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        恩格列凈通過抑制iNOS 改善脂多糖誘導(dǎo)的高血糖和對(duì)心臟功能的影響

        2022-06-23 10:40:46鈕燕朱靜嚴(yán)久瓊
        海軍醫(yī)學(xué)雜志 2022年3期
        關(guān)鍵詞:毒血癥高血糖腹腔

        鈕燕,朱靜,嚴(yán)久瓊

        海軍官兵尤其是艦艇部隊(duì)及登陸作戰(zhàn)官兵在發(fā)生開放性外傷的同時(shí),往往面臨著傷口被海水浸泡的問題。目前開放性外傷治療上最大難題是感染,因?yàn)楹K写嬖诙喾N致病菌,開放性外傷經(jīng)海水浸泡后細(xì)菌入侵和增殖,往往會(huì)加重感染的嚴(yán)重程度,甚至發(fā)生膿毒血癥[1]。膿毒血癥患者常伴隨著許多代謝改變,包括胰島素抵抗和高血糖等,這些代謝改變會(huì)加劇感染,延緩疾病的恢復(fù)等[2-3]。膿毒血癥作為一種重大疾病,應(yīng)激誘導(dǎo)的高血糖很常見,并且與患者預(yù)后相關(guān)[4-5]。此外,應(yīng)激誘導(dǎo)的高血糖通過氧化應(yīng)激和炎癥反應(yīng)等機(jī)制降低心臟功能,而采用胰島素治療降低應(yīng)激性高血糖可以改善心臟功能,但是有研究報(bào)道重癥膿毒血癥患者采用胰島素強(qiáng)化降糖治療會(huì)增加患者低血糖等不良事件的風(fēng)險(xiǎn)[6]。因此,開發(fā)有效降低應(yīng)激性高血糖但又不會(huì)引起低血糖的治療策略對(duì)膿毒血癥患者心臟功能保護(hù)具有重要的意義。

        鈉葡萄糖協(xié)同轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白2 抑制劑(sodium glucose cotransporter 2 inhibitors,SGLT2i)是首個(gè)有效減少2 型糖尿病患者心力衰竭和心血管死亡的降糖化合物,SGLT2i 被明確用于抑制腎臟中的鈉葡萄糖協(xié)同轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白2(SGLT2)[7]。最近大量研究表明,SGLT2i——恩格列凈(empagliflozin, Empa)對(duì)各種類型的心臟細(xì)胞和心臟功能具有直接作用,Empa在心肌細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞缺氧/復(fù)氧后能夠維持細(xì)胞活力和腺苷三磷酸(ATP)含量,從而恢復(fù)高血糖和腫瘤壞死因子(TNF)-α 刺激的主動(dòng)脈環(huán)和高血糖內(nèi)皮細(xì)胞的血管反應(yīng)性[8-9]。在離體的小鼠心臟中,Empa 可以誘導(dǎo)血管舒張[10]。在離體心臟的缺血再灌注研究中,Empa 在缺血期間能夠延遲攣縮的發(fā)展,并在缺血后增加線粒體呼吸[11]。由此可見,Empa 對(duì)心臟具有廣泛的保護(hù)作用,但是Empa 通過何種機(jī)制改善細(xì)菌脂多糖(LPS)誘導(dǎo)的高血糖和心臟功能障礙尚未明確。

        既往研究報(bào)道,心臟中不存在SGLT2 的表達(dá),提示Empa 改善LPS 誘導(dǎo)的心臟功能障礙并非直接通過作用于SGLT2 而發(fā)揮效應(yīng)[12-13]。LPS 是革蘭氏陰性菌血癥和膿毒血癥引起的許多宿主反應(yīng)的關(guān)鍵介質(zhì),可誘導(dǎo)許多參與免疫、炎癥和急性期反應(yīng)的基因[14]。這些基因中,誘導(dǎo)型一氧化氮合酶(iNOS)與膿毒血癥和內(nèi)毒素血癥等有害宿主的反應(yīng)有關(guān)。敲除iNOS 的小鼠對(duì)LPS 誘導(dǎo)的低血壓有抵抗力[15]。與iNOS 基因敲除小鼠的數(shù)據(jù)一致,iNOS 抑制劑氨基胍可降低野生型小鼠注射LPS 后的死亡率[16]。本研究旨在探討Empa 通過抑制iNOS 改善LPS 誘導(dǎo)的高血糖和心臟功能障礙。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 成年雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠,體重200~250 g,購自上海吉輝實(shí)驗(yàn)動(dòng)物飼養(yǎng)有限公司[許可證號(hào):SCXK(滬)2017-0012]。SD 大鼠飼養(yǎng)在氣溫恒定為25°C 的動(dòng)物房,并以12/12 h 的明暗循環(huán)照明。SD 大鼠可自由獲取標(biāo)準(zhǔn)嚙齒動(dòng)物飼料以及隨意飲水。本研究方案得到海軍軍醫(yī)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理委員會(huì)批準(zhǔn),有關(guān)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)操作均接受了實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理委員會(huì)的評(píng)估和認(rèn)證。

        1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物模型和分組 20 只SD 大鼠隔夜禁食18 h 后,按數(shù)字表法隨機(jī)分為4 組,每組5 只,分別腹腔注射單純生理鹽水(NS)、Empa、LPS、LPS 聯(lián)合Empa(LPS+Empa)。LPS 溶液給藥劑量20 mg/kg,LPS 來源于055:B5 血清型大腸桿菌(Sigma,美國(guó)),0.25 g LPS 溶解于100 ml 生理鹽水中,根據(jù)大鼠體重,按照8 ml/kg 的LPS 溶液腹腔注射[17];Empa(Sigma)給藥劑量5 mg/kg,0.062 5 g Empa 溶解于100 ml 生理鹽水中,根據(jù)大鼠體重,按照8 ml/kg 的Empa 溶液腹腔注射[18]。

        1.3 血糖測(cè)量 大鼠分別于腹腔注射后0、60、120、180 和240 min 從尾靜脈獲取血樣,通過Elite血糖儀(Bayer,Elkhart,IN)測(cè)量血糖。

        1.4 心臟功能 通過心室內(nèi)插管,測(cè)量SD 大鼠左心室舒張末期壓力(LVEDP)、壓力變化最大上升速率(+dP/dt)和最大下降速率(?dP/dt),由左心室壓力變化來評(píng)估心臟功能[19]。簡(jiǎn)要步驟如下:SD 大鼠腹腔注射造模完成240 min 后,稱重,腹腔注射尿脂800 mg/kg 和α-氯醛糖40 mg/kg 的混合麻醉液,麻醉大鼠。固定動(dòng)物,備皮,在頸部正中切口,逐層暴露頸部肌肉和氣管,鈍性分離氣管,插入氣管插管,固定氣管插管,保持大鼠氣道通暢。鈍性分離大鼠右側(cè)頸部肌肉,暴露頸動(dòng)脈鞘,游離右側(cè)頸總動(dòng)脈,插入PE 動(dòng)脈插管,通過PowerLab 生物信號(hào)采集系統(tǒng),記錄大鼠頸總動(dòng)脈血壓。穩(wěn)定后,繼續(xù)插入動(dòng)脈插管,深度為3.5~4.0 cm,當(dāng)觀察到血壓波形脈壓差增大,表明動(dòng)脈插管已經(jīng)進(jìn)入左心室,等波形穩(wěn)定后,連續(xù)記錄左心室內(nèi)壓力10 min,計(jì)算LVEDP、+dP/dt 和?dP/dt,心功能指標(biāo)記錄結(jié)束后,過量麻醉使大鼠安樂死,取出心臟,清除血液,液氮冷凍,轉(zhuǎn)移至?80 ℃冰箱,待用。

        1.5 蛋白質(zhì)免疫印跡法檢測(cè)心臟組織iNOS 蛋白表達(dá) 剪取心尖處100 mg 的心臟組織,液氮處理后研磨組織塊,按照說明書比例,加入RIPA 裂解液(P0013B,碧云天生物科技有限公司),提取大鼠心臟總蛋白,4 ℃靜置10 min 后,3 000 r/min 離心提取上清,離心半徑為5 cm,通過BCA 法測(cè)定上清液的蛋白濃度。按照終濃度為4 μg/μl 加入蛋白變性上樣緩沖液,變性10 min,備用。處理好的心臟蛋白樣本進(jìn)行SDS-PAGE 電泳,通過轉(zhuǎn)膜、封閉和洗膜,加入iNOS 一抗(ab178945,英國(guó)Abcam 公司),一抗孵育濃度為1∶1 000,以GAPDH 作為內(nèi)參,4 ℃孵育一抗,過夜,洗膜后,室溫孵育二抗1.5 h,洗膜后,經(jīng)化學(xué)發(fā)光法顯示蛋白條帶,并采用Gel-Pro Analyzer 1 軟件對(duì)蛋白條帶灰度值進(jìn)行分析。

        1.6 Elisa 檢測(cè)心臟組織中一氧化氮(NO)水平如1.5 實(shí)驗(yàn)中提取心臟組織,獲取組織上清液,通過BCA 試劑盒測(cè)定所有樣本上清液的蛋白質(zhì)水平。采用總NO 檢測(cè)試劑盒(碧云天公司,S0023),通過心臟組織中硝酸鹽和亞硝酸鹽的含量來反映心臟樣本中NO 的水平。按照總NO 檢測(cè)試劑盒操作說明書,簡(jiǎn)要步驟如下:配制NADPH、標(biāo)準(zhǔn)品等試劑待用。按說明書加樣順序往96 孔板中依次加入標(biāo)準(zhǔn)品、樣品以及實(shí)驗(yàn)所需的試劑進(jìn)行檢測(cè),加樣結(jié)束后,通過酶標(biāo)儀檢測(cè)540 nm 處吸光度,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算每個(gè)樣本硝酸鹽和亞硝酸鹽的含量,最后用硝酸鹽和亞硝酸鹽含量與相應(yīng)樣品蛋白濃度的比值來反映各心臟樣本的NO 水平。

        1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用GraphPad Prism 6.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,呈現(xiàn)正態(tài)分布的計(jì)量資料以±s表示,組間比較采用t檢驗(yàn)。各組大鼠處理后不同時(shí)間點(diǎn)血糖水平采用重復(fù)測(cè)量的方差分析進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,各組心功能、iNOS 蛋白表達(dá)和NO 水平的差異采用單因素方差分析進(jìn)行檢驗(yàn),組間差異采用采用Tukey 檢驗(yàn)進(jìn)行多重比較。檢驗(yàn)水準(zhǔn)α 為0.05。P<0.05 表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 大鼠腹腔注射后不同時(shí)間點(diǎn)血糖水平 尾靜脈取血進(jìn)行血糖水平檢測(cè)結(jié)果顯示,與同時(shí)間點(diǎn)NS 組相比,LPS 組在腹腔注射后60、120 和180 min 血糖水平升高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而與LPS 組比較,LPS+Empa 組在60 min 和120 min 血糖水平降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見表1。

        表1 各組大鼠腹腔注射后不同時(shí)間點(diǎn)尾靜脈血糖水平比較(mmol/L,± s,每組n=5)

        表1 各組大鼠腹腔注射后不同時(shí)間點(diǎn)尾靜脈血糖水平比較(mmol/L,± s,每組n=5)

        注:與NS 組比較aP<0.05;與LPS 組比較bP<0.05。NS 為生理鹽水,Empa 為恩格列凈,LPS 為脂多糖

        LPS+Empa 組3.6±0.3 5.5±0.4b 5.1±0.3b 4.3±0.5 3.5±0.2時(shí)間0 min 60 min 120 min 180 min 240 min NS 組3.7±0.4 3.6±0.3 4.0±0.5 3.3±0.1 3.7±0.2 Empa 組3.6±0.2 3.4±0.2 3.7±0.3 3.4±0.3 4.3±0.3 LPS 組3.4±0.3 6.3±0.5a 6.9±0.3a 4.5±0.5a 3.5±0.4

        2.2 大鼠心功能指標(biāo) 心功能檢測(cè)指標(biāo)顯示,與NS 組相比,LPS 組LVEDP 和?dP/dt 顯著升高,+dP/dt顯著下降,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而與LPS 組比較,LPS+Empa 組LVEDP、+dP/dt 和?dP/dt顯著改善,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見表2。

        表2 各組大鼠心功能指標(biāo)比較(± s,每組n=5)

        表2 各組大鼠心功能指標(biāo)比較(± s,每組n=5)

        注:與NS 組比較aP<0.05;與LPS 組比較bP<0.05。+dP/dt 為心室壓力變化最大上升速率,?dP/dt 為心室壓力變化最大下降速率,LVEDP 為左心室舒張末期壓力,NS 為生理鹽水,Empa 為恩格列凈,LPS 為脂多糖

        LPS+Empa 組6 519±442b?6 760±631b 10.8±1.6b項(xiàng)目+dP/dt(mmHg/s)?dP/dt(mmHg/s)LVEDP(mmHg)NS 組9 193±720?8 811±906 2.2±1.0 Empa 組8 390±232?8 802±1 003 4.0±0.7 LPS 組4 919±345a?4 942±629a 14.1±1.5a

        2.3 大鼠心臟組織中iNOS 表達(dá)和NO 水平 與NS組相比,LPS 組心臟組織中iNOS 蛋白表達(dá)和NO 水平顯著升高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而與LPS組比較,LPS+Empa 組心臟組織中iNOS 蛋白表達(dá)和NO水平顯著降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖1 和表3。

        表3 各組大鼠心臟組織中iNOS 表達(dá)和NO 水平比較(± s,每組n=5)

        表3 各組大鼠心臟組織中iNOS 表達(dá)和NO 水平比較(± s,每組n=5)

        注:與NS 組比較aP<0.05;與LPS 組比較bP<0.05。NS 為生理鹽水,Empa 為恩格列凈,LPS 為脂多糖,iNOS 為誘導(dǎo)型一氧化氮合酶,NO 為一氧化氮

        LPS+Empa 組1.35 ± 0.14b 3.92 ± 0.34b項(xiàng)目iNOS 蛋白NO(μmol/g)NS 組1.00 ± 0.21 1.79 ± 0.30 Empa 組0.89 ± 0.12 1.90 ± 0.51 LPS 組1.76 ± 0.14a 5.48 ± 0.75a

        圖1 各組大鼠心臟組織中iNOS 蛋白表達(dá)條帶

        3 討論

        膿毒血癥是宿主對(duì)感染或損傷的全身性有害反應(yīng),是導(dǎo)致經(jīng)海水浸泡外傷的海軍官兵感染和死亡的主要原因。盡管發(fā)展為膿毒血癥的患者的住院死亡率在膿毒癥生存運(yùn)動(dòng)指南推出后的2 年內(nèi)從37%下降至30.8%,但死亡率仍然很高[20]。2012 年,一項(xiàng)關(guān)于膿毒血癥負(fù)擔(dān)的全球研究估計(jì),嚴(yán)重膿毒血癥患者的死亡率接近50%[21]。心血管功能異常在膿毒血癥的發(fā)病機(jī)制中起重要作用。大量研究表明,心臟功能障礙是膿毒血癥患者常見的臨床表現(xiàn),其中大約50%的膿毒血癥患者具有心臟功能障礙的跡象[22-23]。然而,膿毒血癥誘導(dǎo)的心臟功能障礙的確切機(jī)制仍未明確。本研究以LPS 誘導(dǎo)膿毒血癥為模型,發(fā)現(xiàn)SGLT2i——Empa 可顯著改善LPS 誘導(dǎo)的心臟收縮和舒張功能,并伴隨心臟組織中iNOS 表達(dá)和NO 產(chǎn)生的改善,從而發(fā)揮心血管保護(hù)作用。

        基于動(dòng)物研究,關(guān)于膿毒血癥誘導(dǎo)的心臟功能異常的病理機(jī)制的可能假設(shè)是冠狀動(dòng)脈血流量不足導(dǎo)致的整體心肌缺血[24-25]。然而,有研究發(fā)現(xiàn),伴有心肌功能障礙的感染性休克患者冠狀動(dòng)脈血流量正?;蛟黾樱?6],反駁了上述假設(shè)。此外,一些研究表明,由于冠狀動(dòng)脈血流分布明顯不均、內(nèi)皮損傷、血管內(nèi)纖維蛋白沉積和中性粒細(xì)胞浸潤(rùn),膿毒血癥期間伴有心臟微循環(huán)障礙,可能導(dǎo)致局灶性心肌缺血和心功能下降,但沒有心肌缺氧的證據(jù)[27-29]。這些研究結(jié)果表明冠狀動(dòng)脈循環(huán)改變?cè)谀摱狙Y誘導(dǎo)的心臟功能異常的病理生理學(xué)機(jī)制中不太重要。本研究發(fā)現(xiàn)LPS 誘導(dǎo)膿毒血癥過程中伴隨著高血糖,而采用Empa 可以改善LPS 誘導(dǎo)的高血糖,顯著改善心臟組織中iNOS 表達(dá)和NO 產(chǎn)生,這些結(jié)果提示Empa 可以較好地控制LPS 誘導(dǎo)的應(yīng)激性高血糖并改善心臟功能。

        在膿毒血癥期間,各種病原體相關(guān)分子模式(PAMP),如LPS 以及內(nèi)源性損傷相關(guān)分子模式(DAMP),包括高遷移率族框1(HMGB1)和細(xì)胞外組蛋白;其與免疫細(xì)胞和其他細(xì)胞上的Toll 樣受體(TLR)相互作用,除TLR3 外,所有TLR 均通過骨髓分化因子88(MyD88)依賴性途徑發(fā)出信號(hào)并激活c-Jun N 末端激酶(JNK)、細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶1/2(ERK1/2)、p38 絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)和轉(zhuǎn)錄因子核因子(NF)-κB 信號(hào)通路,進(jìn)而誘導(dǎo)多種促炎細(xì)胞因子的產(chǎn)生,包括白細(xì)胞介素(IL)-1、IL-6 和TNF-α[30-31]。這些物質(zhì)被認(rèn)為是心肌抑制因子,包括TNF-α、IL-1、IL-6、補(bǔ)體過敏毒素(C5a)和LPS 等,最終參與了膿毒血癥誘導(dǎo)的心臟功能異常。有研究表明,激活心肌細(xì)胞α1-腎上腺素能受體可抑制LPS 誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞TNF-α 的表達(dá),改善膿毒血癥期間的心功能不全[32]。此外,另一項(xiàng)研究發(fā)現(xiàn)阻斷α2-腎上腺素能受體可以抑制膿毒血癥動(dòng)物的心肌TNF-α、iNOS 表達(dá)以及心肌細(xì)胞凋亡和心功能不全[33]。在炎癥反應(yīng)中,iNOS 表達(dá)可誘導(dǎo)產(chǎn)生大量NO,因此,本研究檢測(cè)心臟組織中iNOS 表達(dá)和NO水平,并發(fā)現(xiàn)LPS 誘導(dǎo)的膿毒血癥大鼠心臟組織中iNOS 表達(dá)和NO 水平顯著升高,而Empa 可以改善LPS 誘導(dǎo)的這些改變,并伴隨著心臟功能的改善。但是,本研究存在不足之處是在評(píng)估大鼠心功能時(shí)采用了有創(chuàng)的心內(nèi)導(dǎo)管記錄心室內(nèi)壓力的變化,并未進(jìn)一步開展無創(chuàng)大鼠心臟超聲檢查以及心肌組織病理學(xué)形態(tài)評(píng)估。

        膿毒血癥作為一種重大疾病,應(yīng)激誘導(dǎo)的高血糖很常見,并且與患者預(yù)后相關(guān)。本研究采用腹腔注射LPS 誘導(dǎo)膿毒血癥,發(fā)現(xiàn)LPS 可顯著誘導(dǎo)血糖升高,而Empa 可以降低LPS 誘導(dǎo)的高血糖,提示應(yīng)激性高血糖可能與膿毒血癥誘導(dǎo)的心臟功能異常相關(guān)。目前研究認(rèn)為心臟組織中并不存在Empa 直接作用的SGLT2,而大量研究報(bào)道Empa可以改善心衰和糖尿病患者心臟功能[34],這些結(jié)果表明Empa 可以不直接通過作用于SGLT2 而發(fā)揮心臟保護(hù)作用。本研究發(fā)現(xiàn)Empa 可以改善LPS 誘導(dǎo)的iNOS 表達(dá)和NO 水平,提示Empa 可能通過iNOS 參與改善膿毒血癥誘導(dǎo)的心臟功能異常。

        綜上所述,Empa 可以改善LPS 誘導(dǎo)的心臟功能異常,其機(jī)制可能通過與改善高血糖,降低心臟組織中iNOS 表達(dá)和NO 水平有關(guān)。

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