李易初,石鳳梅,馬立功,劉佳,孟慶林
(黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,哈爾濱 150086)
大豆是人類主要糧食作物之一,具有高營養(yǎng)價(jià)值、高生理活性和廣泛工業(yè)用途的寶貴農(nóng)業(yè)資源[1]。大豆菌核病的病原菌是核盤菌(Sclerotinia sclerotiorum(Lib.)de Bary),隸屬于子囊菌門、盤菌綱、柔膜菌目、核盤菌科、核盤菌屬[2]。核盤菌在全球范圍內(nèi)可危害400 多種植物,是一種世界性分布、寄主眾多,極具破壞性的植物病原真菌[3-4]。大豆菌核病在我國黑龍江、內(nèi)蒙古等地發(fā)生較為嚴(yán)重,病害流行年份可造成大豆減產(chǎn)20%~30%,嚴(yán)重地塊損失達(dá)50%以上。菌核病不僅能造成大豆產(chǎn)量的嚴(yán)重?fù)p失[5],還會影響大豆的蛋白質(zhì)、油分含量和外觀品質(zhì)[6]。
研究發(fā)現(xiàn)核盤菌生長繁殖過程中,H2O2與菌核的形成密切相關(guān),菌絲內(nèi)H2O2含量達(dá)到一定水平后,核盤菌才能由營養(yǎng)菌絲生長階段轉(zhuǎn)變到菌核形成的Initial 階段[7]。阻止核盤菌H2O2積累,會影響菌核形成,核盤菌更多以菌絲形態(tài)存在,菌絲體可直接侵染寄主植物,是核盤菌常見的侵染方式,H2O2參與核盤菌的侵染、繁殖及抗逆過程。超氧化物歧化酶SOD(superoxide dismutase)普遍存在于生物體內(nèi),它是一種參與氧代謝的酶[8];過氧化物酶POD(Peroxidase)是一種活性較高的氧化還原保護(hù)酶[9]。生物體內(nèi)POD及SOD 是參與氧化還原反應(yīng)的關(guān)鍵酶,POD 主要以H2O2為電子受體催化底物氧化;SOD 能催化超氧陰離子轉(zhuǎn)化成H2O2和O2[10]。研究表明當(dāng)病原入侵寄主植物時,寄主植物會釋放O2-和H2O2[11],核盤菌侵染寄主時,H2O2被相關(guān)酶快速分解,會影響植物初期防御抗性;H2O2被快速分解后能阻止核盤菌形成菌核,未萌發(fā)成子囊盤的菌核無法釋放子囊孢子侵染寄主,而核盤菌菌絲具有侵染性,分解H2O2的酶類活性會影響核盤菌菌株的致病力。目前,關(guān)于核盤菌致病機(jī)理的研究主要集中在病原菌侵染時產(chǎn)生的各種酶類及草酸毒性[12-14],國內(nèi)外鮮見病原菌自身氧化酶活性差異與致病力強(qiáng)弱關(guān)系的研究報(bào)道,致病力強(qiáng)弱與POD 及SOD 活性關(guān)系尚未明確。因此,試驗(yàn)針對這一問題開展初步研究,通過強(qiáng)弱致病力差異菌株自身POD 和SOD 活性比較,分析核盤菌致病強(qiáng)弱與POD 和SOD 活性的關(guān)系,明確POD 及SOD 活性對核盤菌致病力的影響,為揭示核盤菌致病力機(jī)制提供新的思路,為進(jìn)一步揭示核盤菌致病力差異和致病機(jī)理提供理論支持。
收集黑龍江省不同地區(qū)不同地塊的大豆菌核病樣本,根據(jù)采集地點(diǎn)編號。菌核浸泡在75%乙醇溶液30 s 表面消毒,無菌水沖洗干凈,用手術(shù)刀切取菌核薄片,濾紙吸干菌核薄片水分,擺放在PDA 平板25 ℃條件培養(yǎng),試驗(yàn)物品提前消毒滅菌,所有操作均在無菌條件下進(jìn)行[15]。按照上述方法分離得到大豆菌核病菌株10 份(見表1),4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
表1 供試菌株編號及采集地點(diǎn)Table1 The strains numbers of S.sclerotiorum on soybean and collecting locations
選擇室內(nèi)離體葉片接種法進(jìn)行菌株間致病力差異試驗(yàn)[16],根據(jù)培養(yǎng)相同時間侵染形成的病斑大小,判斷菌株致病力強(qiáng)弱。盆栽播種感病大豆品種農(nóng)青豆,28 d 后摘取植株最新一片完全展開的健康三出復(fù)葉進(jìn)行試驗(yàn)。供試菌株在PDA 平板活化72 h,沿菌落外緣打取R=0.5 cm 菌塊。菌碟擺放于復(fù)葉的中間葉片,注意避開主葉脈,接種時將著生菌絲一面貼合在葉面上,輕壓菌塊貼緊葉面不掉落[17]。每個供試菌株設(shè)3 次重復(fù),對照處理組接種同等大小的純PDA 塊。試驗(yàn)過程中延長離體葉片存活時間,摘取葉片時保留葉柄,接種后葉柄包裹濕潤脫脂棉保濕。接種葉片集中擺放在鋪有濕潤紗布的平盤中,保鮮膜覆蓋包裹平盤,25 ℃恒溫保濕培養(yǎng),所有試驗(yàn)用品提前滅菌消毒。72 h 調(diào)查發(fā)病情況并測量病斑直徑,十字交叉法測量病斑直徑,每個病斑在3 個不同不位置測量直徑取平均值。
1.2.1 POD 酶粗液的提取
滅菌冷凝的PDA 平板上平鋪一層滅菌的玻璃紙,核盤菌PDA 平板活化72 h,外緣5 mm 菌塊擺放在玻璃紙中心25 ℃培養(yǎng),每個菌株培養(yǎng)3 皿,培養(yǎng)時間和致病力試驗(yàn)時間一致72 h。粗酶液提取方法結(jié)合酶活測試盒推薦方法并在實(shí)際操作過程中略有改動[18]。刮取3 皿玻璃紙的菌絲存放在5 mL 離心管,用液氮迅速冷凍保存?zhèn)溆?。?.6 g 菌絲加入5 mL 50 mmol·L-1預(yù)冷的 PBS 緩沖液(pH=7.4),在預(yù)冷的研缽研磨充分(或用勻漿器勻漿),樣本保持溫度2~8 ℃,離心 0.34 h(3 000 r·min-1),收集上清液,即為粗酶液。每個樣品取1 mL 粗酶液待檢測,其余粗酶液分裝冷凍備用。粗酶液提取后盡快試驗(yàn),若不能馬上試驗(yàn),需將標(biāo)本放置在-20 ℃冰箱保存,試驗(yàn)過程中避免反復(fù)凍融。
1.2.2 SOD 酶粗液的提取
SOD 粗酶液提取方法與POD 酶粗液提取方法相同。
1.3.1 POD 酶活性測定
按照POD 測試盒48 T(購自上海酶聯(lián)生物技術(shù)有限公司)說明書的方法測定酶活性。根據(jù)試劑盒說明設(shè)置標(biāo)準(zhǔn)品孔、空白對照孔及待測樣品孔。標(biāo)準(zhǔn)品孔各加不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)品50 μL;空白對照孔不加樣品及酶標(biāo)試劑,其余各步操作相同;待測樣品孔中先加樣品稀釋液40 μL,然后再加待測樣品10 μL(樣品最終稀釋度為5 倍)。加樣時需將樣品加于酶標(biāo)板孔底部,輕輕晃動混勻,加樣過程中盡量不觸及孔壁。每孔加入酶標(biāo)試劑100 μL,空白孔除外。用封板膜封板置37 ℃溫育1 h,揭掉封板膜,棄去液體,甩干,每孔加滿洗滌液,靜置30 s 后棄去,如此重復(fù)5 次,拍干。每孔順次加入顯色劑A 50 μL,顯色劑B 50 μL,輕輕震蕩混勻,37 ℃避光顯色 0.25 h。每孔加終止液50 μL,終止反應(yīng)(此時藍(lán)色立轉(zhuǎn)黃色)。加入終止液0.25 h 后,以空白孔調(diào)零,450 nm 波長依序測量各孔的吸光度(OD 值)。標(biāo)準(zhǔn)物的濃度為橫坐標(biāo),OD 值為縱坐標(biāo),根據(jù)樣品的OD 值由標(biāo)準(zhǔn)曲線查出相應(yīng)的濃度;再乘以稀釋倍數(shù),即為樣品的實(shí)際濃度。
1.3.2 SOD 酶活性測定
按照SOD 活性測試盒48 T(購自上海酶聯(lián)生物技術(shù)有限公司)說明書方法測定SOD 活性,試驗(yàn)原理與步驟與POD 活性測定試驗(yàn)相同。
用SPSS 22.0 軟件分析試驗(yàn)數(shù)據(jù)。
接種72 h 用十字法測量葉片病斑直徑,供試菌株侵染得到病斑直徑數(shù)據(jù)見表2,按照病斑直徑從小到大順序排列供試菌株。菌株BQI033 接種72 h 后,PDA 菌塊氣生菌絲生長緩慢,與葉片貼合處未見菌絲侵染,接種處大豆葉片完好,無病斑形成,僅記錄接種菌塊直徑;BQI031 接種菌塊氣生菌絲生長延伸至大豆葉片表面,菌塊最外圈接觸的葉片部位顏色發(fā)生變化,病部葉片顏色變深、水浸狀,記錄病斑直徑0.6 cm;QD003 接種處褪綠,可見不規(guī)則病斑,病部葉片呈橄欖綠色,病斑直徑為1.0 cm。QA009 接種菌塊著生白色菌絲團(tuán),接種處病斑較大、病部葉片深褐色,黃暈明顯,病斑擴(kuò)大不受葉脈限制;TY058 侵染致病面積最大,接種菌塊縮小變薄,瓊脂顏色變深,病斑黑色圓形外緣有黃暈,病斑處組織濕腐伴有白色菌絲生長(如圖1)。菌株BQI033、BQI031 和QA001 接種葉片未見明顯病斑,僅觀察到接種菌塊菌絲生長;菌株 QD003、MS010、BQ025 和 QA009 侵染形成病斑直徑≥1.0 cm,發(fā)病部位葉片顏色變深,接種處出現(xiàn)菌核病發(fā)病初期特征性水浸狀病癥;菌株 QA009、HG011、BA007 和 TY058 形 成 病 斑 直徑≥1.5 cm,病部近圓形,病斑黑褐色,外圈顏色發(fā)黃。
圖1 接種不同菌株形成的差異病斑(72 h)Fig.1 The disease spot different after inoculated with different strains(72 h)
SPSS 22.0 分析數(shù)據(jù)可知,10 個菌株接種后得到的病斑直徑差異較大,差異極顯著。試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析,供試菌株的致病力差異在P<0.05 水平差異極顯著。根據(jù)供試菌株病斑直徑差異可知試驗(yàn)核盤菌的菌株間致病力存在差異,接種后病斑較小其致病力較弱,病斑較大其致病力較強(qiáng)。結(jié)合病樣采集地點(diǎn),致病力較弱菌株BQI033、BQI031 均來自雙鴨山市寶清縣;同來自綏化市慶安縣的菌株QA0013 和QA009,雖病樣采集地點(diǎn)相同,但致病力差異較大,病斑直徑差0.87 cm;菌株BQI031 和QA001 病斑直徑差異較小僅為0.03 cm,但樣品采集地點(diǎn)不同,分別來自寶清縣和慶安縣。試驗(yàn)結(jié)果表明:黑龍江省內(nèi)核盤菌菌株間致病力存在較大差異,致病力強(qiáng)弱差異與采集地點(diǎn)無相關(guān)性。菌株來源相同,存在致病力分化;來源不同的菌株,致病力表現(xiàn)也有相同。
表2 致病力分化試驗(yàn)結(jié)果(72 h)Table 2 The test results of differentiation pathogenic( 72 h)
菌株按照致病力從弱到強(qiáng)順序排列,記錄POD 和SOD 酶活試驗(yàn)結(jié)果見表3:BQI033 的SOD 酶活值為642.16 U·g-1,是供試菌株中 SOD 酶活最低值,其菌內(nèi)POD 酶活值1.15 U·g-1也為最低值;菌株TY058的SOD 酶活值是1 493.34 U·g-1,在供試菌株SOD酶活值中最高,其POD 酶活值也為最高值2.61 U·g-1。10 個菌株中有4 個菌株體內(nèi)POD 與SOD 活性排序相同,分別為菌株 BQI033、BQI031、BQ025 和TY058,占總體菌株的40%;3 個菌株體內(nèi)二種酶活在總體排位相近僅差一位,分別是QA001、QA009 和BA007,占總體菌株的30%。余下3 個菌株體內(nèi)中POD 與SOD 酶活性表現(xiàn)略有差別,QD003 菌株SOD 活性偏弱,SOD 活性較強(qiáng);MSO10 體內(nèi) SOD 活性較強(qiáng),在所有菌株SOD 活性中排在第二位是1 052.37 U·g-1,而POD 酶活性偏低,是總體菌株的第七位;HGO11 的POD 活性較高,排在所有菌株P(guān)OD 酶活性的第二位,其SOD 活性只排在第五位。試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)單菌株體內(nèi)的POD 及SOD 兩種酶活性存在相似性,POD 活性強(qiáng),SOD 活性也強(qiáng),SOD 在生物體內(nèi)主要是清除其體內(nèi)的氧自由基;POD 酶起到催化過氧化氫、氧化酚類和胺類并消除其毒性的作用,兩種酶在功能上相輔相成。70 %供試單菌株體內(nèi)兩種酶活性在總體菌株的排序位置相同或相近,核盤菌菌株體內(nèi)SOD 和POD 酶活性表現(xiàn)相似。通過試驗(yàn)結(jié)果可知,POD 和SOD 兩種酶的活性強(qiáng)弱隨著核盤菌菌株不同存在個體差異,兩種酶在同一菌株中的活性表現(xiàn)相同或相近,活性強(qiáng)弱相似,僅有少數(shù)菌株中SOD 和POD 酶活性存在差異。
表3 核盤菌供試菌株內(nèi)SOD 及POD 酶活性Table 3 The relationship between SOD and POD enzyme activity in strains
按致病力強(qiáng)弱順序排列供試菌株樣品并對比POD 活性測定結(jié)果,菌株 BQI033、BQI031 和 QA001的致病力較弱,侵染形成的病斑直徑均<1.0 cm,上述3 個菌株體內(nèi)的 POD 酶活值均<1.6 U·g-1;菌株QD003、MS010、BQ025、QA009、HG011 和 BA007 侵染得到的病斑直徑在1.0~2.0 cm 之間,POD 活性測試結(jié)果在 1.6~2.0 U·g-1之間;菌株 TY058 的致病力最強(qiáng),POD 活性亦最強(qiáng),病斑直徑為2 cm,POD 酶活值為2.61 U·g-1(如圖2 所示)。試驗(yàn)結(jié)果可知,供試菌株中大部分菌株的菌內(nèi)POD 活性與菌株的致病力正相關(guān),菌株致病力強(qiáng),其體內(nèi)POD 活性也強(qiáng),隨著不同菌株致病力的增強(qiáng),不同菌株體內(nèi)POD 活性值也增大。其中,供試菌株 QD003 的 POD 活值是 1.75 U·g-1,相鄰菌株 MS010 的 POD 酶活性為 1.63 U·g-1,QD003 較MS010 的致病力弱,而POD 酶活性卻略強(qiáng)于 MS010;菌株 BA007 的 POD 活性是 1.83 U·g-1,而致病力稍差的HG011 體內(nèi)POD 活性卻高于BA007是 1.93 U·g-1。菌株 QD003 和 BA007 的 POD 酶活性未完全與菌株的致病力強(qiáng)弱正相關(guān),推測原因可能是相鄰菌株間致病力差異較小,POD 活性變化不明顯。由結(jié)果初步推測:核盤菌內(nèi)不同菌株致病力不同,致病力強(qiáng)的菌株,菌株體內(nèi)POD 活性強(qiáng)。隨著供試菌株致病力從弱到強(qiáng)順次排序,不同菌體內(nèi)POD酶活值逐漸增大,10 個菌株的酶活值總體趨勢遞增。
圖2 病斑直徑與菌株內(nèi)POD 酶活性的關(guān)系Fig.2 The relationship between spot diameter and POD enzyme activity in strains
圖3 病斑直徑與菌株內(nèi)SOD 酶活性的關(guān)系Fig.3 The relationship between spot diameter and SOD enzyme activity in strains
菌株QA009 到TY058 的致病力較強(qiáng),侵染形成的病斑直徑≥1.5 cm,SOD 酶活性均高于1 000 U·g-1;菌株BQI033 和TY058 致病力差異最大,兩株菌株對應(yīng)的SOD 酶活性之差>800 U·g-1,酶活性分別為642.16 U·g-1和 1 493.34 U·g-1;其中 QA001 和MS010 較致病力相似的相鄰菌株的SOD 酶活性高,未與趨勢線完全吻合。菌株BQI033、BQI031、QA001的致病力逐漸增強(qiáng),3 個菌株內(nèi)的SOD 酶活數(shù)值亦依次遞增;從菌株BQ025 到TY058,不同菌體內(nèi)SOD酶活性值大小與菌株致病力強(qiáng)弱關(guān)系一致。觀察所有供試菌株SOD 活數(shù)值,不同菌株間SOD 酶活值總體趨勢與菌株致病力強(qiáng)弱變化相關(guān)。菌株之間QA001、QD003 和 MS010 的 SOD 酶存在波動,兩個菌株的SOD 活性未完全與菌株致病力變化一致。
綜上所示,同屬一個菌株的POD 及SOD 酶活性變化趨勢相同,不同菌株間POD 及SOD 酶活性存在差異;SOD 酶活試驗(yàn)結(jié)果與POD 酶活結(jié)果總體表現(xiàn)一致,隨著菌株致病力的增強(qiáng),菌株體內(nèi)SOD 及POD 酶活性也較致病力弱的菌株的酶活值大,不同菌株間酶活性變化趨勢與菌株致病力強(qiáng)弱變化表現(xiàn)一致。從菌株內(nèi)SOD 和POD 活性趨勢及與致病力強(qiáng)弱的關(guān)系等不同角度分析,發(fā)現(xiàn)少數(shù)菌株間酶活性和致病力關(guān)系存在差異,供試菌株中酶活性未完全按照致病力增強(qiáng)而增大的菌株均出自菌株QA001、QDOO3 和MS010。推測此種情況出現(xiàn)的原因,菌株個體存在差異或因菌株間致病力差異較小,酶活變化不明顯所致。具體原因有待下一步試驗(yàn)證明,核盤菌的致病力與其體內(nèi)POD 及SOD 酶活性的關(guān)系仍需進(jìn)一步驗(yàn)證。
通過試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)黑龍江地區(qū)大豆菌核病致病菌株間致病力差異顯著,存在核盤菌致病力分化現(xiàn)象,并明確致病力分化與菌株來源地?zé)o明顯相關(guān)性,此研究結(jié)果與劉春來等[19]研究結(jié)果一致。也有試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)不同采樣地點(diǎn)的大豆菌核病病原菌,它們的菌落形狀和生長速率差異極顯著,核盤菌存在區(qū)域?qū);訹20]。大豆菌核病生物學(xué)特性研究存在區(qū)域轉(zhuǎn)化性,而致病力強(qiáng)弱卻受地理因素影較小,核盤菌菌絲的生長速度與致病力強(qiáng)弱密切相關(guān),近幾年黑龍江省大豆種植面積減少且不集中,菌核樣品采集數(shù)量有限,對核盤菌致病機(jī)制仍需繼續(xù)研究。
研究報(bào)道發(fā)現(xiàn)核盤菌中菌絲體與死體營養(yǎng)體菌核的形態(tài)轉(zhuǎn)變與其體內(nèi)的氧含量有關(guān),核盤菌菌株體內(nèi)氧含量增高時,菌絲體向死體營養(yǎng)體菌核變化;反之,核盤菌內(nèi)SOD 和POD 酶活性大,可快速分解催化體內(nèi)的過氧化氫和氧自由基[21],菌株體內(nèi)氧含量少,核盤菌仍處在可直接侵染寄主的菌絲體狀態(tài),具有較強(qiáng)的致病力。當(dāng)病原菌侵染寄主植物時,寄主在調(diào)動體內(nèi)最早期的防衛(wèi)反應(yīng)時會產(chǎn)生大量的活性氧[22],妨礙病原菌的定殖侵染。菌株體內(nèi)的POD 及SOD 活性較強(qiáng),在侵入寄主體內(nèi)時,不斷進(jìn)行氧化還原反應(yīng)催化活性氧轉(zhuǎn)變成O2和H2O,阻斷信號傳導(dǎo)并減弱寄主的抗性反應(yīng),寄主易被侵染,因而菌株表現(xiàn)為致病力較強(qiáng)。核盤菌菌態(tài)與致病力的關(guān)系和核盤菌侵染過程中阻斷信號傳遞與致病力的關(guān)系兩方面分析,菌株體內(nèi)POD 和SOD 活性均與菌株致病力相關(guān),試驗(yàn)得到核盤菌菌內(nèi)參與氧化還原酶活性與致病力正相關(guān)結(jié)果一致。通過試驗(yàn)初步推斷,核盤菌致病強(qiáng)弱與菌株體內(nèi)POD 和SOD 酶活性呈正相關(guān),菌株致病力越強(qiáng),菌株體內(nèi)POD 及SOD 酶活性越強(qiáng)。由于核盤菌致病機(jī)理研究中對病原菌本身氧化還原酶活性研究較少,分析比較的報(bào)道較少,核盤菌菌體內(nèi)POD 和SOD 活性與致病力關(guān)系需進(jìn)一步試驗(yàn),同時仍需不同來源地核盤菌試驗(yàn)驗(yàn)證。
黑龍江地區(qū)大豆菌核病菌致病力分化較大,同地區(qū)核盤菌菌株存在致病力分化現(xiàn)象,且此種分化與菌株來源地?zé)o相關(guān)性。試驗(yàn)初步發(fā)現(xiàn)核盤菌菌內(nèi)POD 活性與SOD 活性表現(xiàn)相近,同一菌株體內(nèi)POD酶活性強(qiáng),則SOD 活性亦強(qiáng);核盤菌致病強(qiáng)弱與菌體內(nèi)POD 及SOD 酶活性呈正相關(guān),核盤菌致病力越強(qiáng),POD 及 SOD 活性越強(qiáng)。
黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報(bào)2021年1期