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        熱加工方式對牛乳過敏原αs1-酪蛋白二級結構和抗原性的影響

        2022-09-08 10:21:06魏家祺周勝云叢艷君閆文杰
        乳業(yè)科學與技術 2022年4期
        關鍵詞:牛乳酪蛋白殘留量

        魏家祺,周勝云,叢艷君,*,閆文杰

        (1.北京工商大學食品與健康學院,北京市食品營養(yǎng)與人類健康高精尖創(chuàng)新中心,北京市食品添加劑工程技術研究中心,北京 100048;2.北京聯(lián)合大學生物化學工程學院,北京 100023)

        據(jù)統(tǒng)計,全世界每天消耗的牛乳總量約為810 億t[1]。鮮牛乳通常經(jīng)過多種加工方式形成產(chǎn)品,以確保人類食用安全,熱加工是常用的處理方式之一[2],目前,乳品工業(yè)中常用的液態(tài)乳熱加工方法主要有:預熱殺菌法、巴氏殺菌法、超高溫滅菌法和保持殺菌法,加熱溫度和加熱時間是決定乳品品質(zhì)的關鍵因素。

        牛乳中含量最高的蛋白質(zhì)是酪蛋白,其由4 種組分構成,αs1-酪蛋白是含量最高的組分,也是主要過敏原[3]。研究表明,酪蛋白對熱處理非常穩(wěn)定,加熱使其致敏性僅部分降低或沒有變化[4]。Bloom等[5]發(fā)現(xiàn),酪蛋白在95 ℃溫度下加熱60 min后,基本上不會影響其免疫反應性。Morisawa等[6]研究表明,經(jīng)過熱處理的α-酪蛋白不會影響嗜堿性粒細胞釋放的組胺量。但是有研究[7]表明,加熱到65~70 ℃時,α-酪蛋白的致敏性降低,而β-酪蛋白的致敏性顯著增加,從而得出結論,不同加熱條件下,過敏原蛋白質(zhì)表現(xiàn)出不同的敏感性。

        本研究通過8-苯胺-1-萘磺酸(8-anilino-1-naphthalenesulfonic acid,ANS)熒光探針光譜、圓二色譜、間接競爭酶聯(lián)免疫吸附測定(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)、免疫印跡實驗方法探究不同加熱條件下αs1-酪蛋白構象與抗原性的關系,揭示熱加工方式調(diào)控αs1-酪蛋白抗原性的機理。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        鮮牛乳 三元食品公司。

        低分子質(zhì)量標準蛋白 天根生化科技(北京)有限公司;辣根過氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)標記的羊抗鼠免疫球蛋白G 北京友誼中聯(lián)公司;抗血清(多克隆抗體) 實驗室自制;Tris(優(yōu)級純)、甘氨酸(優(yōu)級純)、十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate,SDS,優(yōu)級純)、考馬斯亮藍(分析純)、甲醇(分析純)、醋酸(優(yōu)級純)、吐溫-20(優(yōu)級純)、乙醇(分析純) 國藥集團化學試劑有限公司;αs1-酪蛋白(純度70%)、丙烯酰胺(優(yōu)級純)、甲叉雙丙烯酰胺(優(yōu)級純)、過硫酸銨(優(yōu)級純)、四甲基乙二胺(優(yōu)級純)、α-巰基乙醇(優(yōu)級純)、甘油(優(yōu)級純)、牛血清白蛋白V bovine serum albumin V,BSA,生物級)、四甲基聯(lián)苯胺(tetramethylbenzidine,TMB,優(yōu)級純)、二甲基亞砜(優(yōu)級純)、氨基黑(優(yōu)級純)、4-氯-1-萘酚(優(yōu)級純) 美國Sigma公司;濃鹽酸(分析純) 北京化學試劑公司;磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、過氧化氫、碳酸氫鈉(均為分析純) 西隴化工股份有限公司。

        1.2 儀器與設備

        KHB ST-360酶標儀 上海科華實驗系統(tǒng)有限公司;SHZ-C水浴恒溫振蕩器 上海龍躍儀器設備有限公司;BSA124S-CW電子天平 賽多利斯科學儀器(北京)有限公司;SH-2磁力攪拌器 北京東方開物科學器材有限公司;PHS-3C pH計 上海儀電科學儀器股份有限公司;DYY-7C電泳儀 北京市六一儀器廠;CR22G離心機 日本Hitachi公司;F-7000圓二色譜儀 日本日立公司;RF5301熒光分光光度計 日本島津公司。

        1.3 方法

        1.3.1 牛乳酪蛋白制備

        鮮牛乳通過3 層消毒紗布過濾,除去雜質(zhì),然后用高速冷凍離心機(8 000 r/min、4 ℃、10 min)脫脂,得到脫脂乳。脫脂乳于40 ℃水浴鍋內(nèi)保溫,5 mol/L HCl調(diào)節(jié)pH值至4.6,沉淀30 min后用高速冷凍離心機離心分離(8 000 r/min、4℃、15 min),收集沉淀,得到酪蛋白[8-9]。

        將分離的酪蛋白和αs1-酪蛋白標準品分別溶于50 mmol/mL、pH 7.4磷酸鹽緩沖液中,配制成0.1 mg/mL的溶液,于70、80、90、100 ℃分別加熱10、20、30、40、50、60 min,于-20 ℃冰浴冷卻。

        1.3.2 圓二色譜分析加熱αs1-酪蛋白二級結構變化

        使用圓二色譜儀在遠紫外區(qū)(190~260 nm),于室溫25 ℃條件下測定0.1 mg/mL熱處理的αs1-酪蛋白標準溶液,測定6 次取平均值。圖譜經(jīng)過儀器本底消除和溶液空白差減,利用楊氏算法得出αs1-酪蛋白中α-螺旋、β-折疊、β-轉角和無規(guī)卷曲含量。

        1.3.3 ANS熒光探針分析加熱αs1-酪蛋白的疏水性變化

        不同熱處理的0.1 mg/mLαs1-酪蛋白標準溶液3 mL,加入15 μL ANS溶液作為熒光探針并于室溫放置1 h。樣品用熒光分光光度計掃描,掃描條件為激發(fā)波長390 nm,掃描波長400~650 nm,狹縫寬度5 nm,掃描速率100 nm/min,以特征熒光強度表示疏水性。

        1.3.4αs1-酪蛋白多克隆抗體制備

        用αs1-酪蛋白免疫C3H/He小鼠制備αs1-酪蛋白多克隆抗體。參考Peng Juan[10]、Yeung[11]等的方法,取6 只體質(zhì)量為20~25 g的C3H/He小鼠,將0.2 mL 0.5 mg/mL的αs1-酪蛋白與等體積弗氏完全佐劑充分混合并乳化后,在小鼠背部皮下分6 點免疫;第22天,取0.1 mL 0.5 mg/mL的αs1-酪蛋白和等體積弗氏不完全佐劑乳化至混合物在水中不擴散,小鼠腹腔免疫;第36天,取0.1 mL 0.5 mg/mL的αs1-酪蛋白溶液小鼠腹腔免疫;第50天,取0.2 mL 0.5 mg/mL的αs1-酪蛋白溶液小鼠腹腔免疫;第60天,取6 只小鼠全血,離心制備血清備用。1 只未免疫的小鼠血清為陰性血清,作為對照。

        1.3.5 間接競爭ELISA方法的建立和牛乳中αs1-酪蛋白殘留量的測定

        在優(yōu)化酶標二抗稀釋倍數(shù)、抗原稀釋倍數(shù)、抗血清稀釋倍數(shù)、包被抗原和抗血清反應溫度和時間、底物最佳反應條件基礎上,按照間接競爭ELISA程序,競爭抗原質(zhì)量濃度0~1 400 ng/mL范圍內(nèi)建立間接競爭ELISA抑制曲線,并用此方法測定牛乳中αs1-酪蛋白的殘留量。

        間接競爭ELISA的具體步驟:以αs1-酪蛋白作為包被抗原,用0.05 mol/L、pH 9.6的碳酸鹽緩沖液將αs1-酪蛋白稀釋至5 μg/mL后,以100 μL/孔加入酶標板中,于4 ℃冰箱中過夜。αs1-酪蛋白抗原與一抗初級反應:在反應管中加入1∶1的αs1-酪蛋白抗原或待測樣品(鮮牛乳)和1∶4 000稀釋后的鼠多抗,不加αs1-酪蛋白抗原或樣品的反應管作為無競爭反應體系,4 ℃冰箱中反應12 h。之后傾去酶標板孔內(nèi)的液體,用200 μL/孔PBST洗板3 次,每次5 min,甩干。加入添加1 g/100 mL BSA的PBST封閉液進行封閉,每孔100 μL,37 ℃放置1 h,200 μL/孔PBST洗板3 次,每次5 min,甩干。將αs1-酪蛋白抗原與一抗混合物以100 μL/孔的量加入酶標板內(nèi),于37 ℃溫育2 h。用PBST洗板4 次,200 μL/孔,每次5 min,甩干。用含1 g/100 mL BSA的PBST將HRP-羊抗鼠IgG稀釋5 000 倍,以100 μL/孔加入孔內(nèi),37 ℃反應1 h。用200 μL/孔的PBST洗板3 次,200 μL/孔的雙蒸水洗板2 次,每次5 min,甩干。加入新鮮配制的TMB應用液,100 μL/孔,常溫暗處反應25 min,顯示藍色。每孔加入50 μL 2 mol/L硫酸終止反應,顏色由藍變黃,用酶標儀測定波長450 nm處的光密度(OD450nm)[12-15]。

        式中:B為梯度稀釋αs1-酪蛋白作為競爭抗原測定的OD450nm;B0為無競爭體系的OD450nm;B1為未免疫小鼠血清作為一抗測定的OD450nm。

        1.3.6αs1-酪蛋白SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)分析

        以分離的酪蛋白為研究對象。分離膠12.5%、濃縮膠4.5%、膠聯(lián)度3.6%,進行垂直電泳,單板恒流10 mA。具體實驗步驟為:αs1-酪蛋白抗原或樣品溶液與電泳樣品稀釋液以體積比3∶1比例混合,于沸水浴處理5 min后上樣,上樣量10 μL。電泳結束后的分離膠用考馬斯亮藍R-250染色15 min,顯現(xiàn)蛋白條帶,以低分子質(zhì)量標準蛋白做標準,用凝膠成像系統(tǒng)分析其分子質(zhì)量。

        1.3.7αs1-酪蛋白免疫印跡鑒定

        將分離的酪蛋白首先進行SDS-PAGE,然后將膠上的蛋白轉印到聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜上,將膜用加樣梳、鉛筆作標記,將PVDF膜剪裁,與SDS-PAGE凝膠中分離膠大小一樣,再將PVDF膜、濾紙和海綿一同浸泡于電極緩沖液(含20%甲醇的Tris-甘氨酸緩沖溶液)中30~60 min。將電泳完畢的SDS-PAGE分離膠取下,放入電轉緩沖液中平衡20~30 min,在干凈、平整的實驗臺上按以下順序從正極到負極鋪于凝膠夾上:凝膠夾板→海綿→3 層濾紙→PVDF膜→凝膠→3 層濾紙→海綿→凝膠夾板(此過程中應避免氣泡產(chǎn)生,用光滑的玻璃棒從一側向另一側慢慢滾動,趕出氣泡),夾緊“凝膠三明治”插入轉移電泳槽,灌滿緩沖液。將PVDF膜端靠近正極,凝膠面靠近負極,打開電源,定流192 mA,電轉移4.0 h。轉印后的PVDF膜一式2 份,1 份用氨基黑10B溶液染色5 min,脫色5 min,觀察轉印效果及蛋白質(zhì)位置,另1 份用于免疫印跡。

        將轉印后的PVDF膜于大小合適的平皿中用dH2O洗滌5 min,用TBST溶液(添加體積分數(shù)0.05%吐溫-20的pH 7.4 Tris緩沖溶液)于37 ℃漂洗4 次,每次15 min。再加入裝有封閉液(10~20 mL)的平皿中,于37 ℃孵育1 h,封閉PVDF膜,然后用dH2O洗滌5 min。將PVDF膜與1∶4 000 倍稀釋的多抗于37 ℃孵育2 h,再用dH2O洗滌5 min,用TBST洗滌3 次,每次10 min。將PVDF膜與合適濃度的HRP標記羊抗鼠二抗(1∶5 000稀釋)于37 ℃孵育1 h,再用dH2O洗滌5 min,TBST溶液洗滌3 次,每次10 min。將漂洗后的PVDF膜浸沒在新鮮配制的0.05 mol/L 4-氯-1-萘酚底物溶液中,顯色(37 ℃,35~40 min),待蛋白條帶顯色清晰,即可用高純水漂洗,終止反應。用dH2O沖凈PVDF膜,置于雙層濾紙中風干保存[7,16]。

        1.4 數(shù)據(jù)處理

        所有實驗均做3 個平行,3 次重復。用Origin 8軟件繪制圖表,SPSS 17.0軟件進行數(shù)據(jù)分析,采用Duncan’s multiple range test方法進行顯著性分析。

        2 結果與分析

        2.1 圓二色譜分析αs1-酪蛋白的二級結構變化

        采用圓二色譜分析蛋白質(zhì)時,192 nm波長附近α-螺旋結構有1 個正譜帶,波長208、222 nm附近有2 個負譜帶,波長185~200 nm附近β-折疊有1 個正譜帶,波長216 nm附近有1 個負譜帶,波長206 nm附近β-轉角有1 個正譜帶[17-18]。

        由圖1可知:圓二色譜顯示,在208~212 nm和218~222 nm附近有峰存在,這是α-螺旋結構的典型特征,說明有α-螺旋存在;波長224~230 nm附近有微弱且較寬的譜帶,說明有β-折疊或者富含L-脯氨酸序列的區(qū)域[19]。

        圖1 加熱處理的αs1-酪蛋白圓二色譜圖Fig. 1 CD spectra of heated αs1-casein

        由表1可知,αs1-酪蛋白經(jīng)熱處理后其二級結構構象發(fā)生變化,α-螺旋、β-折疊含量降低,在80 ℃、60 min,90 ℃、10 min,90 ℃、60 min條件下,α-螺旋含量顯著低于未加熱αs1-酪蛋白。70 ℃、20 min,80 ℃、20 min,90 ℃、20 min時無規(guī)卷曲含量顯著增加。而韓波[20]通過圓二色譜分析技術研究牛乳酪蛋白分別于63 ℃、30 min,75℃、20 s,100 ℃、5 min,134 ℃、4 min加熱條件下二級結構構象的變化情況,發(fā)現(xiàn)不同的加熱條件并沒有使牛乳酪蛋白的二級結構構象發(fā)生顯著變化。故加熱對αs1-酪蛋白構象的影響有待深入研究。

        表1 αs1-酪蛋白的二級結構含量Table 1 Secondary structure composition of unheated and heated αs1-casein %

        2.2 ANS熒光探針光譜分析αs1-酪蛋白表面疏水性的變化

        蛋白質(zhì)分子之間的疏水作用是維持其構象的主要作用力,同時對蛋白質(zhì)的功能性質(zhì)也存在一定的影響[21],本研究采用ANS熒光探針法研究經(jīng)不同熱處理的αs1-酪蛋白表面疏水性的變化情況[22]。由圖1可知:αs1-酪蛋白的疏水性結構隨著不同的處理時間和溫度發(fā)生變化。在70~100 ℃加熱處理下,αs1-酪蛋白表面疏水性均隨時間的延長呈無規(guī)則變化趨勢,70~80 ℃時,加熱20 min時相對最強,50 min時相對最低,60 min又趨于增強;90 ℃時,加熱20 min時相對最強,加熱60 min相對最低,100 ℃時,加熱20 min相對最強,加熱10 min相對最低,加熱40、50、60 min又趨于增強。另外αs1-酪蛋白的濃度也會影響其展開和聚合程度。隨著加熱溫度的升高,體系中αs1-酪蛋白重新組成聚合體,也會導致其疏水性下降[23]。

        圖2 加熱處理的αs1-酪蛋白的表面熒光強度Fig. 2 Surface fluorescence intensity of heated αs1-casein

        2.3 間接競爭ELISA測定牛乳中αs1-酪蛋白殘留量結果

        由圖3可知,牛乳中αs1-酪蛋白的殘留量在加熱溫度為70 ℃和90 ℃時,隨時間的延長變化趨勢相近,具體為0~20 min隨時間的延長上升,20~30 min趨于下降,30~40 min趨于上升,之后趨于下降。于80 ℃和100 ℃加熱,隨時間的延長變化趨勢相近,具體為0~20 min隨時間的延長上升,20~30 min趨于下降,30~40 min又趨于上升,40~50 min趨于下降,60 min以后又處于上升階段。

        圖3 熱處理牛乳中αs1-酪蛋白殘留量Fig. 3 Residual amount of αs1-casein in heated milk

        采用Duncan’s multiple range test方法分析,鮮牛乳在70 ℃分別處理0、10、20、30、40、50、60 min,αs1-酪蛋白殘留量差異極顯著(P<0.01),αs1-酪蛋白殘留量最高的是20 min處理組,為(4 551.26±0.26) ng/mL,最低的是60 min處理組,為(4 497.02±1.16) ng/mL;鮮牛乳在80 ℃分別處理0、10、20、30、40、50、60 min,αs1-酪蛋白殘留量差異極顯著(P<0.01),最高的是20 min處理組,為(4 593.99±0.64) ng/mL,最低的是0 min組(對照組),為(4 513.46±1.16) ng/mL;鮮牛乳在90 ℃分別處理0、10、20、30、40、50、60 min,αs1-酪蛋白殘留量差異極顯著(P<0.01),最高的是20 min處理組,為(4 615.36±1.04) ng/mL,最低的是對照組,為(4 513.46±1.16) ng/mL;鮮牛乳在100 ℃分別處理0、10、20、30、40、50、60 min,αs1-酪蛋白殘留量差異極顯著(P<0.01),最高的是20 min處理組,為(4 575.92±1.39) ng/mL,最低的是對照組,為(4 513.46±1.16) ng/mL。綜上分析,70、80、90、100 ℃加熱處理牛乳時均為在20 min時表現(xiàn)出較強的抗原性,分析其原因可能是加熱使牛乳中αs1-酪蛋白構象發(fā)生變化,更多的作用表位暴露出來,從而導致致敏性增強。70 ℃加熱處理60 min時αs1-酪蛋白殘留量為4 497.02 ng/mL,較對照組的過敏原殘留量低,表現(xiàn)出較低抗原性。

        2.4 αs1-酪蛋白SDS-PAGE分析結果

        由圖4可知,不同加熱處理對αs1-酪蛋白的分子質(zhì)量沒有影響,通過凝膠成像技術測得αs1-酪蛋白分子質(zhì)量約為32 kDa。

        圖4 不同加熱處理αs1-酪蛋白SDS-PAGE分析圖Fig. 4 SDS-PAGE patterns of heated αs1-casein

        2.5 αs1-酪蛋白免疫印跡鑒定結果

        SDS-PAGE之后將不同熱處理的酪蛋白轉印到PVDF膜上,通過免疫印跡實驗進行鑒定。由圖5可知,未免疫小鼠血清作為陰性對照與酪蛋白沒有產(chǎn)生反應條帶,說明小鼠多克隆抗體與經(jīng)不同熱處理的αs1-酪蛋白發(fā)生了特異性免疫反應。這個結果既驗證了多克隆抗體的特異性,又說明熱處理后αs1-酪蛋白的致敏性依然存在。

        圖5 αs1-酪蛋白免疫印跡鑒定圖Fig. 5 Western blotting of αs1-casein

        食品熱加工可以誘導過敏原蛋白質(zhì)結構發(fā)生不同改變,如聚集、去折疊等,這些改變都可能影響IgE結合能力,從而增加或降低過敏原的致敏性[24]。通常歸因于食物基質(zhì)中過敏原蛋白質(zhì)構象表位的破壞或其與脂肪或糖發(fā)生的化學反應限制了過敏原對免疫系統(tǒng)的可用性;另一方面,食物基質(zhì)的作用使過敏原蛋白質(zhì)新表位形成及消化率降低可能會增加其致敏性[25]。研究牛乳熱加工技術對于過敏原致敏性的影響,對于優(yōu)化乳品熱加工工藝、開發(fā)低致敏乳制品均具有重要意義。

        3 結 論

        本研究表明:在80 ℃、60 min,90 ℃、10 min,90 ℃、60 min條件下熱處理后,αs1-酪蛋白中α-螺旋結構含量顯著低于未加熱αs1-酪蛋白,在70 ℃、20 min,80 ℃、20 min,90 ℃、20 min條件下熱處理后,αs1-酪蛋白中無規(guī)卷曲含量顯著增加,70~100 ℃加熱20 min條件下表面熒光強度最強,間接競爭ELISA顯示,在70~100 ℃、20 min條件下,αs1-酪蛋白的抗原殘留量均較高,而免疫印跡方法顯示,不同溫度-時間加熱條件下αs1-酪蛋白仍具有免疫反應特性,建議進一步通過動物實驗揭示熱處理調(diào)控αs1-酪蛋白抗原性的機制。

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