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        植物促生微生物產(chǎn)生植物激素相關(guān)研究進(jìn)展

        2025-03-27 00:00:00白鈺高同國(guó)陳波張冬冬朱寶成
        江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2025年1期

        摘要:化肥在保證糧食高產(chǎn)中起到重要作用,但長(zhǎng)期、過(guò)量施用化肥造成土壤板結(jié)、環(huán)境污染等一系列問(wèn)題。微生物肥料替代化肥是農(nóng)業(yè)綠色、可持續(xù)發(fā)展的要求。植物促生微生物(PGPM)是微生物肥料中的功能微生物,其在植物生長(zhǎng)中發(fā)揮著關(guān)鍵作用,其中產(chǎn)生多種植物激素是PGPM發(fā)揮直接促生作用的重要方式之一。本文綜述了PGPM產(chǎn)生的植物激素的種類及相應(yīng)的微生物類群,探討了這些植物激素的化學(xué)結(jié)構(gòu)和在微生物中的主要合成途徑,并對(duì)PGPM產(chǎn)生的植物激素在農(nóng)業(yè)實(shí)踐中的發(fā)展趨勢(shì)和研究潛力進(jìn)行了展望。表明,目前報(bào)道的PGPM產(chǎn)生的植物激素主要以生長(zhǎng)素類、細(xì)胞分裂素類、赤霉素類為主,其在微生物中的合成途徑與植物中的途徑有所不同,且不同微生物合成的激素種類、結(jié)構(gòu)、產(chǎn)量、合成途徑也有差別。該綜述為后續(xù)進(jìn)一步探究PGPM與植物互作機(jī)理,開發(fā)利用PGPM產(chǎn)品提供了思路和理論參考。

        關(guān)鍵詞:植物促生微生物;植物激素;生長(zhǎng)素;赤霉素;細(xì)胞分裂素

        中圖分類號(hào):S182;S184""文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A

        文章編號(hào):1002-1302(2025)01-0009-11

        在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)過(guò)程中,施用化肥是提高農(nóng)作物產(chǎn)量的普遍方式,但化肥利用率低,過(guò)量施用會(huì)引起土壤、環(huán)境等一系列問(wèn)題,導(dǎo)致土壤板結(jié)、肥力下降,土壤微生物群落多樣性降低,進(jìn)而影響農(nóng)作物的品質(zhì),不符合中國(guó)農(nóng)業(yè)綠色、可持續(xù)發(fā)展的要求。目前,使用微生物肥料替代化肥是解決上述問(wèn)題的重要突破點(diǎn)。植物的生長(zhǎng)發(fā)育與微生物活動(dòng)密切相關(guān),而植物促生微生物(plant growth promoting microorganisms,PGPM)是微生物肥料中重要的功能微生物,其在植物生長(zhǎng)中發(fā)揮著多重作用,包括促進(jìn)植物生長(zhǎng)、抵抗植物病害、提高植物免疫力、改善土壤質(zhì)量等,為替代化肥用于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)提供重要的實(shí)踐依據(jù)。2013年國(guó)務(wù)院發(fā)布的《生物產(chǎn)業(yè)發(fā)展規(guī)劃》中將微生物肥料列為高新技術(shù)和戰(zhàn)略性新興產(chǎn)業(yè),國(guó)家發(fā)展和改革委員會(huì)將其列為現(xiàn)代農(nóng)業(yè)技術(shù)領(lǐng)域的重點(diǎn)發(fā)展項(xiàng)目。此外,2022年國(guó)家發(fā)展和改革委員會(huì)發(fā)布的《“十四五”生物經(jīng)濟(jì)發(fā)展規(guī)劃》再次提到了功能型微生物在土壤修復(fù)中的應(yīng)用,凸顯了其在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中的重要作用。目前,已鑒定出多個(gè)PGPM種類,主要包括芽孢桿菌屬(Bacillus)、假單胞菌屬(Pseudomonas)、固氮菌屬(Azotobacter)、固氮螺菌屬(Azospirillum)、克雷伯氏菌屬(Klebsiella)、產(chǎn)堿桿菌屬(Alcaligenes)、節(jié)桿菌屬(Arthrobacter)、 伯克氏菌屬(Burkholderia)、沙雷氏菌屬(Serratia)、青霉菌屬(Penicillium)、木霉菌屬(Trichoderma)和鏈霉菌屬(Streptomyces)等。PGPM可以通過(guò)直接作用和間接作用(圖1)2種方式促進(jìn)植物生長(zhǎng),直接作用有溶磷、固氮以及產(chǎn)生植物激素、嗜鐵素、ACC(1-氨基環(huán)丙烷-1-羧酸)脫氨酶等,間接作用包括生態(tài)競(jìng)爭(zhēng)、誘導(dǎo)植物系統(tǒng)抗性(ISR)、產(chǎn)生抗真菌代謝物等[1-10]

        PGPM產(chǎn)生的植物激素在微生物-植物互作中起到至關(guān)重要的作用,是PGPM發(fā)揮促生效果的主要機(jī)制之一。植物激素是植物體內(nèi)合成的微量有機(jī)化合物,在非常低的濃度條件下就能參與調(diào)控作物的生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程。植物激素調(diào)控植物新陳代謝、生長(zhǎng)發(fā)育和繁衍生息等重要生命活動(dòng),同時(shí)還協(xié)調(diào)植物與周圍環(huán)境的相互作用。目前發(fā)現(xiàn)的植物內(nèi)源激素有生長(zhǎng)素(auxin,IAA)、赤霉素(gibberellin,GA)、細(xì)胞分裂素(cytokinin,CK)、脫落酸(abscisic acid,ABA)、乙烯(ethylene,ET)、水楊酸(salicylic acid,SA)、 茉莉酸(jasmonic acid,JA)、 油菜素內(nèi)酯(brassinolide,BR)和獨(dú)腳金內(nèi)酯(strigolactone,SL)。由人工合成或提取,以及微生物發(fā)酵等方法獲得的植物激素類似物被稱作植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑,其在調(diào)控植物生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中具有與內(nèi)源激素相同或類似的作用,從而達(dá)到調(diào)節(jié)作物生長(zhǎng)發(fā)育、增加產(chǎn)量、改善品質(zhì)等目的。目前發(fā)現(xiàn)PGPM具備產(chǎn)生多種植物激素的能力,如生長(zhǎng)素(IAA)、赤霉素(GA)、細(xì)胞分裂素(CK)、油菜素內(nèi)脂(BR)等。本文綜述了PGPM產(chǎn)生的植物激素的種類、結(jié)構(gòu)和合成途徑,以及相應(yīng)合成植物激素的微生物種類,為植物促生微生物的研究及應(yīng)用提供參考[11]。

        1"生長(zhǎng)素類

        1.1"產(chǎn)生長(zhǎng)素類的微生物種類

        早在1935年,Thimann等就從豬根霉真菌的培養(yǎng)物中分離出吲哚乙酸(indoleacetic acid,IAA)[12]。IAA是生長(zhǎng)素中最具代表性的一類植物激素,在自然界中能夠合成吲哚乙酸的微生物分布極為廣泛,在植物體內(nèi)及其根際土壤微生物中占有很大比例。常見(jiàn)植物促生微生物(PGPM)如農(nóng)桿菌、根瘤菌、腸桿菌、芽孢桿菌、假單胞菌、固氮菌、固氮螺旋菌等微生物中均發(fā)現(xiàn)合成吲哚乙酸的關(guān)鍵酶類。在合適的濃度條件下,細(xì)菌產(chǎn)生的IAA可以提高植物體內(nèi)激素水平,促進(jìn)根毛的伸長(zhǎng),增加根的數(shù)量和長(zhǎng)度。所有的生長(zhǎng)素類化合物都由一個(gè)芳香族骨架和弱有機(jī)酸組成。IAA、吲哚-3-丁酸(IBA)和 4-氯吲哚-3-乙酸(4-Cl-IAA)(化學(xué)結(jié)構(gòu)如圖2所示)是常見(jiàn)的具有芳香吲哚環(huán)的天然生長(zhǎng)素。在某些情況下,細(xì)菌生長(zhǎng)素以共軛形式存在,它們參與儲(chǔ)存、運(yùn)輸和防止酶降解[12-14]

        1.2"IAA的合成途徑

        微生物可以利用多種途徑合成生長(zhǎng)素IAA,這些途徑具有與植物IAA合成途徑相似的特點(diǎn),都以色氨酸為前體物質(zhì)。除了以色氨酸為前提的合成途徑外,還存在一種非色氨酸依賴的IAA合成途徑,被稱為非色氨酸依賴型途徑(tryptophan-3-independent pathway),但目前并未在微生物中發(fā)現(xiàn)該途徑[15]

        1.2.1"吲哚-3-丙酮酸途徑(indole-3-pyruvate pathway,IPyA途徑)

        吲哚-3-丙酮酸途徑存在于多種細(xì)菌中,如根瘤菌、固氮螺菌、陰溝腸桿菌和成團(tuán)泛菌等。其合成過(guò)程如圖3所示:色氨酸在氨基轉(zhuǎn)移酶的作用下首先轉(zhuǎn)氨成吲哚-3-丙酮酸,之后吲哚-3-丙酮酸由吲哚-3-丙酮酸脫羧酶(IPDC)催化脫羧形成吲哚-3-乙醛(IAAld),IAAld氧化最終得到IAA。吲哚-3-丙酮酸途徑的合成關(guān)鍵限速酶為IPDC,編碼該限速酶的基因在巴西固氮螺菌、成團(tuán)泛菌、惡臭假單胞菌和陰溝腸桿菌中均有發(fā)現(xiàn),缺失該基因的細(xì)菌中IAA合成量明顯降低[16-18]。

        1.2.2"吲哚-3-乙酰胺合成途徑(indole-3-acetamide pathway,IAM途徑)

        吲哚-3-乙酰胺合成途徑是當(dāng)前研究最完善的途徑之一。該途徑由2步組成,先是色氨酸通過(guò)色氨酸2-單氧酶(iaaM)催化形成吲哚-3-乙酰胺(IAM);之后由 IAM水解酶(iaaH)將IAM轉(zhuǎn)化為IAA,色氨酸2-單氧酶和IAM水解酶分別由iaaM基因和iaaH基因轉(zhuǎn)錄表達(dá)得到(圖4)。該途徑同樣在許多細(xì)菌中檢測(cè)發(fā)現(xiàn),例如根瘤菌、慢生根瘤菌、成團(tuán)泛菌、農(nóng)桿菌等[19-21]。

        1.2.3"色胺途徑(tryptamine pathway,TAM途徑)

        色胺途徑在植物體和細(xì)菌中均有發(fā)現(xiàn),從植物體內(nèi)提取出色胺明確了色氨酸轉(zhuǎn)化為色胺的必需酶為色氨酸脫羧酶,而在細(xì)菌中固氮螺菌可以使用外源色胺轉(zhuǎn)化成IAA,芽孢桿菌中鑒定出色胺途徑的關(guān)鍵酶為色氨酸脫羧酶。細(xì)菌中色胺途徑主要通過(guò)胺氧化酶將色胺轉(zhuǎn)化成IAA(圖5),植物中色胺途徑還存在爭(zhēng)議, 其核心過(guò)程可能為類黃素單加氧蛋

        白(YUCCA)將色胺轉(zhuǎn)換成N-羥基-色胺[22-23]"。

        1.2.4"吲哚-3-乙腈途徑(indole-3-acetonitrile pathway,IAN途徑)

        吲哚-3-乙腈途徑是近年來(lái)被鑒定出的。已經(jīng)明確的是吲哚-3-乙腈(IAN)轉(zhuǎn)化為IAA是通過(guò)腈水解酶(nitrilases)進(jìn)行的,但反應(yīng)前半段仍然具有爭(zhēng)議,其具體途徑仍不清楚。在細(xì)菌中檢測(cè)出腈水解酶表明該途徑同樣存在于細(xì)菌中[24-25]

        1.2.5"色氨酸側(cè)鏈氧化酶途徑(tryptophan side-chain oxidase pathway,TSO途徑)

        色氨酸側(cè)鏈氧化酶途徑中色氨酸側(cè)鏈氧化酶可以將色氨酸直接氧化成吲哚-3-乙醛(IAAld),然后再進(jìn)一步氧化成IAA。這一現(xiàn)象只在熒光假單胞菌中被發(fā)現(xiàn)。目前在植物體中沒(méi)有發(fā)現(xiàn)該途徑。

        另外,在缺失色氨酸合成途徑的植物體內(nèi)同樣檢測(cè)到IAA含量的升高,這代表非色氨酸依賴途徑的存在,但這一途徑目前還沒(méi)有找到關(guān)鍵酶的存在。微生物中也未有非色氨酸依賴途徑的相關(guān)報(bào)道[26-27]。

        2"赤霉素類

        高等植物中有136種不同化學(xué)結(jié)構(gòu)的赤霉素(GA),在真菌中報(bào)道的有28種,細(xì)菌中有4種,分別命名為GA1~GAn。其中GA1、GA3、GA4、GA7(化學(xué)結(jié)構(gòu)如圖6所示)為赤霉素在植物和微生物中存在的主體形式[28-31]。

        2.1"產(chǎn)赤霉素類的微生物種類

        赤霉素在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中應(yīng)用極為廣泛,它是一種天然的植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑,赤霉素可以促進(jìn)種子萌發(fā)、結(jié)束種子休眠期、緩解逆境脅迫、促進(jìn)植株伸長(zhǎng)等,在植物體內(nèi)具有重要調(diào)控功能。赤霉素促進(jìn)植物生長(zhǎng)的主要原因是誘導(dǎo)DELLA轉(zhuǎn)錄因子的降解。DELLA轉(zhuǎn)錄因子因其N端含有高度保守的DELLA基因序列而被命名,該轉(zhuǎn)錄因子可以抑制維持植物生長(zhǎng)所需的部分基因表達(dá)。DELLA蛋白家族同樣是赤霉素信號(hào)途徑中的關(guān)鍵負(fù)調(diào)控因子,可抑制GA途徑的基因表達(dá),但這種抑制作用可以被微生物所產(chǎn)生的外源GA所解除。目前赤霉素大規(guī)模生產(chǎn)方式主要為液體發(fā)酵。產(chǎn)生赤霉素的微生物有很多種,位于根際部位的細(xì)菌如芽孢桿菌、農(nóng)桿菌、固氮菌、微球菌、假單胞菌、根瘤菌和黃單胞菌等均能產(chǎn)生赤霉素。同樣位于植物根際的真菌如藤倉(cāng)赤霉菌、鏈格孢菌、天門冬孢菌、頭孢菌素、枝孢菌、鐮刀菌、青霉、根霉、痂圓孢菌、木霉和輪枝菌等同樣可以合成赤霉素及其衍生物[32-34]

        不同微生物合成赤霉素的能力有很大差異,合成量基本處于1 mg/L~1 g/L之間。目前用于工業(yè)生產(chǎn)的微生物主要為藤倉(cāng)赤霉菌和串珠鐮孢菌,其中藤倉(cāng)赤霉菌應(yīng)用較為成熟,可經(jīng)過(guò)發(fā)酵方式及條件的優(yōu)化后進(jìn)行工業(yè)生產(chǎn)發(fā)酵,發(fā)酵效價(jià)普遍為 2~4 g/L[35-36]。

        2.2"赤霉素合成途徑

        赤霉素(GA)化學(xué)結(jié)構(gòu)上屬于萜類植物激素,它的本質(zhì)是一種二萜類化合物。與其他萜類物質(zhì)的合成類似,在高等植物體內(nèi)合成赤霉素主要有3個(gè)階段,首先是牻牛兒基牻牛兒基焦磷酸(geranyl geranyl pyrophosphate,GGPP)的合成,第2步是 GA12-醛的合成,最后是赤霉素的合成。在植物中,GGPP合成所需的異戊烯焦磷酸(IPP)是通過(guò)甲基赤藻糖酸(MEP)途徑,由丙酮酸和3-磷酸甘油酯經(jīng)催化后反應(yīng)合成的[37]。

        與植物體內(nèi)所產(chǎn)生的激素不同,在真菌中它由乙酰輔酶A通過(guò)甲羥戊酸(mevalonic acid,MVA)途徑合成甲羥戊酸,再經(jīng)過(guò)5-磷酸甲羥戊酸、5-焦磷酸甲羥戊酸、異戊烯焦磷酸(isopentenyl pyrophosphate,IPP)、3,3-二甲烯丙基焦磷酸、牻牛兒基焦磷酸(geranyl pyrophosphate,GPP)、法尼基焦磷酸(farnesyl pyrophosphate,F(xiàn)PP)而得到(圖7為藤倉(cāng)赤霉菌合成赤霉素第1階段)[38-39]。

        赤霉素合成第2階段是由GGPP合成為內(nèi)根-貝殼杉烯的過(guò)程,其中內(nèi)根-古巴焦磷酸合成酶(copalyl pyrophosphate synthase,CPS)和內(nèi)根-貝殼杉烯合成酶(entkaurenesynthase,KS)為該反應(yīng)的限速酶。內(nèi)根-貝殼杉烯經(jīng)細(xì)胞色素P450-4單氧化酶的一系列催化下合成內(nèi)根-貝殼杉烯酸,再經(jīng)過(guò)P450-1單氧化酶兩步催化合成GA12-醛(圖8為真菌合成赤霉素第2階段)。作為赤霉素合成第2階段,微生物合成的中間產(chǎn)物與所需酶類與植物合成途徑基本一致。

        赤霉素合成的第3階段,在真菌中,GA12-醛首先經(jīng)過(guò)羥基化合成GA14-醛,再經(jīng)過(guò)一系列催化步驟合成GA3。而在高等植物中,GA12-醛先經(jīng)過(guò)19C的氧化合成GA12,再經(jīng)過(guò)一系列氧化去飽和合成GA1等(圖9為真菌合成赤霉素第3階段)[40]。

        3"細(xì)胞分裂素

        3.1"合成細(xì)胞分裂素的微生物種類

        細(xì)胞分裂素作為調(diào)節(jié)植物生長(zhǎng)發(fā)育的一類重要的天然化合物,參與植物種子萌發(fā)、芽的生長(zhǎng)、植物抽枝、次生組織形成、延緩植物體葉片衰老等一系列發(fā)育過(guò)程,在植物抗逆方面同樣具有不可忽視的作用。細(xì)胞分裂素存在于許多生物體中,如植物體、細(xì)菌、真菌、藻類、昆蟲等。細(xì)胞分裂素合成菌產(chǎn)生的細(xì)胞分裂素與植物生長(zhǎng)密切相關(guān),這些細(xì)菌參與到植物的生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中,包括植物促生菌、植物共生菌和一些植物致病菌,尤其在植物根際土壤中,如固氮菌、芽孢桿菌和假單胞菌等細(xì)菌中均有細(xì)胞分裂素的產(chǎn)生[41-42]。

        3.2"細(xì)胞分裂素的合成途徑

        細(xì)胞分裂素是以腺嘌呤為基礎(chǔ)轉(zhuǎn)化而成的腺嘌呤衍生物,其特征是類異戊二烯或芳香側(cè)鏈附著在外環(huán)氮原子上。細(xì)胞分裂素根據(jù)腺嘌呤N6端側(cè)鏈的不同可以分為類異戊二烯CK(isoprenoid CK)和芳香族CK(aromatic CK)。類異戊二烯CK主要由順式玉米素(cis-zeatin,cZ)、反式玉米素(trans-zeatin,tZ)、二氫玉米素(dihydrozeatin,DZ)和N6-異戊烯腺嘌呤(N6-isopentenyladenine,iP)構(gòu)成(化學(xué)結(jié)構(gòu)如圖10所示)。

        芳香族CK由具有代表性的芐基腺嘌呤(BA)、其羥基化衍生物鄰氨基和間氨基拓?fù)渌兀╫T,mT)及其甲氧基衍生物構(gòu)成。芳香族CK,如6-芐基腺嘌呤(6-benzyladenine,6-BA)等物質(zhì)只在特定植物中被發(fā)現(xiàn)。目前沒(méi)有在細(xì)菌體內(nèi)發(fā)現(xiàn)芳香族CK。

        細(xì)菌中細(xì)胞分裂素的合成途徑與植物中的合成途徑大體一致,分為從頭合成途徑和tRNA分解途徑。普遍認(rèn)為,tZ類和iP類細(xì)胞分裂素的合成依賴于從頭合成途徑,該途徑是植物體內(nèi)主要的細(xì)胞分裂素合成途徑;而作為次要途徑的 tRNA 分解途徑則主要合成順式玉米素型細(xì)胞分裂素(cZ-CTK),這一途經(jīng)在細(xì)菌合成CK中占主體地位。從頭合成途徑是以異戊烯基側(cè)鏈為底物,分為AMP途徑、ATP/ADP途徑和旁路途徑[43]。

        細(xì)胞分裂素的合成初始步驟是通過(guò)異戊烯基轉(zhuǎn)移酶(IPT)催化作用來(lái)實(shí)現(xiàn)的,分為腺苷酸IPT和tRNA IPT,IPT也是細(xì)胞分裂素合成途徑中最為關(guān)鍵的限速酶。前者將異戊烯基鏈從二甲基烯丙基焦磷酸(DMAPP)或4-羥基-3-甲基-丁基-2-苯基焦磷酸(HMBPP)轉(zhuǎn)移到AMP的N6氨基,而后者在識(shí)別UNN密碼子的tRNA中使用相同的側(cè)鏈供體將tRNA結(jié)合的腺苷磷酸戊烯化。細(xì)胞分裂素的合成途徑在微生物和植物中極為相似,只有少數(shù)細(xì)菌或者特定植物中存在其他類型的途徑。例如,在植物中存在的芳香族CK在細(xì)菌中沒(méi)有被發(fā)現(xiàn);只有少數(shù)細(xì)菌含有腺苷酸IPT。

        二甲基丙烯基二磷酸(DMAPP)上的異戊烯基基團(tuán)在 IPT 的催化下分別轉(zhuǎn)移到AMP、ADP和ATP的N6位生成異戊烯基腺苷-5′-磷酸(iPRMP)、異戊烯基腺苷-5′-二磷酸(iPRDP)和異戊烯基腺苷-5′-三磷酸(iPRTP)等產(chǎn)物,這些中間產(chǎn)物是合成N6-異戊烯腺嘌呤核苷(iPR)的前體物質(zhì)。其次,iPRMP、iPRTP和iPRDP等在細(xì)胞色素單加氧酶P450(CYP450)的作用下進(jìn)一步轉(zhuǎn)化為核苷酸形式的反式玉米素核苷(tZR)的前體:?jiǎn)瘟姿岱词接衩姿睾塑眨╰ZRTP)、二磷酸反式玉米素核苷(tZRDP)和三磷酸反式玉米素核苷(tZRMP)。細(xì)胞分裂素合成的最后一步是在細(xì)胞分裂素磷酸核糖水解酶(LOG)的催化作用下合成iP、tZ細(xì)胞分裂素。tZ可通過(guò)玉米蛋白還原酶轉(zhuǎn)化為二氫玉米蛋白(DHZ)。tRNA依賴性CK合成途徑主要通過(guò)tRNA異戊烯基轉(zhuǎn)移酶(tRNA IPT)和2-甲硫基-N6-異戊烯-腺苷羥化酶(MiaE)以二甲基烯丙基焦磷酸(DMAPP)為供體將tRNA結(jié)合的腺苷磷酸戊烯化形成三磷酸順式玉米素核苷(cZRMP),后續(xù)則與從頭合成途徑中合成cZ的過(guò)程相同(圖11為細(xì)胞分裂素合成途徑)[44-45]

        4"茉莉酸和水楊酸

        茉莉酸(jasmonic acid,JA)是一種自然界天然存在的脂肪酸類物質(zhì),如茉莉酸(JA)、茉莉酸甲酯(MeJA)等具有代表性的茉莉酸鹽(化學(xué)結(jié)構(gòu)如圖12所示)。它最初被發(fā)現(xiàn)于真菌中,后經(jīng)研究發(fā)現(xiàn)它在自然界中(包括植物、動(dòng)物和真菌)廣泛存在。茉莉酸鹽在植物中的主要作用為促進(jìn)植物生長(zhǎng),控制種子萌發(fā)、離子的吸收與運(yùn)輸,改變膜滲透以及提高植物光合作用。水楊酸(salicylic acid,SA)作為一種小分子酚類物質(zhì),在植物中分布廣泛,最早于1828年從柳樹皮中發(fā)現(xiàn)。SA可以由植物自身合成且作為重要的信號(hào)分子參與植物調(diào)控。在植物抗逆方面,茉莉酸和水楊酸兩者可以提高植物耐鹽性,作為觸發(fā)防御反應(yīng)的重要因子促使植物抵抗病原體。目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)真菌可可毛色二孢菌(Lasiodiplodia theobromae)可以產(chǎn)生JA并投入發(fā)酵生產(chǎn)中,但其在真菌內(nèi)的合成途徑尚不清楚。目前也并未發(fā)現(xiàn)具有合成水楊酸的微生物[46]。

        5"油菜素內(nèi)酯

        油菜素內(nèi)酯(brassinoslide,BR)被稱為五大植物激素之后發(fā)現(xiàn)的第6種植物激素(圖13),作為一種從油菜花粉中發(fā)現(xiàn)并提取的天然活性物質(zhì),廣泛參與植物各種生理活動(dòng),促進(jìn)種子萌發(fā)和細(xì)胞伸長(zhǎng),尤其在提高植物體對(duì)外部環(huán)境脅迫的響應(yīng)中發(fā)揮重要作用,是一種效應(yīng)能力極強(qiáng)的微量化合物。目前已報(bào)道在單細(xì)胞微生物綠藻小球藻中發(fā)現(xiàn)了相應(yīng)類似化合物;油菜素內(nèi)酯在植物抗致病菌及抗逆方面起到了重要作用,但目前并沒(méi)有在其他微生物中發(fā)現(xiàn)該激素[47]

        6"低聚糖

        由微生物產(chǎn)生的具有類似植物激素生物活性的低聚糖(oligosaccharide),如β-D-葡聚糖片段、幾丁質(zhì)和殼聚糖片段、脂低聚糖等在植物生長(zhǎng)過(guò)程中起到重要作用。低聚糖主要由微生物細(xì)胞壁的多糖聚合物裂解產(chǎn)生。低聚糖最為典型的生物活性體現(xiàn)在豆科植物與共生固氮菌之間,例如共生固氮菌中誘導(dǎo)結(jié)瘤基因(Nod)表達(dá)產(chǎn)生的被稱為結(jié)瘤因子的特定脂殼寡糖(圖14),它作為細(xì)菌特定合成的產(chǎn)物可以改變植物根系結(jié)構(gòu)促進(jìn)結(jié)瘤[48]

        7"討論與展望

        7.1"討論

        植物生長(zhǎng)除受到自身所產(chǎn)植物激素調(diào)控外,也與共生微生物產(chǎn)生的植物激素有密切關(guān)系。植物促生微生物可以產(chǎn)生多種植物激素,并且同種植物激素的不同微生物合成途徑可能不同,一種微生物還可能同時(shí)產(chǎn)生多種植物激素。植物生長(zhǎng)是多種植物激素共同作用的結(jié)果,例如,在植物防御反應(yīng)中,乙烯和茉莉酸之間共同協(xié)調(diào),提高植物抗性[49];促生菌產(chǎn)生的植物激素及類物質(zhì)對(duì)于植物內(nèi)源激素也具有調(diào)控作用[50]。

        根際微生物在植物生長(zhǎng)發(fā)育中具有重要作用。目前發(fā)現(xiàn)大多數(shù)根際微生物均具有產(chǎn)生植物激素的能力,并且這些代謝產(chǎn)物關(guān)系到土壤環(huán)境中微生物群落的形成和結(jié)構(gòu)。因此,研究這些激素的生物合成途徑及其促進(jìn)植物生長(zhǎng)的機(jī)理,對(duì)探明微生物與植物之間的互作關(guān)系以及植物根際微生物群落的形成和結(jié)構(gòu)具有重要意義。

        7.2"展望

        2022年11月我國(guó)農(nóng)業(yè)農(nóng)村部發(fā)布《到2025年化肥減量化行動(dòng)方案》和《到2025年化學(xué)農(nóng)藥減量化行動(dòng)方案》,要求進(jìn)一步減少化肥、化學(xué)農(nóng)藥施用總量。微生物肥料順應(yīng)了新時(shí)代農(nóng)業(yè)環(huán)保、綠色、可持續(xù)發(fā)展的主題。微生物肥料不僅可以在一定程度上替代肥料的作用,還可以對(duì)土壤環(huán)境進(jìn)行改良,促進(jìn)農(nóng)作物的增收增效,減少環(huán)境污染。根據(jù)農(nóng)業(yè)農(nóng)村部微生物肥料和食用菌菌種質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)中心所登記的微生物肥料產(chǎn)品信息,目前微生物肥料產(chǎn)品涵蓋45個(gè)屬的163個(gè)種,其中以細(xì)菌為主體,其次是真菌、放線菌、藻類。截至2022年9月,中國(guó)微生物肥料生產(chǎn)企業(yè)約有3 300家,登記產(chǎn)品有11 200余個(gè)。雖然產(chǎn)品數(shù)量眾多,但在菌株效能和功能方面普遍相似,優(yōu)良菌株較少。不同微生物肥料的功能和發(fā)揮的實(shí)際效果參差不齊,甚至微生物肥料產(chǎn)品存在雷同化的問(wèn)題。因此,大力發(fā)展具有特定功能的高效功能菌株是必經(jīng)之路。

        能產(chǎn)生植物激素的微生物是重要的功能性微生物之一,由植物激素產(chǎn)生菌制成的微生物肥料,因其產(chǎn)物中具有植物激素的特點(diǎn),在功能專一性和效用穩(wěn)定性方面上明顯高于其他微生物制品。目前已經(jīng)報(bào)道的產(chǎn)生植物激素的菌株合成的激素含量和種類存在較大差異。已經(jīng)應(yīng)用于微生物肥料及植物激素工業(yè)發(fā)酵生產(chǎn)中的菌株,因菌株本身產(chǎn)生效率和技術(shù)水平限制,難以進(jìn)一步提升其產(chǎn)量和施用效果,這就要求不斷完善微生物產(chǎn)植物激素合成機(jī)制和作用原理相關(guān)研究,篩選、優(yōu)化菌株產(chǎn)植物激素能力和發(fā)酵技術(shù)水平,或通過(guò)基因調(diào)控、基因工程手段強(qiáng)化激素產(chǎn)生菌的育種工作。代謝產(chǎn)物是微生物發(fā)揮促生作用的主要機(jī)制之一,對(duì)于產(chǎn)激素類微生物來(lái)說(shuō)是其發(fā)揮功效的主要原因。但目前市場(chǎng)上對(duì)于該類型產(chǎn)品尚未有相關(guān)的產(chǎn)品標(biāo)準(zhǔn)與評(píng)價(jià)辦法,因此進(jìn)一步完善微生物代謝產(chǎn)物相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)與評(píng)價(jià)辦法,對(duì)于改善和維護(hù)微生物肥料市場(chǎng)秩序具有重要意義。另外,應(yīng)加強(qiáng)菌種資源知識(shí)產(chǎn)權(quán)保護(hù),并確立新研發(fā)功能菌株的知識(shí)產(chǎn)權(quán)保護(hù)政策。建立基于微生物全基因組測(cè)序結(jié)果的功能菌株編碼系統(tǒng),有助于維護(hù)新菌株選育者的權(quán)益。這些都是微生物肥料產(chǎn)業(yè)發(fā)展中十分必要的舉措。

        此外,產(chǎn)植物激素微生物和植物之間的作用機(jī)理解析不夠明確。探明植物激素在微生物和植物間共生機(jī)制中的作用以及調(diào)控機(jī)理,突出微生物、植物間的“合作關(guān)系”,從而達(dá)到“智能化”微生物肥料的功效,為提高微生物產(chǎn)生植物激素的能力,提高微生物肥料應(yīng)用效能,進(jìn)一步提升農(nóng)作物的產(chǎn)量和品質(zhì),推動(dòng)國(guó)家農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展戰(zhàn)略,提供極為重要的理論依據(jù)和實(shí)踐意義。

        參考文獻(xiàn):

        [1]Dˇapek P,Manzoni S,Katovská E,et al. A plant-microbe interaction framework explaining nutrient effects on primary production[J]. Nature Ecology amp; Evolution,2018,2(10):1588-1596.

        [2]Abhilash P C,Dubey R K,Tripathi V,et al. Plant growth-promoting microorganisms for environmental sustainability[J]. Trends in Biotechnology,2016,34(11):847-850.

        [3]Berendsen R L,Pieterse C M J,Bakker P A H M. The rhizosphere microbiome and plant health[J]. Trends in Plant Science,2012,17(8):478-486.

        [4]Zamioudis C,Mastranesti P,Dhonukshe P,et al. Unraveling root developmental programs initiated by beneficial Pseudomonas spp.bacteria[J]. Plant Physiology,2013,162(1):304-318.

        [5]Tsukada K,Takahashi K,Nabeta K. Biosynthesis of jasmonic acid in a plant pathogenic fungus,Lasiodiplodia theobromae[J]. Phytochemistry,2010,71(17/18):2019-2023.

        [6]Nadeem S M,Ahmad M,Ahmad Zahir Z,et al. The role of mycorrhizae and plant growth promoting rhizobacteria(PGPR)in improving crop productivity under stressful environments[J]. Biotechnology Advances,2014,32(2):429-448.

        [7]Cohen A C,Bottini R,Pontin M,et al. Azospirillum brasilense ameliorates the response of Arabidopsis thaliana to drought mainly via enhancement of ABA levels[J]. Physiologia Plantarum,2015,153(1):79-90.

        [8]Wang S S,Wang J B,Zhou Y F,et al. Isolation,classification,and growth-promoting effects of Pantoea sp.ysd J2 from the aboveground leaves of Cyperus esculentus L. var. sativus[J]. Current Microbiology,2022,79(2):66.

        [9]Glick B R,Penrose D M,Li J P. A model for the lowering of plant ethylene concentrations by plant growth-promoting bacteria[J]. Journal of Theoretical Biology,1998,190(1):63-68.

        [10]Dodd I C,Pérez-Alfocea F. Microbial amelioration of crop salinity stress[J]. Journal of Experimental Botany,2012,63(9):3415-3428.

        [11]Kumawat K C,Sharma B,Nagpal S,et al. Plant growth-promoting rhizobacteria:salt stress alleviators to improve crop productivity for sustainable agriculture development[J]. Frontiers in Plant Science,2023,13:1101862.

        [12]Shi T Q,Peng H,Zeng S Y,et al. Microbial production of plant hormones:opportunities and challenges[J]. Bioengineered,2017,8(2):124-128.

        [13]Ali B,Sabri A N,Ljung K,et al. Auxin production by plant associated bacteria:impact on endogenous IAA content and growth of Triticum aestivum L.[J]. Letters in Applied Microbiology,2009,48(5):542-547.

        [14]Pilet P E,Saugy M. Effect on root growth of endogenous and applied IAA and ABA:a critical reexamination[J]. Plant Physiology,1987,83(1):33-38.

        [15]Duca D,Lorv J,Patten C L,et al. Indole-3-acetic acid in plant-microbe interactions[J]. Antonie Van Leeuwenhoek,2014,106(1):85-125.

        [16]Prinsen E. Azospirillum brasilense indole-3-acetic acid biosynthesis:evidence for a non-tryptophan dependent pathway[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,1993,6(5):609.

        [17]Manulis S,Haviv-Chesner A,Brandl M T,et al. Differential involvement of indole-3-acetic acid biosynthetic pathways in pathogenicity and epiphytic fitness of Erwinia herbicola pv.gypsophilae[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,1998,11(7):634-642.

        [18]Patten C L,Glick B R. Role of Pseudomonas putida indoleacetic acid in development of the host plant root system[J]. Applied and Environmental Microbiology,2002,68(8):3795-3801.

        [19]Pollmann S,Müller A,Weiler E W. Many roads lead to “auxin”:of nitrilases,synthases,and amidases[J]. Plant Biology,2006,8(3):326-333.

        [20]Theunis M,Kobayashi H,Broughton W J,et al. Flavonoids,NodD1,NodD2,and nod-box NB15 modulate expression of the y4wEFG locus that is required for indole-3-acetic acid synthesis in Rhizobium sp.strain NGR234[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,2004,17(10):1153-1161.

        [21]Glickmann E,Gardan L,Jacquet S,et al. Auxin production is a common feature of most pathovars of Pseudomonas syringae[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,1998,11(2):156-162.

        [22]Hartmann A,Singh M,Klingmüller W. Isolation and characterization of Azospirillum mutants excreting high amounts of indoleacetic acid[J]. Canadian Journal of Microbiology,1983,29(8):916-923.

        [23]Bak S,Tax F E,F(xiàn)eldmann K A,et al. CYP83B1,a cytochrome P450 at the metabolic branch point in auxin and indole glucosinolate biosynthesis in Arabidopsis[J]. The Plant Cell,2001,13(1):101-111.

        [24]Zhao Y,Christensen S K,F(xiàn)ankhauser C,et al. A role for flavin monooxygenase-like enzymes in auxin biosynthesis[J]. Science,2001,291(5502):306-309.

        [25]Kobayashi M,Suzuki T,F(xiàn)ujita T,et al. Occurrence of enzymes involved in biosynthesis of indole-3-acetic acid from indole-3-acetonitrile in plant-associated bacteria,Agrobacterium and Rhizobium[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1995,92(3):714-718.

        [26]Oberhnsli T,Dfago G,Haas D.Indole-3-acetic acid(IAA)synthesis in the biocontrol strain CHA0 of Pseudomonas fluorescens:role of tryptophan side chain oxidase[J]. Journal of General Microbiology,1991,137(10):2273-2279.

        [27]Normanly J,Cohen J D,F(xiàn)ink G R. Arabidopsis thaliana auxotrophs reveal a tryptophan-independent biosynthetic pathway for indole-3-acetic acid[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1993,90(21):10355-10359.

        [28]MacMillan J,Takahashi N. Proposed procedure for the allocation of trivial names to the gibberellins[J]. Nature,1968,217(5124):170-171.

        [29]Hedden P,Thomas S G. Gibberellin biosynthesis and its regulation[J]. Biochemical Journal,2012,444(1):11-25.

        [30]Bmke C,Tudzynski B. Diversity,regulation,and evolution of the gibberellin biosynthetic pathway in fungi compared to plants and bacteria[J]. Phytochemistry,2009,70(15/16):1876-1893.

        [31]Rodrigues C,Vandenberghe L P,de Oliveira J,et al. New perspectives of gibberellic acid production:a review[J]. Critical Reviews in Biotechnology,2012,32(3):263-273.

        [32]Mander L N. Twenty years of gibberellin research[J]. Natural Product Reports,2003,20(1):49-69.

        [33]宋松泉,劉"軍,黃"薈,等. 赤霉素代謝與信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)及其調(diào)控種子萌發(fā)與休眠的分子機(jī)制[J]. 中國(guó)科學(xué)(生命科學(xué)),2020,50(6):599-615.

        [34]Tate R L Ⅲ. Phytohormones in soils:microbial production and function[J]. Soil Science,1996,161(3):202.

        [35]李春玲,牛"春,張"萍. 赤霉素高產(chǎn)菌株篩選及發(fā)酵條件優(yōu)化[J]. 北方園藝,2021(3):47-51.

        [36]彭"輝,施天穹,聶志奎,等. 微生物發(fā)酵產(chǎn)赤霉素的研究進(jìn)展[J]. 化工進(jìn)展,2016,35(11):3611-3618.

        [37]Domenech C E,Giordano W,Avalos J,et al. Separate compartments for the production of sterols,carotenoids and gibberellins in Gibberella fujikuroi[J]. European Journal of Biochemistry,1996,239(3):720-725.

        [38]Hedden P,Kamiya Y. GIBBERELLIN BIOSYNTHESIS:enzymes,genes and their regulation[J]. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology,1997,48:431-460.

        [39]Tudzynski B. Gibberellin biosynthesis in fungi:genes,enzymes,evolution,and impact on biotechnology[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2005,66(6):597-611.

        [40]Hedden P,Sponsel V. A century of gibberellin research[J]. Journal of Plant Growth Regulation,2015,34(4):740-760.

        [41]李小艷,許"晅,朱同生,等. 細(xì)胞分裂素對(duì)玉米產(chǎn)量性狀的影響[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2013,29(36):219-223.

        [42]Osugi A,Kojima M,Takebayashi Y,et al. Systemic transport of trans-zeatin and its precursor have differing roles in Arabidopsis shoots[J]. Nature Plants,2017,3:17112.

        [43]Zeng X F,Zhao D G. Expression of IPT in Asakura-sanshoo[Zanthoxylum piperitum (L.) DC. f. inerme Makino]alters tree architecture,delays leaf senescence,and changes leaf essential oil composition[J]. Plant Molecular Biology Reporter,2016,34:649-658.

        [44]Guilfoyle T,Hagen G,Keshishian E A,et al. Plant cytokinin signalling[J]. Essays Biochen,2015,58,13-27.

        [45]Tokunaga H,Kojima M,Kuroha T,et al. Arabidopsis lonely guy(LOG)multiple mutants reveal a central role of the LOG-dependent pathway in cytokinin activation[J]. The Plant Journal,2012,69(2):355-365.

        [46]Dhandhukia P,Thakkar V. Standardization of growth and fermentation criteria of Lasiodiplodia theobromae for production of jasmonic acid[J]. African Journal of Biotechnology,2007,6:707-712.

        [47]Bajguz A,Asami T. Effects of brassinazole,an inhibitor of brassinosteroid biosynthesis,on light-and dark-grown Chlorella vulgaris[J]. Planta,2004,218(5):869-877.

        [48]Skorupska A,Wielbo J,Kidaj D,et al. Enhancing rhizobium-legume symbiosis using signaling factors[M]//Microbes for legume improvement. Vienna:Springer Vienna,2010:27-54.

        [49]Zhu Q H,Stephen S,Kazan K,et al. Characterization of the defense transcriptome responsive to Fusarium oxysporum-infection in Arabidopsis using RNA-seq[J]. Gene,2013,512(2):259-266.

        [50]尚"賞,王"平,陳彩艷. 叢枝菌根形成過(guò)程及其信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑[J]. 植物生理學(xué)報(bào),2011,47(4):331-338.

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