董一唯,孫艷莎,李宗海,蔣華
多發(fā)性骨髓瘤(multiple myeloma,MM)作為一種惡性漿細(xì)胞腫瘤,其特征為骨髓中單克隆漿細(xì)胞的惡性增殖并產(chǎn)生單克隆免疫球蛋白,臨床癥狀主要表現(xiàn)為貧血、腎功能損害、溶骨性損害和高血鈣等引起的終末器官損傷[1]。MM是第2常見的血液惡性腫瘤,在血液系統(tǒng)惡性腫瘤中約占10%,在所有腫瘤中約占1%[2]。盡管由于新興治療手段的發(fā)展,MM的中位生存期延長至6年[3],但多數(shù)患者會復(fù)發(fā),所以目前MM仍被認(rèn)為是無法治愈的惡性腫瘤。B細(xì)胞成熟抗原(B cell maturation antigen,BCMA)即CD269,也稱作腫瘤壞死因子超家族成員17(tumor necrosis factor receptor superfamily member-17,TNFRSF-17),是由184個氨基酸組成的3型跨膜蛋白,對B細(xì)胞增殖、成熟、存活和向漿細(xì)胞分化發(fā)揮調(diào)節(jié)作用[4]。BCMA僅在漿細(xì)胞上表達(dá),且在惡性漿細(xì)胞中的表達(dá)比例高于正常漿細(xì)胞[5]。80%~100%的MM細(xì)胞上都表達(dá)BCMA,并且隨著疾病進(jìn)展,BCMA表達(dá)上調(diào)[4]。另外,BCMA高表達(dá)與不良預(yù)后有關(guān),因此被當(dāng)做免疫治療的理想靶抗原[5]。
近年來,嵌合抗原受體(chimeric antigen receptor,CAR)修飾的T細(xì)胞療法成為腫瘤治療領(lǐng)域最具前景的發(fā)展方向之一。CAR-T細(xì)胞治療的主要流程為從體外獲取人外周血T細(xì)胞,通過基因重組技術(shù),獲得表達(dá)CAR的T細(xì)胞,使得CAR-T細(xì)胞能夠特異性識別和結(jié)合腫瘤表面抗原,并殺傷帶有該特定抗原的腫瘤細(xì)胞。目前CAR-T療法已被美國食品藥品監(jiān)督管理局批準(zhǔn)用于治療難治性前B細(xì)胞急性淋巴結(jié)白血病和彌漫大B細(xì)胞淋巴瘤[6]。然而,傳統(tǒng)的CAR-T細(xì)胞產(chǎn)品主要由處于終末分化狀態(tài)的效應(yīng)T細(xì)胞(effector T cell,Teff)組成,這一定程度上導(dǎo)致了CAR-T細(xì)胞治療血液腫瘤過程中的低免疫應(yīng)答和治療后復(fù)發(fā)。有研究顯示,良好的治療效果與T細(xì)胞的存活持久性有關(guān)[7]。除了腫瘤負(fù)荷的大小,不同的T細(xì)胞亞群比例也影響了臨床治療中的免疫應(yīng)答和抗腫瘤效果。在治療慢性淋巴細(xì)胞白血?。╟hronic lymphocytic leukemia,CLL)過程中,靶向CD19的CAR-T細(xì)胞中低分化T細(xì)胞所占的百分比越高,患者對CAR-T細(xì)胞治療的免疫應(yīng)答越完全且持久。并且,完全應(yīng)答的CLL患者的CAR-T細(xì)胞高表達(dá)記憶相關(guān)的基因,而未高表達(dá)終末分化和糖酵解相關(guān)的基因[8]。
初始T細(xì)胞(na?ve T cell,Tn)遇到抗原刺激后分化為干細(xì)胞樣記憶T細(xì)胞(stem-cell memory T cell,Tscm),隨后逐漸分化為中央型記憶型T細(xì)胞(central memory T cell,Tcm)、效應(yīng)記憶型T細(xì)胞(effector memory T cell,Tem)和效應(yīng)T細(xì)胞(effector T cell,Teff)。在分化過程中,T細(xì)胞的效應(yīng)殺傷功能逐漸增強(qiáng),而干性逐漸喪失[9]。Tscm作為初始的記憶型T細(xì)胞,其干性最強(qiáng),即具有自我更新和多向分化的能力。Tscm遇到抗原后能夠分化為其他T細(xì)胞亞群,尤其是細(xì)胞毒性CD8+T細(xì)胞[10]。在動物模型中,相較于記憶型T細(xì)胞的其他亞群,Tscm顯示出更強(qiáng)的增殖、存活和抗腫瘤能力[11]。長期接受抗原刺激后,腫瘤細(xì)胞表面的檢查點分子會使細(xì)胞毒性CD8+T細(xì)胞耗竭進(jìn)而功能失調(diào)[12],而Tscm富集的T細(xì)胞可以重新分化為細(xì)胞毒性CD8+T細(xì)胞,并增強(qiáng)T細(xì)胞的瘤內(nèi)浸潤[13]。因此,Tscm亞群有希望解決免疫治療中T細(xì)胞存活時間短、瘤內(nèi)浸潤不足和T細(xì)胞失能等問題。本研究中采取體外誘導(dǎo)的策略,將傳統(tǒng)的CAR-T細(xì)胞誘導(dǎo)為Tscm富集的CAR-T細(xì)胞,再進(jìn)行體內(nèi)治療,以期提高免疫治療效果。
T細(xì)胞的代謝對于T細(xì)胞分化十分重要,代謝重編程是獲得大量記憶型T細(xì)胞的策略之一。活化后的T細(xì)胞利用需氧的糖酵解過程向效應(yīng)T細(xì)胞分化。在T細(xì)胞亞群中,效應(yīng)T細(xì)胞處于終末分化狀態(tài),記憶能力最低,僅能發(fā)揮短時的殺傷作用;而長期存活的記憶型T細(xì)胞仍然通過氧化磷酸化來供能[14]。研究表明,抑制雷帕霉素靶蛋白(mechanistic target of rapamycin,mTOR)通路,以及促進(jìn)脂肪酸氧化(fatty acid oxidation,F(xiàn)AO)都可以促進(jìn)記憶型CD8+T細(xì)胞的生成[15-17]。近年來,許多研究根據(jù)此思路更新了體外擴(kuò)增T細(xì)胞的方案,以獲得富集Tscm的T細(xì)胞庫,例如體外培養(yǎng)T細(xì)胞過程中添加絲裂原活化蛋白激酶激酶(mitogen-activated protein kinase kinase,MEK)抑制劑和mTOR抑制劑等,主要機(jī)制涉及增強(qiáng)Notch信號,減少活性氧(reacitive oxygen species,ROS)或減少mTOR通路的活性[18-19]。二甲雙胍是治療糖尿病的常用藥,其調(diào)節(jié)能量代謝的主要機(jī)制為促進(jìn)AMP活化蛋白激酶(AMP-activated protein kinase,AMPK)的活化、減少T細(xì)胞的脂肪酸氧化[15]。二甲雙胍能抑制線粒體電子傳遞鏈(electron transport chain,ETC)和ATP生成,通過激活A(yù)MPK和抑制mTOR復(fù)合體Ⅰ來促進(jìn)分解代謝、抑制合成代謝,從而調(diào)節(jié)腫瘤免疫微環(huán)境[20]。另外,二甲雙胍降低T細(xì)胞表面程序性死亡配體1(programmed cell death protein ligand 1,PD-L1)的表達(dá)水平,提高腫瘤浸潤C(jī)D8+T細(xì)胞的數(shù)量和分泌效應(yīng)細(xì)胞因子的能力,使耗竭的T細(xì)胞由失活狀態(tài)“復(fù)活”[21-22]。因此,作為AMPK激活劑,二甲雙胍是T細(xì)胞代謝重編程的理想分子。因此,本研究中采用二甲雙胍體外誘導(dǎo)BCMA靶向的CAR-T細(xì)胞,觀察其對CAR-T細(xì)胞分化的影響,并進(jìn)一步探究其對小鼠MM移植瘤模型生長的抑制作用。
人MM細(xì)胞系RPMI-8226購自中國科學(xué)院典型培養(yǎng)物保藏委員會細(xì)胞庫,在含有10%胎牛血清、100 U/mL青霉素和100 μg/mL鏈霉素的RPMI 1640培養(yǎng)液中培養(yǎng);人胚腎上皮細(xì)胞293T細(xì)胞構(gòu)自美國典型培養(yǎng)物保藏中心,在含有10%胎牛血清、不含抗生素的DMEM培養(yǎng)液中培養(yǎng);所有細(xì)胞均置于37 ℃、CO2體積分?jǐn)?shù)為5%的細(xì)胞培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。
5~6周齡的雌性高度免疫缺陷型NPG小鼠購自北京維通達(dá)生物技術(shù)有限公司[實驗動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(京)2019-0002]。小鼠飼養(yǎng)于上海市腫瘤研究所實驗動物中心[實驗動物使用許可證號:SYXK(滬)2017-0011]的無特定病原體(specific pathogen free,SPF)環(huán)境。本研究的動物實驗嚴(yán)格按照上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬仁濟(jì)醫(yī)院實驗動物管理委員會制定的實驗動物倫理條例進(jìn)行。
胎牛血清、RPMI 1640培養(yǎng)液、AIM-V培養(yǎng)液和DMEM培養(yǎng)液購自美國Gibco公司。人AB血清購自美國Gemini公司,細(xì)胞培養(yǎng)用青霉素-鏈霉素購自美國Invitrogen公司,非放射性細(xì)胞毒性檢測試劑盒購自瑞士Roche公司。人CD3/CD28 T細(xì)胞活化磁珠購自美國Invitrogen公司。重組人白細(xì)胞介素2(recombinant human interleukin-2,rhIL-2)購自上海華新生物高技術(shù)有限公司,rhIL-7和rhIL-21購自美國PeproTech公司;鹽酸二甲雙胍購自美國Selleck Chemicals公司。生物素(biotin)標(biāo)記的羊抗人F(ab’)多克隆抗體購自美國Jackson ImmunoResearch公司。藻紅蛋白(phycoerythrin,PE)標(biāo)記的鏈霉親和素購自美國eBioscience公司。PerCP標(biāo)記的抗人CD3抗體、FITC標(biāo)記的抗人CD4抗體、PE標(biāo)記的抗人CD8抗體、BV510標(biāo)記的抗人CD8抗體、APC標(biāo)記的抗人CD95抗體、PE-CF594標(biāo)記的抗人C-C基序趨化因子受體7(C-C motif chemokine receptor 7,CCR7)抗體購自美國BD公司,F(xiàn)ITC標(biāo)記的抗人CD45RA抗體購自美國Invitrogen公司。FITC-Annexin Ⅴ和碘化丙啶(propidium iodide,PI)雙染細(xì)胞凋亡試劑盒和絕對計數(shù)管購自美國BD公司。人外周血單個核細(xì)胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMC)由上海市血液中心提供。聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)-8000和聚乙烯亞胺(polyethyleneimine,PEI)購自美國Sigma公司。
流式細(xì)胞儀(BD FACSCelesta?)為美國BD公司產(chǎn)品,生物安全柜為新加坡ESCO公司產(chǎn)品,細(xì)胞培養(yǎng)箱為美國Thermo公司產(chǎn)品。
將293T細(xì)胞接種于直徑為10 cm的培養(yǎng)皿中,待細(xì)胞狀態(tài)良好時使用。在800 μL DMEM培養(yǎng)液中分別加入一定比例的pAX2、pMD2.G和攜帶有BCMA-BBZ的重組載體(由本實驗室構(gòu)建并保存)混勻(即為A液);在800 μL DMEM培養(yǎng)液中加入PEI溶液(PEI與質(zhì)粒的質(zhì)量比為2∶1)混勻(即為B液)。將A液滴加入B液中,室溫靜置10 min后將混合液滴加入接種有293T細(xì)胞的培養(yǎng)皿中,置于37 ℃、CO2體積分?jǐn)?shù)為5%的細(xì)胞培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。4~6 h后收集細(xì)胞,除去原培養(yǎng)上清液,更換為新鮮的含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)72 h后收集病毒,用孔徑為0.45 μm的尼龍過濾膜過濾后,加入1/4體積的5×PEG-8000溶液,混勻后置于4 ℃冰箱中過夜。次日,離心后收集病毒,用含2%人AB血清的AIM-V培養(yǎng)液重懸病毒,混勻后保存于-80 ℃冰箱備用。
二甲雙胍誘導(dǎo)靶向BCMA的CAR-T細(xì)胞構(gòu)建流程見圖1A。采用Ficoll淋巴細(xì)胞分離液分離獲得健康人群的PBMC,將約1×107個PBMC置于含2%人AB血清和rhIL-2(300 IU/mL)的AIM-V培養(yǎng)液中培養(yǎng)過夜。為了分離出PBMC中的T細(xì)胞,首先采用人CD3/CD28 T細(xì)胞活化磁珠進(jìn)行活化∶按照CD3陽性細(xì)胞數(shù)與活化磁珠數(shù)比例為1∶2估算出所需活化磁珠的數(shù)量,加入相應(yīng)的活化磁珠于培養(yǎng)體系內(nèi),將細(xì)胞密度調(diào)整為2×106個/mL,同時加入rhIL-2激活細(xì)胞,記為Day 0。為了將CAR轉(zhuǎn)導(dǎo)至活化后的T細(xì)胞上,T細(xì)胞活化24 h后,更換新鮮的培養(yǎng)液并加入BCMA-BBZ慢病毒[感染復(fù)數(shù)(multiplicity of infection,MOI)=5]進(jìn)行感染,同時添加8 μg/mL聚凝胺(polybrene)以提高感染效率,記為Day 1。為使CAR-T細(xì)胞擴(kuò)增并誘導(dǎo)出更高比例的Tscm,在慢病毒感染T細(xì)胞24 h后,收集細(xì)胞并將原有的培養(yǎng)液更換為含2%人AB血清、rhIL-7(5 ng/mL)和rhIL-21(25 ng/mL)的AIM-V培養(yǎng)液,培養(yǎng)于培養(yǎng)瓶中,記為Day 2。二甲雙胍誘導(dǎo)組(rhIL-7+rhIL-21+二甲雙胍)為CAR-T細(xì)胞在rhIL-7和rhIL-21基礎(chǔ)上加入二甲雙胍(0.25 mmol/L),非二甲雙胍誘導(dǎo)組(rhIL-7+rhIL-21)為CAR-T細(xì)胞在rhIL-7和rhIL-21基礎(chǔ)上加入與二甲雙胍溶劑等量的PBS,空白對照組為未感染慢病毒的人T細(xì)胞(untransduced T cell,UTD)。T細(xì)胞感染后3 d,用磁極吸附除去活化磁珠,各組分別更換為與Day 2一致的新鮮的培養(yǎng)液,記為Day 5。次日,收集細(xì)胞用于檢測CAR-T細(xì)胞陽性率、表型和功能,記為Day 6。隨后,置于37 ℃、CO2體積分?jǐn)?shù)為5%的細(xì)胞培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。
1.5.1 FCM法檢測二甲雙胍處理不同時間對CAR-T細(xì)胞陽性率的影響
收集各組CAR-T細(xì)胞[UTD組、rhIL-7+rhIL-21組、rhIL-7+rhIL-21+二甲雙胍(0.25 mmol/L)組(分別在T細(xì)胞活化當(dāng)天、活化后1 d和活化后2 d時進(jìn)行處理)],使用含1%小牛血清的PBS洗滌后,加入Biotin標(biāo)記的羊抗人F(ab’)抗體(體積稀釋比例為1∶50),冰上避光孵育45 min;洗滌后加入PE標(biāo)記的鏈霉親和素(體積稀釋比例為1∶200),室溫避光孵育20 min后重懸細(xì)胞,上流式細(xì)胞儀檢測。PE陽性的細(xì)胞即為慢病毒感染后表達(dá)CAR的T細(xì)胞,PE陽性細(xì)胞占總淋巴細(xì)胞的比例即為CAR-T細(xì)胞陽性率。
1.5.2 FCM檢測不同濃度的二甲雙胍對CAR-T細(xì)胞記憶表型的影響
收集不同濃度二甲雙胍處理至第6天的各組CAR-T細(xì)胞[rhIL-7+rhIL-21組、rhIL-7+rhIL-21+二甲雙胍(0.125 mmol/L)組、rhIL-7+rhIL-21+二甲雙胍(0.25 mmol/L)組和rhIL-7+rhIL-21+二甲雙胍(0.5 mmol/L)組],洗滌后同時加入BV510標(biāo)記的抗人CD8抗體、APC標(biāo)記的抗人CD95抗體、PE-CF594標(biāo)記的抗人CCR7抗體和FITC標(biāo)記的抗人CD45RA抗體(體積稀釋比例均為1∶50),室溫避光孵育20 min后重懸細(xì)胞,上流式細(xì)胞儀檢測。首先圈出淋巴細(xì)胞中的CD8+CD95+的細(xì)胞群,以CD45RA和CCR7的表達(dá)水平區(qū)分Tscm和Teff細(xì)胞。CD8+T細(xì)胞中的CD95、CD45RA和CCR7高表達(dá)(CD95high CD45RAhigh CCR7high)的細(xì)胞亞群為Tscm,CD95和CD45RA高表達(dá)、CCR7低表達(dá)(CD95high CD45RAhigh CCR7low)的細(xì)胞亞群為Teff。
收集各組CAR-T細(xì)胞(細(xì)胞分組及處理時間同1.5.2節(jié)),PBS洗滌后,加入PI和FITCAnnexin Ⅴ(體積比例為1∶50),室溫避光孵育15 min,直接加入適量指定溶液后上機(jī)檢測細(xì)胞的凋亡率。
收集活化6和8 d后的非二甲雙胍誘導(dǎo)組(rhIL-7+rhIL-2)和二甲雙胍誘導(dǎo)組[rhIL-7+rhIL-21+二甲雙胍(0.25 mmol/L)]CAR-T細(xì)胞,采用FCM法檢測CAR-T細(xì)胞記憶表型,實驗流程同1.5.2節(jié)。
收集活化6 d后(Day 6)的CAR-T細(xì)胞作為效應(yīng)細(xì)胞(培養(yǎng)過程及實驗分組同1.4節(jié)),以MM細(xì)胞RPMI-8226作為靶細(xì)胞,離心后計數(shù)細(xì)胞,按照效靶比3∶1、1∶1和1∶3,將效應(yīng)細(xì)胞和靶細(xì)胞接種于96孔板中;分別設(shè)置效應(yīng)自發(fā)、靶細(xì)胞自發(fā)、靶細(xì)胞最大、空白對照和體積對照組,每組至少設(shè)3個復(fù)孔;培養(yǎng)體系為200 μL,培養(yǎng)于含10%胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)液中,置于37 ℃、CO2體積分?jǐn)?shù)為5%的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。18 h后,每孔取50 μL培養(yǎng)上清液加入酶標(biāo)板中,再加入顯色試劑顯色后用酶聯(lián)免疫檢測儀在波長490 nm處檢測的各孔細(xì)胞的D值。
收集活化6 d(Day 6)后的CAR-T細(xì)胞作為效應(yīng)細(xì)胞(培養(yǎng)過程及實驗分組同1.4節(jié)),RPMI-8226細(xì)胞作為靶細(xì)胞,以1∶1的效靶比混合接種于6孔板中,加入含10%胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)液培養(yǎng)2 d后(Day 8),收集剩余CAR-T細(xì)胞檢測表型(實驗方法同1.5.2節(jié))或毒性殺傷能力(實驗方法同1.8節(jié)),定義為第一輪刺激(Stim 1);同時,將剩余的CAR-T細(xì)胞再次與新的RPMI-8226細(xì)胞按1∶1的細(xì)胞數(shù)共培養(yǎng),2 d后收集剩余CAR-T細(xì)胞再次檢測表型或毒性殺傷能力(實驗方法同第一輪刺激),定義為第二輪刺激(Stim 2)。
收集狀態(tài)良好的人MM細(xì)胞RPMI-8226接種于NPG小鼠的右側(cè)腋部皮下,每只小鼠接種3×106個細(xì)胞。當(dāng)腫瘤生長至體積為200~300 mm3(約14 d)時,將荷瘤小鼠被隨機(jī)分為3組,實驗分組同1.4節(jié),每組6只。收集T細(xì)胞活化6 d后(Day 6)的UTD和CAR-T細(xì)胞(非二甲雙胍誘導(dǎo)組和二甲雙胍誘導(dǎo)組),培養(yǎng)過程及實驗分組同1.4節(jié),分別通過尾靜脈注射輸注至3組小鼠體內(nèi),每只小鼠尾靜脈注射的劑量為5×105個UTD或CAR-T細(xì)胞。每周測量腫瘤體積(Vtumor=1/2×長徑×短徑2)和小鼠體質(zhì)量2~3次。當(dāng)每組小鼠腫瘤平均體積達(dá)到2 000 mm3時結(jié)束觀察,小鼠實施安樂死。CAR-T細(xì)胞注射14 d時采用頜下靜脈采血法采集少量小鼠外周血,保存于EDTA處理后的抗凝管中,使用抗人CD3、CD4和CD8抗體以及絕對計數(shù)管,檢測外周血中CD4+T細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞的數(shù)量。
荷瘤小鼠尾靜脈注射CAR-T細(xì)胞14 d后,每組選取3只小鼠采集外周血。吸取20 μL PerCP標(biāo)記的抗人CD3抗體、FITC標(biāo)記的抗人CD4抗體及PE標(biāo)記的抗人CD8抗體滴加于絕對計數(shù)管管底的金屬網(wǎng)上,勿溶解微球;隨后加入50 μL外周血,渦旋混勻后室溫靜置15 min;再加入450 μL紅細(xì)胞裂解液,渦旋混勻后室溫條件下靜置15 min,即可上機(jī)檢測;最后根據(jù)說明書提供的方法計算陽性表達(dá)細(xì)胞的數(shù)量。所有流式數(shù)據(jù)通過FlowJo V10軟件進(jìn)行分析。
采用Graphpad Prism 8對所有實驗數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,所有實驗均獨立重復(fù)3次,計量資料以表示。2組間比較采取獨立樣本t檢驗,多組間比較采取雙因素或單因素方差分析,組內(nèi)兩兩比較采用Bonferroni檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
采用FCM法檢測T細(xì)胞活化6 d后(UTD組和rhIL-7+rhIL-7組)以及Day 0、Day 1和Day 2時(見圖1A)添加二甲雙胍(0.25 mmol/L)對CAR-T細(xì)胞陽性率的影響。結(jié)果(圖1B)顯示,T細(xì)胞活化時(Day 0)和病毒感染轉(zhuǎn)入CAR時(Day 1)添加二甲雙胍會使CAR-T細(xì)胞的陽性率降低6%~10%,而在導(dǎo)入CAR 1 d后(Day 2)再加入二甲雙胍則CAR-T細(xì)胞的陽性率不受影響。因此,本研究選擇在T細(xì)胞導(dǎo)入CAR 1 d后(Day 2)加入二甲雙胍進(jìn)行誘導(dǎo),并且3 d后(Day 5)更換培養(yǎng)液時重新加入二甲雙胍以維持培養(yǎng)體系中二甲雙胍的持續(xù)作用。
Fig.1 A: Schematic diagram of B cell maturation antigen (BCMA)-targeted chimeric antigen receptor(CAR)-T cells culture process and metformin (MET) induction.B: The effect of MET (0.25 mmol/L) on the transduction efficiency of BCMA-BBZ CAR on T cells at different time points (Day 0,Day 1 and Day 2) during the culture of CAR-T cells was detected by FCM method.Untransduced T cell (UTD): the blank control;CAR-T cells treated with cytokines [recombinant human interleukin-7 (rhIL-7)+rhIL-21]: the control.圖1 靶向BCMA CAR-T細(xì)胞的構(gòu)建及二甲雙胍誘導(dǎo)處理流程圖(A)及CAR-T細(xì)胞構(gòu)建過程中不同時間點加入二甲雙胍(0.25 mmol/L)對BCMA-BBZ CAR轉(zhuǎn)染至T細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率的影響(B)
采用FCM法檢測T細(xì)胞活化6 d后,添加不同濃度(0.125、0.25和0.5 mmol/L)二甲雙胍誘導(dǎo)后對CAR-T細(xì)胞記憶表型的影響。結(jié)果(圖2A)顯示,濃度為0.125、0.25和0.5 mmol/L的二甲雙胍誘導(dǎo)后的CD8+T細(xì)胞中的Tscm所占百分比依次升高,且0.25和0.5 mmol/L二甲雙胍誘導(dǎo)后的CD8+T細(xì)胞中的Tscm所占百分比均明顯高于非二甲雙胍誘導(dǎo)組的細(xì)胞(P<0.05和P<0.01)。
FCM法檢測結(jié)果(圖2B)顯示,濃度為0.25 mmol/L二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞中凋亡細(xì)胞所占百分比明顯低于0.5 mmol/L濃度組。為了減少凋亡細(xì)胞對CAR-T細(xì)胞的不利影響,因此,本研究后續(xù)選用0.25 mmol/L作為二甲雙胍體外誘導(dǎo)CAR-T細(xì)胞的濃度。
FCM法連續(xù)檢測T細(xì)胞活化6和8 d后CAR-T細(xì)胞中CD8+T細(xì)胞和Tscm所占的百分比。結(jié)果(圖3)顯示,在連續(xù)培養(yǎng)的過程中,相較于只使用rhIL-7+rhIL-21培養(yǎng)的CAR-T細(xì)胞(非二甲雙胍誘導(dǎo)組),使用二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞中,CD8+細(xì)胞中Tscm所占的百分比明顯增高(P<0.05),Teff所占的百分比略低但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。這一結(jié)果說明,體外培養(yǎng)時加入二甲雙胍能維持CAR-T細(xì)胞中CD8+T細(xì)胞的記憶性和干性,減緩向終末分化的速度。
用RPMI-8226細(xì)胞對CAR-T細(xì)胞進(jìn)行多輪刺激后檢測CAR-T細(xì)胞中Tscm的富集情況。結(jié)果(圖4A)顯示,經(jīng)第一輪和第二輪刺激后,二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞的CD8+T細(xì)胞中Tscm所占百分比均高于未經(jīng)二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞。這一結(jié)果提示二甲雙胍的誘導(dǎo)后的CAR-T細(xì)胞在長期抗原刺激下仍能保持Tscm的富集。
非放射性細(xì)胞毒性法檢測各組CAR-T細(xì)胞對RPMI-8226細(xì)胞的殺傷能力。結(jié)果(圖4B)顯示,在RPMI-8226細(xì)胞對CAR-T細(xì)胞進(jìn)行刺激前,在不同的靶效比中,與未經(jīng)二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞相比,二甲雙胍誘導(dǎo)后的CAR-T細(xì)胞對腫瘤細(xì)胞的殺傷能力沒有明顯變化,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P均>0.05);經(jīng)二甲雙胍誘導(dǎo)的Tscm富集的CAR-T細(xì)胞在經(jīng)過RPMI-8226細(xì)胞第一輪和第二輪刺激后,在不同的靶效比中,與未經(jīng)二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞相比,其特異性殺傷能力差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P均>0.05)。
Fig.2 The differentiation (A) and apoptosis rate (B) of chimeric antigen receptor (CAR)-T cells induced by different concentrations (0.125,0.25 and 0.5 mmol/L) of metformin (MET) were determined by flow cytometry (FCM).CAR-T cells treated with cytokines [recombinant human interleukin-7 (rhIL-7)+rhIL-21]: the control.*P<0.05,**P<0.01 (n=3).圖2 FCM法檢測不同濃度二甲雙胍處理后對CAR-T細(xì)胞中的記憶細(xì)胞分化(A)和凋亡(B)的影響
Fig.3 The effects of metformin (MET) on the percentage of stem-cell memory T cell (Tscm) in CD8+ T cells after T cell activation at Day 6 and Day 8 were detected by flow cytometry (FCM).CAR-T cells treated with recombinant human interleukin-7 (rhIL-7) and rhIL-21: the control.*P<0.05 (n=3).圖3 FCM檢測T細(xì)胞活化第6和第8天時二甲雙胍對CD8+干細(xì)胞性記憶T細(xì)胞比例的影響
Fig.4 A: Experimental scheme for serial antigen stimulation by RPMI-8226 cells,and the effect of metformin (MET) on the percentage of stem-cell memory T cell (Tscm) in CD8+ T cells after serial RPMI-8226 cells stimulation was determined by flow cytometry (FCM).Chimeric antigen receptor (CAR)-T cells treated with recombinant human interleukin-7 (rhIL-7) and rhIL-21: the control (n=3).B: The effect of MET on the cytotoxic activities of CAR-T cells before and after serial RPMI-8226 cells stimulation (Stim 1 and Stim 2) was tested by nonradioactive cytotoxicity assay.CAR-T cells treated with rhIL-7 and rhIL-21:the control;the untransduced T cells (UTD): the blank control (n=3).圖4 FCM法檢測二甲雙胍誘導(dǎo)對經(jīng)過連續(xù)2輪RPMI-8226細(xì)胞刺激的CAR-T細(xì)胞中CD8+ Tscm所占比例的影響(A)以及非放射性細(xì)胞毒性法檢測RPMI-8226細(xì)胞刺激前和連續(xù)2輪刺激后二甲雙胍誘導(dǎo)對CAR-T細(xì)胞體外殺傷能力的影響(B)
構(gòu)建小鼠MM細(xì)胞RPMI-8226皮下移植瘤模型:腫瘤細(xì)胞接種14 d后,將腫瘤平均體積約250 mm3的小鼠隨機(jī)分為3組,尾靜脈注射相應(yīng)的CAR-T細(xì)胞(圖5A),記錄小鼠腫瘤體積。結(jié)果(圖5B)顯示,相較于UTD組,二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T治療組與非二甲雙胍誘導(dǎo)CAR-T治療組均能有效抑制MM移植瘤的生長(P<0.000 1和P<0.01),但二甲雙胍誘導(dǎo)前后的2個CAR-T治療組之間其的抑瘤效果,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。在腫瘤接種35 d后,二甲雙胍誘導(dǎo)組CAR-T細(xì)胞和非二甲雙胍誘導(dǎo)組CAR-T細(xì)胞的抑瘤率分別為83.14%和90.92%(圖5C)。此時UTD組小鼠的平均腫瘤體積超過2 000 mm3,繼續(xù)觀察剩余2組小鼠的腫瘤體積直到出現(xiàn)小鼠死亡,結(jié)果顯示雖然在UTD組小鼠死亡時二甲雙胍誘導(dǎo)組CAR-T細(xì)胞的抑瘤率略小于非誘導(dǎo)組CAR-T細(xì)胞的抑瘤率,但腫瘤細(xì)胞接種42 d后,二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T治療組的抑瘤效果持續(xù)略優(yōu)于與非誘導(dǎo)CAR-T細(xì)胞組。
期間每周記錄小鼠體質(zhì)量,結(jié)果(圖5D)顯示每組之間小鼠體質(zhì)量沒有明顯變化,說明用二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞治療無明顯不良反應(yīng)。隨后,繼續(xù)觀察剩余治療組的小鼠生存期,結(jié)果(圖5E)顯示,二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T治療組的小鼠與非二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞組小鼠相比具有一定的生存獲益(腫瘤細(xì)胞接種87 d后,二甲雙胍誘導(dǎo)CAR-T組1只小鼠死亡,非誘導(dǎo)組2只小鼠死亡),但2組之間差異無統(tǒng)計學(xué)意義。
FCM法檢測經(jīng)尾靜脈注射CAR-T細(xì)胞14 d后的荷瘤小鼠外周血中CD4+和CD8+T細(xì)胞的數(shù)量。結(jié)果(圖5F)顯示,二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T治療組的小鼠外周血中CD8+T細(xì)胞數(shù)明顯多于二甲雙胍非誘導(dǎo)CAR-T細(xì)胞組(P<0.05)。上述結(jié)果說明,雖然Tscm富集的CAR-T細(xì)胞的抗腫瘤療效并未顯著優(yōu)于非誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞,但其CD8+T細(xì)胞在體內(nèi)存活數(shù)量明顯增多,提示從抗腫瘤持久性上,可能具有一定的生存獲益。
Fig.5 A: Schematic diagram of murine subcutaneous xenografts of multiple myeloma RPMI-8226 cells.The effect of MET-induced chimeric antigen receptor (CAR)-T cells on the tumor growth (B-C),body weight(D) and survival (E).The effect of MET-induced CAR-T cells on the number of lymphocytes in murine peripheral blood tested by flow cytometry (FCM) (F).*P<0.05,**P<0.01,****P<0.000 1,vs UTD group [n=6(B-E) or n=3 (F)].圖5 NPG小鼠RPMI-8226細(xì)胞皮下移植瘤模型建立的示意圖(A),二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞對小鼠體內(nèi)腫瘤的抑制作用(B和C)、小鼠體質(zhì)量(D)和小鼠生存期的影響(E),F(xiàn)CM檢測二甲雙胍對小鼠外周血中淋巴細(xì)胞數(shù)量的影響(F)
Tscm在抗腫瘤應(yīng)答的許多環(huán)節(jié)都起著非常重要的作用,Tscm具有高增殖和多向分化的特點。目前,在CAR-T細(xì)胞輸注之前將具有細(xì)胞毒性的CD8+T細(xì)胞重編程為具有干性的細(xì)胞是細(xì)胞治療領(lǐng)域的熱點之一。大部分過繼性T細(xì)胞治療的臨床試驗均采用T細(xì)胞的集合而不是特定的T細(xì)胞亞群,所以在向患者輸注細(xì)胞治療產(chǎn)品之前,盡量提高Tscm比例非常必要。體外通過調(diào)節(jié)Notch或Wnt信號通路誘導(dǎo)Tscm富集的T細(xì)胞顯示出更強(qiáng)的抗腫瘤能力,優(yōu)于其他記憶T細(xì)胞亞群[19,23]。本研究的結(jié)果表明,二甲雙胍體外處理后的CAR-T細(xì)胞分化程度低,其Tscm亞群所占百分比升高,并且經(jīng)過體外靶細(xì)胞多輪刺激后仍能保持Tscm富集,提示二甲雙胍在體內(nèi)可能有利于CAR-T細(xì)胞的存活。
二甲雙胍促進(jìn)Tscm生成的具體機(jī)制尚未被完全闡明。在線粒體水平,二甲雙胍通過抑制ETC從而抑制氧化磷酸化,導(dǎo)致AMP水平升高及AMPK的磷酸化,激活后的AMPK能夠抑制mTOR活性[24-26]。AMPK-mTOR通路在許多生物過程中普遍存在,因此二甲雙胍的作用并不特異,其在不同細(xì)胞和不同器官中起不同作用。例如,二甲雙胍在固有和適應(yīng)性免疫系統(tǒng)中發(fā)揮著抑瘤作用,包括促進(jìn)M2巨噬細(xì)胞向M1巨噬細(xì)胞極化、抑制骨髓來源的抑制性細(xì)胞和調(diào)節(jié)性T細(xì)胞的作用、減少抗炎性細(xì)胞因子的生成和提高T細(xì)胞的應(yīng)答水平[22,27-30]。AMPK-mTOR通路也作用于T細(xì)胞代謝重編程,即將糖酵解轉(zhuǎn)化為氧化磷酸化,對于T細(xì)胞保持殺傷功能和記憶性非常重要[14,31]。AMPK激活過氧化物酶體增殖物激活受體γ共激活因子1(peroxisome proliferatoractivated receptorγcoactivator-1,PGC-1),可以使腫瘤浸潤的細(xì)胞毒性T細(xì)胞進(jìn)行代謝重編程,增強(qiáng)線粒體功能和免疫應(yīng)答[32]。mTOR的抑制可促進(jìn)記憶T細(xì)胞形成過程中的氧化磷酸化,對維持線粒體正常功能非常關(guān)鍵[17,33-34]。上述研究結(jié)果提示,二甲雙胍可能通過激活的AMPK-mTOR通路來抑制T細(xì)胞糖酵解,從而增強(qiáng)T細(xì)胞記憶表型,然而二甲雙胍誘導(dǎo)后的CAR-T細(xì)胞的代謝改變?nèi)孕柽M(jìn)一步予以闡明。
本研究中的荷瘤小鼠模型實驗結(jié)果顯示,二甲雙胍誘導(dǎo)的CAR-T細(xì)胞能夠顯著抑制腫瘤生長,并保持更高的外周血CD8+T細(xì)胞的存活,且能帶來一定程度的生存期受益,這一研究說明二甲雙胍能在保持CAR-T殺傷功能的同時延長CAR-T細(xì)胞在體內(nèi)的存活時間。然而本研究中也發(fā)現(xiàn),在人MM免疫缺陷小鼠皮下移植瘤模型中,給予靶向BCMA的二代CAR-T細(xì)胞進(jìn)行治療,二甲雙胍誘導(dǎo)獲得的Tscm富集的CAR-T細(xì)胞雖能顯著抑制腫瘤生長,甚至清除腫瘤,但與誘導(dǎo)前的CAR-T細(xì)胞相比,未能顯示出更強(qiáng)的抗腫瘤能力,尤其在CAR-T細(xì)胞輸注的初期,二甲雙胍誘導(dǎo)后的CAR-T細(xì)胞抑瘤效果反而不及對照組。究其原因可能是二甲雙胍除了誘導(dǎo)Tscm產(chǎn)生外,在培養(yǎng)過程中也會導(dǎo)致CAR-T細(xì)胞的凋亡,進(jìn)而可能影響CAR-T細(xì)胞的抗腫瘤作用,但二甲雙胍對T細(xì)胞的作用仍需進(jìn)一步深入研究。雖然二甲雙胍體外可誘導(dǎo)產(chǎn)生更多的Tscm,但這種誘導(dǎo)產(chǎn)生的Tscm可能與人體內(nèi)自然生成的Tscm功能上仍存在差異;即使未經(jīng)二甲雙胍誘導(dǎo),CAR-T細(xì)胞中仍存在一定比例的Tscm,且具有顯著的抑瘤效果,由此推測本研究所使用的動物模型中,Tscm起效的比例可能存在一定的閾值,在此范圍內(nèi)CAR-T細(xì)胞抑瘤效果差異不顯著,但本研究數(shù)據(jù)仍然顯示Tscm富集的CAR-T細(xì)胞治療后的小鼠外周血中的CD8+T細(xì)胞存活數(shù)量顯著增多,且治療的小鼠具有一定的生存獲益。因此,后續(xù)有必要針對不同靶點、不同腫瘤負(fù)荷、不同腫瘤模型來進(jìn)一步深入研究。
本研究中主要發(fā)現(xiàn),在體外一定濃度的二甲雙胍可以誘導(dǎo)CAR-T細(xì)胞更多地分化為Tscm表型。有研究表明,二甲雙胍能延長部分腫瘤合并糖尿病患者的生存期[35],且對腫瘤免疫微環(huán)境有積極地調(diào)節(jié)作用,因此推測體內(nèi)實驗中如果將二甲雙胍與CAR-T細(xì)胞聯(lián)合應(yīng)用于治療,是否也可誘導(dǎo)Tscm的富集進(jìn)而增強(qiáng)CAR-T細(xì)胞的抗腫瘤能力?此外,也有研究報道,在動物實驗中口服高濃度二甲雙胍可抑制T細(xì)胞的增殖,對T細(xì)胞過繼治療產(chǎn)生不利影響[36]。因此,后續(xù)探究的重點是進(jìn)一步明確體內(nèi)不同濃度二甲雙胍對T細(xì)胞分化和功能的不同作用,探索聯(lián)合口服二甲雙胍是否能增強(qiáng)Tscm富集的CAR-T細(xì)胞的療效。
綜上,本研究提供了一種體外可以誘導(dǎo)Tscm富集的方式,證明了二甲雙胍體外可以誘導(dǎo)CAR-T細(xì)胞產(chǎn)生更多Tscm亞群,經(jīng)Tscm富集型CAR-T細(xì)胞治療后的荷瘤小鼠具有一定的生存優(yōu)勢,且外周血中CD8+T細(xì)胞的存活數(shù)量顯著增多。整個實驗過程中未觀察到明顯不良反應(yīng)。本研究有望為更優(yōu)的CAR-T細(xì)胞制備提供一種新的途徑,具有一定的理論指導(dǎo)價值。