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        HPLC-DAD結(jié)合交替三線性分解二階校正法測(cè)定荔枝果肉中游離植物甾醇

        2015-08-15 10:59:47項(xiàng)雷文陳國(guó)泰翁佳敏陳文韜汪少蕓
        食品科學(xué) 2015年24期
        關(guān)鍵詞:菜油甾醇校正

        項(xiàng)雷文,陳國(guó)泰,翁佳敏,陳文韜,汪少蕓*

        (1.福建師范大學(xué)福清分校海洋與生化工程學(xué)院,福建 福清  350300;2.福州大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,福建 福州  350108)

        HPLC-DAD結(jié)合交替三線性分解二階校正法測(cè)定荔枝果肉中游離植物甾醇

        項(xiàng)雷文1,陳國(guó)泰1,翁佳敏1,陳文韜1,汪少蕓2,*

        (1.福建師范大學(xué)福清分校海洋與生化工程學(xué)院,福建 福清350300;
        2.福州大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,福建 福州350108)

        為快速測(cè)定荔枝果肉中游離植物甾醇含量,建立高效液相色譜-二極管陣列檢測(cè)器結(jié) 合基于交替三線 性分解算法的二階校正方法。基本色譜條件:島津ODS-SP柱(150 mm×4.6 mm,5 μm),流動(dòng)相體積分?jǐn)?shù)95%乙腈溶液,檢測(cè)波長(zhǎng)范圍為190~340 nm,柱溫30 ℃,流速1.0 mL/min,進(jìn)樣量20.0 μL。結(jié)果表明,‘蘭竹’和‘烏葉’荔枝樣品中菜油甾醇含量分別為24.1 μg/g和27.4 μg/g,兩種荔枝樣品豆甾醇含量分別為25.8 μg/g和26.7 μg/g,菜油甾醇和豆甾醇加標(biāo)回收率分別為(95.25±0.78)%和(96.83±1.01)%。所建立的方法簡(jiǎn)單、準(zhǔn)確、靈敏度高且可靠,可用于檢測(cè)荔枝果肉中游離植物甾醇含量。

        高效液相色譜;二極管陣列檢測(cè)器;交替三線性分解;二階校正;植物甾醇

        植物甾醇是果蔬中的生物活性物質(zhì),進(jìn)入人體后可降低體內(nèi)膽固醇含量[1]。文獻(xiàn)報(bào)道有多種檢測(cè)植物甾醇的方法,如洋地黃皂苷沉淀法[2],植物甾醇經(jīng)酶催化氧化后的比色法[3]、薄層色譜法[4]、分光光度法[5]、紅外光譜法[6]等,還有使用不同檢測(cè)器的氣相色譜法[7-8]和高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)法[9-13]。但是沉淀法和比色法只能定量總植物甾醇,氣相色譜法在檢測(cè)植物甾醇前需要衍生化處理,質(zhì)譜定量中植物甾醇信號(hào)較弱。因此植物甾醇定量分析首選HPLC法。

        按常規(guī)HPLC法,配合相應(yīng)的提取技術(shù)及前處理方法[14-17],雖能得到比較滿意的結(jié)果。但植物甾醇常作為細(xì)胞膜的重要結(jié)構(gòu)成分和脂質(zhì)存在于植物細(xì)胞,有的以游離態(tài)存在,有的與糖類、脂肪酸等結(jié)合以結(jié)合態(tài)存在,如甾醇酯、甾苷和乙?;捃盏龋?8],已發(fā)現(xiàn)的植物甾醇超過(guò)250 種[19]。最具代表性的和含量較高的植物甾醇有菜油甾醇、膽甾醇、豆甾醇和β-谷甾醇,而麥角甾醇則常存在于發(fā)霉的植物中[19]。植物甾醇是分子結(jié)構(gòu)帶有四環(huán)環(huán)戊二烯[α]的菲環(huán)和在第17個(gè)碳原子上有一條柔性長(zhǎng)鏈的類固醇化合物及其衍生物[20],不同植物甾醇結(jié)構(gòu)相似(圖1),因而常規(guī)色譜分析中要達(dá)到基線分離需要足夠長(zhǎng)的洗脫時(shí)間;并且果蔬為復(fù)雜體系,檢測(cè)前需要對(duì)樣品進(jìn)行預(yù)處理,盡量去除干擾,以求響應(yīng)信號(hào)的簡(jiǎn)單化。因此,需要對(duì)常規(guī)LC方法進(jìn)行改進(jìn)。

        圖 1 游離甾醇化學(xué)結(jié)構(gòu)示意圖Fig.1 Chemical structures of free phytosterols

        交替三線性分解(a l t e r n a t i n g t r i-l i n e a r decomposition,ATLD)算法利用基于切尾奇異值分解的Moore-Penrose廣義逆計(jì)算和交替迭代來(lái)進(jìn)行三線性數(shù)據(jù)分解,使損失函數(shù)即殘差陣元素的平方和達(dá)到極小值,詳見參考文獻(xiàn)[21]。二階校正方法以“數(shù)學(xué)分離”來(lái)部分代替或強(qiáng)化“理化分離”,在有未知干擾物和背景條件下實(shí)現(xiàn)復(fù)雜體系中目標(biāo)分析組分的快速有效分離定量,定量條件不要求達(dá)到基線分離,洗脫時(shí)間縮短。

        本實(shí)驗(yàn)以荔枝果肉為檢測(cè)對(duì)象,利用HPLC-二極管陣列檢測(cè)器(HPLC-diode array detector,HPLC-DAD)結(jié)合基于ATLD算法的二階校正方法,使預(yù)處理簡(jiǎn)單快速,并允許部分色譜峰重疊,簡(jiǎn)化測(cè)量步驟并節(jié)省檢測(cè)時(shí)間,從而建立起一種快速、穩(wěn)定的植物甾醇分析方法。結(jié)果顯示,其預(yù)處理簡(jiǎn)單,單次樣本測(cè)試所耗時(shí)間較短,可作為快速定量植物甾醇的可選擇方法。

        1  材料與方法

        1.1材料與試劑

        荔枝市購(gòu),經(jīng)本校植物學(xué)教師鑒定為‘蘭竹’、‘烏葉’2 個(gè)品種。

        菜油甾醇、膽固醇、豆甾醇、β-谷甾醇、麥角甾醇西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;甲醇、乙腈(均為色譜純)百靈威科技有限公司;硫酸、乙醇、正己烷、特丁基對(duì)苯二酚、氫氧化鈉(均為分析純)國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;實(shí)驗(yàn)用水為實(shí)驗(yàn)室自制去離子水。

        1.2儀器與設(shè)備

        FW100高能粉碎機(jī)天津泰斯特儀器有限公司;101-A型數(shù)顯式電熱恒溫干燥箱上海陽(yáng)光實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;英展ALH-3天平上海英展機(jī)電企業(yè)有限公司;BLST-500Q球形脂肪抽出器上海比朗儀器有限公司;UGC-12C旋轉(zhuǎn)式水浴氮吹儀北京優(yōu)晟聯(lián)合科技有限公司;RE52A型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;HH-4型數(shù)顯恒溫水浴鍋國(guó)華電器有限公司;超聲波清洗機(jī)廣州邦潔超聲波設(shè)備有限公司;1100 HPLC儀(配有G1311A四元泵、G1313A自動(dòng)進(jìn)樣器、G1322A在線脫氣機(jī)、G1316柱溫箱、G1315A二極管陣列檢測(cè)器)安捷倫科技有限公司。

        1.3方法

        1.3.1標(biāo)準(zhǔn)品配制

        菜油甾醇(0.5 mg/mL)、膽固醇(1.0 mg/mL)、豆甾醇(0.5 mg/mL)、β-谷甾醇(1.0 mg/mL)和麥角甾醇(1.0 mg/mL)溶于甲醇中配成標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)儲(chǔ)備液,置于冰箱-20 ℃保存。在使用之前取出放至室溫,而后稀釋成系列質(zhì)量濃度的溶液。

        1.3.2荔枝果肉樣品中植物甾醇提取

        荔枝果肉樣品中植物甾醇提取及預(yù)處理程序參考文獻(xiàn)[22]。荔枝去殼去核后,稱質(zhì)量,將果肉洗凈用濾紙擦干,將其切成片狀。在105 ℃條件下烘至恒質(zhì)量,將荔枝果肉放入粉碎機(jī)內(nèi)攪碎成顆粒狀,得到荔枝果肉干品,放入干燥器中保存。用天平準(zhǔn)確稱量10.00 g荔枝果肉粉,折好濾紙?zhí)缀蠓湃耄侔惭b索氏提取器,加入提取溶劑正己烷至圓底燒瓶,將荔枝果肉粉中的粗脂肪提取出來(lái)。用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器減壓揮盡得到的粗脂肪中的溶劑后,于圓底燒瓶中加入10 mL鹽酸的乙醇溶液,安裝回流裝置于80 ℃水浴中加熱1 h,每隔10 min振蕩圓底燒瓶一次至回流結(jié)束,結(jié)束后冷卻至室溫,再加入氫氧化鉀的乙醇溶液20 mL,再安裝回流裝置于70 ℃水浴中加熱1 h,每隔10 min振蕩圓底燒瓶一次至回流結(jié)束,結(jié)束后冷卻至室溫。

        冷卻至室溫后加入100 mL水和正己烷,攪拌均勻后轉(zhuǎn)移至分液漏斗中萃取3~4 次,合并萃取液,將多次實(shí)驗(yàn)(共100.00 g荔枝果肉粉)所得的萃取液集中,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀蒸除正己烷后濃縮得甾醇粗品,用甲醇溶解定容至10 mL,得到檢測(cè)樣品。

        1.3.3校正樣品配制

        該方法的組內(nèi)精密度(可重復(fù)性)通過(guò)測(cè)定單點(diǎn)質(zhì)量濃度(160 μg/mL)來(lái)獲得,檢測(cè)6 次取其平均值,并獲得相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差,即可確認(rèn)色譜條件的系統(tǒng)精密度。所配校正樣的質(zhì)量濃度范圍見表1。

        表1 校正樣質(zhì)量濃度Taabbllee 11   PPhhyyttoosstteerrooll ccoonntteennttss ooff ccaalliibbrraattiioonn ssaammpplleessμg/mL

        1.3.4加標(biāo)實(shí)際樣品配制

        樣品加入標(biāo)準(zhǔn)品后,其后樣品提取及預(yù)處理程序同1.3.2節(jié)。方法的準(zhǔn)確度通過(guò)計(jì)算樣品的加標(biāo)回收率來(lái)確定。

        1.3.5色譜條件

        色譜柱:島津ODS-SP柱(150 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相:乙腈-水(95∶5,V/V)溶液;檢測(cè)波長(zhǎng)190~340 nm;進(jìn)樣量20 μL;柱溫30 ℃;流速1.0 mL/min。

        2  結(jié)果與分析

        2.1色譜分離條件的優(yōu)化

        圖2  混合植物甾醇標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)HPLC色譜圖Fig.2  HPLC profi les of mixed phytosterol standard materials

        植物甾醇是極性非常弱的小分子化合物,在反相色譜柱上有很強(qiáng)的保留性。因此植物甾醇需要高濃度的有機(jī)溶劑來(lái)降低其在色譜柱上的保留性來(lái)實(shí)現(xiàn)分離。為了得到較好的分離效果,選擇波長(zhǎng)210 nm作為檢測(cè)波長(zhǎng),對(duì)分析柱和流動(dòng)相進(jìn)行了優(yōu)化,5 種植物甾醇標(biāo)準(zhǔn)品的HPLC色譜結(jié)果如圖2所示。在所采用的HPLC色譜條件下,麥角甾醇、膽甾醇、菜油甾醇、豆甾醇和β-谷甾醇的保留時(shí)間分別為10.30、13.10、14.79、15.16、17.13 min,分析時(shí)間適中。由于不同植物甾醇分子結(jié)構(gòu)極其相似,菜油甾醇和豆甾醇色譜峰出現(xiàn)重疊,未能實(shí)現(xiàn)基線分離。如用常規(guī)LC法來(lái)定量,會(huì)因?yàn)樽V峰重疊及未知干擾的影響使得各組分的保留時(shí)間及含量出現(xiàn)偏差。因此需要對(duì)色譜峰進(jìn)行分段解析。

        分段解析主要針對(duì)菜油甾醇和豆甾醇重疊部分進(jìn)行,利用基于三線性分解的二階校正方法所得到的純光譜數(shù)據(jù)及純色譜數(shù)據(jù)分別繪圖,再與標(biāo) 準(zhǔn)品在相同條件下測(cè)得的光譜和色譜圖形進(jìn)行對(duì)比,并以相應(yīng)譜圖的重合程度作為定性依據(jù),得到更直觀的定性結(jié)果。再根據(jù)標(biāo)樣質(zhì)量濃度進(jìn)行定量分析,得到預(yù)測(cè)樣含量,并以加標(biāo)回收率及算法品質(zhì)因子來(lái)驗(yàn)證和評(píng)價(jià)本實(shí)驗(yàn)所采用的方法。

        實(shí)際樣、加標(biāo)實(shí)際樣及校正樣的保留時(shí)間在14.4~15.8 min之間的色譜對(duì)照?qǐng)D如圖3所示。

        圖 3  實(shí)際樣、加標(biāo)實(shí)際樣及校正樣的色譜對(duì)照?qǐng)DFig.3  Comparative chromatographic profi les of spiked real sample,real sample and calibration sample

        2.2定性分析

        圖 4  解析出的譜圖與真實(shí)譜圖對(duì)比Fig.4  Comparison between resolved profi les and actual profi les

        前段數(shù)據(jù)包含2 個(gè)目標(biāo)分析組分,各貢獻(xiàn)一個(gè)因子,其余信號(hào)包括背景、噪聲干擾等提供一個(gè)因子,即選取的解析組分?jǐn)?shù)為3;后段數(shù)據(jù)包含一個(gè)目標(biāo)分析組分,其余信號(hào)提供一個(gè)因子,即選取的解析組分?jǐn)?shù)為2。ATLD算法在相應(yīng)組分?jǐn)?shù)條件下,解析HPLC-DAD得到的矩陣數(shù)據(jù)所構(gòu)成的三維數(shù)陣,解析出的圖譜與由校正樣解析出的標(biāo)準(zhǔn)品圖譜的對(duì)照?qǐng)D如圖4所示。算法解析出的色譜、光譜圖的輪廓與對(duì)照品的色譜、光譜圖分別重合較好,說(shuō)明從色譜、光譜2 個(gè)角度上都證明了實(shí)際樣中菜油甾醇和豆甾醇的存在。

        2.3定量分析

        由ATLD算法分解所得到的相對(duì)濃度矩陣對(duì)照標(biāo)樣含量進(jìn)行后續(xù)回歸處理就能夠?qū)崿F(xiàn)定量預(yù)測(cè)。本方法得出的實(shí)際樣中菜油甾醇和豆甾醇的預(yù)測(cè)含量如表2所示。

        表2 ATLD算法分辨獲得的實(shí)際樣品中菜油甾醇和豆甾醇的含量TTaabbllee 22   RReessoollvveedd ccoonntteennttss ooff ccaammppeesstteerrooll aanndd ssttiiggmmaasstteerrooll iinn real samples using ATLLDD

        對(duì)算法的評(píng)價(jià)用到的品質(zhì)因子計(jì)算和純分析物信號(hào)密切相關(guān),包括:靈敏度、選擇性、檢測(cè)限及與預(yù)測(cè)精密度相關(guān)的預(yù)測(cè)均方差等[21]。計(jì)算的各品質(zhì)因子見表3。加標(biāo)回收率的計(jì)算結(jié)果見表4。

        表 3 ATLD算法品質(zhì)因子Taabbllee 33   FFiigguurreess ooff mmeerriitt ooff tthhee pprrooppoosseedd mmeetthhoodd uussiinngg AATTLLDD

        表 4 加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)結(jié)果TTaabbllee 44   RReeccoovveerriieess ooff pphhyyttoosstteerroollss ffrroomm ssppiikkeedd lliittcchhii ppuullpp

        由表4可知,菜油甾醇和豆甾醇的加標(biāo)回收率平均值分別為:(95.25±0.78)%和(96.83±1.01)%,加標(biāo)回收率小于100%。提取植物甾醇過(guò)程中,受熱會(huì)使植物甾醇分子雙鍵斷裂,而導(dǎo)致?lián)p失。通過(guò)查表可得到t-檢驗(yàn)的t值,t(6,0.10)=1.940。由t-檢驗(yàn)公式計(jì)算得到的t值分別為0.784、0.946,它們均小于t(6,0.10)值。以上結(jié)果表明二階校正方法得到的結(jié)果是可靠的。

        2.4分析方法的應(yīng)用

        表5 荔枝果肉樣品中植物甾醇含量TTaabbllee 55   TThhee ccoonntteennttss ooff pphhyyttoosstteerrooll iinn lliittcchhii ppuullppμg/g

        為驗(yàn)證所建立的植物甾醇定量分析方法,從荔枝樣品中提取、分離并檢測(cè)植物甾醇。樣品處理如上所述,每個(gè)樣品5 次平行。分析在最優(yōu)條件下進(jìn)行。所測(cè)得的膽固醇、麥角甾醇、豆甾醇、菜油甾醇和β-谷甾醇的含量列于表5??傊参镧薮己侩S荔枝品種不同有所區(qū)別,含量在102.4~113.2 μg/g之間。各種植 物甾醇中,‘蘭竹’和‘烏葉’荔枝果肉中膽甾醇含 量最高,分別為37.2 μg/g和43.1 μg/ g。β-谷甾醇含量最少,分別為15.3 μg/g和16.0 μg/g。菜油甾醇和豆甾醇含量差不多,分別為24.1 μg/g和27.4 μg/g,25.8 μg/g和26.7 μg/g。該檢測(cè)結(jié)果和氣相色譜分析荔枝中植物甾醇含量結(jié)果[23]相近。

        3  結(jié) 論

        本實(shí)驗(yàn)所建立的用HPLC-DAD結(jié)合基于ATLD算法的二階校正方法,能夠快速、可靠地對(duì)荔枝果肉中麥角甾醇、膽甾醇、菜油甾醇、豆甾醇和β-谷甾醇定量分析。與傳統(tǒng)的LC法相比,該方法的優(yōu)勢(shì)在于使預(yù)處理簡(jiǎn)單化,色譜條件相對(duì)簡(jiǎn)單并允許部分色譜峰重疊及存在未知干 擾,測(cè)試所耗時(shí)間較短,試劑消耗量相對(duì)較少。

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        Determination of Free Phytosterols in Litchi Pulp by HPLC-DAD Coupled with Second-Order Calibration Based on Alternating Trilinear Decomposition

        XIANG Leiwen1, CHEN Guotai1, WENG Jiamin1, CHEN Wentao1, WANG Shaoyun2,*
        (1. School of Ocean Science and Biochemistry Engineering, Fuqing Branch of Fujian Normal University, Fuqing350300, China;2. College of Biological Science and Engineering, Fuzhou University, Fuzhou350108, China)

        A rapid method to quantify free phytosterols in litchi pulp was established with high performance liquid chromatography with diode array detection (HPLC-DAD) coupled with second-order calibration method based on alternating trilinear decomposition (ATLD) algorithm. The chromatographic conditions were simplifi ed by applying secondorder calibration method. The mobile phase was 95% aqueous acetonitrile (V/V) at a fl ow rate of 1.0 mL/min. The injection volume was 20.0 μL. The temperature of inertsil ODS-SP (150 mm × 4.6 mm, 5 μm) column was set at 30 ℃. The detection wavelengths were 190-340 nm. The average spiked recoveries of campesterol and stigmasterol in litchi pulp were (95.25 ± 0.78)% and (96.83 ± 1.01)%, respectively. The pulp of “Lanzhu” and “Wuye” litchi was detected to contain 24.1 and 27.4 μg/g campesterol, and 25.8 and 26.7 μg/g stigmasterol, respectively. The newly established method is simple, accurate, highly sensitive and reliable, and can be used to determine free phytosterols in litchi pulp.

        high performance liquid chromatography (HPLC); diode array detector (DAD); alternating trilinear decomposition (ATLD); second-order calibration; phytosterols

        TS207.3

        A

        1002-6630(2015)24-0172-05

        10.7506/spkx1002-6630-201524031

        2015-06-12

        福建省省級(jí)重點(diǎn)學(xué)科“食品科學(xué)與工程”建設(shè)項(xiàng)目(閩教高[2012]48號(hào));福建省區(qū)域科技重大項(xiàng)目( 2014N3005)

        項(xiàng)雷文(1975—),男,副教授,博士,主要從事天然產(chǎn)物綜合利用,生物大分子分離與表征,食品中美拉德反應(yīng)研究。E-mail:xiangleiwen@163.com

        汪少蕓(1972—),女,教授,博士,主要從事食品化學(xué)、生物活性蛋白質(zhì)、酶和多肽及食品生物技術(shù)研究。E-mail:shywang@fzu.edu.cn

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