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        高糖環(huán)境下P物質(zhì)活化Akt通路促進(jìn)間充質(zhì)干細(xì)胞增殖和成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化的研究

        2022-05-24 12:07:24劉娜張曉東李永濤金海峰姜楊王璐璐劉丹陽沈雷
        天津醫(yī)藥 2022年5期
        關(guān)鍵詞:糖尿病實(shí)驗(yàn)

        劉娜,張曉東,李永濤,金海峰,姜楊,王璐璐,劉丹陽,沈雷△

        預(yù)計(jì)2045年全球糖尿病患者將達(dá)到6.93億[1]。糖尿病常并發(fā)神經(jīng)纖維和微血管病變,導(dǎo)致許多并發(fā) 癥[2]。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSC)是間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells,MSC)的重要類型,BMSC對多種疾病均有治療潛力[3]。神經(jīng)生長因子(nerve growth factor,NGF)[4]、腦源性神經(jīng)生長因子(brain derived nerve growth factor,BDNF)[5]、P物質(zhì)(substance P,SP)[6]等均具有促進(jìn)血管新生效應(yīng),SP還能誘導(dǎo)血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖,加速糖尿病性傷口愈合[7]。因此,SP成為促血管新生的新靶點(diǎn)[6]。SP聯(lián)合BMSC的雙重促血管新生作用將有利于修復(fù)糖尿病血管神經(jīng)損傷。雖然SP可通過MAPK信號(hào)通路抑制BMSC凋亡,促進(jìn)BMSC增殖和成骨分化[8],但是高糖環(huán)境下SP對BMSC增殖、遷移或成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化的作用及其分子機(jī)制還不明了。本文擬對該作用及機(jī)制進(jìn)行探討,為糖尿病皮膚潰瘍等并發(fā)癥的治療提供新思路。

        1 材料與方法

        1.1 主要材料和儀器 BMSC購自武漢普諾賽(Procell)生命科技有限公司,本實(shí)驗(yàn)保存使用。青霉素、鏈霉素、α-MEM培養(yǎng)基和胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購自美國Hyclone公司;SP購自英國Abcam公司;蛋白激酶B(Akt)抑制劑GSK6906693購自美國Selleck公司;細(xì)胞計(jì)數(shù)試劑盒-8(CCK-8)購自日本同仁化學(xué)研究所;磷酸鹽緩沖液(PBS)、蛋白提取試劑盒、BCA蛋白檢測試劑盒購自上海碧云天生物科技公司;人CD31蛋白酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)試劑盒購自美國R&D公司;堿性成纖維細(xì)胞生長因子(bFGF)、血管內(nèi)皮細(xì)胞生長因子(VEGF)重組蛋白均購自美國MyBioSource公司;無血清基質(zhì)膠購自美國BD公司;小鼠抗人CD31抗體,小鼠抗人Akt、p-Akt、GAPDH一抗及HRP標(biāo)記山羊抗小鼠IgG購自Abcam公司。結(jié)晶紫和多聚甲醛購自生工生物工程(上海)股份有限公司。SpectraMax iD3型酶標(biāo)儀(美國Molecular Devices公司);IX53型倒置顯微鏡(日本Olympus公司)。

        1.2 方法

        1.2.1 細(xì)胞高糖模型建立和細(xì)胞培養(yǎng) 采用含10%FBS、100 U/mL青霉素和100 mg/L鏈霉素的α-MEM培養(yǎng)基培養(yǎng)BMSC,并以含25 mmol/L葡萄糖的α-MEM培養(yǎng)基為細(xì)胞高糖模型培養(yǎng)方法。使用對數(shù)期生長狀態(tài)良好的細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

        1.2.2 實(shí)驗(yàn)分組 實(shí)驗(yàn)分為正常對照組(正常環(huán)境培養(yǎng)的BMSC)、高糖對照組(高糖環(huán)境下無任何刺激培養(yǎng)的BMSC)、高糖SP組(高糖環(huán)境下以10μmol/L SP刺激的BMSC)和高糖Akt抑制劑組(高糖環(huán)境下以1 nmol/L GSK690693和10μmol/L SP刺激的BMSC)[9]。

        1.2.3 BMSC成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化 以含10%FBS、10μg/L VEGF、50μg/L bFGF的α-MEM培養(yǎng)基為BMSC成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化誘導(dǎo)液。各組BMSC用成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化誘導(dǎo)液培養(yǎng)12 d,誘導(dǎo)BMSC成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化。

        1.2.4 CCK-8法檢測細(xì)胞增殖 按照細(xì)胞分組情況,接種BMSC于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,37℃、5%CO2培養(yǎng)24 h;每孔添加10μL CCK-8溶液,37℃、5%CO2繼續(xù)培養(yǎng)24 h,實(shí)驗(yàn)重復(fù)5次。SpectraMax iD3酶標(biāo)儀在450 nm波長處檢測各組樣品吸光度(A450)值。

        1.2.5 Transwell細(xì)胞小室遷移實(shí)驗(yàn)檢測BMSC遷移數(shù)目 接種BMSC到孔徑0.8μm的Transwell細(xì)胞小室。根據(jù)BMSC實(shí)驗(yàn)分組,向Transwell細(xì)胞小室下層的24孔細(xì)胞培養(yǎng)板內(nèi)加入相應(yīng)的培養(yǎng)基或試劑,37℃,5%CO2培養(yǎng)12 h。擦除Transwell細(xì)胞小室內(nèi)未遷移細(xì)胞后,0.01 mmol/L PBS沖洗3次,每次1 min。4%多聚甲醛溶液室溫固定60 min,0.5%結(jié)晶紫染色,實(shí)驗(yàn)重復(fù)10次。IX83型倒置顯微鏡隨機(jī)拍照,計(jì)數(shù)BMSC遷移數(shù)目的平均值[10]。

        1.2.6 ELISA檢測CD31蛋白含量 各組BMSC經(jīng)成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化實(shí)驗(yàn)誘導(dǎo)12 d,0.01 mmol/L PBS清洗3次,每次1 min。裂解液于4℃裂解細(xì)胞,1 000 r/min離心5 min,收集上清液,BCA蛋白定量試劑盒檢測總蛋白含量,實(shí)驗(yàn)重復(fù)10次。ELISA試劑盒檢測裂解液中CD31蛋白含量。

        1.2.7 基質(zhì)膠網(wǎng)眼形成實(shí)驗(yàn) 各組成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化后的細(xì)胞接種到預(yù)先鋪無血清基質(zhì)膠的8孔細(xì)胞培養(yǎng)板內(nèi),37℃、5%CO2培養(yǎng)12 h。IX83型倒置顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài),并隨機(jī)拍照各組細(xì)胞的5個(gè)視野,觀察成血管形成能力,實(shí)驗(yàn)重復(fù)4次。Image J 1.8.0軟件計(jì)數(shù)網(wǎng)眼數(shù)量的平均值。

        1.2.8 Western blot檢測Akt、p-Akt蛋白表達(dá) 各組BMSC經(jīng)37℃,5%CO2培養(yǎng)12 h,蛋白提取試劑盒提取總蛋白,BCA法測定蛋白質(zhì)濃度,依次進(jìn)行SDS-PAGE電泳、轉(zhuǎn)膜和封閉等步驟,分別添加一抗小鼠抗人Akt(1∶1 000)、小鼠抗人p-Akt(1∶1 000)和GAPDH(1∶1 000),4℃孵育16 h;再添加HRP標(biāo)記山羊抗小鼠IgG(1∶5 000),室溫避光孵育120 min,增強(qiáng)化學(xué)法顯影,各實(shí)驗(yàn)重復(fù)5次。Gel Image Svstem 4.2軟件分析蛋白條帶灰度的平均值。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用GraphPad Prism 8.0.2.263軟件分析實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù),計(jì)量資料符合正態(tài)分布的以±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間多重比較采用SNK-q檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 SP促進(jìn)高糖環(huán)境下BMSC增殖 與正常對照組比較,高糖對照組A450值降低;高糖SP組A450值較高糖對照組升高;與高糖SP組相比,高糖Akt抑制劑組的A450值降低(P<0.01),見表1。

        2.2 SP促進(jìn)高糖環(huán)境下BMSC遷移 Transwell細(xì)胞小室遷移實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),與正常對照組比較,高糖對照組BMSC遷移數(shù)目減少;高糖SP組BMSC遷移數(shù)目較高糖對照組增多;與高糖SP組相比,高糖Akt抑制劑組的BMSC遷移數(shù)目減少(P<0.01),見圖1,表1。

        Tab.1 Comparison of BMSC results and Akt pathway-related protein levels between the four groups表1 各組BMSC實(shí)驗(yàn)結(jié)果以及Akt通路相關(guān)蛋白表達(dá)水平的比較 (±s)

        Tab.1 Comparison of BMSC results and Akt pathway-related protein levels between the four groups表1 各組BMSC實(shí)驗(yàn)結(jié)果以及Akt通路相關(guān)蛋白表達(dá)水平的比較 (±s)

        *P<0.05,**P<0.01;a與正常對照組比較,b與高糖對照組比較,c與高糖SP組比較,P<0.05。

        組別正常對照組高糖對照組高糖SP組高糖Akt抑制劑組F A450(n=5)0.258±0.006 0.208±0.004a 0.322±0.008b 0.218±0.003c 346.000*遷移數(shù)目(×103,n=10)253.94±9.33 166.66±7.63a 278.53±9.49b 176.47±8.14c 370.700**CD31蛋白含量(ng/L,n=10)627.11±43.32 312.20±12.53a 529.28±12.74b 317.76±10.85c 384.200**基質(zhì)膠網(wǎng)眼數(shù)目(個(gè),n=4)32.23±0.71 23.33±0.71a 29.10±0.70b 15.43±0.54c 364.200**Akt蛋白相對表達(dá)量(n=5)1.179±0.090 0.851±0.044a 1.314±0.055b 0.832±0.067c 52.900**p-Akt蛋白相對表達(dá)量(n=5)0.827±0.022 0.751±0.038a 1.134±0.098b 0.490±0.027c 90.850**

        Fig.1 The migration of BMSC in each group detected by Transwell cell migration assay(crystal violet staining,×200,Scale bar=50μm)圖1 Transwell細(xì)胞小室遷移實(shí)驗(yàn)檢測各組BMSC遷移情況(結(jié)晶紫染色,×200,標(biāo)尺=50μm)

        2.3 SP能促進(jìn)高糖環(huán)境下BMSC成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化

        2.3.1 SP能促進(jìn)高糖環(huán)境下BMSC表達(dá)CD31蛋白 ELISA檢測各組成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化后細(xì)胞的CD31蛋白含量發(fā)現(xiàn),與正常對照組比較,高糖對照組CD31蛋白含量明顯降低;高糖SP組CD31蛋白含量較高糖對照組顯著升高;與高糖SP組相比,高糖Akt抑制劑組CD31蛋白含量降低(P<0.01),見表1。2.3.2 SP能促進(jìn)高糖環(huán)境下BMSC形成基質(zhì)膠網(wǎng)眼 基質(zhì)膠管網(wǎng)眼形成實(shí)驗(yàn)評估各組BMSC成血管分化后的細(xì)胞功能。相對于高糖對照組,正常對照組BMSC具有典型的網(wǎng)眼形態(tài),排列整齊;與高糖對照組比較,高糖SP組BMSC表現(xiàn)比較完整的網(wǎng)眼結(jié)構(gòu),排列比較有序;高糖Akt抑制劑組BMSC形成網(wǎng)眼的細(xì)胞比較分散。與正常對照組比較,高糖對照組網(wǎng)眼數(shù)目減少;高糖SP組網(wǎng)眼數(shù)目較高糖對照組增多;與高糖SP組相比,高糖Akt抑制劑組的網(wǎng)眼數(shù)目減少,見圖2,表1。

        2.4 SP能促進(jìn)高糖環(huán)境下BMSC表達(dá)Akt和p-Akt蛋白 與正常對照組比較,高糖對照組Akt和p-Akt蛋白相對表達(dá)量均降低;高糖SP組Akt和p-Akt蛋白相對表達(dá)量較高糖對照組明顯升高;與高糖SP組相比,高糖Akt抑制劑組的Akt和p-Akt蛋白相對表達(dá)量均降低(P<0.01),見圖3,表1。

        Fig.2 The mesh formation of BMSC in each group detected by matrix mesh formation assay(×100,Scale bar=100μm)圖2 基質(zhì)膠網(wǎng)眼形成實(shí)驗(yàn)檢測各組BMSC形成的網(wǎng)眼(×100,標(biāo)尺=100μm)

        Fig.3 The protein expression levels of Akt and p-Akt in each group detected by Western blot assay圖3 Western blot檢測各組細(xì)胞Akt、p-Akt蛋白表達(dá)

        3 討論

        糖尿病易并發(fā)微血管及神經(jīng)纖維病變,繼而導(dǎo)致微循環(huán)障礙及內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)失調(diào)。改善微循環(huán)將有利于局部組織血液供應(yīng),逆轉(zhuǎn)高糖缺氧性血管或神經(jīng)組織損傷,對臨床改善糖尿病及其并發(fā)癥具有積極意義。BMSC能分泌白細(xì)胞介素-10(IL-10)、基質(zhì)細(xì)胞衍生因子-1α(SDF-1α)及VEGF等因子,修復(fù)血管或神經(jīng)組織的損傷[11-12]。因此,BMSC可應(yīng)用于肝臟疾?。?3]、心臟疾?。?4]等治療。

        研究發(fā)現(xiàn),若局部組織形成高水平的CXCL8、SDF-1α、CXCL13等因子,可以有效促進(jìn)外源性BMSC歸巢,增強(qiáng)BMSC的再生修復(fù)作用[15]。目前,BMSC主要經(jīng)血管進(jìn)行移植,提高局部組織細(xì)胞因子水平將有利于動(dòng)員外源的BMSC歸巢,這是通過移植BMSC治療疾病的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。人體神經(jīng)纖維與血管相伴而行,神經(jīng)生長因子、血管活性因子共同促進(jìn)神經(jīng)或血管的生長發(fā)育[16]。研究發(fā)現(xiàn),神經(jīng)營養(yǎng)因子-3(NT-3)除促進(jìn)神經(jīng)纖維生長和神經(jīng)遞質(zhì)釋放外,還可誘導(dǎo)血管內(nèi)皮細(xì)胞生長和血管新生[17]。BMSC可表達(dá)NGF的神經(jīng)營養(yǎng)因子受體激酶A(neurotrophin receptor kinase,TrkA)[18],分泌基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP)重塑細(xì)胞外基質(zhì),促進(jìn)血管新生[19]。SP是速激肽(Tachykinins,TKs)家族成員,廣泛分布于哺乳動(dòng)物的神經(jīng)系統(tǒng)[20]。SP除了誘導(dǎo)BMSC增殖,還介導(dǎo)BMSC遷移,促進(jìn)傷口愈合[7],上調(diào)BMSC表達(dá)SDF-1α和N-鈣黏蛋白,促進(jìn)BMSC成骨分化[21]。因此,SP具有較好的招募干細(xì)胞歸巢及再生修復(fù)作用。雖然SP是新的促血管新生靶點(diǎn),但SP能否有效招募移植的BMSC歸巢至局部組織,促進(jìn)BMSC成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化,發(fā)揮雙重促血管新生作用還需要深入研究。如能充分利用SP促進(jìn)BMSC遷移或成血管活性,將提高移植BMSC的再生作用。

        本實(shí)驗(yàn)以25 mmol/L葡萄糖建立的細(xì)胞高糖模型能較好模擬糖尿病高血糖狀態(tài)。CCK-8實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證了與高糖對照組相比,SP能夠促進(jìn)高糖環(huán)境下BMSC增殖過程。田麗等[22]采用1、10、1×103、1×104、1×105和1×106nmol/L等6個(gè)濃度的SP干預(yù)人牙周膜細(xì)胞(hPDLC),結(jié)果發(fā)現(xiàn),隨著SP濃度的增高,SP通過激活組蛋白去乙?;福℉DAC),導(dǎo)致H3組蛋白去乙?;龠M(jìn)hPDLC增殖,修復(fù)牙周組織。一項(xiàng)對食管癌的研究中也發(fā)現(xiàn),SP可通過與EC109食管癌細(xì)胞的神經(jīng)激肽1受體(neurokinin 1 receptor,NK1R)結(jié)合,上調(diào)發(fā)狀分裂相關(guān)增強(qiáng)子1(hairy and enhancer of split 1,HES-1)蛋白表達(dá)而提高EC109食管癌細(xì)胞的增殖能力[23]。許多實(shí)驗(yàn)表明,SP能促進(jìn)腫瘤細(xì)胞增殖,抑制其凋亡,廣泛參與頭頸癌、食管癌等腫瘤的發(fā)生過程[24-25]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果與相關(guān)研究結(jié)論基本一致。此外,本實(shí)驗(yàn)還發(fā)現(xiàn)Akt抑制劑能夠阻滯SP對BMSC增殖的促進(jìn)作用,提示Akt通路在SP對BMSC增殖的促進(jìn)作用中起到一定作用。

        角膜等組織的感覺神經(jīng)末梢分泌的SP對神經(jīng)纖維生長具有較好促進(jìn)作用[26]。SP介導(dǎo)成纖維細(xì)胞的遷移,促進(jìn)傷口愈合[27]。本實(shí)驗(yàn)通過Transwell細(xì)胞小室遷移實(shí)驗(yàn)證實(shí)SP在高糖環(huán)境下也能夠促進(jìn)BMSC遷移,這提示糖尿病狀態(tài)下,SP能啟動(dòng)BMSC歸巢,對提高糖尿病患者體內(nèi)BMSC的利用率,修復(fù)糖尿病組織損傷具有重要意義。此外,本實(shí)驗(yàn)還發(fā)現(xiàn),Akt抑制劑組BMSC遷移數(shù)目降低,這可能是由于GSK690693干擾Akt磷酸化,阻滯SP-Akt信號(hào)通路參與細(xì)胞遷移的過程所致。因此,筆者認(rèn)為SP誘導(dǎo)高糖環(huán)境下BMSC增殖和遷移,減少BMSC凋亡的作用可能與Akt信號(hào)通路相關(guān)。研究發(fā)現(xiàn),阿瑞匹坦(Aprepitant)能夠阻斷SP與NK1R結(jié)合,下調(diào)PI3K-Akt-NF-κB通路蛋白的表達(dá),阻滯細(xì)胞周期于G2/M期,抑制人食管鱗癌細(xì)胞KYSE-30的生長[28]。也有研究揭示了SP可活化膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)ERK信號(hào)通路,介導(dǎo)小鼠口腔頜面部疼痛的傳導(dǎo)[29],由此可見SP的作用機(jī)制比較復(fù)雜,還需要今后利用多組學(xué)實(shí)驗(yàn)進(jìn)行深入研究。

        有研究發(fā)現(xiàn),SP不僅促進(jìn)神經(jīng)生長,還能夠促使血管新生,調(diào)節(jié)血管擴(kuò)張過程[30]。SP可上調(diào)VEGF和SDF-1α表達(dá),改善糖尿病皮膚潰瘍等微循環(huán)障礙,促進(jìn)糖尿病傷口愈合[7]。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)高糖環(huán)境下,SP能促進(jìn)BMSC成血管內(nèi)皮細(xì)胞分化,再次豐富了血管與神經(jīng)纖維相互作用,神經(jīng)因子能夠促進(jìn)血管生長的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。利用SP等神經(jīng)因子募集或保護(hù)移植的BMSC治療糖尿病皮膚潰瘍、糖尿病心臟病等糖尿病并發(fā)癥具有較好的應(yīng)用前景。后續(xù)將著重探討高糖條件下SP等神經(jīng)因子對BMSC基因表達(dá)的影響,篩選與BMSC相互作用的神經(jīng)因子,為深入探索神經(jīng)因子和干細(xì)胞的關(guān)系奠定基礎(chǔ)。

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