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        高效液相色譜法同時(shí)檢測(cè)油脂類(lèi)藥用輔料中膽甾醇、豆甾醇和β-谷甾醇的含量

        2022-03-30 02:09:40尹君胡鵬輝舒暢中國(guó)藥科大學(xué)藥物質(zhì)量與安全預(yù)警教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室南京210009中國(guó)藥科大學(xué)藥學(xué)院南京211198
        中南藥學(xué) 2022年3期
        關(guān)鍵詞:谷甾醇甾醇輔料

        尹君,胡鵬輝,舒暢*(1.中國(guó)藥科大學(xué)藥物質(zhì)量與安全預(yù)警教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京 210009;2.中國(guó)藥科大學(xué)藥學(xué)院,南京 211198)

        《中國(guó)藥典》自1953年開(kāi)始收載脂肪與脂肪油等油脂類(lèi)藥用輔料的分析方法,2020年版《中國(guó)藥典》四部亦收載了油脂類(lèi)藥用輔料的分析方法,包括相對(duì)密度、折光率、皂化值、雜質(zhì)、水分與揮發(fā)物等的分析檢測(cè),但是對(duì)于這些油脂類(lèi)藥用輔料的甾醇、脂肪酸、

        ω

        -3 脂肪酸的組成和分類(lèi)等分析方法尚未收載。目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了200多種甾醇化合物,一般存在于復(fù)雜的生物基體中,含量很低,常見(jiàn)的甾醇化合物有膽甾醇、豆甾醇、

        β

        -谷甾醇、麥角甾醇等,甾醇化合物具有抗腫瘤、消炎、降低心臟疾病風(fēng)險(xiǎn)等生理功能。1999年FDA 批準(zhǔn)了植物甾醇及其酯類(lèi)使用“健康聲稱”標(biāo)簽,2004年歐盟批準(zhǔn)在特定食品中使用植物甾醇,2010年我國(guó)衛(wèi)生部批準(zhǔn)并認(rèn)證植物甾醇為新資源食品。近年來(lái),甾醇化合物在醫(yī)藥、化工、食品等領(lǐng)域備受關(guān)注,需求量逐年遞增。因此,建立一種快速、簡(jiǎn)便、靈敏度高、準(zhǔn)確度好且成本低的甾醇化合物分析方法,對(duì)提高我國(guó)藥品與食品的質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn)具有重要意義。甾醇的檢測(cè)方法有很多,包括化學(xué)分析法、色譜法以及聯(lián)用技術(shù)等?;瘜W(xué)分析法主要有毛地黃皂苷法和酶法,只能檢測(cè)甾醇的總量;色譜法中,薄層色譜法主要用于甾醇化合物的定性分析,無(wú)法達(dá)到準(zhǔn)確定量,且靈敏度和穩(wěn)定性較差;氣相色譜法及氣質(zhì)聯(lián)用技術(shù)進(jìn)樣口和檢測(cè)器溫度較高,易使待測(cè)組分分解或破壞,而硅烷衍生化技術(shù)操作煩瑣,且檢測(cè)成本較高;液質(zhì)聯(lián)用技術(shù)靈敏度高,選擇性強(qiáng),但是儀器操作及維護(hù)煩瑣,對(duì)分析人員要求較高。高效液相色譜法是一種常見(jiàn)的色譜技術(shù),利用皂化和萃取方式,將甾醇化合物從樣本中分離純化后直接進(jìn)樣分析,具有靈敏度高、準(zhǔn)確度高、穩(wěn)定性好,且易于操作,簡(jiǎn)便快捷,分析成本較低等優(yōu)點(diǎn)。因此,本文采用高效液相色譜法同時(shí)檢測(cè)油脂類(lèi)藥用輔料大豆油中膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇等甾醇成分的含量。

        圖1 3 種甾醇組分的化學(xué)結(jié)構(gòu)Fig 1 Chemical structural of three phytosterols

        1 儀器與試藥

        1.1 試藥

        膽甾醇(純度>99.7%)、

        β

        -谷甾醇(純度>95.0%)、豆甾醇(純度>90.0%)(阿拉丁試劑);甲醇、乙腈和異丙醇(色譜純,美國(guó)TEDIA 試劑公司);氫氧化鉀、乙醇、乙醚、丙酮等試劑(均為分析純,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司)。實(shí)驗(yàn)用水為實(shí)驗(yàn)室純水儀所制。

        1.2 儀器

        CPA225D 電子天平(Sartorius,德國(guó));KH-250DE 數(shù)控超聲波清洗器(昆山禾創(chuàng)超聲儀器有限公司);HC-2062 高速離心機(jī)(山東百歐醫(yī)療科技有限公司);WH-3 渦旋儀(上海滬西分析儀器廠有限公司);Milli-Q 純水儀(美國(guó)Merk Millipore);高效液相色譜儀(美國(guó)Agilent),配置高壓二元泵(G1312A)、真空脫氣機(jī)(G1322A)、自動(dòng)進(jìn)樣器(G1367A)、柱溫箱(G1316A)、紫外檢測(cè)器(G1314A)和Agilent 數(shù)據(jù)采集系統(tǒng)。

        2 方法與結(jié)果

        2.1 溶液配制

        2.1.1 對(duì)照品溶液 分別精密稱取膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇對(duì)照品10.0 mg 置于10 mL 棕色量瓶中,用乙腈-甲醇-異丙醇(90∶9∶1,

        V/V/V

        )混合液(以下簡(jiǎn)稱稀釋劑)完全溶解后稀釋至刻度,渦旋混勻,即得各甾醇單體對(duì)照品儲(chǔ)備液,4℃避光冷藏備用。分別精密稱取

        β

        -谷甾醇、豆甾醇、膽甾醇對(duì)照品10.0 mg 置于同一10 mL 棕色量瓶中,用稀釋劑稀釋至刻度,渦旋混勻,即得甾醇混合對(duì)照品儲(chǔ)備液,4 ℃避光冷藏備用。精密量取上述混合對(duì)照品儲(chǔ)備液1.0 mL 置于10 mL 棕色量瓶中,用稀釋劑稀釋至刻度,即得甾醇混合對(duì)照品溶液,4℃避光冷藏備用。

        2.1.2 供試品溶液 稱取氫氧化鉀粉末12 g,用10 mL 水溶解后,乙醇稀釋至100 mL,搖勻備用,即氫氧化鉀乙醇溶液。稱取藥用輔料大豆油5.0 g置于圓底燒瓶中,加氫氧化鉀乙醇溶液50 mL,加熱回流1 h 后,放冷至25℃。將上述溶液轉(zhuǎn)移至分液漏斗中,50 mL 水潤(rùn)洗圓底燒瓶2 次后,并入分液漏斗。100 mL 乙醚提取3 次后,合并乙醚提取液,用40 mL 水洗滌乙醚提取液3 次。依次用40 mL 的3%氫氧化鉀溶液、水洗滌乙醚層各3 次,直至最后洗液加酚酞指示液2 滴不顯紅色。室溫旋蒸除去乙醚,用丙酮6 mL 溶解殘?jiān)诳諝饬髦袚]去丙酮,在105℃干燥至連續(xù)2 次稱重之差不超過(guò)0.3 mg。加入稀釋劑 10 mL 溶解不皂化物,用0.45 μm 濾膜過(guò)濾,得供試品溶液,4℃避光冷藏備用。

        2.2 色譜條件

        采用Agilent Inspire PHP(250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱,流動(dòng)相為甲醇和水(90∶10,

        V/V

        ),等度洗脫,流速1.0 mL·min,檢測(cè)波長(zhǎng)210 nm,柱溫 30℃,進(jìn)樣體積20 μL,自動(dòng)進(jìn)樣器溫度4℃。

        2.3 方法學(xué)驗(yàn)證

        2.3.1 系統(tǒng)適用性試驗(yàn) 分別取空白溶液,膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇單個(gè)對(duì)照品溶液和混合對(duì)照品溶液適量,進(jìn)樣測(cè)定,記錄色譜圖。在該色譜條件下,3 種甾醇組分的出峰順序依次是膽甾醇(25.4 min)、豆甾醇(26.8 min)和

        β

        -谷甾醇(28.9 min),分離度均大于1.8,達(dá)到完全分離要求。混合對(duì)照品溶液中膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇的理論塔板數(shù)分別為23 329、22 512 和 24 244,對(duì)稱因子均在0.96 ~1.04,無(wú)明顯拖尾或前沿現(xiàn)象。

        2.3.2 專屬性試驗(yàn) 分別取空白溶液、混合對(duì)照品溶液、供試品溶液適量,進(jìn)樣測(cè)定,記錄色譜圖。由圖2 結(jié)果可知,在該色譜條件下,空白溶液和輔料對(duì)3 種甾醇測(cè)定無(wú)明顯干擾,供試品中3 種甾醇組分的出峰順序與對(duì)照品溶液保持一致,并且分離度均大于2.6。

        圖2 專屬性試驗(yàn)色譜圖Fig 2 HPLC chromatogram of specificity test

        2.3.3 線性關(guān)系考察 精密量取對(duì)照品儲(chǔ)備液適量,分別置于10 mL 棕色量瓶中,加稀釋劑稀釋至刻度,渦旋混勻,得到一系列質(zhì)量濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液(1、2、5、10、20 μg·mL)。按“2.2”項(xiàng)下色譜條件分別進(jìn)樣,記錄色譜圖。以色譜峰面積積分值(

        Y

        )為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度(

        X

        ,μg·mL)為橫坐標(biāo),進(jìn)行線性回歸分析,結(jié)果見(jiàn)表1。

        表1 3 種甾醇組分的線性關(guān)系考察結(jié)果
        Tab 1 Linearity regression equation of three phytoterols

        化合物回歸方程R2膽甾醇 Y =9.218X-2.2140.9999豆甾醇 Y =10.79X-1.0870.9999 β-谷甾醇Y =7.857X-0.77550.9999

        2.3.4 定量限與檢測(cè)限 將對(duì)照品儲(chǔ)備液加稀釋劑逐級(jí)稀釋后進(jìn)樣分析,當(dāng)信噪比(

        S/N

        )約為3時(shí),膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇的檢測(cè)限分別為0.312、0.331 和0.301 μg·mL;當(dāng)

        S/N

        約為 10時(shí),膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇的定量限分別為0.983、1.01 和0.997 μg·mL。2.3.5 回收率 精密稱取同一批樣品,按照“2.1.2”項(xiàng)下方法制備,分別加入80%、100%、120%的混合對(duì)照品儲(chǔ)備液制備供試品溶液,每個(gè)濃度平行配制3 份,分別進(jìn)樣,記錄色譜圖,計(jì)算回收率。結(jié)果膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇的回收率分別在96.02%~97.58%、96.70%~99.47%、97.34%~100.2%,平均回收率分別為97.66%、98.04%、98.82%(

        n

        =3),

        RSD

        分別為1.7%、1.4%、1.4%。結(jié)果表明該方法準(zhǔn)確度良好。2.3.6 精密度和重復(fù)性 精密量取同一混合對(duì)照品溶液,連續(xù)進(jìn)樣6 次,結(jié)果膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇的峰面積

        RSD

        分別為0.11%、0.40%和0.46%,表明儀器精密度良好。按照“2.1.2”方法平行制備3 份供試品溶液,進(jìn)樣分析。結(jié)果膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇含量平均值的

        RSD

        分別為2.7%、0.47%和0.99%,表明方法的重復(fù)性良好。2.3.7 穩(wěn)定性 分別取同一混合對(duì)照品溶液和同一供試品溶液,室溫下放置0、4、8、12、24 h,進(jìn)樣分析,記錄色譜圖。結(jié)果混合對(duì)照品溶液和供試品溶液中3 種成分峰面積

        RSD

        均<2.4%,表明混合對(duì)照品溶液和供試品溶液室溫放置24 h穩(wěn)定。

        2.4 樣品的測(cè)定

        隨機(jī)抽取5 批樣品,按照“2.1.2”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,進(jìn)樣分析,分別記錄3 種甾醇的峰面積,結(jié)果見(jiàn)表3。其中,豆甾醇的含量相對(duì)較高。

        表3 不同樣品的混合甾醇中 3 種甾醇組分的含量( =3,mg·kg)
        Tab 3 Content of three phytosterols in different samples ( =3,mg·kg)

        樣品膽甾醇豆甾醇β-谷甾醇樣品14.341±0.08510.82±0.96 4.312±0.064樣品24.500±0.05513.36±0.06 4.442±0.034樣品35.887±0.05418.36±0.03 6.551±0.064樣品47.202±0.28215.51±0.22 5.463±0.055樣品52.368±0.07813.90±0.08 4.584±0.561

        3 討論

        3.1 色譜柱的選擇

        分別選擇了Agilent Polaris 5 C-A(250 mm×4.6 mm,5 μm)、Shimadzu WondaSil CSuperb(250 mm×4.6 mm,5 μm)和 Agilent Inspire PHP(250 mm×4.6 mm,5 μm)3 種色譜柱進(jìn)行分離。結(jié)果顯示,膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇在Agilent Polaris 5 C-A 色譜柱上保留較強(qiáng),拖尾現(xiàn)象嚴(yán)重,出峰時(shí)間較長(zhǎng);Shimadzu WondaSil CSuperb 色譜柱未能實(shí)現(xiàn)3 種甾醇組分的完全分離,峰形較差;在相同的流動(dòng)相下,Agilent Inspire PHP 能夠?qū)崿F(xiàn)3 種甾醇組分的完全分離,且色譜峰峰形對(duì)稱,能夠滿足定量分析要求。因此,最終采用Agilent Inspire PHP(250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱分析。

        3.2 波長(zhǎng)的選擇

        采用全波長(zhǎng)法在190 ~400 nm 下分別對(duì)膽甾醇、

        β

        -谷甾醇和豆甾醇進(jìn)行掃描,結(jié)果顯示3種甾醇組分在210 nm 左右有最強(qiáng)吸收,因此選用210 nm 作為檢測(cè)波長(zhǎng)。

        3.3 流動(dòng)相的選擇

        本試驗(yàn)考察了不同比例甲醇和水、不同比例乙腈和水條件下對(duì)照品溶液中3 種甾醇組分的色譜峰峰形及分離情況。結(jié)果顯示,使用100%甲醇時(shí)檢測(cè)信號(hào)變強(qiáng),峰形變窄且對(duì)稱,但膽甾醇和豆甾醇沒(méi)有達(dá)到完全分離狀態(tài);當(dāng)甲醇和水的比例為90∶10(

        V/V

        )時(shí),3 種甾醇組分達(dá)到完全分離,柱效較高,峰形對(duì)稱。因此,流動(dòng)相最終選擇甲醇和水(90∶10,

        V/V

        )。

        3.4 柱溫的選擇

        本試驗(yàn)考察了柱溫對(duì)3 種甾醇組分的分析影響,當(dāng)柱溫為25℃時(shí),峰形變寬,且保留時(shí)間較長(zhǎng);隨著溫度的增加,保留時(shí)間變短,峰形變窄;當(dāng)溫度升高至35 ℃時(shí),3 種組分未達(dá)到完全分離,且溫度較高會(huì)影響色譜柱壽命。因此,本試驗(yàn)的柱溫設(shè)定為30℃。

        通過(guò)優(yōu)化色譜柱類(lèi)型、流動(dòng)相比例、柱溫、檢測(cè)波長(zhǎng)等色譜條件,建立了藥物中膽甾醇、豆甾醇和

        β

        -谷甾醇的HPLC 定量分析方法,具有靈敏度高,簡(jiǎn)便快速且穩(wěn)定性好,線性范圍寬,分析成本低,適用于含有上述3 種甾醇組分的藥用輔料、食品、藥品、中藥的定量分析。

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