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        產(chǎn)γ-氨基丁酸乳酸菌的發(fā)酵條件優(yōu)化

        2023-02-17 11:41:34林楊李雪楚敏唐琦勇顧美英譚慧林孫建張志東
        食品研究與開發(fā) 2023年4期
        關(guān)鍵詞:酵母粉氮源菌體

        林楊,李雪,楚敏,唐琦勇,顧美英,譚慧林,孫建*,張志東*

        (1.新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院微生物應(yīng)用研究所/新疆特殊環(huán)境微生物實(shí)驗(yàn)室,新疆 烏魯木齊 830091;2.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與藥學(xué)學(xué)院,新疆 烏魯木齊 830052)

        γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)是動(dòng)物體中樞神經(jīng)系統(tǒng)中重要的抑制性神經(jīng)遞質(zhì),由谷氨酸脫羧酶(glutamic acid decarboxylase,GAD)催化谷氨酸(glutamic acid,L-Glu)或其鈉鹽脫羧而成[1],具有鎮(zhèn)靜安神、抗焦慮、調(diào)節(jié)血壓、改善睡眠[2]、治療糖尿病及改善肝、腎臟功能[3]等多種生理功效,是一種新型功能性因子,2009年我國(guó)衛(wèi)生部批準(zhǔn)其為新資源食品的生產(chǎn)原料之一[4],并逐漸應(yīng)用于食品、醫(yī)藥等行業(yè)。因此,GABA的合成引起了人們的關(guān)注和重視。目前,GABA的制備方法主要有化學(xué)合成法、植物富集法和微生物發(fā)酵法,其中通過化學(xué)合成法和植物富集法得到的GABA存在安全性差、產(chǎn)量低及獲取難度大[5]等問題,相較而言,微生物發(fā)酵生產(chǎn)GABA具有條件溫和、安全性高、污染小[6]等優(yōu)點(diǎn),成為主要的研究趨勢(shì)。現(xiàn)有研究表明,大腸桿菌、曲霉菌、酵母菌和乳酸菌等微生物均具有產(chǎn)GABA能力,其中乳酸菌作為食品安全級(jí)(generally recognized as safe,GRAS)微生物[7],其發(fā)酵GABA產(chǎn)量相較于其他菌種普遍較高;同時(shí)相比于霉菌、大腸桿菌等可能產(chǎn)生毒素的微生物來說,乳酸菌的食品安全性更高[8],極具發(fā)展?jié)摿?。因此,利用乳酸菌發(fā)酵生產(chǎn)GABA已被公認(rèn)為安全、綠色的方法。

        目前研究顯示,多數(shù)乳酸菌具有產(chǎn)GABA能力,如乳桿菌[9]、乳球菌[10]、鏈球菌[11]等,其中菌株多來源于酸奶等乳制品中,如高冬臘[12]從賽里木酸奶中獲得5株產(chǎn)GABA的乳酸菌,隸屬于糞腸球菌和徳氏乳桿菌保加利亞亞種;Ribeiro等[13]從奶酪中分離出8株GABA產(chǎn)量在300 mg/L以上的菌株,涉及OTakiensis乳桿菌屬、副干酪乳桿菌屬及植物乳桿菌屬,而對(duì)于戊糖乳植桿菌屬(Lactiplantibacillus pentosus,L.pentosus)產(chǎn)GABA的研究卻鮮有報(bào)道。L.pentosus多來源于傳統(tǒng)發(fā)酵食品中,較常用酸乳發(fā)酵劑如德式乳桿菌保加利亞亞種、嗜熱鏈球菌等,其耐酸和耐膽鹽能力更強(qiáng),進(jìn)入人體腸道后能夠更好地發(fā)揮益生作用,將高產(chǎn)GABA的L.pentosus應(yīng)用于功能性乳制品的開發(fā),可進(jìn)一步提高乳品的益生性。此外,在利用乳酸菌發(fā)酵代謝GABA的過程中,不同的培養(yǎng)基及培養(yǎng)條件會(huì)對(duì)菌株的GAD活性產(chǎn)生影響[14],且產(chǎn)物對(duì)菌株代謝有負(fù)反饋抑制等,導(dǎo)致乳酸菌發(fā)酵GABA產(chǎn)量仍相對(duì)較低。因此,探索乳酸菌發(fā)酵GABA的最適條件成為提高GABA生產(chǎn)效率的關(guān)鍵。

        本研究旨在對(duì)前期從傳統(tǒng)酸乳中分離篩選獲得的L.pentosus Z6-15試驗(yàn)菌株的產(chǎn)GABA能力進(jìn)行研究,并通過單因素試驗(yàn)和響應(yīng)面設(shè)計(jì)法對(duì)菌株的發(fā)酵培養(yǎng)條件進(jìn)行優(yōu)化,以提高其GABA產(chǎn)量,為后續(xù)將產(chǎn)GABA乳酸菌應(yīng)用于工業(yè)化生產(chǎn)及功能性食品開發(fā)奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        L.pentosus Z6-15:新疆微生物資源保藏管理中心。

        GABA 標(biāo)準(zhǔn)品(純度≥99.9%)、L-谷氨酸鈉(sodium hydrogen glutamate,L-MSG)、碳酸鈉、硼酸、硼砂、苯酚、次氯酸鈉(有效氯≥10.0%)、無水乙醇(均為分析純):北京鼎國(guó)昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司。

        乳酸細(xì)菌培養(yǎng)基(MRS):青島高科技工業(yè)園海博生物技術(shù)有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        超凈工作臺(tái)(SW-CJ-1F):蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;生化培養(yǎng)箱(SPX-250BF):上海?,攲?shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;立式冷藏柜(SC-316):青島海爾股份有限公司;自動(dòng)高壓滅菌鍋(HVE-50):日本HIRAYAMA公司;紫外分光光度計(jì)(UVZ2550):日本島津儀器公司;TS恒溫振蕩器(TS-2102C):德國(guó)耶拿分析儀器股份公司;電熱恒溫水浴鍋(DK-8D):上海齊欣科學(xué)儀器有限公司;高速冷凍離心機(jī)(PLCD):德國(guó)Sigma公司。

        1.3 發(fā)酵培養(yǎng)及產(chǎn)物測(cè)定

        將MRS斜面保藏的乳酸菌Z6-15于MRS平板活化2代~3代后,取一環(huán)于MRS液體培養(yǎng)基中振蕩培養(yǎng)24 h,按4%接種量復(fù)接于MRS液體培養(yǎng)基中,37℃、160 r/min振蕩培養(yǎng)72 h后,取10 mL發(fā)酵液于10000r/min、4℃條件下離心10min,取上清液于4℃保藏,備用。

        GABA的測(cè)定:通過Berthelot比色法,繪制GABA的標(biāo)準(zhǔn)曲線,具體參照梁慧[15]的方法。

        菌體量的測(cè)定:采用分光光度計(jì)法。

        葡萄糖的測(cè)定:采用硫酸-苯酚法[16]。

        1.4 發(fā)酵條件優(yōu)化

        1.4.1 碳源的選擇

        以MRS為基礎(chǔ)培養(yǎng)基,分別以蔗糖19 g/L、乳糖19 g/L、麥芽糖20 g/L、可溶性淀粉19 g/L、糊精18 g/L替代葡萄糖20 g/L作唯一碳源,其中添加量以含碳量一致為原則,并設(shè)置MRS培養(yǎng)基作對(duì)照,考察不同種類碳源對(duì)菌株Z6-15的菌體量和GABA產(chǎn)量的影響。

        1.4.2 氮源的選擇

        以MRS為基礎(chǔ)培養(yǎng)基,在最適碳源的條件下,有效含氮量按2 g/L進(jìn)行換算,分別以酵母粉+蛋白胨(N1),酵母粉+氯化銨(N2),酵母粉+硫酸銨(N3),蛋白胨+氯化銨(N4),蛋白胨+硫酸銨(N5),酵母粉+蛋白胨+氯化銨(N6),酵母粉+蛋白胨+硫酸銨(N7),酵母粉+蛋白胨+氯化銨+硫酸銨(N8)這8種組合,按同比例配比作復(fù)合氮源,考察不同組合氮源對(duì)菌株Z6-15的菌體量和GABA產(chǎn)量的影響。

        1.4.3 Plackett-Burman優(yōu)化設(shè)計(jì)

        在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,使用Design expert 8.0軟件,對(duì)發(fā)酵培養(yǎng)基中的9種成分進(jìn)行分析。試驗(yàn)以GABA產(chǎn)量為響應(yīng)值,兩水平分別取原水平的±25%,Plackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計(jì)見表1。

        表1 Plackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計(jì)Table 1 Plackett-Burman experimental design

        1.4.4 響應(yīng)面分析

        基于Plackett-Burman試驗(yàn)結(jié)果,以GABA產(chǎn)量為響應(yīng)值,對(duì)蛋白胨、L-MSG和初始pH值作三因素三水平的響應(yīng)面試驗(yàn)。每組試驗(yàn)做3次平行,因素水平見表2。

        表2 響應(yīng)面試驗(yàn)因素水平Table 2 Factors and levels of response surface methodology

        1.5 統(tǒng)計(jì)分析

        試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Microsoft Excel 2010、Design Expert 8.0、Origin 8.0、SPSS 20.0等數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)進(jìn)行整理及統(tǒng)計(jì)分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 GABA標(biāo)準(zhǔn)曲線

        基于OD645nm繪制的GABA標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖1。

        圖1 GABA標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Standard curve of GABA

        由圖1可知,線性回歸方程:y=1.737x+0.083,R2=0.999 3。由此可見,在0.1 g/L~0.5 g/L內(nèi),GABA的吸光值與其濃度具有良好的線性關(guān)系。在此條件下,取稀釋適當(dāng)倍數(shù)后的菌株發(fā)酵上清液0.8 mL,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線測(cè)得菌株Z6-15的GABA產(chǎn)量為2.84 g/L。

        2.2 發(fā)酵條件優(yōu)化

        2.2.1 碳源的選擇

        微生物利用碳源來為機(jī)體代謝活動(dòng)提供能量,而不同微生物的最適碳源則有所不同。不同種類碳源對(duì)菌株Z6-15的菌體量及GABA產(chǎn)量的影響見圖2。

        圖2 不同碳源對(duì)菌株Z6-15產(chǎn)GABA及菌體量的影響Fig.2 Effects of different carbon on GABA production and biomass of strain Z6-15

        由圖2可知,6種碳源對(duì)菌株Z6-15的菌體量和GABA產(chǎn)量的影響存在明顯的差異,其中葡萄糖作碳源時(shí),菌株Z6-15的菌體量最高,且與其他碳源相比存在顯著性差異;同時(shí)葡萄糖價(jià)格低廉、易獲得,作為發(fā)酵原料可節(jié)約成本。因此,選擇葡萄糖為發(fā)酵培養(yǎng)基的碳源。

        2.2.2 氮源的選擇

        氮源在微生物代謝產(chǎn)物尤其是含氮代謝物的合成中起著至關(guān)重要的作用。微生物對(duì)不同氮源類型有不同的利用程度,對(duì)有機(jī)氮的利用程度遠(yuǎn)高于無機(jī)氮,且有機(jī)氮更利于代謝產(chǎn)物的形成。在以葡萄糖為最適碳源的基礎(chǔ)上,考察不同組合的復(fù)合氮源對(duì)菌株Z6-15的菌體量及GABA產(chǎn)量的影響,結(jié)果見圖3。

        圖3 不同組合氮源對(duì)菌株Z6-15產(chǎn)GABA及菌體量的影響Fig.3 Effects of different combined nitrogen on GABA production and biomass of strain Z6-15

        由圖3可知,在以蛋白胨和酵母粉為組合氮源(N1)時(shí),菌株Z6-15的菌體量和GABA產(chǎn)量最高,較其他組合具有顯著性差異;而添加無機(jī)氮源則不利于菌體的生長(zhǎng)和GABA的合成。這可能是由于有機(jī)氮源中的氮化物等物質(zhì)有助于細(xì)胞的生長(zhǎng)代謝,同時(shí)其富含的維生素可在一定程度上提高GAD活力。因此,選擇酵母粉和蛋白胨為發(fā)酵培養(yǎng)基的組合氮源。

        2.2.3 Plackett-Burman試驗(yàn)優(yōu)化分析

        選用N=12的試驗(yàn)設(shè)計(jì)方法,對(duì)菌株發(fā)酵過程中的11個(gè)因素(9個(gè)實(shí)際因素、2個(gè)虛擬因素)進(jìn)行分析。試驗(yàn)以GABA產(chǎn)量(Y)為響應(yīng)值,其設(shè)計(jì)及結(jié)果見表3,各因素效應(yīng)見表4。

        表3 Plackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 3 Design and results of Plackett-Burman experiment

        表4 因素效應(yīng)Table 4 Effects of factors

        由表 4可知,蛋白胨(B)、L-MSG(E)、初始 pH 值(G)對(duì)GABA產(chǎn)量的影響率分別為26.68%、18.91%、22.94%,其中蛋白胨對(duì)GABA產(chǎn)量的影響為正相關(guān),即隨著其含量的增加GABA產(chǎn)量也增加;L-MSG和初始pH值則為負(fù)相關(guān);而虛擬因素影響不大,可信度高。因此,選擇以上3個(gè)主要因素進(jìn)行下一步試驗(yàn)。

        2.2.4 響應(yīng)面分析

        依據(jù)Plackett-Burman試驗(yàn)結(jié)果,通過Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)對(duì)蛋白胨、L-MSG、初始pH值進(jìn)行5個(gè)中心點(diǎn)(17個(gè)試驗(yàn))的分析。試驗(yàn)以GABA產(chǎn)量為響應(yīng)值,其設(shè)計(jì)與結(jié)果見表5,回歸模型方差分析見表6。

        表5 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 5 Design and resuls of Box-Behnken experiment

        表6 回歸模型方差分析Table 6 Analysis of variance

        方差分析結(jié)果顯示,影響GABA產(chǎn)量的因素順序:L-MSG>初始pH值>蛋白胨。其中回歸模型P<0.000 1,呈極顯著水平,決定系數(shù)R2=0.978 2;同時(shí)失擬項(xiàng) P=0.509 0>0.05,R2Adj=0.950 3,說明模型擬合度良好,能夠反映響應(yīng)值的變化,可以用于發(fā)酵工藝的分析預(yù)測(cè)。其二次回歸方程:Y=3.88+0.19A+0.25B-0.21C-0.10AB+0.18AC+0.18BC-0.11A2-0.19B2-0.18C2。

        2.2.5 響應(yīng)面及等高線圖解析

        因素交互作用的響應(yīng)面分析見圖4。

        圖4 交互因素的響應(yīng)面分析Fig.4 Response surface analysis of interaction factors

        由圖4可知,在L-MSG為零水平時(shí),最佳蛋白胨含量和初始pH值分別為11.5 g/L和5.49,此時(shí)兩者對(duì)GABA產(chǎn)量的影響較為顯著;在初始pH值和蛋白胨含量分別取零水平時(shí),L-MSG對(duì)GABA產(chǎn)量的影響較大。在一定范圍內(nèi),GABA產(chǎn)量與初始pH值成反比,這可能與GAD適宜酸性環(huán)境有關(guān);同時(shí)從交互作用可以看出,在蛋白胨11.5 g/L、L-MSG 4.49 g/L、初始pH5.49條件下,GABA產(chǎn)量最高,為4.01 g/L。

        2.2.6 模型驗(yàn)證試驗(yàn)

        數(shù)據(jù)分析表明,菌株的最佳發(fā)酵工藝:蛋白胨11.54 g/L、L-MSG 4.49 g/L、初始 pH 值 5.49,此條件下生成GABA的理論預(yù)測(cè)最大值為4.01 g/L?;趯?shí)際情況,選擇蛋白胨11.5 g/L、L-MSG 4.5 g/L、初始pH值5.5進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),3批發(fā)酵試驗(yàn)實(shí)測(cè)GABA產(chǎn)量分別為 3.99、3.92、3.96 g/L,平均產(chǎn)量 3.96 g/L,較預(yù)測(cè)值接近度達(dá)98.75%。

        2.3 發(fā)酵過程曲線

        菌株Z6-15發(fā)酵GABA的過程曲線見圖5。

        圖5 菌株Z6-15發(fā)酵GABA的過程曲線Fig.5 Process curve of GABA fermentation by strain Z6-15

        從菌株發(fā)酵GABA的過程曲線可知,0~4 h為菌株的生長(zhǎng)延遲期,4 h~16 h為對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,此后則為穩(wěn)定期。同時(shí),從菌體生長(zhǎng)與產(chǎn)物形成的關(guān)系看,在菌體主要生長(zhǎng)階段(對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期),葡萄糖被大量消耗,菌體量迅速增加,但合成GABA較少;而當(dāng)進(jìn)入穩(wěn)定期后,GABA大量生成。

        3 討論與結(jié)論

        GABA作為一種天然的非蛋白質(zhì)氨基酸,具有多種生理活性,目前通過微生物發(fā)酵就可方便地得到GABA。其中,乳酸菌因其良好的益生特性及食用安全性,是目前生產(chǎn)GABA的主要菌株。然而從自然界初篩獲得的乳酸菌合成GABA的能力往往較低,約為0.3 g/L~2 g/L左右,因此優(yōu)良菌株的篩選成為了開發(fā)GABA的重要任務(wù)。此外,利用乳酸菌發(fā)酵合成GABA,菌體的生長(zhǎng)狀況及其代謝產(chǎn)物的積累,均取決于發(fā)酵培養(yǎng)基的組成及發(fā)酵培養(yǎng)條件,合適的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)及濃度配比有利于菌體的生長(zhǎng)代謝,因此有必要對(duì)菌株的發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,從而提高其GABA產(chǎn)量。

        本研究利用響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)對(duì)影響乳酸菌L.pentosus Z6-15產(chǎn)GABA的發(fā)酵條件進(jìn)行篩選,最終得到蛋白胨、L-MSG、初始pH值3個(gè)影響較大的因素,這一結(jié)果與王冰聰[17]、司闊林等[18]的研究較為相近;同時(shí)響應(yīng)面3D圖及其等高線模型顯示,初始pH值和L-MSG含量對(duì)GABA產(chǎn)量的影響呈現(xiàn)極顯著作用。其中L-MSG作為菌株發(fā)酵產(chǎn)GABA的底物,提高其含量有助于GABA的生成,而過量的L-MSG又會(huì)使發(fā)酵過程中的pH值上升,導(dǎo)致GABA產(chǎn)量降低。相關(guān)研究表明,GAD的最適pH值為4.0~6.0,此范圍有利于GABA的合成,同時(shí)又可抑制GABA的分解[19];而pH值的升高則會(huì)使L-Glu的脫羧作用減弱,導(dǎo)致GABA的分解加快。如李歡等[20]在研究植物乳桿菌14發(fā)酵GABA的條件過程中,發(fā)現(xiàn)pH值為6.0時(shí),菌株的菌體量及GABA產(chǎn)量達(dá)到最高值,而隨著pH值的升高,GABA產(chǎn)量逐漸降低;李理等[21]探索植物乳桿菌DNC75017產(chǎn)GABA的最適條件時(shí),發(fā)現(xiàn)菌株在初始pH值為4.65時(shí)產(chǎn)GABA能力最強(qiáng)。因此,試驗(yàn)通過設(shè)定目標(biāo)響應(yīng)值,最終得到菌株發(fā)酵的最優(yōu)參數(shù):葡萄糖20 g/L、酵母粉 10 g/L、蛋白胨 11.5 g/L、L-MSG 4.5 g/L、K2HPO42 g/L、無水乙酸鈉5 g/L、檸檬酸三銨2 g/L、MnSO40.05 g/L、MgSO40.2 g/L、吐溫-80 0.1%、初始 pH值 5.5,接種量 4%、裝添量 175 mL、37℃、160 r/min、發(fā)酵時(shí)間72 h。此條件下得到GABA產(chǎn)量為3.96 g/L,較優(yōu)化前提高了39.63%,與預(yù)測(cè)值4.01 g/L的接近度為98.75%,擬合度較好。

        乳酸菌在發(fā)酵過程中,菌體的生長(zhǎng)和產(chǎn)物的生成并不一定是同步的[22]。菌株Z6-15發(fā)酵GABA的過程曲線表明,0~16 h為菌體主要生長(zhǎng)階段,此時(shí)葡萄糖被大量消耗,但合成GABA較少;而當(dāng)菌株進(jìn)入穩(wěn)定期,即16 h以后,GABA開始大量合成,即菌體代謝生長(zhǎng)和GABA生成存在一定的滯后性。這一結(jié)果與Yogeswara等[23]的研究相一致,而與曾林等[24]研究的植物乳桿菌BC114培養(yǎng)24 h后進(jìn)入穩(wěn)定期,GABA在發(fā)酵40 h后激增,在72 h達(dá)到最大值而有所不同,說明不同種類的菌種其生產(chǎn)周期和培養(yǎng)特性存在差異。

        本研究的開展,為后續(xù)開發(fā)L.pentosus Z6-15的發(fā)酵乳制品,并將該菌株用于乳品工業(yè)中生產(chǎn)具有功能因子的乳酸菌飲品等提供一定的科學(xué)依據(jù),同時(shí)也為研制和開發(fā)富含GABA的相關(guān)功能性食品奠定理論基礎(chǔ)。

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