陳 銳,陳金萍，楊雯翔，鄧致運，程文翰*

(1.荊楚理工學院 生物工程學院，湖北 荊門 448000； 2.特色花卉生物育種湖北省工程研究中心，湖北 荊門 448000；3.新疆農業(yè)大學 農學院，新疆維吾爾自治區(qū) 烏魯木齊 830052)

多胺(polyamines, 簡稱PAs)存在于幾乎所有生物體內，多胺分為腐胺(putrescine, 簡稱Put)、亞精胺(spermidine, 簡稱Spd)、精胺(spermine, 簡稱Spm)及熱精胺[1].多胺在植物體內被認為像“第二信使”般發(fā)揮重要作用，如調節(jié)保衛(wèi)細胞質膜中依賴電壓的內向K+通道，并調節(jié)氣孔孔徑[2].研究表明,多胺是一種植物生長調節(jié)劑[3],能參與高等植物體內的許多生理過程，諸如形態(tài)發(fā)生、根系形成、花發(fā)育、果實發(fā)育以及衰老等.多胺可在外植體成花過程中積累，是成花的物質基礎[4].多胺的合成從鳥氨酸的合成開始，腐胺是合成途徑的中心產物.腐胺是精氨酸經兩條不同途徑形成的：一條是由鳥氨酸通過鳥氨酸脫羧酶脫羧直接形成腐胺，另一條是由精氨酸經過精胺酸脫羧酶的催化形成鯡精胺，鯡精胺水解成N-氨甲基腐胺后再形成腐胺.腐胺再經連續(xù)加入氨丙基殘基生成亞精氨和精氨，而氨丙基是由S-腺苷甲硫氨酸脫羧酶催化S-腺苷甲硫氨酸(SAM)脫羧產生的脫羧SAM而來.脫羧S-腺苷甲硫氨酸除了作為甲基的供體外，也是多胺和乙烯合成的共同前體.多胺經由二胺氧化酶(DAO)和多胺氧化酶(PAO)代謝產生過氧化氫，而過氧化氫是一種重要的信號分子，參與調控各種生物過程.此外，多胺合成上游的前體精氨酸，在一氧化氮合成酶作用下可以合成一氧化氮(NO)，而NO也是生物體內最重要的信號分子之一，具有很重要的生物學功能[5-6].在玉米幼胚的離體培養(yǎng)中，外源添加適量多胺，可有效提高根系活力，促進再生，再生苗株高、葉長、葉寬、鮮重均有顯著增加[7].棉花的相關研究表明,外源多胺可改變內源多胺代謝,使內源多胺水平增加；在陸地棉體細胞胚胎發(fā)生過程中,多胺可提高誘導成苗率，表現為促進下胚軸產生愈傷組織、胚性愈傷組織分化、早期胚狀體形成、成熟胚分化，最后形成再生植株，在不同時期,發(fā)揮主要作用的多胺不同[8].伏令夏橙的胚性愈傷組織中多胺含量較非胚性愈傷組織高,多胺對其體細胞胚發(fā)生表現為正調控[9].前人在對棉花[8]和伏令夏橙[9]的研究中還發(fā)現，腐胺有利于體細胞胚胎發(fā)生，隨著體胚發(fā)生過程，腐胺逐漸轉化為亞精胺和精胺，在胚狀體時期，亞精胺和精胺的水平顯著增加并達到最大值.在枸杞[10]中，腐胺含量先升后降，最后再升至最高，亞精胺只在胚性細胞分化早期出現，精胺只在胚狀體發(fā)育晚期出現.此外,多胺可增強植物對環(huán)境的適應性,提高不同脅迫下植物的抗性，促進生長[11-17].

野薔薇(RosamultifloraThunb.)是薔薇科薔薇屬雙子葉植物，用途廣泛，具有廣闊的開發(fā)應用前景，但植株的高效再生是前提，而關于野薔薇體細胞胚胎發(fā)生的報道較少，且體細胞胚誘導率較低[18].多胺在野薔薇組織培養(yǎng)方面的作用目前未見報道,野薔薇不同器官和不同培養(yǎng)時期的組織多胺含量尚不清楚，多胺提取的方法及測定體系也鮮見報道.關于其他植物組織多胺提取的報道較多,如茶葉[19]、水稻[20]、棉花[21]等均采用高效液相色譜法，以苯甲酰氯做衍生化反應劑，以甲醇為溶劑.但多胺含量受基因差異表達影響，不同種植物、不同器官，多胺含量也不盡相同[22]，因此，多胺的提取方法也可能不同，需針對不同植物材料建立不同的方法體系.筆者參照程文翰等[21]的方法,以野薔薇為材料,初步探索野薔薇組織多胺的提取方法及高效液相色譜(HPLC)測定方法,并用該法測定野薔薇組培不同階段愈傷組織及莖、葉、花等器官游離多胺的含量，探索野薔薇體細胞胚胎發(fā)生過程中內源多胺的變化規(guī)律.

1 材料與方法

1.1 植物材料

試驗所有樣品材料均為當地野薔薇,于荊楚理工學院內取樣.分別取花瓣、花蕊、花苞、莖、葉片,培養(yǎng)3 h，3 d，5 d后的葉片,培養(yǎng)25 d的愈傷組織為材料,上述材料摘取后立即用液氮冷凍,后置于-70 ℃超低溫冰箱中保存,備用.

1.2 植物組織培養(yǎng)

在野薔薇生長期(4月初)摘取新鮮幼嫩葉片,流水沖洗盡表面塵土后,移到超凈工作臺內，用乙醇和升汞消毒滅菌，即得到處理好的無菌野薔薇葉片.滅菌流程如下：先用70%～75%乙醇浸泡30～60 s,立即用無菌水清洗3～5次,再用0.1%～0.2%的升汞浸泡10 min,再次用無菌水清洗3～5次.

將上述無菌葉片切成邊長為0.5 cm × 0.5 cm的小四方塊,接種于愈傷組織誘導培養(yǎng)基中,每皿均勻接種6片，接種時，應使葉片背面接觸培養(yǎng)基,葉片正面朝上.完成接種后,放置于無菌組培室培養(yǎng)，培養(yǎng)條件為：溫度28 ℃、光照周期16 h光照/8h黑暗、光照強度2 000～3 000 lx.

1.3 試劑與儀器

多胺標準品均購自Sigma公司，純度≥99%；甲醇為色譜純；高氯酸、氫氧化鈉、氯化鈉、苯甲酰氯、乙醚均為國產分析純；水為超純水，電阻率為18.25 MΩ·cm；高效液相色譜儀型號為Waterse2695型，色譜柱型號為Waters C18 20 cm；低溫離心機型號為湘儀TGL-16.

1.4 試驗方法

1.4.1 多胺標準品測定

參考程文翰等[21]的方法，標準品測定：將多胺(Put, Spd, Spm)標準品配置成1 mmol·L-1的混合貯液，取40 μL混合液進行苯甲?；磻皽y定，繪制標準曲線.

1.4.2 野薔薇器官及組織多胺的提取與測定

分別稱取0.2 g各野薔薇材料，用液氮研磨成粉末，轉入2 mL離心管中，立即加入1.5 mL 5%預冷的高氯酸，渦旋2 min，冰浴浸提1 h后12 000 r·min-14 ℃離心20 min，取300 μL上清液于新的2mL離心管中，加入4 μL苯甲酰氯、300 μL 2 mol·L-1NaOH，渦旋30 s，37 ℃水浴衍生化反應25 min后，加入400 μL飽和NaCl 、500 μL乙醚，渦旋1 min， 5 000 r·min-14 ℃離心5 min，小心吸取上層300 μL乙醚相于1.5 mL離心管中，打開管蓋，4 000 r·min-125 ℃離心，待乙醚完全揮發(fā)后，加入300 μL甲醇，渦旋5～10 min，靜置溶解1 h，最后8 000 r·min-14 ℃離心1.5 min以去除提取過程中可能含有的少量雜質，收集苯甲酰多胺的甲醇溶解液至樣品瓶，再加甲醇定容至500 μL，待HPLC檢測.每個野薔薇樣品生物學重復2次，技術重復3次.數據采用Excel 2019版、SPSS 26.0軟件處理，origin 9.6.5軟件繪圖.HPLC檢測參數：流動相為V(甲醇)∶V(水)(60∶40)；進樣量15 μL；流速1 mL·min-1；柱溫30 ℃；檢測波長254 nm；保留時間15 min.

1.5 方法設計

1.5.1 苯甲酰化反應溫度

參照劉俊等[23]對苯甲酰氯衍生化反應時不同溫度的探索，試驗設置30，37，40 ℃ 3個不同溫度，以探索野薔薇苯甲?；磻淖罴褱囟?

1.5.2 冰浴浸提液取用量

探索不同冰浴浸提液取用量對多胺提取的影響，比較200，300，400 μL 3個不同體積取用量，以確定最終的反應體系.

1.6 回收率測定

試驗采用梯度加標回收的方法，隨機選取花苞和葉片為樣品材料進行回收率試驗.取不同體積的樣品和標準品冰浴浸提液，按照2∶1 , 1∶1 , 1∶2的配比混合，然后按照1.4.2的流程反應、提取分離多胺并測定其含量，每個處理重復3次.

2 結果與分析

2.1 多胺標準品HPLC測定

將3種多胺標準品反應液按比例加入甲醇，以此推算標準品濃度.經HPLC檢測后，對測定結果以濃度為橫坐標，峰面積為縱坐標作圖，得到標準曲線(如圖1所示).標準曲線的線性方程：腐胺Puty=0.003 9x+0.001 2(R2=0.994 5)；亞精胺Spdy=0.003 9x+0.000 8(R2=0.998 2)；精胺Spmy=0.000 9x+0.002 7(R2=0.996 8).

3種多胺混合液經HPLC測定，分離出單個多胺的色譜峰，峰型良好無重疊，可得到單個多胺標準品的出峰時間(保留時間)，以此確定待測樣品中的色譜峰為何種多胺.由于氨基酸數目不同，Put(二胺)、Spd(三胺)、Spm(四胺)苯甲酰化反應后3種多胺的極性差異較大，在分離過程中，3種多胺依次出峰，未出現峰重疊現象(如圖2所示).

圖1 多胺標準曲線 圖2 多胺標準品測定色譜圖

2.2 野薔薇內源多胺的提取及測定

試驗以葉片為材料，比較了苯甲?；磻獪囟?30, 37,40 ℃)、不同冰浴浸提液用量(200,300,400 μL)對野薔薇多胺提取的影響，HPLC檢測結果表明(如表1所示)：3個不同溫度對提取結果無顯著性差異；冰浴浸提液為300 μL時，精胺峰面積最大，顯著大于取400 μL浸提液的峰面積，而亞精胺峰面積無顯著差異，300 μL為冰浴浸提液最佳反應用量.綜合3種多胺的提取效果，最終選擇37 ℃作為反應溫度，300 μL為最佳體系.

表1 不同處理下多胺的相對含量 mg·g-1

2.3 野薔薇組織培養(yǎng)物HPLC測定

按照1.4.2方法中所列參數，對野薔薇組織做HPLC檢測.樣品中3種多胺的出峰時間分別為：腐胺(Put)3.5 min，亞精胺(Spd)5.5 min，精胺(Spm)9.1 min，色譜圖如圖3所示，3種多胺依次出峰，無重疊，峰型良好，峰高、峰寬適宜，出峰時間與多胺標準品一致.

圖3 野薔薇組織多胺測定色譜圖

2.4 回收率測定

回收率是檢驗提取方法是否可靠的依據.較高的回收率說明提取方法具有較高的準確性.實驗測定結果如表2所示：回收率為87.17%～103.64%，標準差為1.71～4.60，表明方法可靠.

表2 加標回收率

2.5 野薔薇不同組織內源游離多胺含量

試驗取自然生長的野薔薇花瓣、花蕊、花苞、莖、葉片，培養(yǎng)3 h，3 d，5 d后的葉片，培養(yǎng)25 d的愈傷組織為材料(如圖4所示)，測定內源多胺含量，測定結果如圖5所示.

(a)3 h 葉片;(b)3 d葉片;(c)5 d葉片;(d)25 d愈傷組織;(e)葉片;(f)花瓣和花蕊;(g)花苞;(h)莖.圖4 野薔薇組織與器官

在野薔薇體細胞胚胎發(fā)生過程中(3 h，3 d，5 d，25 d callus)，內源多胺總量呈現出先逐漸上升，再逐漸下降的變化趨勢，在培養(yǎng)3 d后達到最大值0.295 mg·g-1(FW)，培養(yǎng)25 d的愈傷組織中多胺含量顯著下降，在野薔薇器官(花瓣、花蕊、花苞、葉、莖)中，花蕊的多胺含量最高，野薔薇體胚發(fā)生過程多胺總含量是野薔薇器官的2.5倍(如圖 5(a))；體胚發(fā)生過程中Put相對含量先升高后降低，在3 d時達到最高相對含量0.259 mg·g-1(FW)，與其他時期以及其他組織相比均有極顯著差異，其他組織Put含量無顯著性差異(圖 5(b))；Spd在各組織中含量最高，其中，5 d時含量最多，達到0.265 mg·g-1(FW)，花蕊其次，含量為0.050 4 mg·g-1(FW)，體細胞胚胎發(fā)生過程中，Spd含量變化趨勢與多胺總量變化趨勢一致，不同組織間Spd含量差異為5 d>花蕊>3 d>3 h>25 d>葉>花瓣>莖>花苞(圖5 (a),(c))；野薔薇組織中Spm含量較少，在5 d時達到最高，并且顯著高于花、莖、葉、愈傷，其相對含量為0.006 36 mg·g-1(FW)，Spm含量變化趨勢與腐胺含量變化趨勢一致(圖5(b),(d)).以上結果表明，多胺可能對野薔薇體細胞胚胎發(fā)生有調控作用.

(a)多胺總量;(b)腐胺含量;(c)亞精胺含量;(d)精胺含量.數據是平均值±標準偏差(n = 3)；條形上方的不同小寫字母表示根據LSD多重比較在p< 0.05處存在顯著差異，相同小寫字母表示根據LSD多重比較在p< 0.05處無顯著差異.圖5 野薔薇不同組織多胺含量

3 討 論

多胺性質不穩(wěn)定，易分解，直接測定難度較大且結果不準確[24].過去檢測多胺的方法有氨基酸分析儀、紙電泳和熒光比色等, 但這些方法的樣品回收率低、靈敏度不高[25].現在主要采用HPLC法檢測植物內源多胺，該方法較為成熟、靈敏、迅速[23].該試驗采用高效液相色譜(HPLC)法檢測野薔薇花瓣、花蕊、花苞、莖、葉，以及組織培養(yǎng)過程不同階段(3 h，3 d，5 d，25 d callus)的內源多胺(腐胺、亞精胺、精胺)含量，15 min內3種多胺可完全分離，通過對標品的線性分析，相關系數均大于0.99，可用得到的回歸方程計算樣品中的多胺含量.通過多次方法和技術重復試驗，得到樣品多胺的HPLC色譜圖及數據分析柱形圖，樣品出峰時間與標準品基本一致，峰型適宜，該方法能很好地測定野薔薇組織內源多胺含量.在提取樣品多胺時，取0.2 g樣品材料、300 μL冰浴浸提液、苯甲酰氯衍生化反應37 ℃，多胺可被充分提取，經HPLC檢測結果較好.由于苯甲酰多胺不宜長期保存，在-70 ℃時避光環(huán)境下貯存1周后, 亞精胺就會開始發(fā)生變化, 高于-70 ℃則3種多胺均會發(fā)生不同程度的分解, 在24 h 內,多胺衍生物不會發(fā)生明顯分解[26]，故須在提取后盡快檢測，以免誤差太大影響測定結果.通過預實驗得知，苯甲酰衍生化反應的時間不宜過短，會造成反應不完全，苯甲酰氯殘留，影響測定結果；也不宜過長，可能會使多胺分解，造成出現多個色譜峰的情況.提取多胺過程中，冰浴浸提和衍生化反應的溫度、時間長短，對多胺含量測定有重要影響.程文翰等[21]的研究中，冰浴浸提3 h、37 ℃衍生化反應30 min，棉花組織多胺溶解量達到最大值；劉俊等[23]對苯甲酰衍生化反應溫度及時間做了研究，發(fā)現 37 ℃反應20～25 min，峰面積最大且副反應少，室溫(30 ℃左右)反應 30～40 min也可獲得十分接近的結果，隨著溫度升高(< 37 ℃)，Put的反應更加完全,而Spd與Spm的面積變化無顯著差異.筆者所采用的方法為冰浴浸提1 h、37 ℃苯甲酰化反應25 min，峰面積較大.在12.2 min左右，檢測樣品出現一個色譜峰，峰面積較小，推測可能是熱精胺(五胺)，需要做質譜法進一步檢測.目前提取多胺多采用10 mL體系，如程文翰等[21]取棉花組織培養(yǎng)物0.4 g，胡文等[20]取秈稻愈傷組織1 g，蔣學美等[25]取荔枝葉片2.0 g，對樣品材料的用量較大.筆者參照程文翰等[21]的方法，并對提取體系做了優(yōu)化，用2 mL體系即可提取出野薔薇內源多胺，可減少樣品及試劑的用量，簡化操作.

在植物組織離體培養(yǎng)過程中，多胺能發(fā)揮諸多生理效應[27]，如代謝、發(fā)育調控以及非生物脅迫反應[28].該研究表明：在野薔薇花瓣、花蕊、花苞、莖、葉中，花蕊的多胺總含量及3種多胺含量均高于其他器官，暗示多胺可能與植物受精及性別分化有關.野薔薇是雌雄同花植物，由于采集花蕊時，未將雌蕊與雄蕊分開，無法得知雌雄蕊多胺含量的規(guī)律.相較于野薔薇器官，在野薔薇的體胚發(fā)生過程中，內源多胺含量較高，不同培養(yǎng)階段其含量變化較大，則多胺很可能參與了野薔薇體細胞胚胎發(fā)生過程，在不同時期對體胚發(fā)生的作用不同.腐胺向下游產物亞精胺和精胺轉化，使它們含量增加，說明在體細胞胚胎發(fā)生初期腐胺可能發(fā)揮著重要作用，腐胺向亞精胺和精胺的轉化，可能有利于野薔薇體細胞胚胎發(fā)生.在野薔薇愈傷組織增殖階段，精胺作用可能不顯著，根據前人的研究結果[8-10]，精胺可能會在體細胞胚胎發(fā)生后期胚狀體及再生苗階段發(fā)揮作用.目前對多胺在野薔薇體內的代謝通路還未見報道，闡明多胺如何影響野薔薇體細胞胚胎發(fā)生和多胺作用機制尚需探究.