王 靜, 耿 燕, 孫 青, 陸震鳴, 許正宏, 史勁松
(江南大學(xué) 藥學(xué)院,江蘇 無錫 214122)
肝纖維化是指許多慢性肝臟疾病發(fā)病過程中由各種致病因子所致肝內(nèi)彌漫性細(xì)胞外基質(zhì)(Extracellular matrix,ECM)過度沉淀的病理過程[1],進一步發(fā)展為肝硬化、肝衰竭,往往需要肝移植來根治。但由于器官來源嚴(yán)重短缺,許多病人在等待器官過程中死亡,這已成為我國一個重要的公共衛(wèi)生問題[2]。
目前的研究認(rèn)為,肝星狀細(xì)胞(hepatic stellate cells,HSCs)是正常及纖維化肝臟中ECM的主要合成細(xì)胞,HSCs增殖與凋亡的失衡是肝纖維化發(fā)生的細(xì)胞生物學(xué)基礎(chǔ)[3]。研究表明,多種細(xì)胞因子參與肝纖維化的發(fā)生,血小板衍生生長因子(PDGF)是強大的促HSC增殖因子,PDGF以自分泌、旁分泌的方式參與HSCs活化,且有很強的促纖維生成作用,可以顯著促進I型膠原合成[4]。
樟芝(Antrodia cinnamomea)[5]是一種僅分布在我國臺灣地區(qū)的珍稀擔(dān)子菌。據(jù)國內(nèi)外文獻報道,樟芝子實體及菌絲體中含有眾多生理活性物質(zhì),如三萜類化合物、多糖、SOD、腺苷、小分子蛋白質(zhì)及固醇類物質(zhì)等[5]?,F(xiàn)代藥理研究已證實,樟芝子實體及其發(fā)酵產(chǎn)物在保肝[6]、抗氧化[7]、抗炎[8]方面具有獨特的功效。樟芝深層液態(tài)發(fā)酵產(chǎn)物的粗提取物已被證實對CCl4誘發(fā)的肝損傷及肝纖維化節(jié)結(jié)和二甲基亞硝胺(DMN)造成的肝纖維化都有明顯的阻礙作用[6,9],但是其活性組分及作用機制研究還未見報道。
筆者前期從樟芝菌粉中分離得到Fr.2組分,具有較強的抗肝纖維化活性,但其作用機制還需進一步研究。水飛薊賓(Silybin)是從水飛薊種子的種皮中提取所得的一種黃酮化合物,具有抗肝纖維化活性[10]。因此,本實驗中以Fr.2為研究對象,以Silybin為陽性對照物,通過構(gòu)建PDGF-BB活化的CFSC-8B細(xì)胞模型,檢測Fr.2對PDGF-BB刺激的CFSC-8B細(xì)胞增殖及遷移效果,探討其抗肝纖維化的作用機制,旨在為深入研究樟芝防治肝纖維化提供理論依據(jù)。
1.1.1 材料與試劑 樟芝菌粉購自金穎生物科技股份有限公司,樟芝菌粉采用甲醇浸提,正己烷-水以體積比1∶1萃取,將正己烷萃取物通過硅膠柱色譜進行層析,獲得組分Fraction2(Fr.2),用于開展抗肝纖維化研究;RPMI-1640培養(yǎng)基,胎牛血清(FBS),購自美國Gibco公司;胰酶-EDTA消化液,青霉素,鏈霉素,購自碧云天公司;Silybin及MTT,購自美國Sigma公司;WST-1細(xì)胞增殖試劑盒,TRIZOL,F(xiàn)astStart Universal SYBR Green Master,細(xì)胞裂解液,購自美國Roche公司;MAPK信號通路抗體,購自Cell Signaling Technology公司;其余試劑為分析純,購自國藥集團化學(xué)有限公司。
1.1.2 實驗細(xì)胞 大鼠肝星狀細(xì)胞株 CFSC-8B,購自中南大學(xué)湘雅中心實驗室細(xì)胞庫。細(xì)胞培養(yǎng)液為RPMI-1640培養(yǎng)基,內(nèi)含質(zhì)量分?jǐn)?shù)10%FBS、青霉素和鏈霉素,在37℃,質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),細(xì)胞匯集至80%時進行傳代接種,選取對數(shù)生長期細(xì)胞進行實驗。
1.1.3 儀器 EL204電子天平,博特勒托利多公司制造;MULTISKAN ASCENT酶標(biāo)儀,賽默飛世爾儀器有限公司制造;CO2培養(yǎng)箱,Thermo公司制造;倒置顯微鏡,Nikon公司制造;PCR擴增儀,Bio-Rad公司制造。
1.2.1 體外PDGF-BB誘導(dǎo)的CFSC-8B細(xì)胞增殖模型的構(gòu)建 將處于對數(shù)生長期的CFSC-8B細(xì)胞以5×103個/孔的密度接種于96孔板,24 h后用含有體積分?jǐn)?shù)0.5%FBS的培養(yǎng)基饑餓細(xì)胞24 h,加入不同質(zhì)量濃度的 PDGF-BB (0、5、10、20 ng/mL),每組設(shè) 6個復(fù)孔,分別作用 24、36、48、72 h后,每孔加入10 μL WST-1,在細(xì)胞培養(yǎng)箱中作用1 h后,用酶標(biāo)儀檢測450 nm的OD值,參考波長為690 nm。
1.2.2 MTT法檢測細(xì)胞活性 將CFSC-8B細(xì)胞以3×103個/孔的密度接種于96孔板,37℃培養(yǎng)24 h后,加入Fr.2組分,使每孔終質(zhì)量濃度分別為3、6、12、25、50、100 μg/mL,每組設(shè) 6 個復(fù)孔,分別作用24、36、48、72 h 后,每孔加入 5 mg/mL 的 MTT 溶液10 μL,繼續(xù)培養(yǎng)4 h后小心吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液,加入150 μL DMSO,震蕩10 min使紫色結(jié)晶充分溶解,在酶標(biāo)儀上測570 nm處OD值[11]。通過公式(2)及Graphpad軟件計算細(xì)胞存活率及IC50值。
1.2.3 細(xì)胞劃痕法檢測細(xì)胞遷移 調(diào)整對數(shù)期CFSC-8B細(xì)胞懸液濃度至3×105個/mL,以每孔1 mL細(xì)胞懸液接種到6孔板內(nèi),待細(xì)胞生長至90%~100%融合度時,以體積分?jǐn)?shù)0.5%FBS饑餓細(xì)胞24 h。用200 μL槍頭垂直插入孔中劃痕。PBS洗滌細(xì)胞,加入含有體積分?jǐn)?shù)0.5%FBS培養(yǎng)基配制的不同質(zhì)量濃度的 Fr.2 溶液及 Silybin(25 μmol/L)。每隔一定時間對細(xì)胞取樣拍照,使用Image J軟件計算劃痕面積,以劃痕面積的變化值定義細(xì)胞遷移率。
1.2.4 細(xì)胞小室遷移實驗檢測細(xì)胞遷移 Transwell小室濾膜為8 μm孔徑的聚碳酸酯微孔濾膜(Millipore公司),調(diào)整對數(shù)生長期懸液濃度至2×105個/mL,加入 100 μL 于上室,將 Transwell小室放入預(yù)先加入500 μL含有體積分?jǐn)?shù)10%FBS細(xì)胞培養(yǎng)基的24孔板中。加入不同質(zhì)量濃度的Fr.2及Silybin(25 μmol/L)后繼續(xù)在培養(yǎng)箱常規(guī)培養(yǎng) 24 h。取出濾膜,用棉簽擦去上室濾膜內(nèi)表面殘存細(xì)胞,對遷移至濾膜外表面的細(xì)胞用質(zhì)量分?jǐn)?shù)4%多聚甲醛固定,PBS洗滌,質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%結(jié)晶紫染色,用體積分?jǐn)?shù)33%醋酸脫色抽提10 min,將結(jié)晶紫完全洗脫下來,洗脫液在酶標(biāo)儀上于570 nm處測定OD值,間接反映細(xì)胞數(shù)。
1.2.5 實時熒光定量PCR(qRT-PCR)法檢測相關(guān)基因表達情況 采用TRIZOL法,按試劑盒說明書提取總RNA,將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,采用SYBR Green進行熒光定量PCR反應(yīng)。采用2-ΔΔCt法對α-SMA、Collagen I (Col 1)、Collagen Ⅲ (Col 3)和Fibronectin(Fn)基因的表達水平進行相對定量,計算各相關(guān)基因的表達倍數(shù)[12],相關(guān)基因引物序列采用文獻[13-14]所述。
1.2.6 蛋白質(zhì)印跡(Western Blotting) 用4℃預(yù)冷的PBS洗滌細(xì)胞,加入含蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑的總蛋白質(zhì)抽提試劑,于冰上裂解30 min,超聲處理30 s以降解DNA。裂解產(chǎn)物在4℃下12 000 g離心10 min后得到細(xì)胞蛋白質(zhì)上清液,采用BCA蛋白質(zhì)檢測試劑盒測定蛋白質(zhì)濃度。經(jīng)SDS-PAGE電泳后在冰浴條件下將凝膠上的蛋白質(zhì)電轉(zhuǎn)移至PVDF膜(Millipore公司)上,分別孵育一抗和二抗。ECL試劑盒(Thermo Scientific)顯色,利用Image J軟件分析蛋白質(zhì)條帶灰度值。
1.2.7 數(shù)據(jù)統(tǒng)計 根據(jù)One-Way ANOVA統(tǒng)計學(xué)處理實驗結(jié)果,結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,極顯著水平為與對照組比較##P<0.01,與PDGFBB誘導(dǎo)組比較**P<0.01。
由表1可知,5~20 ng/mL范圍的PDGF-BB可誘導(dǎo)CFSC-8B細(xì)胞增殖,與對照組相比,差異極顯著(**P<0.01),呈現(xiàn)劑量及時間依賴性。PDGF-BB 20 ng/mL和10 ng/mL促增殖作用相比差異不顯著,所以選擇10 ng/mL PDGF-BB作用CFSC-8B細(xì)胞48 h為最佳細(xì)胞增殖模型。
表1 PDGF-BB質(zhì)量濃度和孵育時間對CFSC-8B細(xì)胞增殖率的影響Table 1 Proliferation effect of PDGF-BB on CFSC-8B cells,Proliferation %
如圖1所示,不同質(zhì)量濃度的Fr.2作用CFSC-8B細(xì)胞不同時間后,細(xì)胞存活率受到不同程度的抑制。細(xì)胞存活率隨著作用時間及Fr.2質(zhì)量濃度增加而呈逐漸下降趨勢,F(xiàn)r.2在0~12 μg/mL范圍內(nèi)對CFSC-8B細(xì)胞存活率無明顯抑制,其細(xì)胞存活率均在90%以上;但在高質(zhì)量濃度的Fr.2作用下,CFSC-8B細(xì)胞出現(xiàn)了較多的死亡,表現(xiàn)出明顯的細(xì)胞生長抑制效應(yīng),本實驗中選定Fr.2 0~25 μg/mL的范圍與CFSC-8B細(xì)胞孵育48 h進行后續(xù)研究。通過Graphpad分析得出Fr.2與CFSC-8B細(xì)胞共孵育 48 h的 IC50值為 56.46 μg/mL。
采用體外PDGF-BB誘導(dǎo)CFSC-8B細(xì)胞增殖模型,檢測了Fr.2對PDGF-BB刺激的CFSC-8B細(xì)胞增殖的影響(圖2),10 ng/mL PDGF-BB可極顯著誘導(dǎo) CFSC-8B 細(xì)胞增殖(##P<0.01),而 6、12、25 μg/mL Fr.2可極顯著抑制PDGF-BB誘導(dǎo)的CFSC-8B細(xì)胞增殖(**P<0.01),且具有劑量依賴性,其中 25 μg/mL Fr.2的抑制率為71.8%,這與陽性對照Silybin(25 μmol/L)的抑制率(70.8%)相當(dāng)。
圖1 Fr.2對CFSC-8B細(xì)胞存活率的影響Fig.1 Effect of Fr.2 on the cell proliferation in CFSC-8B cells
圖2 不同質(zhì)量濃度Fr.2對于PDGF-BB誘導(dǎo)的CFSC-8B細(xì)胞增殖的抑制作用Fig.2 Inhibitory effect of Fr.2 on the cell proliferation induced by PDGF-BB in CFSC-8B cells
HSCs向肝內(nèi)炎癥區(qū)域遷移,可導(dǎo)致炎癥區(qū)域活化的HSCs數(shù)目增多,加重病灶局部的纖維化程度。所以,如能抑制HSCs在肝損傷時向炎癥區(qū)域遷移,就可能干擾或減輕纖維化進程。
細(xì)胞劃痕實驗顯示,各實驗組中CFSC-8B細(xì)胞從劃痕邊緣向劃痕內(nèi)遷移,24 h后遷移的細(xì)胞呈單層鋪路卵石樣排列(圖3(a));與對照組比較,計算各區(qū)域細(xì)胞遷移率(圖3(b))。結(jié)果表明,PDGF-BB刺激24 h后,細(xì)胞遷移的距離明顯高于對照組(##P<0.01),F(xiàn)r.2(6、12、25 μg/mL)與 PDGF-BB 細(xì)胞共孵育組細(xì)胞遷移率顯著低于PDGF-BB組(**P<0.01),說明一定劑量的Fr.2可抑制PDGF-BB誘導(dǎo)的細(xì)胞遷移。
圖3 不同質(zhì)量濃度Fr.2對于PDGF-BB誘導(dǎo)的細(xì)胞劃痕損傷的作用Fig.3 Effect of Fr.2 on the cell scratch wound induced by PDGF-BB in CFSC-8B cells
細(xì)胞小室遷移實驗進一步驗證了Fr.2對PDGF-BB誘導(dǎo)CFSC-8B細(xì)胞遷移有抑制作用,結(jié)果如圖4所示。
PDGF-BB可顯著誘導(dǎo)CFSC-8B細(xì)胞遷移,與對照組相比差異極顯著(##P<0.01)。Fr.2可顯著抑制PDGF-BB 誘導(dǎo)的 CFSC-8B 細(xì)胞遷移(**P<0.01),呈現(xiàn)劑量依賴性。25 μg/mL Fr.2細(xì)胞遷移抑制率為65.0%,而25 μmol/L Silybin的抑制率為 69.1%,結(jié)果表明25 μg/mL Fr.2抑制細(xì)胞遷移的效果優(yōu)于Silybin。
圖4 不同質(zhì)量濃度Fr.2對于PDGF-BB誘導(dǎo)的CFSC-8B細(xì)胞遷移的作用Fig.4 Effect of different concentrations of Fr.2 on the cell migration induced by PDGF-BB in CFSC-8B cells
在分子水平上進一步檢測Fr.2對于PDGF-BB誘導(dǎo)的HSC活化及細(xì)胞外基質(zhì)表達的影響。圖5 qRT-PCR結(jié)果顯示,10 ng/mL PDGF-BB可顯著誘導(dǎo)HSCs活化標(biāo)記α-SMA基因表達,并顯著上調(diào)細(xì)胞外基質(zhì) Col1、Col3 及 Fn 基因表達(##P<0.01)。 而Fr.2 (6、12、25 μg/mL) 顯著抑制 PDGF-BB 誘導(dǎo)的α-SMA、Col1、Col3 及 Fn 基因表達(**P<0.01),且具有劑量相關(guān)性(圖 5)。
在明確了Fr.2組分對CFSC-8B細(xì)胞增殖、遷移及肝纖維化相關(guān)基因表達的抑制作用后,進一步研究了其對PDGF介導(dǎo)的MAPK信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑的影響。
如圖6所示,對照組的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑處于低水平狀態(tài),PDGF-BB誘導(dǎo)的CFSC-8B細(xì)胞MAPK途徑下游信號分子,如磷酸化Extracellular signalregulated kinase (p-ERK)、 磷酸化 c-Jun NH2-terminal kinase(p-JNK),及磷酸化P38 mitogenactivated protein kinases(p-P38),它們的表達較正常對照組明顯增強(##P<0.01)。用Fr.2處理細(xì)胞后,PDGF-BB誘導(dǎo)的 CFSC-8B細(xì)胞 p-ERK、p-JNK、p-P38 的表達受到抑制(**P<0.01)。
圖 5 不同質(zhì) 量 濃 度 Fr.2對 α-SMA、Col1、Col3及 Fn mRNA相對表達量的影響Fig.5 Effect of Fr.2 on the relative expression of α-SMA、Col1、Col3 and Fn mRNA
圖6 Fr.2對 CFSC-8B細(xì)胞 p-ERK、p-JNK、p-P38蛋白質(zhì)表達的影響Fig.6 Effect of Fr.2 on expression of p-ERK、p-JNK、p-P38 in CFSC-8B cells
過去認(rèn)為肝纖維化是持續(xù)的不可逆的過程,但目前有病例稱重度肝纖維化仍可逆轉(zhuǎn),這極大激發(fā)了研究人員從事開發(fā)抗肝纖維化藥物[15]。通過抑制HSCs活化來控制肝纖維化,已成為醫(yī)藥領(lǐng)域的研究熱點。
HSCs是位于Disse間隙的一種間質(zhì)細(xì)胞,正常情況下處于靜息狀態(tài),經(jīng)多種細(xì)胞因子刺激活化后HSCs大量增殖,合成包括膠原在內(nèi)的各種細(xì)胞外基質(zhì),最終導(dǎo)致肝臟內(nèi)膠原的異常沉積而發(fā)展成為纖維化[3]。其中PDGF是重要的促有絲分裂因子,可通過激活MAPK信號通路,促進HSCs增殖和細(xì)胞外基質(zhì)如膠原表達增加[16]。
作者構(gòu)建了體外PDGF-BB活化的CFSC-8B細(xì)胞模型,進一步利用此模型檢測Fr.2對CFSC-8B細(xì)胞的作用。 結(jié)果表明:Fr.2(6~25 μg/mL)能抑制PDGF-BB誘導(dǎo)CFSC-8B細(xì)胞的增殖及遷移,且呈劑量依賴性。并顯著降低PDGF-BB誘導(dǎo)的α-SMA、Col1、Col3及Fn基因表達水平。
MAPK通路有調(diào)控細(xì)胞增殖、分化、凋亡及細(xì)胞間功能同步化等重要功能,MAPK蛋白質(zhì)家族包括ERK、JNK和P38[17]。MAPK途徑也是HSCs中重要的細(xì)胞內(nèi)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑。研究顯示,F(xiàn)r.2可抑制PDGF-BB誘導(dǎo)MAPK信號轉(zhuǎn)導(dǎo)中p-ERK、p-JNK及p-P38表達。由此推測Fr.2可能通過阻止CFSC-8B細(xì)胞增殖及向損傷部位遷移,下調(diào)細(xì)胞外基質(zhì)的表達,從而阻止肝纖維化的發(fā)生,其機制可能與抑制胞內(nèi)MAPK信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路有關(guān)。
對樟芝提取物的Fr.2組分進一步分離,并鑒定其活性化合物的結(jié)構(gòu),進而研究其抗肝纖維化的機制,將有助于抗肝纖維化藥物的研制。
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