趙璐藐，郜海燕，劉瑞玲，丁玉庭，韓延超，陳杭君,*

（1.浙江工業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院，浙江 杭州 310014；2.浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院食品科學(xué)研究所，農(nóng)業(yè)農(nóng)村部果品產(chǎn)后處理重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，中國(guó)輕工業(yè)果蔬保鮮與加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，浙江省果蔬保鮮與加工技術(shù)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，浙江 杭州 310021）

芋艿（Colocasia esculenta L. Schott）屬天南星科，是多年生單子葉草本植物，其肉質(zhì)球莖，富含淀粉，食用價(jià)值高，原產(chǎn)于中國(guó)、印度等熱帶沼澤地區(qū)[1-3]。浙江奉化是我國(guó)最早栽培芋艿的地區(qū)之一，奉化芋艿肉質(zhì)細(xì)膩，個(gè)大皮薄，品質(zhì)極佳，深受大眾喜愛(ài)[4-5]。但新鮮芋艿水分高，采后易發(fā)生腐爛褐變[6]而失去商品價(jià)值，其采后病害問(wèn)題已成為浙江芋艿產(chǎn)業(yè)發(fā)展的主要問(wèn)題。

近年來(lái)，對(duì)芋艿的研究主要集中于田間病蟲害及采后褐變。據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道，芋艿田間病害主要有芋疫病、炭疽病等[7-8]，均由真菌引起，病原真菌侵染是引起果蔬采后病腐的主要原因[9]，而目前關(guān)于芋艿采后病害問(wèn)題鮮見(jiàn)報(bào)道。因此，分離鑒定芋艿采后主要病原菌，并針對(duì)性采取有效措施對(duì)減少芋艿采后貯藏?fù)p失及延長(zhǎng)貯藏期具有重大意義。為了延長(zhǎng)芋艿的保鮮期，前人研究以低溫保鮮[10]為主，但低溫不能有效阻止病原菌侵染，而植物提取物是存在于植物體內(nèi)通過(guò)化學(xué)或物理方法提取出的具有有效抑菌作用的物質(zhì)[11]。檜木醇是從扁柏樹中提取的一種單萜類天然化合物[12]，具有抗菌、抗氧化以及抗腫瘤功效，是高安全性的植物提取成分[13-14]。有研究表明，檜木醇可控制桃子和茄子等采后病害[15]，且能維持采后龍眼品質(zhì)[14]，而其在芋艿采后病原菌控制方面還鮮見(jiàn)研究。

本研究采用傳統(tǒng)菌種分離法對(duì)浙江奉化芋艿采后常溫貯藏過(guò)程中的病原菌進(jìn)行分離純化，并對(duì)其進(jìn)行形態(tài)學(xué)及rDNA-ITS序列分子學(xué)鑒定，旨在明確主要病原菌的種類；同時(shí)研究檜木醇溶液處理對(duì)芋艿采后主要病原菌的抑菌效果，以期為后續(xù)采取針對(duì)性的研發(fā)綠色防腐保鮮技術(shù)提供理論參考依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

芋艿采自浙江寧波奉化芋艿基地，選擇大小均一、無(wú)明顯病蟲害的健康芋艿，于室溫下貯藏。貯藏期間，定期觀察發(fā)病情況并將其病原菌分離進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

檜木醇（純度＞99%） 梯希愛(ài)（上海）化成工業(yè)發(fā)展有限公司；馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基（potato dextrose agar，PDA）、馬鈴薯葡萄糖肉湯培養(yǎng)基（potato dextrose broth，PDB） 上海盛思生物科技有限公司。

1.2 儀器與設(shè)備

MLS-3781L-PC高壓蒸汽滅菌器 松下健康醫(yī)療器械株式會(huì)社；MJX-160B-Z霉菌培養(yǎng)箱 上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠；超凈工作臺(tái) 江蘇蘇凈集團(tuán)有限公司；H7650透射電子顯微鏡 日本Hitachi公司；UV9000紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海元析儀器有限公司；HZQ-F160全溫振蕩培養(yǎng)箱 太倉(cāng)市實(shí)驗(yàn)設(shè)備廠；axio-vert倒置熒光顯微鏡 卡爾·蔡司股份公司。

1.3 方法

1.3.1 病原菌分離純化

參照文獻(xiàn)[16]，將貯藏過(guò)程中自然發(fā)病的芋艿按不同病癥分組，采用常規(guī)組織分離法對(duì)病原菌進(jìn)行分離純化，反復(fù)純化出現(xiàn)單菌落后轉(zhuǎn)接斜面培養(yǎng)，菌種編號(hào)并低溫保存，用于菌落形態(tài)觀察及鑒定。

1.3.2 病原菌致病性檢測(cè)

選用健康無(wú)傷的芋艿，采用針刺法將純化后的絲狀真菌塊回接至芋艿刺傷部分，以不接真菌塊為對(duì)照，于室溫貯藏，定期觀察芋艿發(fā)病癥狀，顯出病癥后再次對(duì)其進(jìn)行分離鑒定，觀察菌株是否與接種菌一致，以便判斷主要致病菌。每個(gè)病原菌處理3 個(gè)重復(fù)。

1.3.3 病原菌形態(tài)觀察

將保存的純病原菌活化，并接種于PDA培養(yǎng)基中，25 ℃恒溫箱培養(yǎng)至產(chǎn)孢，于熒光顯微鏡下觀察菌絲體及孢子形態(tài)并拍照。

1.3.4 病原菌rDNA-ITS序列與系統(tǒng)發(fā)育分析

采用CTAB法提取和純化基因組DNA[17]。利用真菌通用引物ITS1（5’-TCCGTAGGTGAACCTGCGC-3’）和ITS4（5’-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3’）對(duì)病原菌的基因組DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增，引物合成委托杭州擎科梓熙生物技術(shù)有限公司完成。擴(kuò)增程序：98 ℃預(yù)變性2 min，98 ℃變性10 s，55 ℃退火10 s，72 ℃延伸10 s，35 個(gè)循環(huán)，72 ℃延伸5 min，4 ℃保存。

上述擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)后，切下目的片段進(jìn)行回收，由杭州擎科梓熙生物技術(shù)有限公司進(jìn)行測(cè)序。將測(cè)序結(jié)果提交到GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)，并利用NCBI網(wǎng)站進(jìn)行BLAST比對(duì)分析，尋找同源性較高的已知序列。利用Neighbor-Joining法[18]構(gòu)建菌株親緣關(guān)系較近的系統(tǒng)發(fā)育樹，結(jié)合菌株形態(tài)，確定菌株種屬。

1.3.5 體外抑菌

將一定量已配制好的檜木醇溶液加入已滅菌的PDA培養(yǎng)基中，制成檜木醇質(zhì)量濃度為0、10、20、30、40、50、60、80、100 mg/L的平板。用無(wú)菌打孔器在病原菌平板上取直徑6 mm的菌塊，放入PDA平板中央，在25 ℃條件下培養(yǎng)，定期觀察菌落，用游標(biāo)卡尺測(cè)量菌落直徑并記錄，實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次求平均值。

1.3.6 孢子萌發(fā)率測(cè)定

參考Li Jiangkuo[19]和周靈靈[20]等方法，稍作修改。在無(wú)菌條件下，將病原菌孢子懸浮液分別混合于不同質(zhì)量濃度檜木醇的葡萄糖溶液中，分別取不同質(zhì)量濃度的終液50 μL滴入雙凹載玻片，將載玻片放置在培養(yǎng)皿中（直徑200 mm），于25 ℃培養(yǎng)箱中保濕培養(yǎng)，在第6、12、18小時(shí)于顯微鏡下觀察孢子萌發(fā)情況，每處理鏡檢孢子數(shù)不少于100 個(gè)，以芽管長(zhǎng)度超過(guò)孢子直徑一半計(jì)為孢子萌發(fā)。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次，孢子萌發(fā)率計(jì)算公式如下：

1.3.7 丙二醛濃度測(cè)定

病原菌細(xì)胞膜脂質(zhì)過(guò)氧化程度可用丙二醛（malondialdehyde，MDA）濃度作為指標(biāo)進(jìn)行測(cè)定。參考Li Jiangkuo等[19]的方法，稍作修改。稱取2.5 g（濕質(zhì)量）的菌絲體加入含有合適濃度的檜木醇溶液的PDB液體培養(yǎng)基中，搖床（25 ℃，140 r/min）培養(yǎng)0、3、6、9、12、24 h后，分別取2 mL上清液采用硫代巴比妥酸法測(cè)定吸光度，實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。

1.3.8 透射電鏡觀察

菌絲固定采用戊二醛、鋨酸雙重固定法。稱1 g菌絲（濕質(zhì)量）浸泡于3%戊二醛室溫下固定過(guò)夜，用pH 6.8的磷酸鹽緩沖液反復(fù)沖洗15 min后用1%的鋨酸固定2 h（4 ℃），再經(jīng)乙醇梯度脫水、包埋、聚合。聚合后進(jìn)行切片處理，超薄切片經(jīng)醋酸雙氧鈾和檸檬酸鉛染色后，于透射電鏡下觀察菌絲體并拍照。

1.4 數(shù)據(jù)處理與分析

實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用Microsoft Office Excel 2010軟件整理，采用SPSS Statistics 23軟件進(jìn)行差異顯著性分析（P＜0.05，差異顯著），圖片繪制采用Origin 2017以及Photoshop CS4。

2 結(jié)果與分析

2.1 芋艿采后病原菌的分離鑒定

2.1.1 病原菌分離純化及致病性檢測(cè)結(jié)果

根據(jù)科赫法則，從芋艿的自然發(fā)病部位分離出3 株真菌，編號(hào)為CE-1、CE-2、CE-3，回接致病（圖1d、h）和再分離純化后確定芋艿采后致病菌為CE-1和CE-2，此2 種菌株能不同程度地導(dǎo)致芋艿發(fā)病腐爛，初期均從采摘受損處發(fā)病。CE-1菌使芋艿表皮出現(xiàn)白色絨狀物病斑，而后長(zhǎng)出白色菌絲使其腐爛，CE-2菌使表皮出現(xiàn)褐變進(jìn)而軟化，直至長(zhǎng)出灰黑色疏松菌絲。

CE-1菌在PDA培養(yǎng)基上25 ℃培養(yǎng)5 d后菌落形態(tài)如圖1b所示，CE-1菌落圓形，菌絲為白色或淺灰色，形如羊絨，菌落背面略帶黃色。菌絲有隔，分生孢子兩端較尖，呈鐮刀型或紡錘形，孢體稍彎曲（圖1c）。CE-2菌在PDA培養(yǎng)基上25 ℃培養(yǎng)3 d后菌落形態(tài)如圖1f所示，CE-2菌落圓形，絨狀菌絲叢，初期白色，后期轉(zhuǎn)為炭黑色，且隨培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng)，產(chǎn)生少許菌核。菌絲有隔，分枝，分生孢子黑褐色，卵圓形，基部平截，端部鈍圓，壁厚（圖1g）。

圖1 芋艿貯藏期發(fā)病果實(shí)病害癥狀、分離菌株菌落形態(tài)特征及其回接癥狀Fig. 1 Symptoms of postharvest diseases on taro, and morphology and pathogenicity of pathogens

2.1.2 病原菌rDNA-ITS序列和系統(tǒng)發(fā)育樹分析

以病原菌基因組DNA為模板，采用引物ITS1和ITS4進(jìn)行PCR擴(kuò)增，2 個(gè)病原菌菌株均獲得1 條500 bp左右的擴(kuò)增條帶。將其序列在NCBI中進(jìn)行BLAST比對(duì)發(fā)現(xiàn)，菌株CE-1與鐮刀菌屬序列相似度達(dá)99%以上，菌株CE-2與可可毛色二孢菌序列相似度達(dá)99%以上，可信度較高。選取同源性高低不同的菌株進(jìn)行多重序列比較和系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建（圖2），結(jié)果表明：菌株CE-1與茄病鐮刀菌（Fusarium solani，登錄號(hào)：KF938479.1）親緣關(guān)系較近，與禾谷鐮刀菌（F. graminearum，登錄號(hào)：KT318586.1）及層生鐮刀菌（F. proliferatum，登錄號(hào)：KU984710）等鐮刀菌親緣關(guān)系較遠(yuǎn)。菌株CE-2與可可毛色二孢菌（Lasiodiplodia theobromae，登錄號(hào)：MH454030.1）聚為一類。因此，結(jié)合2 種病原菌的形態(tài)特征鑒定，rDNA-ITS序列分析以及系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建，確定引起芋艿采后病害的主要病原菌為Fusarium sp.和L. theobromae。

圖2 基于ITS基因序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig. 2 Phylogenetic tree based on ITS sequences

2.2 檜木醇對(duì)芋艿采后病原菌的抑菌活性

2.2.1 檜木醇體外抑菌效果

2 種病原菌菌落生長(zhǎng)速度不同，CE-1長(zhǎng)滿培養(yǎng)皿需5 d時(shí)間，而CE-2則在2 d長(zhǎng)滿。從圖3可以看出，檜木醇溶液對(duì)芋艿采后2 種病原菌均有一定的抑菌效果，且隨質(zhì)量濃度的升高抑制能力增強(qiáng)，相對(duì)來(lái)說(shuō)，檜木醇對(duì)CE-2的抑制能力要弱于CE-1。質(zhì)量濃度為10 mg/L的檜木醇溶液對(duì)CE-1菌絲生長(zhǎng)有明顯的抑菌效果，在培養(yǎng)3 d后不同質(zhì)量濃度處理間菌絲生長(zhǎng)有顯著差異（P＜0.05），且質(zhì)量濃度為50 mg/L的檜木醇溶液完全抑制了CE-1的生長(zhǎng)。對(duì)于CE-2，檜木醇質(zhì)量濃度為40 mg/L時(shí)對(duì)菌絲生長(zhǎng)有明顯抑制作用，在培養(yǎng)2 d后不同質(zhì)量濃度處理間菌絲生長(zhǎng)有顯著差異（P＜0.05），且質(zhì)量濃度為100 mg/L時(shí)完全抑制CE-2的生長(zhǎng)。

圖3 檜木醇處理對(duì)CE-1和CE-2菌絲生長(zhǎng)的影響Fig. 3 Inhibitory effects of hinokitiol at different concentrations against mycellial growth of the two pathogens

2.2.2 檜木醇對(duì)病原菌孢子萌發(fā)率的影響

圖4 檜木醇處理對(duì)CE-1病原菌孢子萌發(fā)的抑制效果Fig. 4 Inhibitory effects of hinokitiol at different concentrations on spore germination of the pathogens

為研究檜木醇對(duì)病原菌孢子萌發(fā)的抑制效果，進(jìn)一步分析了檜木醇溶液對(duì)CE-1在培養(yǎng)第6、12、18小時(shí)的孢子萌發(fā)率。由圖4可以看出，隨著檜木醇質(zhì)量濃度的增加，CE-1孢子萌發(fā)率顯著降低（P＜0.05），18 h對(duì)照組孢子萌發(fā)率達(dá)到91.33%，而40 mg/L和80 mg/L檜木醇處理組孢子萌發(fā)率僅分別為32%和9.67%，其中孢子萌發(fā)抑制率分別約為66%和90%。在進(jìn)行CE-2孢子萌發(fā)實(shí)驗(yàn)時(shí)，采用普通培養(yǎng)基培養(yǎng)，發(fā)現(xiàn)產(chǎn)孢子困難，這與Saha等[21]研究結(jié)果一致。進(jìn)一步采用燕麥培養(yǎng)基及連續(xù)光照等方法進(jìn)行優(yōu)化培養(yǎng)，培養(yǎng)26 d后產(chǎn)孢量依然很少，不具備統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。因此，在一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi)，檜木醇能顯著抑制CE-1病原菌孢子的萌發(fā)，也由此抑制其菌絲生長(zhǎng)。

2.2.3 檜木醇對(duì)菌絲膜脂過(guò)氧化的影響

MDA是膜脂過(guò)氧化的主要產(chǎn)物，是衡量膜系統(tǒng)氧化損傷的重要指標(biāo)之一[22]。為能明顯看出抑菌效果，選取抑菌率為60%以上的檜木醇處理菌種，即以40 mg/L質(zhì)量濃度處理CE-1和80 mg/L質(zhì)量濃度處理CE-2。從圖5a可以看出，質(zhì)量濃度為40 mg/L檜木醇溶液處理CE-1，在處理6 h后MDA濃度開始超過(guò)對(duì)照組并始終保持上升，于第24小時(shí)達(dá)到最高水平。從圖5b可以看出，質(zhì)量濃度為80 mg/L檜木醇溶液處理CE-2，其MDA濃度始終高于對(duì)照組。由此可見(jiàn)，檜木醇能夠誘導(dǎo)芋艿采后兩種病原菌菌絲膜脂質(zhì)過(guò)氧化，加劇膜的損傷，促進(jìn)MDA的大量積累。MDA可與真菌的蛋白質(zhì)及核酸發(fā)生相應(yīng)反應(yīng)，從而改變其結(jié)構(gòu)，破壞其生物學(xué)功能，致使真菌死亡。

圖5 檜木醇處理對(duì)2 種病原菌菌絲脂質(zhì)過(guò)氧化影響Fig. 5 Effects of hinokitiol on membrane lipid peroxidation of the two pathogens

2.2.4 檜木醇對(duì)菌絲體亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)的影響

由圖6可知，檜木醇處理對(duì)CE-1和CE-2的亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)有明顯破壞的影響，對(duì)照組的2 種菌菌絲體細(xì)胞壁層次清楚，有明確界限的質(zhì)膜，厚度均勻且細(xì)胞器完整未受損傷。而經(jīng)檜木醇處理后的CE-1細(xì)胞膜部分模糊，厚度不均勻，菌絲體內(nèi)部分細(xì)胞質(zhì)解體出現(xiàn)空腔（圖6A、B）。CE-2菌絲體膜有溶解跡象，且菌絲體內(nèi)細(xì)胞器液泡化（圖6C、D）。2 種病原菌細(xì)胞完整性均遭到破壞，表明檜木醇對(duì)鐮刀菌屬和可可毛色二孢菌菌絲體有一定的破壞作用，促使膜脂質(zhì)過(guò)氧化而造成膜損傷，改變膜通透性，從而達(dá)到抑菌效果。

圖6 檜木醇處理對(duì)2 種病原菌菌絲體亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)的影響Fig. 6 Transmission electron micrographs of the two pathogens treated and not treated with hinokitiol

3 討論與結(jié)論

本研究通過(guò)形態(tài)學(xué)觀察、分子生物學(xué)鑒定以及致病性檢測(cè)方法，初步確定引起芋艿采后腐爛變質(zhì)的主要病原菌為鐮刀菌屬（Fusarium sp.）和可可毛色二孢菌（L. theobromae）。此2 種菌均能對(duì)芋艿采后造成不同程度的病變，其中可可毛色二孢菌引起的芋艿果實(shí)采后病害為國(guó)內(nèi)首次報(bào)道。可可毛色二孢菌可引起龍眼焦腐病[23]、橡膠樹葉斑病[24]、桑樹根腐病[25]以及枇杷采后病害[26]，具有一定的致病力。守川俊幸等[27]研究發(fā)現(xiàn)茄病鐮刀菌可引起低溫貯藏的富山縣芋頭發(fā)病，這與本研究分離出鐮刀菌屬菌株有相同之處?？赡芨鞯貐^(qū)不同品種芋艿采后病害不盡相同，而是否均能致病且有無(wú)存在復(fù)合侵染還有待進(jìn)一步研究。

我國(guó)植物資源豐富，其產(chǎn)生的次生代謝產(chǎn)物有40多萬(wàn) 種，不同植物有不同的抑菌活性成分，其結(jié)構(gòu)類型涉及醇類、萜類、生物堿類、精油類等化合物均有抑菌、殺菌或抗菌的功效[28]。研究表明，芳樟醇和檸檬醛[29]、香茅醇[30]、肉桂精油[31]、黃帚橐吾[32]等植物提取物分別對(duì)柑橘褐色蒂腐病菌、鐮刀菌屬、藍(lán)莓采后致病菌以及辣椒疫霉菌有較好的抑菌作用。Zhou Ting等[33]研究發(fā)現(xiàn)癸烷精油能夠顯著抑制青霉菌（Penicillium expansum）的菌絲生長(zhǎng)和孢子萌發(fā)，從而發(fā)揮抑制青霉病的作用。劉瑞玲等[34]采用體外直接接觸法和體外熏蒸法，研究了香芹酚精油、肉桂精油和百里香精油對(duì)火龍果采后主要病原菌層生鐮刀菌（F. proliferatum）和平頭炭疽菌（Colletotrichum fructicola）的抑制效果，發(fā)現(xiàn)香芹酚精油表現(xiàn)出較強(qiáng)的抑菌性，可作為火龍果貯藏前的熏蒸劑。檜木醇從柏科樹木中提取，天然安全，具有良好的抗真菌活性，研究發(fā)現(xiàn)其能抑制灰霉病菌，是良好的食品防腐劑和發(fā)芽抑制劑[35]，有持久的抗菌效果，然而，目前關(guān)于檜木醇對(duì)果蔬采后病原菌的抑制作用及可能的作用機(jī)理鮮有報(bào)道。

本研究通過(guò)體外平板抑菌實(shí)驗(yàn)，明確了檜木醇溶液對(duì)芋艿采后兩種主要病原菌的抑制作用，50 mg/L的檜木醇溶液能完全抑制鐮刀菌屬真菌的生長(zhǎng)，這與Morita等[36]研究結(jié)果一致。同時(shí)，100 mg/L檜木醇溶液可完全抑制可可毛色二孢菌的生長(zhǎng)。有文獻(xiàn)報(bào)道，檜木醇可抑制各類腐霉菌的體外菌絲生長(zhǎng)[15]，這給本研究結(jié)果提供了理論依據(jù)，且研究發(fā)現(xiàn)檜木醇溶液濃度越大對(duì)病原菌的抑制率越大。進(jìn)一步通過(guò)其對(duì)病原菌孢子萌發(fā)、菌絲體脂質(zhì)過(guò)氧化以及亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)的影響判斷對(duì)病原菌的破壞程度，初探其作用機(jī)理。鐮刀菌屬孢子萌發(fā)受檜木醇在一定程度上的抑制，采用40 mg/L和80 mg/L檜木醇溶液分別處理鐮刀菌屬和可可毛色二孢2 種病原菌，發(fā)現(xiàn)均能使菌的MDA濃度比對(duì)照組的高，表明膜脂過(guò)氧化嚴(yán)重，可能膜系統(tǒng)結(jié)構(gòu)遭到破壞，從而促使細(xì)胞死亡，抑制菌絲的生長(zhǎng)。透射電鏡的觀察發(fā)現(xiàn)檜木醇破壞菌絲的亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)，推測(cè)其作用于真菌細(xì)胞膜導(dǎo)致通透性增加，直接接觸線粒體等亞細(xì)胞器，造成其損傷，引起細(xì)胞能量代謝障礙，最終導(dǎo)致真菌細(xì)胞死亡，也進(jìn)一步證實(shí)以上結(jié)論。

近幾年對(duì)檜木醇的研究主要集中于人體醫(yī)學(xué)和營(yíng)養(yǎng)學(xué)方面的應(yīng)用，而在食品保鮮領(lǐng)域較少報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)分離鑒定出芋艿采后主要病原菌，并對(duì)檜木醇處理此兩種病原菌的抑制效果進(jìn)行了初步研究，對(duì)進(jìn)一步開發(fā)綠色、安全、高效的芋艿防腐保鮮技術(shù)提供了理論參考價(jià)值，而至于檜木醇的抑菌機(jī)理尚未清晰，還需后續(xù)實(shí)驗(yàn)更進(jìn)一步闡明。