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        灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36基因克隆及功能研究

        2023-11-23 09:11:36楊敏龍雨青曾娟曾梅周新茹王玲付學(xué)森周日寶3劉湘丹
        生物技術(shù)通報 2023年10期
        關(guān)鍵詞:糖基化皂苷花期

        楊敏 龍雨青 曾娟 曾梅 周新茹 王玲 付學(xué)森 周日寶,2,3劉湘丹,2,3

        (1. 湖南中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,長沙 410208;2. 湘產(chǎn)大宗道地藥材種質(zhì)資源及規(guī)范化種植重點研究室,長沙 410208;3 湖南省普通高等學(xué)校中藥現(xiàn)代化研究重點實驗室,長沙 410208)

        灰氈毛忍冬Lonicera macranthoides Hand.?Mazz.為中藥材山銀花的主要來源品種之一[1],主要以干燥花蕾或者初開的花入藥,具有疏散風熱、清熱解毒之功效,用于風熱感冒、癰腫疔瘡、溫病發(fā)熱、熱毒血痢等癥狀[2]。灰氈毛忍冬多被應(yīng)用于醫(yī)藥、園藝、化妝品[3]等行業(yè),還可以作為抗氧化劑的提取來源[4],具有巨大的藥用、經(jīng)濟及生態(tài)價值。

        皂苷類為灰氈毛忍冬中重要化學(xué)成分之一,主要包括灰氈毛忍冬皂苷乙、川續(xù)斷皂苷乙、灰氈毛忍冬皂苷甲[5],現(xiàn)代藥理研究表明,該類成分具有保肝、抗癌、抗氧化、抗補體活性等作用[6-10]?;覛置潭碥諏儆邶R墩果烷型五環(huán)三萜類化合物,其生物合成途徑包括上游前體物質(zhì)3?異戊二烯焦磷酸(IPP)和二甲基烯丙基焦磷酸(DMAPP)合成,中游氧化鯊烯環(huán)化酶(OSCs)催化的碳環(huán)骨架的合成,下游細胞色素P450酶(CYP450s)氧化和糖基化反應(yīng)生成各種植物三萜皂苷[11-12]。糖基轉(zhuǎn)移酶(GTs)是能夠催化糖基化反應(yīng)的一大類酶,在生物體內(nèi)以超基因家族的形式存在,其能使糖基和天然產(chǎn)物之間形成特定的糖苷鍵來合成糖苷類化合物,根據(jù)已收集的碳水化合物活性酶數(shù)據(jù)庫(CAZy,http://www.cazy.org/)及GTs氨基酸序列,將GTs分為114個家族[13],目前發(fā)現(xiàn)的催化植物天然產(chǎn)物糖基化的酶常以尿苷二磷酸-糖為糖基供體,被稱為尿苷二磷酸依賴的糖基轉(zhuǎn)移酶(UGTs)[14]。在山芥[15]、姜狀三七[16]、甘草[17]、大豆[18]、苜蓿[19]等植物中已經(jīng)分離出參與齊墩果烷型五環(huán)三萜皂苷生物合成途徑的關(guān)鍵糖基轉(zhuǎn)移酶基因,目前未見灰氈毛忍冬皂苷相關(guān)糖基轉(zhuǎn)移酶報道。

        相關(guān)研究表明灰氈毛忍冬不同部位皂苷含量存在較大差異,花蕾的皂苷含量較高,較葉和莖中的皂苷含量高出幾個數(shù)量級[5],且課題組前期研究發(fā)現(xiàn)灰氈毛忍冬花蕾不同發(fā)育階段皂苷含量存在差異。基于此,項目組對灰氈毛忍冬進行轉(zhuǎn)錄組測序分析,進一步從轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中篩選到2個差異顯著的皂苷合成關(guān)鍵酶UGTs基因(UGTPg17、UGTPg36),其編號為DN53278_c0_g1(log2 Ratio:8.023 762 531)及DN45149_c0_g2(log2 Ratio:8.888 548 674)。利用RT?PCR克隆得到2個UGTs基因并對其編碼蛋白進行特征解析,采用實時熒光定量PCR分析基因在不同花期表達模式,HPLC法測定各個花期皂苷含量,并對表達量和皂苷含量進行相關(guān)性分析以探索UGTPg17及UGTPg36基因功能。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        灰氈毛忍冬樣品采于湖南省隆回縣,經(jīng)湖南中醫(yī)藥大學(xué)周日寶教授鑒定為灰氈毛忍冬(Lonicera macranthoides Hand.?Mazz.)樣品,根據(jù)課題組前期分期依據(jù),將灰氈毛忍冬分為7個不同花期[20],即花蕾初期(花期1)、青綠色花期(花期2)、綠白色花蕾期(花期3)、白色花蕾期(花期4)、白色開花期(花期5)、金黃色開花期(花期6)、枯萎期(花期7),其中花期4、花期5為藥典規(guī)定山銀花樣品(圖1)[21]。部分樣品用密封袋裝好,液氮速凍后保存于?80℃冰箱,用于提取RNA。部分樣品烘干后儲存,用于皂苷含量測定。

        圖1 灰氈毛忍冬不同花期樣品Fig. 1 Flower samples at different flowering stages of L. macranthoides

        灰氈毛忍冬皂苷乙對照品(17021504,純度≥97%,成都普菲德生物技術(shù)有限公司),灰氈毛忍冬皂苷甲對照品(18120403,純度≥98%,成都普菲德生物技術(shù)有限公司),川續(xù)斷皂苷乙對照品(20072004,純度≥99%,成都普菲德生物技術(shù)有限公司)。本實驗所用其他試劑見表1,基因克隆、熒光定量PCR等引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,濃度均稀釋至10 μmol/L,具體引物序列見表2。

        表1 實驗試劑Table 1 Reagents for experiment

        表2 引物序列Table 2 Primer sequences

        1.2 方法

        1.2.1 灰氈毛忍冬各組織總RNA提取及cDNA的獲得 分別取灰氈毛忍冬各花期樣品適量,于研缽中加液氮研磨充分,利用多糖多酚試劑盒法(BiospinPlant Total RNA Extraction Kit)分別提取各花期總RNA,用1.5%瓊脂糖凝膠電泳和核酸蛋白分析儀檢測RNA的完整性和純度。選取高質(zhì)量的RNA,按照RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit(美國賽默飛)說明書,逆轉(zhuǎn)錄合成灰氈毛忍冬各花期cDNA。

        1.2.2 UGTPg17、UGTPg36基因引物設(shè)計 根據(jù)灰氈毛忍冬花、葉轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)Unigene序列,通過NCBI比對確定ORF區(qū)域,根據(jù)ORF序列設(shè)計特異性克隆引物(表2)。

        1.2.3 目的片段的克隆、回收及測序 以逆轉(zhuǎn)錄得到的cDNA為模板進行PCR擴增。采用25 μL PCR反應(yīng)體系包括:2×Pfu MasterMix(Dye)12.5 μL,ddH2O 9.5 μL,UGTPg17?F 1 μL,UGTPg17?R 1 μL,cDNA 1 μL。PCR擴增條件為:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性30 s,55℃退火30 s,72℃延伸1.5 min,循環(huán)反應(yīng)40次;最后72℃延伸10 min。用1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,目的條帶經(jīng)膠回收試劑盒回收純化(北京擎科),回收產(chǎn)物連接pEASY??T1 Cloning Vector克隆載體后轉(zhuǎn)化TreliefTM5α感受態(tài)細胞,涂布于含有Amp,IPTG,X?gal的固體培養(yǎng)基進行藍白斑篩選,挑選白色菌落進行PCR鑒定后選取陽性克隆過夜培養(yǎng),次日送至上海生工生物工程股份有限公司測序。

        1.2.4 UGTPg17、UGTPg36生物信息學(xué)分析 通過在線軟件(表3)對UGTPg17、UGTPg36蛋白進行生物信息學(xué)分析;將氨基酸序列上傳NCBI數(shù)據(jù)庫中進行Blastp比對,篩選出同源性相對較高的物種,導(dǎo)入DNAMAN軟件進行氨基酸多重序列比對分析;利用MEGA 7.0以鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)進化樹。

        表3 生物信息學(xué)分析網(wǎng)站Table 3 Websites on bioinformatics analysis

        1.2.5 UGTPg17、UGTPg36基因不同花期表達量分析 根據(jù)灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36基因序列,設(shè)計適用于熒光定量PCR的特異性引物(表2)。以18S基因為內(nèi)參[22],設(shè)計引物18S?F和18S?R。將提取的灰氈毛忍冬各花期的總RNA定量至相同濃度(約90 ng/μL),逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,采用Bio?Rad CFX96進行熒光定量分析。反應(yīng)體系20 μL:上、下游引物各0.4 μL,cDNA 1 μL,2×TransStart?Green qPCR SuperMix UDG 10 μL,超純水8.2 μL。擴增程序(全式金兩步法)為50℃ 2 min,94℃預(yù)變性10min;94℃變性5 s,55℃退火15 s,40個循環(huán)。每個樣品3次生物學(xué)重復(fù),反應(yīng)完成后以2-ΔΔCt法計算基因的相對表達量。

        1.2.6 灰氈毛忍冬皂苷含量測定

        1.2.6.1 對照品溶液制備 精密稱取灰氈毛忍冬皂苷甲、灰氈毛忍冬皂苷乙、川續(xù)斷皂苷乙對照品適量,用70%甲醇溶解制得濃度為0.1 mg/mL的對照品溶液,經(jīng)0.45 μm微孔濾膜過濾,密封,制得對照品溶液,在“1.2.6.3”項色譜條件下進樣檢測。

        1.2.6.2 供試品溶液制備 分別取過60目篩的灰氈毛忍冬不同花期樣品約0.1 g,精密稱定,分別置于50 mL具塞錐形瓶中,加入70%甲醇溶液10 mL,稱量,超聲提取30 min后取出冷卻至室溫,補足失重,離心,取上清液經(jīng)0.45 μm濾膜過濾,制得樣品溶液,在“1.2.6.3”項色譜條件下每個樣品重復(fù)進樣3次。

        1.2.6.3 色譜條件 采用Agilent Technologies 1260 Infinity液相儀,ZORBAX Eclipse Plus C18色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),流動相為乙腈(A),0.4%磷酸水(B),進行梯度洗脫(0-15 min,90%B;15-17 min,90%-88% B;17-20 min,88%-84.6% B;20?22 min,84.6%-78.6% B;22-34 min,78.6%-78.2% B;34-40 min,78.2%-70% B)流速1.0 mL/min,進樣量10 μL,檢測波長210 nm,柱溫30℃[23]。

        1.2.7 灰氈毛忍冬UGT基因表達量與皂苷含量相關(guān)性分析 分別將灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36基因表達量與皂苷含量峰面積導(dǎo)入SPSS 23數(shù)據(jù)統(tǒng)計軟件,對兩者進行Pear?son相關(guān)性分析。

        2 結(jié)果

        2.1 總RNA提取

        灰氈毛忍冬不同花期的總RNA瓊脂糖凝膠電泳見圖2,可見28S和18S條帶明顯,說明RNA完整性較好,A260/A280值在1.8-2.0,A260/A230值大于2.0,RNA質(zhì)量符合后續(xù)實驗要求。

        圖2 灰氈毛忍冬各花期總RNA提取Fig. 2 Extraction of total RNA from the L macranthoides in different flowering stages

        2.2 UGTPg17、UGTPg36基因的克隆

        RT?PCR擴增后進行瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果見圖3,分別在約1 400 bp、1 450 bp處有1條清晰條帶,條帶長度符合UGTPg17、UGTPg36基因編碼區(qū)開放閱讀框大小,故推測成功擴增相關(guān)目的基因。通過DNAMAN比對,測序所得的序列與Unigene模板序列匹配。

        圖3 灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36 PCR產(chǎn)物Fig. 3 PCR product of UGTPg17 and UGTPg36 gene cloned from L. macranthoides

        2.3 UGTPg17、UGTPg36生物信息學(xué)分析

        2.3.1 UGTPg17、UGTPg36基因序列分析 根據(jù)NCBI與轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)比對結(jié)果,將獲得的灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36基因進行命名并將序列上傳至NCBI數(shù)據(jù)庫,獲得基因登錄號為Lm?UGTPg17(GenBank:OP326755),Lm?UGTPg36(GenBank:OP331224)。Lm?UGTPg17,Lm?UGTPg36基因ORF全長分別為1 410 bp、1 428 bp,分別編碼469、475個氨基酸。

        2.3.2 UGTPg17、UGTPg36蛋白理化性質(zhì) 利用ExPASy Protparam在線分析軟件預(yù)測蛋白基本理化性質(zhì),推測灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36相對分子質(zhì)量分別為52.66 kD,53.47 kD;蛋白分子式分別為C2393H3692N622O688S15、C2400H3720N684O687S10。LmUGTPg17、LmUGTPg36蛋白不穩(wěn)定系數(shù)>40,推測其均屬于不穩(wěn)定蛋白。NetOGly 4.0分析推測LmUGTPg17、LmUGTPg36蛋白分別包含4個、7個糖基化位點。ProtScale在線預(yù)測蛋白親/疏水性,結(jié)果顯示LmUGTPg17、LmUGTPg36蛋白平均疏水指數(shù)(GRAVY)分別為?0.161、?0.244(負值),推測LmUGTPg17、LmUGTPg36蛋白為親水性蛋白。通過在線軟件WOLF PSORT進行亞細胞定位預(yù)測,結(jié)果表明LmUGTPg17蛋白定位于葉綠體(chloroplast)中定位系數(shù)為6,LmUGTPg36蛋白定位于細胞核(nucleus)中定位系數(shù)為7。Signal P 4.1 Server 軟件預(yù)測可知LmUGTPg17蛋白平均S值>0.5,推測其可能含有信號肽,LmUGTPg36蛋白平均S值<0.5,推測其不存在含信號肽序列。運用在線軟件TMHMM2.0分析LmUGTPg17、LmUGTPg36編碼蛋白跨膜結(jié)構(gòu)表明,兩者均不具跨膜區(qū)域且均在膜外。

        2.3.3 UGTPg17、UGTPg36蛋白結(jié)構(gòu)域和二、三級結(jié)構(gòu)預(yù)測 通過NCBI網(wǎng)站CD?Search在線工具分析灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)域,結(jié)果如圖4。LmUGTPg17、LmUGTPg36蛋白均屬于Glycosyltransferase_GTB?type、Yjic超基因家族成員,均包含GT1_Gtf?like特殊結(jié)構(gòu)域。

        圖4 LmUGTPg17(A)、LmUGTPg36(B)蛋白結(jié)構(gòu)域預(yù)測Fig. 4 Domain prediction of LmUGTPg17(A)and LmUGTPg36(B)proteins

        通過SOPMA在線預(yù)測灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36蛋白二級結(jié)構(gòu),結(jié)果如圖5,LmUGTPg17、LmUGTPg36蛋白中α螺旋(alpha helix)分別占34.62%和42.53%,無規(guī)則卷曲(random coil)分別占44.87%和38.32%,β轉(zhuǎn)角(beta turn)分別占6.41%和5.26%,延伸鏈(extended strand)分別占14.10%和13.89%。無規(guī)則卷曲和α螺旋為灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36編碼蛋白二級結(jié)構(gòu)的主要結(jié)構(gòu)組成元件。通過SWISS?MODEL軟件,在線預(yù)測得到灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36蛋白三級結(jié)構(gòu),結(jié)果見圖6。

        圖5 LmUGTPg17(A)、LmUGTPg36(B)蛋白二級結(jié)構(gòu)Fig. 5 Secondary structure of LmUGTPg17(A)and LmUGTPg36(B)proteins

        圖6 LmUGTPg17(A)、LmUGTPg36(B)蛋白三級結(jié)構(gòu)預(yù)測Fig. 6 Prediction of tertiary structure of LmUGTPg17(A)and LmUGTPg36(B)protein

        2.3.4 UGTPg17、UGTPg36氨基酸序列同源性比對和系統(tǒng)進化樹分析 利用NCBI中的BlastP對LmUGTPg17、LmUGTPg36氨基酸序列進行比對,下載同源性較高的幾個物種的氨基酸序列。UGTPg17蛋白與人參Panax ginseng、伊德斯種咖啡Coffea eugenioides、萵苣Lactuca sativa、茶Camellia sinensis、向日葵Helianthus annuus、小飛蓬Erigeron canadensis、紫花風鈴木Handroanthus impetiginosus、黃花蒿Artemisia annua、獨腳金Striga asiatica、獨腳金屬雜草Striga hermonthica等同源性達59.21%-67.89%。運用DNAMAN進行多序列比對,顯示LmUGTPg17與其他物種UGTPg17氨基酸序列總相似度達69.96%,比對結(jié)果如圖7。UGTPg36蛋白與山梨獼猴桃Actinidia rufa、人參Panax ginseng、紫花風鈴木Handroanthus impetiginosus等同源性達59.74%-60.59%。運用DNAMAN進行多序列比對,顯示LmUGTPg36與其他物種UGTPg36氨基酸序列總相似度達71.31%,比對結(jié)果如圖8。

        圖7 LmUGTPg17蛋白與多種植物UGT蛋白序列比對Fig. 7 Multiple sequences alignment of LmUGTPg17 with UGT protein of other plants

        圖8 LmUGTPg36蛋白與多種植物UGT蛋白序列比對Fig. 8 Multiple sequences alignment of LmUGTPg36 with UGT protein of other plants

        利用MEGA7.0.21構(gòu)建NJ進化樹,灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36蛋白與其他植物UGT蛋白系統(tǒng)進化樹見圖9,系統(tǒng)進化樹聚為兩大分支,灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36均與人參Panax ginseng同源性最高。

        圖9 LmUGTPg17、LmUGTPg36蛋白與多種植物UGT家族蛋白系統(tǒng)進化樹Fig. 9 Phylogenetic tree of LmUGTPg17 and LmUGTPg36 with UGT protein from other plants

        2.4 UGTPg17、UGTPg36基因在不同花期特異性表達

        用RT?qPCR檢測UGTPg17、UGTPg36基因在灰氈毛忍冬不同花期中表達情況(圖10),結(jié)果表明兩個基因在7個花期中均有表達且趨勢相似,在前3個花期中表達量相對低,在后4個花期中表達量較高,UGTPg17基因在后4個花期的表達量均較UGTPg36基因表達量高出2倍以上。

        圖10 LmUGTPg17(A)、LmUGTPg36(B)基因在不同花期中表達模式Fig. 10 Expression patterns of LmUGTPg17(A)and LmUGTPg36(B)in different flowering stages of L. macranthoides

        2.5 灰氈毛忍冬皂苷含量測定

        對灰氈毛忍冬不同花期灰氈毛忍冬皂苷乙、川續(xù)斷皂苷乙、灰氈毛忍冬皂苷甲進行含量測定,色譜圖中3種皂苷色譜峰與其他色譜峰分離度良好(圖11)。灰氈毛忍冬不同花期皂苷含量變化趨勢見圖12,灰氈毛忍冬中皂苷類成分以灰氈毛忍冬皂苷乙為主,不同花期中3種皂苷含量高低順序為:灰氈毛忍冬皂苷乙>川續(xù)斷皂苷乙>灰氈毛忍冬皂苷甲,各花期間總皂苷含量差異較小,整體表現(xiàn)為前3個花期總皂苷含量相對較高,后4個花期總皂苷含量相對較低。

        圖11 對照品溶液(A)和灰氈毛忍冬樣品溶液(B)的 HPLC圖譜Fig. 11 HPLC profiles of reference substance(A)and L. macranthoides sample solution(B)

        圖12 灰氈毛忍冬不同花期皂苷含量趨勢Fig. 12 Trend of saponins at different flowering stages of L. macranthoides

        2.6 灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36基因表達量與不同花期總皂苷含量相關(guān)性分析

        灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36基因表達量與不同花期皂苷含量做相關(guān)性分析(表4),UGTPg17、UGTPg36基因表達量與灰氈毛忍冬皂苷乙、總皂苷含量呈極顯著負相關(guān),與灰氈毛忍冬皂苷甲、川續(xù)斷皂苷乙含量呈負相關(guān),即基因表達量增加時皂苷含量下降,基因表達量減少時皂苷含量增加。

        表4 灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36基因表達量與皂苷含量相關(guān)性法分析Table 4 Correlation analysis between the gene expression of UGTPg17 and UGTPg36 and the content of saponins of L. macranthoides

        3 討論

        皂苷類化合物是許多藥用植物的藥效成分,隨著皂苷類化合物在醫(yī)藥、食品、化妝品等行業(yè)的廣泛使用,其生物合成途徑也在不斷進行研究,參與皂苷生物合成的關(guān)鍵酶包括氧化鯊烯環(huán)化酶(OSCs)、細胞色素P450(CYP450s)及糖基轉(zhuǎn)移酶(UGTs),其中UGTs催化的糖基化反應(yīng)通常被認為是皂苷生物合成的最后一步,是皂苷多樣性和生物活性形成的關(guān)鍵環(huán)節(jié)[24-25],因此對UGTs基因的研究在探索灰氈毛忍冬皂苷生物合成途徑中具有重要意義。

        UGTPg基因主要歸屬于UGT71、UGT74、UGT94家族,在人參皂苷生物合成途徑研究中較為廣泛,例如從人參中克隆得到的UGTPg45具有糖基化原人參二醇C3?OH的作用,UGTPg1能夠糖基化C20?OH[24];后續(xù)在人參中分離出的UGTPg100和UGTPg101,前者可催化原人參三醇的C6?OH糖基化生成人參皂苷Rh1,后者可催化原人參三醇的C20?OH糖基化生成人參皂苷F1,再進一步催化C6?OH糖基化生成人參皂苷Rg1[25]。在對催化糖鏈延長的UGTs的研究中發(fā)現(xiàn),UGTPg29具有延長C3?糖鏈的作用[24];UGTPg71A29能夠延長人參皂苷Rd的C20?糖鏈[26];PgUGT94Q15能夠延長人參皂苷Rh2的C3?糖鏈生成Rg3以及延長人參皂苷F2C3?糖鏈生成Rd,PgUGT94Q15?V1延長金盞花苷E(calenduloside E)的C3?糖鏈生成姜狀三七皂苷R1(zingibroside R1),且這兩個基因均能延長3?O-β-Glc齊墩果酸(3GOA)的C3?糖鏈生成3?O?[β-D?吡喃葡萄糖?(1→2)-β-D?吡喃葡萄糖]?齊墩果酸[27]。為進一步研究UGTPg17、UGTPg36基因在灰氈毛忍冬皂苷生物合成途徑中的作用,通過NCBI下載山芥、苜蓿、姜狀三七、竹節(jié)參中已報道的參與齊墩果烷型五環(huán)三萜類化合物糖基化作用的糖基轉(zhuǎn)移酶基因,與本研究克隆所得Lm?UGTPg17、Lm?UGTPg36基因進行比對,發(fā)現(xiàn)灰氈毛忍冬中UGTPg17、UGTPg36基因與已報道的17條UGTs基因總同源性為61.43%,表明本研究克隆所得基因可能參與灰氈毛忍冬皂苷生物合成途徑,發(fā)揮類似的糖基化作用。

        在植物中皂苷生物合成為多基因及多物質(zhì)共同調(diào)控的結(jié)果,本實驗結(jié)果為探索Lm?UGTPg17、Lm?UGTPg36基因在灰氈毛忍冬皂苷合成途徑中的具體功能奠定研究基礎(chǔ),后續(xù)將通過轉(zhuǎn)基因技術(shù),將克隆所得Lm?UGTPg17、Lm?UGTPg36基因分別轉(zhuǎn)化至灰氈毛忍冬愈傷組織中,培養(yǎng)鑒定得到陽性轉(zhuǎn)化植株,對轉(zhuǎn)基因愈傷組織進行HPLC?MS檢測,分析Lm?UGTPg17、Lm?UGTPg36基因在灰氈毛忍冬皂苷生物合成途徑具體功能。

        4 結(jié)論

        本研究成功克隆得到灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36基因,其編碼蛋白LmUGTPg17包含4個糖基化位點,LmUGTPg36包含7個糖基化位點,均屬于不穩(wěn)定、親水性蛋白,不具跨膜區(qū)域;UGTPg36蛋白不存在信號肽序列,UGTPg17蛋白可能含有信號肽;進化樹分析發(fā)現(xiàn)灰氈毛忍冬UGTPg17、UGTPg36蛋白均與人參親緣關(guān)系最近。通過分析不同花期基因表達量與皂苷含相關(guān)性得出,Lm?UGTPg17、Lm?UGTPg36基因與灰氈毛忍冬總皂苷含量呈極顯著負相關(guān),推測2個UGTs基因均與灰氈毛忍冬皂苷合成密切相關(guān)。

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