盛玲潔 徐 佳 戴靜靜 王海芳 曹傲能
(上海大學(xué)環(huán)境與化學(xué)工程學(xué)院,納米化學(xué)與生物學(xué)研究所,上海 200444)
以納米粒子(NPs)來模擬天然蛋白質(zhì)既是一個(gè)重要的科學(xué)問題,也具有廣闊的生物醫(yī)學(xué)應(yīng)用前景[1]。目前賦予NPs與蛋白質(zhì)特異性作用的生物功能的常用方法是在NPs表面直接連接具有該功能的分子基團(tuán)[2-3]。比如,很多研究都在NPs 表面直接修飾完整的蛋白質(zhì),但由于NPs對(duì)蛋白質(zhì)構(gòu)象的影響以及難以控制NPs上蛋白質(zhì)的取向,作用效果常常低于預(yù)期,而且蛋白質(zhì)較大的分子體積也常常影響作用效果和應(yīng)用范圍[4]。在NPs表面直接連接具有活性的蛋白質(zhì)片段也是一種常用的手段[5],但絕大多數(shù)蛋白質(zhì)片段離開了原來的蛋白質(zhì)骨架后就沒有了穩(wěn)定的構(gòu)象和功能,因此這種方法的應(yīng)用范圍也極為有限。
能不能在NPs 上重建蛋白質(zhì)片段的天然構(gòu)象,從而恢復(fù)其天然活性呢?針對(duì)這個(gè)問題,最近本課題組[6]提出“構(gòu)象工程”概念,旨在通過精確控制NPs 表面的柔性基團(tuán)(多肽片段)的構(gòu)象賦予NPs新的生物功能。和通常應(yīng)用一個(gè)化學(xué)鍵把多肽連接到NPs 上的方法不同,本課題組[6]巧妙地通過兩個(gè)Au-S 鍵將一段來自天然抗體、單獨(dú)存在時(shí)沒有穩(wěn)定構(gòu)象和功能的互補(bǔ)決定簇區(qū)(CDR)多肽連接到金納米粒子(AuNPs)表面,成功地重建了CDR 多肽的天然構(gòu)象,得到了像原天然抗體一樣能特異性識(shí)別原抗原的的納米人工抗體——金抗體(Goldbody)。進(jìn)一步的丙氨酸掃描突變等實(shí)驗(yàn)證明,金抗體中CDR 片段的結(jié)合構(gòu)象與其在原天然抗體中的完全一致[7]。這一構(gòu)象工程技術(shù)也得到了其他課題組的理論計(jì)算和實(shí)驗(yàn)的驗(yàn)證[8-9]。Liu等[10]和Wang等[11]后續(xù)利用構(gòu)象工程技術(shù)制備出了多種靶向不同抗原的金抗體,同時(shí),許艷嬌等[12]研究表明,金抗體在實(shí)際應(yīng)用中有望代替天然抗體。這些金抗體不僅具有和原天然抗體一樣的特異性,而且穩(wěn)定性更好。Willson教授[13]專門為這一構(gòu)象工程技術(shù)創(chuàng)造了一個(gè)特殊的術(shù)語“金化”,將其與醫(yī)用抗體中的“人源化”技術(shù)相比。在金抗體工作取得成功的基礎(chǔ)上,Xu 等[14]研究發(fā)現(xiàn),構(gòu)象工程技術(shù)并不僅僅局限于AuNPs,在銀納米粒子(AgNPs)上同樣可以重建CDR 片段的天然構(gòu)象,并制備出了能特異性結(jié)合原抗原的銀抗體。
金抗體和銀抗體的成功表明了構(gòu)象工程技術(shù)可能是一種普適性的技術(shù),只要NPs表面的原子具有流動(dòng)性以保證連接的多肽能夠進(jìn)行構(gòu)象調(diào)整,其他NPs,特別是與Au 和Ag 相似的貴金屬NPs 都可以作為構(gòu)象工程的骨架。在眾多貴金屬中,鉑的化合物和鉑納米粒子(PtNPs)在抗腫瘤治療中具有廣闊的應(yīng)用前景[15-16]。此外,PtNPs由于具有良好的熱穩(wěn)定性和較高的光熱轉(zhuǎn)換效率,還常被用作抗癌藥物的載體[17]。如果能夠應(yīng)用構(gòu)象工程技術(shù)開發(fā)基于PtNPs 的鉑抗體,即賦予PtNPs 像天然抗體一樣的、特異性識(shí)別靶蛋白的能力,那將為研發(fā)高度靶向性的PtNPs藥物載體提供一條全新的路徑。
本文以在金抗體和銀抗體中都取得成功的抗溶菌酶天然抗體(cAB-lys3)中CDR3 多肽片段為研究對(duì)象,通過兩個(gè)Pt-S 鍵將其連接到2.5 nm 的PtNPs 上,經(jīng)過PtNPs 表面多肽密度調(diào)控和聚乙二醇(PEG)修飾等優(yōu)化過程,成功地制備出了能夠特異性識(shí)別溶菌酶并抑制其活性的鉑抗體。
磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、濃硝酸、濃鹽酸、二水合檸檬酸鈉、六水合氯鉑酸和硼氫化鈉購于國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;鉑標(biāo)準(zhǔn)溶液(100 mg/L)購于鋼研納克檢測(cè)技術(shù)有限公司;溶菌酶和溶壁微球菌購于美國Sigma-Aldrich 公司;SH-PEG-SH(平均分子質(zhì)量為1 ku)購于上海芃碩生物科技有限公司。所用試劑均為分析純。多肽P1、多肽P1m 和多肽P1s 購于上??齐纳锟萍加邢薰?,純度均大于95%。 實(shí)驗(yàn)中使用超純水(18.2 MΩ·cm,美國Millipore公司)。
U-3010 型紫外-可見分光光度計(jì)(日本HⅠTACHⅠ公司);HT7700 型透射電子顯微鏡(日本日立公司);ZS90 型納米粒度分析儀(英國Malvern 公司);F-7000 型熒光光譜儀(日本HⅠTACHⅠ公司);PinAAcle 900T 型原子吸收光譜儀(美國PerkinElmer公司)。
參考和改進(jìn)了文獻(xiàn)[18-20]中的水熱合成方法,制備了PtNPs。具體來說,在25℃恒溫水浴中,向盛有38 ml超純水的圓底燒瓶中加入1 ml濃度為16 mmol/L 的氯鉑酸溶液和1 ml 濃度為40 mmol/L 的檸檬酸鈉溶液,攪拌30 min。之后用注射泵逐滴加入0.2 ml 新鮮配制的50 mmol/L 的硼氫化鈉,攪拌1 h。制備完成后樣品封口避光保存于4℃冰箱中待用。使用前用0.22 μm濾膜過濾。
采用原子吸收光譜儀(AAS)對(duì)PtNPs樣品的濃度進(jìn)行定量。首先,將一定體積的樣品溶液加入超濾管(Amicon-Ultra-15,截留分子質(zhì)量為3 ku,Millipore公司)中,5 000g轉(zhuǎn)速下超濾20 min,去除未反應(yīng)的氯鉑酸;隨后,向濃縮好的樣品中加入新鮮配制的王水,使其充分溶解,再加熱趕酸并定容,最后在AAS 上測(cè)量。標(biāo)準(zhǔn)曲線由用氯鉑酸標(biāo)準(zhǔn)溶液配制的一系列不同濃度的標(biāo)樣繪制。樣品來自3 個(gè)不同批次合成的PtNPs,每個(gè)批次的樣品分析3 個(gè)平行樣,測(cè)量結(jié)果取平均值。PtNPs 的粒徑結(jié)合電鏡圖進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。最后,用PtNPs的顆粒半徑(r)、樣品中Pt 的濃度以及Pt 的密度(ρ,21.45 g/cm3),根據(jù)公式(1)計(jì)算出樣品中PtNPs的摩爾濃度。
其中NA是阿伏伽德羅常數(shù)。
取6 ml PtNPs 溶液加入10 ml 玻璃瓶中,玻璃瓶放置在磁力攪拌器上,轉(zhuǎn)速設(shè)置為650 r/min。隨后,向玻璃瓶中加入10 μl 0.2 mol/L 的檸檬酸鈉溶液,提高溶液的穩(wěn)定性,防止PtNPs 發(fā)生團(tuán)聚。接著,在攪拌的條件下將2 ml多肽溶液(或多肽與SH-PEG-SH的混合溶液)逐滴勻速地加入到PtNPs溶液中,室溫下反應(yīng)12 h。反應(yīng)結(jié)束后,將多肽修飾后的PtNPs樣品避光放置于4°C冰箱備用。
將多肽修飾后的PtNPs 溶液加入超濾管(Amicon-Ultra-15, 截留分子質(zhì)量為30 ku,Millipore公司)中,1 500g轉(zhuǎn)速下超濾15 min,收集下清溶液。通過熒光光譜儀來測(cè)量反應(yīng)前和反應(yīng)后游離多肽的熒光強(qiáng)度,以定量多肽嫁接到PtNPs表面的效率。多肽的熒光強(qiáng)度測(cè)量的激發(fā)波長設(shè)置為280 nm,激發(fā)狹縫寬度為5 nm,發(fā)射狹縫寬度為5 nm,發(fā)射譜的波長收集范圍是300~400 nm。同時(shí),采用納米粒度儀表征多肽修飾前后PtNPs水合粒徑的變化。
利用紫外-可見分光光度計(jì)檢測(cè)在鉑抗體及對(duì)照樣品存在條件下,溶菌酶酶解溶壁微球菌導(dǎo)致細(xì)菌吸光度的變化來定量測(cè)定溶菌酶的酶活[21-22]。整個(gè)測(cè)試體系的溫度控制在25℃,溶液環(huán)境是pH=6.2 的0.1 mol/L 磷酸鹽緩沖溶液。為了保證對(duì)溶菌酶活性的抑制效果,鉑抗體與溶菌酶的摩爾濃度比控制在1∶1~1∶3之間,且溶菌酶濃度固定為30 nmol/L,溶壁微球菌的濃度固定為0.13 g/L。在實(shí)驗(yàn)開始前,先將溶菌酶和溶壁微球菌溶液分別置于25℃恒溫水浴中預(yù)孵育1 h。實(shí)驗(yàn)中,取1 ml樣品加入5 ml 離心管中,并在25℃恒溫水浴中孵育3 min,隨后加入0.5 ml 溶菌酶溶液,震蕩混合均勻,1 min 后向其中加入1 ml 溶壁微球菌溶液,快速震蕩混合均勻,30 s后,取1 ml三者混合液加入比色皿中,用紫外-可見分光光度計(jì)測(cè)量其90 s 內(nèi)450 nm 處的吸光度隨時(shí)間的變化,溶菌酶活性以吸光度隨時(shí)間變化曲線的斜率表示。在測(cè)定溶菌酶活性的抑制實(shí)驗(yàn)中,鉑抗體及對(duì)照樣品預(yù)先和溶菌酶溶液混合,再按上述方法測(cè)定溶菌酶活性,并根據(jù)公式(2)計(jì)算出抑制率。
鉑抗體的設(shè)計(jì)思想如圖1 所示。P1 是從cABlys3的CDR3中截取的多肽片段,并在其兩端各添加一個(gè)半胱氨酸,以便通過Pt-S鍵將多肽片段的兩個(gè)末端連接在PtNPs 表面。自由狀態(tài)下的P1 沒有穩(wěn)定的構(gòu)象,因而也就沒有識(shí)別抗原的功能。只有通過構(gòu)象工程在PtNPs 表面重建P1 在原抗體中的天然構(gòu)象后,才可能像原天然抗體cAB-lys3一樣,通過CDR3深插到溶菌酶的活性位點(diǎn)裂縫與溶菌酶特異性結(jié)合,并抑制溶菌酶的活性[23-24]。為了減少鉑抗體對(duì)蛋白質(zhì)的非特異性吸附,根據(jù)前期研究成果[25],還引入SH-PEG-SH來輔助多肽的構(gòu)象工程。另外,和金抗體及銀抗體工作一樣,為了對(duì)比顯示構(gòu)象工程的效果,本文將兩條對(duì)照多肽,P1m和P1s,也分別修飾到PtNPs 表面。其中,P1m 僅僅比P1 少了C 端的半胱氨酸,只能一端錨定在PtNPs 上,因而無法對(duì)其構(gòu)象進(jìn)行精確調(diào)控,P1s具有和P1 相同的氨基酸組成,在兩端都有半胱氨酸,但中間序列則被完全打亂,P1s被用來作為和溶菌酶非特異性相互作用的對(duì)照多肽。如果構(gòu)象工程可以在PtNPs 上實(shí)現(xiàn),則PtNPs 和多肽的復(fù)合物(PtNP-Pep)對(duì)溶菌酶酶活的抑制率的順序應(yīng)該為:PtNP-P1>PtNP-P1m>PtNP-P1s。
Fig. 1 Scheme of the design of the anti-HEWL Platinumbody
采用透射電子顯微鏡(TEM)對(duì)PtNPs進(jìn)行了形貌表征。由圖2a可見,PtNPs保持著良好的分散性,粒徑也較為均一。對(duì)TEM 圖的PtNPs 粒徑進(jìn)行統(tǒng)計(jì)(圖2b),得到PtNPs 平均粒徑約為2.5 nm。
利用AAS 對(duì)合成的PtNPs 樣品的濃度進(jìn)行定量。如表1所示,樣品批次間的平行性良好,說明合成和純化方法重復(fù)性好。取不同批次的平均值23.77 mg/L作為樣品中PtNPs的含量。結(jié)合TEM測(cè)量的PtNPs粒徑約為2.5 nm,根據(jù)公式(1),計(jì)算得到合成出來的PtNPs濃度為225 nmol/L。
Table 1 Pt contents of the PtNP solutions determined by AAS
經(jīng)不同多肽修飾后的PtNPs依然保持著良好的分散性,粒徑也較為均一(圖3)。同時(shí),為了定性表征多肽成功修飾在PtNPs表面,采用納米粒度儀對(duì)多肽修飾前后PtNPs 水合粒徑的變化進(jìn)行測(cè)定。如圖4 所示,經(jīng)多肽修飾的PtNPs 相較于未被修飾的PtNPs粒徑發(fā)生了明顯地增大。水合粒徑的增大證明了多肽已成功地修飾在PtNPs表面。
Fig. 3 TEM images of PtNP-peptide conjugates
Fig. 4 Sizes of PtNPs and PtNP-peptide conjugates in water characterized by dynamic light scattering(DLS)
為了定量多肽連接到PtNPs上的效率,本文通過超濾的方法,用熒光光譜儀測(cè)定了反應(yīng)前總的多肽和反應(yīng)后游離多肽的熒光強(qiáng)度。當(dāng)PtNPs濃度為225 nmol/L,多肽與PtNPs 的摩爾投料比為60∶1時(shí),反應(yīng)后的游離多肽與投入多肽的熒光強(qiáng)度相比極弱(圖5)。這一結(jié)果表明,在此條件下溶液中幾乎不含游離的多肽,也就是說幾乎100%的多肽已修飾到PtNPs表面。
金抗體和銀抗體的研究都表明,優(yōu)化NPs表面的多肽密度可以更好地調(diào)控多肽構(gòu)象。優(yōu)化多肽密度有兩方面的作用。一方面,合適的多肽密度可以對(duì)多肽在NPs表面的移動(dòng)加以必要的限制;另一方面,覆蓋NPs表面,以避免NPs普遍存在的對(duì)蛋白質(zhì)的非特異性吸附。參考前期金抗體和銀抗體的結(jié)果,首先在2.5 nm 的PtNPs 表面連接了60 條多肽(簡(jiǎn)寫為PtNP-60P1,其他依此類推),對(duì)它的抗溶菌酶活性進(jìn)行了測(cè)定。圖6所示的溶菌酶測(cè)活結(jié)果表明,30 nmol/L 的PtNP-60P1 可以顯著地抑制溶菌酶的活性,但30 nmol/L 的PtNP-60P1s 也具有較強(qiáng)抑制能力,表明PtNP-60P1s 存在明顯的非特異性相互作用。由于抑制劑對(duì)酶的抑制率隨濃度的增加存在飽和效應(yīng),30 nmol/L 已經(jīng)超過PtNP-60P1和PtNP-60P1m 的最大抑制濃度,因此它們之間的差距被掩蓋。為了展示PtNP-60P1 和PtNP-60P1m抑制能力的差別,又檢測(cè)了15 nmol/L 時(shí)兩者對(duì)溶菌酶活力的抑制能力。結(jié)果顯示,當(dāng)濃度降低到15 nmol/L后,PtNP-60P1對(duì)溶菌酶的抑制能力要顯著強(qiáng)于PtNP-60P1m,初步顯示出了構(gòu)象工程的效果(圖6)。盡管PtNP-P1m不能控制多肽構(gòu)象,但P1m 本身具有微弱的活性,而且由于每個(gè)PtNPP1m 上有60 條多肽,多價(jià)效應(yīng)能夠顯著增強(qiáng)P1m的活性,使得PtNP-P1m 也表現(xiàn)出略高于PtNP-P1s的抑制能力,但差別沒有統(tǒng)計(jì)顯著性。
Fig. 5 Conjugation efficiency shown by the fluorescence spectra of the total peptides (dotted black lines) before conjugation onto PtNPs and the free peptides (red lines) after conjugation
Fig. 6 Inhibition of the enzymatic activity of lysozyme by the PtNP-peptide conjugates with different concentrations
圖6 的抑制酶活結(jié)果符合預(yù)期的PtNP-P1>PtNP-P1m>PtNP-P1s順序,初步顯示了構(gòu)象工程的成功。但PtNP-P1s 顯示出比前期AuNP-P1s 和AgNP-P1s 更強(qiáng)的非特異性吸附能力[6,14]。而且,和AuNP-P1s 非特異性隨著P1s 密度的增加而下降的趨勢(shì)不同[6],即使增加P1s 在PtNPs 上的密度并不能降低PtNP-P1s 對(duì)溶菌酶的非特異性吸附(圖7),這種區(qū)別可能是NPs 的粒徑不同造成的[26-27]。PtNP-Pep中的PtNPs粒徑只有2.5 nm,比先前金抗體中的AuNPs (3.6 nm) 和銀抗體中的AgNPs(5 nm)粒徑更小,更容易進(jìn)入溶菌酶的活性裂縫處。同時(shí)雖然P1s 序列已被打亂,但P1s 能與溶菌酶活性位點(diǎn)結(jié)合的3 個(gè)關(guān)鍵疏水殘基Tyr(對(duì)應(yīng)于原天然抗體中的Y99、Y100b、Y100c)依然存在,這樣同一PtNPs 上的多個(gè)P1s 多肽上的疏水殘基可能同時(shí)與溶菌酶相互作用而產(chǎn)生較強(qiáng)的“非特異性”結(jié)合。
Fig. 7 Inhibition of the enzymatic activity of lysozyme by the PtNP-xP1s conjugates with various peptide densities on the surface of PtNPs
研究顯示,在NPs 上嫁接雙頭巰基的PEG 可以輔助多肽在NPs表面的構(gòu)象工程,大大減少多肽的用量[25];同時(shí),PEG 是FDA 批準(zhǔn)的安全聚合物,且容易功能化在NPs表面,對(duì)NPs表面進(jìn)行空間屏蔽,能有效地減少NPs 對(duì)蛋白質(zhì)的吸附[28-29]。因此,本工作隨即在PtNPs表面修飾了一定數(shù)量的雙頭巰基PEG??紤]到PEG 鏈的柔性,為避免過長的PEG 鏈覆蓋在多肽表面,從而降低P1 對(duì)溶菌酶的特異性吸附,本文選擇了分子質(zhì)量為1 ku的短鏈雙頭巰基PEG。從圖8a 可見,當(dāng)每個(gè)粒子上的P1s多肽數(shù)量降低并固定在20個(gè)時(shí),隨著PEG個(gè)數(shù)的增加,PtNP-P1s對(duì)溶菌酶活性的抑制率下降,表明與溶菌酶的非特異性結(jié)合減少。當(dāng)PEG 個(gè)數(shù)為10 時(shí),PtNP-P1s 對(duì)溶菌酶的非特異性吸附已顯著減弱,繼續(xù)增加PEG 數(shù)量雖然可以進(jìn)一步減少非特異性吸附,但減弱程度變小并逐漸趨于穩(wěn)定。因?yàn)楹罄m(xù)還需要在粒子上修飾多肽P1,所以選定PtNPs表面修飾PEG的個(gè)數(shù)為10。
為了進(jìn)一步優(yōu)化多肽密度,實(shí)驗(yàn)中固定PtNPs上PEG數(shù)為10,同時(shí)固定P1數(shù)量為20,然后通過添加不同數(shù)量的P1s,分析粒子對(duì)溶菌酶活性的影響。這樣設(shè)計(jì)主要是為了保持具有較強(qiáng)的特異性吸附的P1數(shù)量不變,用弱吸附的P1s來調(diào)控密度,以盡量減少多價(jià)效應(yīng)對(duì)結(jié)果判斷的影響。由圖8b 可見,在固定10PEG 和20P1 的條件下,在PtNPs 表面再嫁接10個(gè)P1s對(duì)溶菌酶活性的抑制明顯優(yōu)于其他數(shù)量的P1s?;谏鲜鰧?shí)驗(yàn)結(jié)果,最終選定PtNPs 表面的最佳功能基團(tuán)密度為每個(gè)PtNP(2.5 nm)上連接10 條PEG 和30 條多肽,而PtNP-10PEG-30P1 即為本工作優(yōu)化得到的抗溶菌酶鉑抗體。
Fig. 8 Reducing non-specific interaction by PEG and optimizing specific interaction by adjusting the density of P1 on PtNPs
圖9 顯示了30 nmol/L 的鉑抗體對(duì)30 nmol/L 溶菌酶活性抑制的結(jié)果,可見鉑抗體對(duì)溶菌酶的抑制能力顯著高于作為對(duì)照的PtNP-10PEG-30P1m 和PtNP-10PEG-30P1s。特別需要指出的是,相比圖6中的PtNP-60P1,鉑抗體中P1數(shù)量減少了一半,因而多價(jià)性效應(yīng)的作用已大大減少,同時(shí)PEG 的引入也降低了鉑抗體對(duì)溶菌酶的非特異性吸附。因此圖9顯示的鉑抗體對(duì)溶菌酶活性的顯著抑制能力很好地證明了在PtNPs上構(gòu)象工程的成功。但與金抗體和銀抗體相比,在PtNPs上進(jìn)行構(gòu)象工程難度較大,這也是預(yù)料之中的結(jié)果。以金抗體為代表的通過在AuNPs 上重構(gòu)天然蛋白質(zhì)片段的天然構(gòu)象來制備人工抗體之所以能夠成功,首先是因?yàn)檫@些片段有形成其天然構(gòu)象的傾向性,其背后的理論基礎(chǔ)是蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的“限域下最低能量片段”理論[30-31]。其次還要求NPs表面的原子像金、銀、鉑一樣具有一定的流動(dòng)性,使得通過調(diào)整多肽兩端在NPs上的跨度調(diào)控多肽的構(gòu)象成為可能[6,13]。金屬的熔點(diǎn)大致反映了NPs位于晶格最外層的原子的活潑性。鉑的熔點(diǎn)高于金和銀,因而PtNPs表面的鉑原子要比AuNPs 表面的金原子和AgNPs 表面的銀原子更穩(wěn)定[32-33],這意味著Pt-S 鍵的流動(dòng)性比Au-S 鍵和Ag-S 鍵弱,因此PtNPs 的表面構(gòu)象工程比AuNPs 及AgNPs 的難度更大。在金、銀、鉑3種NPs中,AgNPs穩(wěn)定性最差,雖然有利于多肽進(jìn)行構(gòu)象調(diào)控,但AgNPs 在含Cl-等溶液環(huán)境中可以溶解,這就對(duì)銀抗體的儲(chǔ)存和使用環(huán)境提出了一定要求,而PtNPs因?yàn)楦€(wěn)定,因而進(jìn)行構(gòu)象工程難度更大,但一旦在PtNPs構(gòu)象工程成功,制備的鉑抗體便具有極好的穩(wěn)定性。除了這3 種貴金屬外,許多金屬,包括非貴金屬都可以制備成NPs。在沒有進(jìn)行共價(jià)修飾之前,這些NPs表面的金屬原子處于高能態(tài)并都具有一定的流動(dòng)性,因而都可能作為進(jìn)行構(gòu)象工程的“骨架”。但另一方面,部分金屬NPs 表面常常容易被氧化,表面被氧化后的金屬NPs 可能失去了流動(dòng)性,也就不再適合進(jìn)行構(gòu)象工程。
本文通過分子構(gòu)象工程技術(shù),在PtNPs表面成功地實(shí)現(xiàn)了對(duì)柔性多肽構(gòu)象的控制,制備出了一種全新的抗溶菌酶人工抗體——鉑抗體。該鉑抗體可以特異性結(jié)合溶菌酶并顯著抑制其酶活。該工作拓展了分子構(gòu)象工程方法的適用范圍,證明了分子構(gòu)象工程方法的普適性,也為基于NPs的天然蛋白質(zhì)模擬和具有靶向功能的藥物載體的開發(fā)提供了一種全新思路。而蛋白質(zhì)片段在NPs上的重新折疊,以及僅依靠NPs和一小段蛋白質(zhì)片段就能重現(xiàn)天然蛋白質(zhì)的功能,也為闡明蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)-功能機(jī)制帶來新的啟示。