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        應(yīng)用DiversiLab系統(tǒng)對肺炎克雷伯菌進(jìn)行同源性分析

        2013-12-03 03:50:48胡志東徐海茹
        天津醫(yī)藥 2013年11期
        關(guān)鍵詞:克雷伯相似性分型

        李 靜 胡志東 田 彬 徐海茹

        肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae)是一種常見的革蘭陰性條件致病菌,為醫(yī)院獲得性肺炎及社區(qū)獲得性肺炎的重要病原菌之一。近年來肺炎克雷伯菌的感染率、耐藥性均顯著升高,尤其是產(chǎn)超廣譜β-內(nèi)酰胺酶(ESBLs)菌株的增多,已成為肺炎患者死亡的重要原因。目前用于肺炎克雷伯菌的基因分型主要方法是脈沖場凝膠電泳(PFGE)。PFGE是公認(rèn)的細(xì)菌分析分型及同源性分析的金標(biāo)準(zhǔn),是分型分辨率最高的一種方法,但所需時(shí)間較長[1]。Diver?siLab系統(tǒng)是基于細(xì)菌基因組重復(fù)序列PCR技術(shù)(rep-PCR)原理的分型方法,目前國內(nèi)關(guān)于Diversi?Lab系統(tǒng)的相關(guān)報(bào)道較少。本研究應(yīng)用DiversiLab系統(tǒng)對8株肺炎克雷伯菌進(jìn)行基因分型,并比較Di?versiLab系統(tǒng)和PFGE兩種分型方法的一致性。

        1 材料與方法

        1.1 菌株來源 實(shí)驗(yàn)菌株為2010年7月從天津一家甲級醫(yī)院外科同一病房的臨床標(biāo)本中分離,采用常規(guī)方法及VI?TEK-Compact儀器鑒定的8株肺炎克雷伯菌,其臨床資料見表1。(CRO)、頭孢唑林(CFZ)、氨芐西林(AMP)、美羅培南(MEM)、頭孢哌酮/舒巴坦(CPZ/SU)、復(fù)方新諾明(SXT)、哌拉西林/他唑巴坦(PIP/TA)、慶大霉素(GEN)等11種抗菌藥物,為北京天壇藥物生物技術(shù)開發(fā)公司產(chǎn)品。XbaⅠ酶、蛋白酶K購自大連寶生物公司。低熔點(diǎn)瓊脂糖、PFGE瓊脂糖均為Bio-Rad公司產(chǎn)品。細(xì)菌鑒定儀為法國生物梅里埃公司VITEK-Compact細(xì)菌鑒定系統(tǒng)。脈沖場凝膠電泳儀為Bio-Rad公司CHEF-DⅢ脈沖場凝膠電泳儀,凝膠成像系統(tǒng)為Bio-Rad公司GelDocTMXR+凝膠成像系統(tǒng)。MOBIO Ultra?Clean(TM)Microbial DNA Isolation kit、rep-PCR DNA finger?printing kit、微流體芯片、Agilent 2100生物分析儀均購自法國生物梅里埃公司。

        Table 1 Clinical data of 8 Klebsiella pneumoniae strains表1 8株肺炎克雷伯菌臨床資料

        1.3 藥物敏感試驗(yàn) 采用微量肉湯稀釋法測定菌株對11種抗菌藥物的最低抑菌濃度(MIC)。判定標(biāo)準(zhǔn)參照美國臨床實(shí)驗(yàn)室標(biāo)準(zhǔn)化研究所(CLSI)2011版標(biāo)準(zhǔn)[2]執(zhí)行。

        1.4 DiversiLab系統(tǒng)分子分型 (1)DNA提取。應(yīng)用MOBIO UltraClean(TM)Microbial DNA提取試劑盒提取細(xì)菌DNA。經(jīng)可見分光光度計(jì)(NanoDrop ND-1000)測定,調(diào)整DNA的濃度為25~50 mg/L。(2)rep-PCR擴(kuò)增。應(yīng)用rep-PCR DNA指紋圖譜試劑盒,配制25 μL PCR擴(kuò)增體系:18 μL rep-PCR MM1,2.5 μLGeneAmp10×PCR緩沖液,2.0 μL Primer Mix,0.5 μL AmpliTaq DNA聚合酶,2 μL模板。預(yù)變性94 ℃ 2 min,94℃變性30 s,55℃退火30 s,70℃延伸90 s,共35個(gè)循環(huán);最后70℃延伸3 min。(3)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物檢測。應(yīng)用微流體芯片和Agilent 2100生物分析儀分離和檢測不同大小和強(qiáng)度的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物。DiversiLab系統(tǒng)分型技術(shù)評價(jià)標(biāo)準(zhǔn):分析結(jié)果的虛擬凝膠圖像判斷標(biāo)準(zhǔn)參照分為3種,即不可辨別的相似性>97%,并且沒有條帶差異;相似的相似性>95%,有1~2條不同的條帶;不同的相似性<95%,大于2條不同的條帶[3]。DiversiLab系統(tǒng)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析原理:DiversiLab version 3.4自帶軟件依據(jù)Pearson相關(guān)系數(shù)分析和計(jì)算各樣本的相似性系數(shù)。非加權(quán)組平均數(shù)自動比較rep-PCR產(chǎn)物并創(chuàng)建樹狀圖。數(shù)據(jù)的分析包括樹狀圖、相似性矩陣、電泳圖譜、虛擬凝膠圖像、散點(diǎn)圖和可選擇的相似性數(shù)據(jù)[4]。

        1.5 脈沖場凝膠電泳分型 用滅菌棉棒沾取數(shù)個(gè)純菌落溶于 2.5 mL TE buffer(10 mmol/LTris-HCl∶1 mmol/L EDTA,pH值8.0)中,配制4.0麥?zhǔn)蠁挝唬?7℃孵育備用。取出150 μL處理好的標(biāo)本,加入20 μL蛋白酶K,30 μL10%十二烷基硫酸鈉(SDS),終濃度要求1%,混勻56℃預(yù)熱。取2%低熔點(diǎn)膠與處理好的菌液1∶1混合后灌模,室溫下凝固30 min。將成型的膠塊加入到含有5 μL蛋白酶K的1 mL裂解液中,54℃搖床,孵育2 h。然后用50℃預(yù)熱的無菌蒸餾水洗2次,每次10 min,50℃預(yù)熱的TE洗3次,每次10 min。將樣本膠塊取出,切下約2 mm膠塊,浸入含有限制性核酸內(nèi)切酶XbaⅠ的200 μL酶切體系中,37℃酶切過夜。將消化好的凝膠塊貼附于制膠梳子末端,置于水平放置的倒膠模具上,將在50℃水浴中平衡的已融化的1%電泳瓊脂糖加入模具中,在室溫凝固30 min。電泳條件為電泳緩沖液0.5×TBE(Tris堿,硼酸,EDTA),切換時(shí)間4~30 s,電場強(qiáng)度6 V/cm,溫度14 ℃,電場夾角120°,電泳時(shí)間18.5 h,溴化乙錠染色后紫外燈下觀察結(jié)果。PFGE分型技術(shù)的評價(jià)標(biāo)準(zhǔn)[5]:(1)同一株。酶切圖譜顯示帶型大小和數(shù)量均相同。(2)緊密相關(guān)型。由于突變、插入、缺失或倒置的遺傳改變在電泳條帶型上與主要表型有3個(gè)或3個(gè)以下差別的菌株被認(rèn)為是主要型中的亞型。(3)可能相關(guān)。帶型中有4~6條條帶不同被認(rèn)為是不同型別。(4)不相關(guān)。相差7個(gè)以上條帶有差異。

        2 結(jié)果

        2.1 藥物敏感試驗(yàn) 8株肺炎克雷伯菌中,菌株K8-02與其他7株肺炎克雷伯菌的藥敏譜不盡相同。菌株K8-02對SXT、GEN、MEM、CPZ/SU、CRO、ATM 敏感,對AMC/CA、CIP、CFZ、AMP、PIP/TA 耐藥;菌株1等其他7株肺炎克雷伯菌為多重耐藥菌,對AMC/CA、ATM、CIP、MEM、CPZ/SU、PIP/TA敏感,對CRO、CFZ、AMP、SXT、GEN耐藥,見表2。

        Table 2 MIC results of 8 Klebsiella pneumoniae strains表2 8株肺炎克雷伯菌的MIC測定結(jié)果 (mg/L)

        2.2 DiversiLab系統(tǒng)分型 DiversiLab將8株肺炎克雷伯菌分成3組,K8-02號單獨(dú)為1組,K8-05、K8-04和K8-08相似性>97%,為1組;K8-07、K8-06、K8-03和K8-01相似性>97%,為1組,結(jié)果見圖1。利用DiversiLab分析工具將后2組進(jìn)一步比較,2組的相似度為95.2%,可認(rèn)為是1組,結(jié)果見圖2。從而可得出DiversiLab系統(tǒng)分型結(jié)果為:8株肺炎克雷伯菌可分為2組,K8-02標(biāo)本為1組,其他7株菌為另1組。

        2.3 PFGE分析 8株肺炎克雷伯菌臨床菌株染色體DNA經(jīng)酶切后進(jìn)行PFGE,均產(chǎn)生了14~16條片段。結(jié)果顯示,8株肺炎克雷伯菌可分為2組(A、B),其中7株為A型,A1亞型5株(K8-01、K8-03、K8-04、K8-06、K8-08號),A2亞型1株(K8-05號),A3亞型1株(K8-07號);B型1株(K8-02號),見圖3。

        3 討論

        3.1 分型方法回顧 為確定感染是否為院內(nèi)感染,追蹤感染源、了解傳播途徑,有必要對分離菌株進(jìn)行流行病學(xué)研究??考?xì)菌藥敏譜表型分型,雖具有一定的臨床意義,但有時(shí)細(xì)菌藥敏譜復(fù)雜,對于確定其來源較為困難。因此無論是確定散發(fā)的還是流行的克隆菌株,基因分型方法的分辨力是分型技術(shù)的重要指標(biāo)。Te Witt等[6]對93株MRSA菌株應(yīng)用Diversi?Lab系統(tǒng)、MLST和PFGE分型,三者的Simpson系數(shù)分別是0.860、0.877和0.905。盡管分辨率不同,但3種方法都常用于MRSA的基因分型。國內(nèi)學(xué)者曲燕燕等[1]將DiversiLab系統(tǒng)用于鮑曼不動桿菌基因分型,得到了很好效果。DiversiLab系統(tǒng)快速,操作簡單,有商品化試劑盒,可用于實(shí)驗(yàn)室流行病學(xué)的分型方法。

        3.2 8株肺炎克雷伯菌的感染情況 本研究的8株肺炎克雷伯菌分別分離自某醫(yī)院外科同一病房7月17日—29日半個(gè)月期間5例感染患者痰、血液和腹腔引流液標(biāo)本。藥敏試驗(yàn)顯示,8株菌中除K8-2號菌株外的其他7株菌對11種抗菌藥物具有相同的藥敏譜,DiversiLab系統(tǒng)和PFGE也顯示了這7株菌屬于同一型,此次感染很可能為醫(yī)院感染暴發(fā)。來自患者W的腹腔引流液的K8-02號菌,與同時(shí)來自該患者的2份血液和1份痰標(biāo)本的3株菌的藥敏譜不同,并且其PFGE圖譜和DiversiLab系統(tǒng)均顯示無相關(guān)性,為不同的肺炎克雷伯菌克隆株感染。根據(jù)5例患者感染的時(shí)間先后,DiversiLab系統(tǒng)提供的分析發(fā)現(xiàn),患者W最先感染,且與隨后感染的L、H、Y、J患者分離出的肺炎克雷伯菌為同一型,PFGE圖譜也同時(shí)顯示出此結(jié)果。因此,患者W很有可能是此次醫(yī)院感染暴發(fā)的傳染源,并通過外源途徑傳染給L、H、Y、J等4例患者。

        3.3 DiversiLab系統(tǒng)分析 基于rep-PCR的Diversi?Lab系統(tǒng)是一種標(biāo)準(zhǔn)化和自動化系統(tǒng),由于采用了標(biāo)準(zhǔn)化操作、高分辨率微流體芯片和熒光檢測系統(tǒng)及統(tǒng)一的數(shù)據(jù)處理軟件,具有較好的可重復(fù)性,操作簡單、快速,并且可用于實(shí)驗(yàn)室長期流行病學(xué)的分型方法,因而已應(yīng)用于鮑曼不動桿菌、金黃色葡萄球菌、銅綠假單胞菌、分枝桿菌屬等的分子流行病學(xué)研究。其結(jié)果收集和分析處理不受主觀限制,40 min即可分析12例標(biāo)本,操作總共只需6~8 h。結(jié)果具有很高的分辨率,一般條帶達(dá)到10條左右,是一種實(shí)時(shí)定量檢測方法。但這種方法也存在其缺點(diǎn),分析時(shí)只需要1 μL的微量操作,有時(shí)1個(gè)氣泡就需要重新分析擴(kuò)增產(chǎn)物,增加了檢測周期和費(fèi)用。在用芯片檢測時(shí),即使在標(biāo)本不足的情況下,12個(gè)加樣孔和1個(gè)標(biāo)準(zhǔn)孔中也必須加入標(biāo)志物和凝膠熒光染料混合物,造成試劑浪費(fèi)和成本增加。

        本研究發(fā)現(xiàn),DiversiLab系統(tǒng)具有操作簡便快速,高重復(fù)性和高分辨率,結(jié)果的定量處理和多種形式輸出等優(yōu)點(diǎn),將來如果擴(kuò)大樣本量對此方法進(jìn)行方法學(xué)評估,其有可能作為分型鑒定的首選工具,尤其對短期內(nèi)暴發(fā)流行時(shí)大量標(biāo)本檢測具有明顯優(yōu)勢。

        Figure 1 DiversiLab results of 8 Klebsiella pneumoniae strains圖1 8株肺炎克雷伯菌DiversiLab系統(tǒng)分型結(jié)果

        Figure 2 DiversiLab results of 7 Klebsiella pneumoniae strains except for K8-02 specimen圖2 剔除K8-02號標(biāo)本,其他7株肺炎克雷伯菌DiversiLab系統(tǒng)分型結(jié)果

        [1]曲燕燕,王文飛,周華,等.Diversilab系統(tǒng)鮑曼不動桿菌基因分型可行性研究[J].中華檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志,2010,5(33):425-429.

        [2]Clinical and Laboratory Standards Institute.2011.Performance stan?dards for antimicrobial susceptibility testing:Twenty-first informa?tional supplement,M100-S21.

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        [6]Te Witt R,Kanhai V,van Leeuwen WB.Comparison of the Diversi?lab system,Pulsed-field Gel Electrophoresis and Multi-Locus Se?quence Typing for the characterization of epidemic reference MRSA strains[J].J Microbiol Methods,2009,77(1):130-133.

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