夏玲玲
摘 ?要:目的 ?研究與分析高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法建立同時(shí)測(cè)定肌肉組織中4種藥物殘留的方法及其確認(rèn)情況。方法 ?采取高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜分析方法來(lái)同時(shí)建立測(cè)定肌肉組織中新霉素、多黏菌素B、灰黃霉素、喹乙醇以及其代謝物3-甲基喹啉-2-羧酸,同時(shí)采取外標(biāo)法定量。結(jié)果 ?在質(zhì)量濃度1.0~200.0g/L范圍內(nèi),4種藥物均表現(xiàn)出良好的線性關(guān)系,且R2均超過(guò)0.9980。喹乙醇及MQCA的方法檢出限為0.5g/kg,灰黃霉素、新霉素以及多黏菌素B的方法檢出限為5.0g/kg,4種藥物在陰性樣品中的加標(biāo)回收率為82.1%~98.5%。結(jié)論 ?采取高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法來(lái)進(jìn)行處理,操作簡(jiǎn)單便捷,對(duì)結(jié)果干擾性較小,可以加以廣泛應(yīng)用。
關(guān)鍵詞:高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法 ?肌肉組織 ?藥物殘留
中圖分類號(hào):X824 ? 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1672-3791(2020)01(c)-0230-02
隨著藥物的濫用,在動(dòng)物肌肉組織中會(huì)殘留很多藥物,目前已經(jīng)有部分報(bào)道了灰黃霉素、喹乙醇、黏菌素以及新霉素等藥物的檢測(cè)方法,很多法律法規(guī)也對(duì)各類藥物的檢測(cè)方法進(jìn)行了規(guī)定[1]。該文對(duì)高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法建立同時(shí)測(cè)定肌肉組織中4種藥物殘留的方法及其確認(rèn)情況進(jìn)行研究與分析,現(xiàn)報(bào)道如下。
1. 材料與方法
1.1 材料和試劑
試驗(yàn)樣品選取購(gòu)買自市場(chǎng)的8份豬肉,4份兔肉以及8份雞肉。試劑選取德國(guó)Dr.Ehrenstorfe公司生產(chǎn)的純度>99.0%的MQCA、純度>99.0%的喹乙醇、純度>84.0%的硫酸多黏菌素B、純度>98.0%的灰黃霉素、純度>90.0%的硫酸新霉素標(biāo)準(zhǔn)品。德國(guó)Merck公司生產(chǎn)的乙腈以及甲醇。此次試驗(yàn)均為超純水,同時(shí)該實(shí)驗(yàn)使用甲酸為上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司生產(chǎn),分析純?yōu)閺V州化學(xué)試劑廠生產(chǎn)。
1.2 儀器與設(shè)備
德國(guó)CNW公司生產(chǎn)的200mg、6mL HLB固相萃取小柱,德國(guó)IKA公司生產(chǎn)的T18高速均質(zhì)機(jī)以及MS3 Basic漩渦振蕩器,美國(guó)Agilent公司生產(chǎn)的6490串聯(lián)三重四極桿質(zhì)譜儀以及1260超高效液相色譜儀,昆山市超聲儀器有限公司生產(chǎn)的250W KQ-250DV超聲波清洗儀,美國(guó)Millipore公司生產(chǎn)的Milli-Q純水儀,KDC-1044離心機(jī)采用由北京中科佳儀科技有限公司生產(chǎn)的儀器。
1.3 方法
1.3.1 配制標(biāo)準(zhǔn)溶液
準(zhǔn)確稱取10.0mg5種標(biāo)準(zhǔn)品,放置于100mL的棕色容量瓶中,溶解標(biāo)準(zhǔn)品采用50∶50,V/V10mL乙腈-1%甲酸水溶液,采用乙腈進(jìn)行定容處理,將5種單標(biāo)儲(chǔ)備液分別吸取1.0mL,隨后定容至100mL,隨后得到混合標(biāo)準(zhǔn)溶液。在-18℃條件下保存標(biāo)準(zhǔn)溶液。
1.3.2 樣品處理
(1)提取。
首先切碎肌肉組織,隨后將其打碎,混合均勻,將均質(zhì)后的5.00g樣品放置在塑料離心管(50mL)內(nèi),向其內(nèi)加入提取溶劑10mL,隨后進(jìn)行渦旋,渦旋時(shí)間為1min,在超聲提取10min,離心速度為4000r/min,離心時(shí)間為3min,向25mL比色管中加入上清液,隨后進(jìn)行重復(fù)提取,合并2次對(duì)上清液進(jìn)行提取,使用提取溶劑進(jìn)行定容,需要定容至25.0mL,隨后進(jìn)行搖勻,待凈化[2-3]。
(2)凈化。
預(yù)先將HLB固相萃取柱進(jìn)行活化,活化采取超純水10mL,甲醇5mL,待完全流出液體后,對(duì)固相萃取柱采用5mL超純水淋洗,隨后進(jìn)行減壓抽干處理,目標(biāo)化合物采用10mL凈化洗脫液進(jìn)行洗脫,洗脫完畢后將其放置于15mL離心管內(nèi),將洗脫液用氮?dú)庠?0℃條件下濃縮至近干。采用1.0mL初始流動(dòng)相溶解濃縮物,采取0.22m濾膜來(lái)進(jìn)行過(guò)濾處理,測(cè)定采用HPLC-MS/MS[4-5]。50℃條件下將洗脫液用氮?dú)鉂饪s至近干。濃縮物采用1.0mL初始流動(dòng)相溶解,過(guò)濾采取0.22m濾膜,最后采用HPLC-MS/MS進(jìn)行測(cè)定[4-5]。
2 ?結(jié)果
2.1 樣品提取和凈化條件的選擇
很多脂溶性的內(nèi)源性物質(zhì)存在于動(dòng)物肌肉組織內(nèi),在檢測(cè)過(guò)程中這些物質(zhì)會(huì)對(duì)化合物的相應(yīng)產(chǎn)生影響,因此將干擾物質(zhì)采取合適的凈化方式和提取溶劑去除十分必要[6]。
2.1.1 選擇提取溶劑
極性較大的藥物包括新霉素、多黏菌素B和喹乙醇,可以使用極性溶劑進(jìn)行提取,而極性較小的藥物包括MQCA和灰黃霉素,可以使用有機(jī)溶劑進(jìn)行提取,在酸性條件下多黏菌素B和新霉素具有較高的提取效率。此次實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,喹乙醇、MQCA以及灰黃霉素可以通過(guò)單一有機(jī)溶劑體系來(lái)進(jìn)行提取,但是提取新霉素以及多黏菌素的效果較差,使用單一的5%甲酸水溶液來(lái)提取灰黃霉素幾乎沒(méi)有提取效果。
2.1.2 凈化洗脫液的選擇
利用固相萃取小柱凈化提取液,可以有效地去除雜質(zhì),同時(shí)將基質(zhì)的干擾減少。此次實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,采用體積分?jǐn)?shù)為20%和50%的乙腈來(lái)洗脫雜質(zhì),具有較佳的去除效果,但是仍有30%和45%未被洗脫的灰黃霉素殘留,洗脫采用純乙腈洗脫液后,會(huì)具有較多的雜質(zhì)。而采取5%甲酸水-80%乙腈來(lái)進(jìn)行洗脫時(shí),具有較少的雜質(zhì),而藥物的回收率均超過(guò)80%,因此,最佳的洗脫液為10mL 5%甲酸水-80%乙腈。
2.2 線性方程和檢出限
在質(zhì)量濃度1.0~200.0g/L范圍內(nèi),4種藥物均表現(xiàn)出良好的線性關(guān)系,且R2均超過(guò)0.9980。喹乙醇及MQCA的方法檢出限為0.5g/kg,灰黃霉素、新霉素以及多黏菌素B的方法檢出限為5.0g/kg(見表1)。
2.3 回收率
4種藥物在陰性樣品中的加標(biāo)回收率為82.1%~98.5%。
3 ?結(jié)語(yǔ)
采取高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法來(lái)進(jìn)行處理,操作簡(jiǎn)單便捷,對(duì)結(jié)果干擾性較小,可以加以廣泛應(yīng)用。
參考文獻(xiàn)
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