江大學基礎醫(yī)學院,動物合格證號:新醫(yī)動字(新)syxk2014]60只,體重250~300 g,飼養(yǎng)環(huán)境溫度在18~26℃,相對濕度40%~70%,噪音85 dB以下,氨濃度15.2mg/m3以下,通風換氣8~12次/h。所有大鼠采用隨機數(shù)字表法分為4組,每組15只,每3只一籠,即對照組(d0組)、膽總管結扎術后7 d組(d7組)、膽總管結扎術后14 d組(d14組)及膽總管結扎術后21 d組(d21組),并將d7組、d14組及d21組均記為試驗組。
1.2方法
1.2.1模型建立試驗組大鼠麻醉后開腹,雙重結扎膽總管后,斷離膽總管,膽管結扎動物模型即成功建立。對照組大鼠則予開腹后輕觸膽總管后即關腹。
1.2.2分離肝間質細胞及膽管上皮細胞分別在術后的第1、2、3周處死大鼠,包括45只試驗組大鼠和15只對照組大鼠。將處死大鼠的部分肝臟取出并置于15%福爾馬林中浸泡,使用5μm切片對肝臟組織標本進行常規(guī)染色,立刻冷凍,提取RNA進行逆轉錄PCR (RT-PCR)擴增DNA,殘余組織用于分離間質細胞,使用PBS清洗液對膠原酶溶液中的肝細胞進行2次沖洗,之后通過3次離心(50 r/min,3 min)將肝細胞除去,取上清液二次離心(350 r/min,3 min)得到肝間質細胞。使用高密度梯度法將膽管上皮細胞從NLPC中分離而出,方法為:在各濃度梯度的Pcoll層放置細胞懸濁液,并在5℃的環(huán)境下進行10 min的離心(3000 r/min),膽管上皮細胞量即處于1.055~1.065 g/cm3之間。最終得到的膽管上皮細胞標本,一抗為小鼠抗大鼠CK7,二抗為PE結合的馬抗小鼠IgG多抗,試劑均由Wadecam公司提供,在對膽管上皮細胞染色完成后,通過流式細胞學方法檢測純度。
1.2.3肝臟病理組織學及免疫組化檢查肝臟切片通過天狼星紅染色后觀察組織結構,并對所有大鼠Knodell組織學活動指數(shù)(HAI)進行評分,根據(jù)病理檢查結果分別按界面性炎癥及橋接壞死的程度按0~10分評定,匯管周圍無壞死為0分,輕度片狀壞死為1分,中度片狀壞死(累及<30%匯管周圍)為2分,中度片狀壞死(累及<50%匯管周圍)為3分,明顯片狀壞死(累及>50%匯管周圍)為4分,中度片狀壞死+橋狀壞死為5分,明顯片狀壞死+橋狀壞死為6分,多小葉壞死為10分;按小葉內肝細胞變性和壞死的范圍及匯管區(qū)的炎癥狀況分別記分為0~4分,肝小葉內無變性和灶性壞死為0分,輕度(嗜酸小體、氣球樣變性和/或<1/3結節(jié)中散在的肝細胞壞死灶)為1分,中度(累及1/3~2/3肝小葉或結節(jié)為3分,明顯(累及>2/3肝小葉或結節(jié))為4分,匯管區(qū)無炎癥為0分,輕度(<1/3匯管區(qū)出現(xiàn)炎癥細胞)為1分,中度(1/3~2/3匯管區(qū)炎癥細胞增加)為3分,明顯(>2/3匯管區(qū)炎癥細胞密度增加)為4分;按纖維化的程度分別記1~4分,無肝纖維化為0分,匯管區(qū)纖維性擴大為1分,橋狀纖維連接(匯管區(qū)-匯管區(qū)或匯管區(qū)-中央靜脈連接)為3分,肝硬化為4分[11]。
1.2.4實時定量PCR從大鼠肝臟以及膽管上皮細胞中獲取RNA,并將之作為模板通過RT-PCR得到DNA,RNeasy Mini試劑盒由北京方程生物科技有限公司提供。分別自大鼠肝組織及BDEC中提取RNA,以500 ng所提取RNA為模板進行RT-PCR獲取cDNA模板。采用QuantiFect SYBR Green PCR試劑盒(Qiagen),TaqMan ABI PRISM 7300實時PCR系統(tǒng)(Applied Biosystems,F(xiàn)oster City,CA)對來自大鼠肝臟組織及不同時間點的BDEC的cDNA模板進行定量擴增。在每次PCR擴增時,取相同量的蒸餾水取代模板并當作陰性對照,使用GAPDH取代模板的當作加樣對照[8]。每個樣本進行3次檢測。
1.2.5TGF-β1對膽管上皮細胞增殖的作用通過6孔培養(yǎng)板培養(yǎng)膽管上皮細胞,并加入TGF-β1和m IBEC培養(yǎng)液(包括DMEM、F12培養(yǎng)液及胎牛血清)一同進行孵育,此外將不添加TGF-β1孵育的細胞作為對照。通過96孔培養(yǎng)板進行細胞增殖培養(yǎng),培養(yǎng)方法與對照確立方法膽管上皮細胞培養(yǎng)相同,但培養(yǎng)液中需額外加入10 mL/L FBS,使用比色法分別測算細胞培育后4 d內膽管上皮細胞的數(shù)量,測定細胞增殖情況。細胞增殖率=(試驗后細胞總量-試驗前細胞總量)/試驗前細胞總量。
1.3統(tǒng)計學方法
采用SPSS 18.0統(tǒng)計學軟件進行數(shù)據(jù)的處理分析,計量資料用均數(shù)±標準差(±s)表示,多組比較采用方差分析,組間兩兩比較則采用LSD-t檢驗,兩組間比較采用t檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1各組大鼠Knodell組織學活動指數(shù)評分比較
肝臟Knodell HAI評分隨著淤膽時間的延長而增加,d7組、d14組、d21組伴或不伴橋接壞死匯管周圍壞死評分、小葉內變性及局灶性壞死評分、匯管區(qū)炎癥評分、纖維化評分及總分均較d0組明顯增高(均P<0.05),d14組和d21組較d7組伴或不伴橋接壞死匯管周圍壞死評分、小葉內變性及局灶性壞死評分、匯管區(qū)炎癥評分、纖維化評分及HAI總分也明顯偏高(均P<0.05),且d21組HAI各項評分較d14組也明顯偏高(均P<0.05)。見表1。
表1 各組大鼠Knodell組織學活動指數(shù)評分比較(分,±s,n=15)
表1 各組大鼠Knodell組織學活動指數(shù)評分比較(分,±s,n=15)
注:與d0組比較,*P<0.05;與d7組比較,#P<0.05;與d14組比較,△P<0.05
組別伴或不伴橋接壞死的匯管區(qū)周圍壞死小葉內變性及局灶性壞死匯管區(qū)炎癥 纖維化 合計d0組d7組d14組d21組0.2±0.1 2.4±0.5*4.7±1.9*#6.8±1.3*#△0.3±0.1 1.7±0.7*2.6±0.9*#3.1±0.6*#△0.6±0.2 1.4±0.8*2.5±1.3*#3.2±0.7*#△0.2±0.1 1.7±0.9*2.1±1.6*#2.9±0.5*#△0.8±0.3 7.2±2.9*12.9±5.7*#16.0±2.9*#△
2.2各組肝臟組織及膽管上皮細胞中TGF-βmRNA表達水平比較
研究結果顯示,肝臟及膽管上皮細胞內表達最多的是TGF-β1mRNA,而較少表達TGF-β2mRNA,而TGF-β3mRNA表達極其微弱。而隨著膽汁淤積的發(fā)生時間延長,肝臟組織及膽管上皮細胞中的TGF-β1、TGF-β2及TGF-β3的mRNA表達水平均逐漸增加,d21組、d14組及d7組均顯著高于d0組(P<0.05),且d21組明顯高于d14組、d7組(P<0.05),d14組明顯高于d7組(P<0.05)。見表2~3。
表2 各組肝臟組織中TGF-βm RNA表達水平比較(±s,n=15)
表2 各組肝臟組織中TGF-βm RNA表達水平比較(±s,n=15)
注:與d0組比較,*P<0.05;與d7組比較,#P<0.05;與d14組比較,△P<0.05
組別 TGF-β1mRNA TGF-β2mRNA TGF-β3mRNA d0組d7組d14組d21組0.09±0.01 0.18±0.03*0.55±0.02*#0.78±0.03*#△0.01±0.01 0.02±0.01*0.11±0.01*#0.19±0.02*#△0.001±0.001 0.002±0.001*0.010±0.001*#0.017±0.010*#△
表3 各組膽管上皮細胞中TGF-βm RNA表達水平比較(±s,n=15)
表3 各組膽管上皮細胞中TGF-βm RNA表達水平比較(±s,n=15)
注:與d0組比較,*P<0.05;與d7組比較,#P<0.05;與d14組比較,△P<0.05
組別 TGF-β1mRNA TGF-β2mRNA TGF-β3mRNA d0組d7組d14組d21組0.50±0.02 0.70±0.03*0.80±0.03*#1.10±0.10*#△0.10±0.01 0.20±0.01*0.70±0.04*#1.00±0.21*#△0.01±0.01 0.10±0.01*0.30±0.02*#1.10±0.15*#△
2.3TGF-β1抑制膽管上皮細胞的增殖情況
TGF-β1作用后1、2、3、4 d,試驗組細胞增殖率均顯著低于對照組,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見表4。
表4 TGF-β1抑制膽管上皮細胞的增殖情況(%,±s,n=3)
表4 TGF-β1抑制膽管上皮細胞的增殖情況(%,±s,n=3)
注:與對照組比較,*P<0.05
組別 1 d 2 d 3 d 4 d對照組試驗組2.6±0.5 1.8±0.4*10.0±1.7 2.0±0.3*6.3±0.8 5.5±0.7*1.3±0.4 1.0±0.2*
近些年來,肝臟疾病的許多基礎及臨床研究都取得了很大的進步和發(fā)展,隨著經濟生活水平提高以及治療方案的進步,其疾病的變化也很大[12-14]。在本次研究中所制作的肝臟膽汁淤積大鼠動物模型,其病理特征表現(xiàn)為肝內膽汁淤積、膽管增生、纖維間隔形成等一系列狀態(tài)。通過Knodell組織學評分系統(tǒng)評估膽汁淤積發(fā)生不同時間肝臟組織學的變化,發(fā)現(xiàn)肝臟損傷程度可因淤膽時間的不同造成不同影響,絕大多數(shù)情況均表現(xiàn)為淤膽時間越長,肝臟損傷程度越重,應引起臨床工作者的重視。另外,本研究發(fā)現(xiàn),肝內膽管膽管結扎術后第14天內出現(xiàn)明顯增殖,且隨著淤膽時間的延長而加重,與以往研究報道基本一致[15-18]。
有研究資料顯示,膽管結扎誘導膽汁淤積性肝病多合并出現(xiàn)不同類型的病理改變,其中以肝內膽管增殖作為常見,且隨著疾病的進展表現(xiàn)為肝纖維化的加重,出現(xiàn)此類情況的原因是當組織損傷后,參與其中的TGF-β存在著長時間過度表達,這就在一定程度上促進誘導了纖維增生及細胞外基質積聚,從而造成重要器官纖維化,影響其正常的結構與功能,提示TGF-β在肝纖維化發(fā)生中起著重要作用[19-20]。本研究發(fā)現(xiàn)在肝臟發(fā)生纖維化的病變中,膽管上皮細胞中不僅可見到TGF-β蛋白的增加,同時可見TGF-βmRNA含量也顯著提升,而此一系列改變與匯管區(qū)組織學異常變化及纖維化程度存在著明顯的相關性,但其在正常肝臟組織和膽管上皮細胞中的表達較為薄弱,進一步證實了本研究的預期結果。此次試驗通過制作大鼠膽汁淤積性肝病模型并分時點檢測大鼠肝臟的病理改變,同時運用Knodell組織學評分來評價處理后的肝臟組織學的改變和膽管上皮細胞的TGF-β mRNA表達的具體情況發(fā)現(xiàn),肝臟Knodell組織評分隨著術后時間的延長而提高,肝臟組織和膽管上皮細胞中TGF-β1、TGF-β2及TGF-β3的mRNA表達水平隨著淤膽時間的延長而顯著上調,且大鼠模型顯示,TGF-β可抑制膽管上皮細胞增殖,此次研究結果提示了TGF-β表達上升在淤膽性肝病的發(fā)生發(fā)展中的顯著作用,同時分離膽管上皮細胞提示增生的膽管上皮細胞也可憑借TGF-β表達上升在淤膽性肝病的發(fā)生發(fā)展中起到一定的作用。為以直接的方式證實TGF-β與膽管上皮細胞間的互相影響,本研究同時進行膽管上皮細胞與TGF-β在體外的培養(yǎng),結果提示TGF-β對膽管上皮細胞的增殖起到了抑制效果。
綜上所述,本研究提示TGF-β表達上調在該病發(fā)病中發(fā)揮了重要的作用,增生的膽管上皮細胞是TGF-β的重要細胞來源,并顯示了TGF-β在該病肝纖維化形成中的肯定作用。從本研究結果可以推測出膽汁淤積對膽管結扎后肝纖維化發(fā)生的影響重大,但其發(fā)病機制是通過感染還是通過膽鹽潴留等其他因素合并的刺激在起作用,目前還沒有確切的證據(jù)證明這個機制,還需要今后進一步探討研究。
[1]Gonzalez-Moreno O,Lecanda J,Green JE,et al.VEGF elicits-mesenchymal transition(EMT)in prostate intrapithelial neoplasia(PIN)-like cells via an autoctin loop[J].Exp Cell Res,2010,316(14):445-446.
[2]白久旭,韓敬明,李旭,等.Netrin-1慢病毒表達載體的構建及延續(xù)TGF-β誘導HK-2細胞上皮-間充質轉化的初步研究[J].現(xiàn)代生物醫(yī)學進展,2012,12(27):90-91.
[3]梁瑞,張繼帥,葉輝,等.Rack1敲低TGF-β誘導的A529細胞的上皮-間充質轉化[J].軍事醫(yī)學,2012,36(1):29-30.
[4]Kalluri R,WeinbergRA.The basics of epithelial-mesenchy-mal transition[J].J Clin Invest,2009,119(6):1420-1428.
[5]王玲.總膽汁酸和前白蛋白在肝臟疾病中的臨床價值研究[J].中國醫(yī)藥科學,2012,2(15):114.
[6]Han YT,Sun C,Liu CX,et al.Clinical features and outcome of acute hepatitis B in pregnancy[J].BMC Infect Dis,2014,14(1):368-369.
[7]孫艷坤,王洋,劉鵬.酒精性肝病的超聲診斷[J].醫(yī)學信息,2011,24(4):456-457.
[8]張穎娟,連耀國,鄭法雷.VEGF對上皮間充質轉化的抑制與Smad信號途徑及SnoN表達的變化[J].北京醫(yī)學,2012,34(4):299-300.
[9]Thiery JP,Acloque H,HuangRJ,et al.Epithelial-Mesenchymal transitions in development and disease[J].Cell,2009,139(5):871-890.
[10]劉然,劉淑麗,李玉梅.肝病高膽紅素對葡萄糖氧化酶法測定血糖的影響[J].中國醫(yī)藥指南,2010,8(10):59-60.
[11]李多云,劉黎,周健.血清TBA、CHE及PA聯(lián)合檢測在不同類型肝病診斷中的應用[J].胃腸病學和肝病學雜志,2011,20(11):1043-1044.
[12]Scholten D,Osterreicher CH,Scholten A,et al.Genetic labelingdoes not detect epithelial-to-mesenchymal transition of cholangiocytes in liver fibrosis in mice[J]. Gastroenterology,2010,139(3):987-998.
[13]Czul F,Peyton A,Levy C.Primary biliary cirrhosis:therapeutic advances[J].Clinics in Liver Disease,2013,17 (2):229-242.
[14]成志云,彭俊純,呂穎慧.上皮-間充質轉化對肝纖維化作用的研究進展[J].中國臨床藥理學與治療學,2013,18(8):567-568.
[15]張穎娟,連耀國,李雪梅,等.VEGF165抑制HK2細胞上皮-間充質轉化過程NOTCH信號系統(tǒng)的變化[J].基礎醫(yī)學與臨床,2010,30(10):456-457.
[16]Saeki J,Sekine S,Horie T.LPS-induced dissociation of multidrug resistance-associated prot ein 2(Mrp2)and radixin is associated with Mrp2 selective internalization in rats[J].Biochem Pharmacol,2011,81(1):178-184.
[17]Wauters J,Mesotten D,Van Zwam K,et al.The impact of resuscitated fecal peritonitis on the expression of the hepatic bile salt transporters in a porcine model[J]. Shock,2010,34(5):508-516.
[18]Jaishree V,Badami S.Antioxidant and hepatoprotective effect of swertiamarin from Enicostemma axillare against D-galactosamine induced acute liver damage in rats[J]. J Ethnopharmacol,2010,130(1):103-106.
[19]李崇輝,葉晟,張愛群,等.膽汁淤積致肝內膽管上皮細胞間質表型轉變的病理學分析[J].軍醫(yī)進修學院學報,2012,33(3):234-235.
[20]Lee YM,Kim DJ.Primary sclerosing cholangitis[J].Encyclopedia of Molecular Mechanisms of Disease,1995,332 (14):924-933.
Expression of transforming growth factorβin the liver and its biliary epithelial cells of rats with cholestatic liver disease
QIU BingfengXU FangmingXU TangzhouXU Qi XI Jianwei
Department of Gastroenterology,Zhoushan Hospital of Zhoushan City,Zhejiang Province,Zhoushan316000,China
Objective To explore the expression of transforming growth factorβ(TGF-β)in the liver and its biliary epithelial cells of rats with cholestatic liver disease.Methods Sixty healthy female SPF SD rats aged 6-8 weeks were divided into control group(d0group),7 days after common bile duct ligation group(d7group),14 days after common bile duct ligation group(d14group)and 21 days after common bile duct ligation group(d21group),with 15 rats in each group,among which,the common bile duct of d0group was touched softly after laparotomy and then abdomen was closed immediately.Knodell histological activity index(HAI)grading was used to evaluate the hepatic histologic changes of rats,the expression of TGF-βmRNA in liver tissue and biliary epithelial cells was detected by PCR,the amount of biliary epithelial cells within 4 d after cell culture was calculated by colorimetric method,the proliferative effect of TGF-β1for biliary epithelial cells was observed.Results The Knodell HAI scores were improved with the extension of postoperative time(P<0.05);the levels ofmRNA expression of TGF-β1,TGF-β2and TGF-β3were increased with the extension of cholestasis time(P<0.05);the study in vitro showed that TGF-β1could inhibit the proliferation of biliary epithelial cells.Conclusion In the cholestatic liver disease caused by common bile duct ligation,the liver damage and expression of TGF-βmRNA are increased with the extension of cholestasis time,the level of TGF-β1is closely related to the genesis and development of cholestatic liver disease,with the increase of the expression of TGF-β1in hyperplastic biliary epithelial cells,the incidence of cholestatic hepatic fibrosis will be increased relevantly.
Cholestatic liver disease;Biliary epithelial cells;Transforming growth factorβ
R575
A
1673-7210(2016)01(c)-0027-04
2015-10-14本文編輯:張瑜杰)
浙江省衛(wèi)生廳醫(yī)藥衛(wèi)生科技計劃項目(2010KY B086);浙江省教育廳高校科研計劃項目(Y200908063)。
邱冰峰(1971-),男,博士,副主任醫(yī)師;研究方向:肝纖維化發(fā)病機制及臨床診治。