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        miR-155在重癥肺炎患者血清中的表達及其對肺組織的保護機制研究

        2020-01-02 17:23:10張錦麗吳杭捷
        健康研究 2020年5期
        關(guān)鍵詞:孵育重癥肺炎

        張錦麗,吳杭捷,郭 偉

        (浙江省醫(yī)療健康集團杭州醫(yī)院 重癥監(jiān)護室,浙江 杭州 310021)

        重癥肺炎是呼吸內(nèi)科常見的社區(qū)獲得性感染,病情嚴重,發(fā)展迅速,病程長[1]。重癥肺炎患者死亡率較高,為20%~50%[2]。Th17/Treg動態(tài)平衡與炎癥的發(fā)生發(fā)展有著密切聯(lián)系[3-5]。microRNAs (miRNAs)是一種長度為21~24個核苷酸的小型非編碼RNA[6],miR-155在炎癥介導(dǎo)的相關(guān)疾病中的作用被相繼報道[7-8]。本研究檢測重癥肺炎患者miR-155水平,結(jié)合Th17/Treg動態(tài)平衡狀態(tài)對miR-155保護肺組織的機制進行探討。

        1 材料和方法

        1.1 一般資料 選取浙江省醫(yī)療健康集團杭州醫(yī)院2018年3月—2019 年3月收治的重癥肺炎患者32例,其中男18例,女14例,平均年齡(61.09±7.72)歲,均符合重癥肺炎相關(guān)診斷標準[9]。以同期健康體檢者32例為健康對照組,其中男17例,女15例,平均年齡(62.11±7.08)歲。2組研究對象平均年齡、性別比較,差異均無統(tǒng)計學意義 (P>0.05)。所選研究對象均簽署知情同意書,本研究經(jīng)醫(yī)院倫理委員會批準。

        1.2 實驗動物及材料 選取成年健康Sprague-Dawley(SD)大鼠39只,6~8周齡,體質(zhì)量200~250 g,雌雄不限,購于北京華埠康生物技術(shù)有限公司[SCXK(京)2016-0275]。SPF系統(tǒng)內(nèi)分籠飼養(yǎng),12 h循環(huán)光照,室溫(23.0±1.0)℃,濕度50%~60%,適應(yīng)性喂養(yǎng)1周。miR-155模擬物(miR155-Mimics)購自廣州銳博生物科技有限公司,F(xiàn)ITC-Foxp3 (鼠8512477180 ,人71577640)、PE-Cy5.5-CD4 (鼠8511004181,人35004280)、PE-IL-17A (鼠8512717781,人12717842)、PE-CD25 (鼠51-0259- 41,人25-0259-42)、PE-Cy5 IgG1(共用PA5-75428)均購自eBioscience公司,IL-17A(鼠1311702, 人512315)、IL-6(鼠1310602, 人430501)、IL-10(鼠1311002, 人501420)等ELISA檢測試劑盒購自達科為生物科技有限公司。

        1.3 大鼠肺炎模型建立及給藥方法 參照文獻[10],培養(yǎng)肺炎克雷伯菌(武漢淼靈生物科技有限公司)制備成混懸菌液備用。將大鼠按照隨機數(shù)字法分成3組,每組13只,分別為對照組、模型組(重癥肺炎模型)和miR-155組。模型組和miR-155組大鼠麻醉后,以仰臥姿態(tài)固定在操作臺上,將舌頭固定在口外,聲門顯露,插入氣管約0.5 cm,拔出導(dǎo)絲。0.4 mL的肺炎克雷伯菌液(含菌量1.2×1010CFU/mL)經(jīng)導(dǎo)管注射至大鼠氣管,確保菌液全部進入。當大鼠出現(xiàn)呼吸急促、喘息、哮鳴音、躁動、口唇、耳紫紺等癥狀時為造模成功[11]。對照組腹腔注射等體積的無菌生理鹽水。造模前24 h,miR-155組氣管穿刺注入miR-155模擬物40 μg,對照組和模型組腹腔注射等量無菌生理鹽水。造模成功后24 h,各組大鼠腹主動脈采血5 mL(1 mL抗凝全血,其余抗凝離心后取血清),并剖開胸腔取肺組織,部分于4%多聚甲醛中固定,剩余組織凍存于液氮中。

        1.4 miR-155檢測 提取血清中總RNA,將RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,通過qRT-PCR檢測miR-155水平,上海生工生物工程(上海)股份有限公司協(xié)助完成引物設(shè)計和合成,嚴格按照SYBR Green PCR 混合試劑盒(德國Qiagen)說明書操作。miR-155正向和反向引物分別是:5’-UUAALUGGUAAUUGUCAUACGGGU-3’和5’-CCCUAUGACAAUUACCAUUAA UU-3’,內(nèi)參為U6,采用2-△△ct法進行定量計算,實驗重復(fù)3次。

        1.5 Th17和Treg細胞比例測定 采用FC500 MCL流式細胞儀進行檢測。分別采集重癥肺炎組和健康對照組研究對象3 mL抗凝血,F(xiàn)icoll 法分離出外周血單個核細胞,懸液于2個流式管中,第 1 管中加入 PERCP標記的CD4抗體,第2管中加入PERCP標記的CD4、FITC標記的CD25,室溫避光孵育30 min,PBS洗滌離心后室溫避光孵育IL-17A 破膜劑A液15 min,清洗。加入IL-17A 破膜劑B液及IL-17A 抗體,通過IgG1做同型對照,室溫下避光孵育30 min,清洗重懸等待上機。以相同操作孵育Foxp3對應(yīng)的抗體,上機設(shè)門后分別分析CD4-CD25-Foxp3-/CD4-(Th17細胞)和CD4+IL-17+/CD4+(Treg細胞)在外周血中的比例。另取大鼠肺組織的單個核細胞,調(diào)整至1×106個/mL,步驟同上。

        1.6 ELISA IL-17A、IL-6、IL-10水平檢測 采用ELISA法。取各組外周血3 mL,EDTA抗凝后3 000 r(有效離心半徑10 cm),4 ℃下離心10 min,取上層血清。加入不同濃度標準品(100 μL /孔)至相應(yīng)孔中,封孔、室溫下孵育120 min后洗板5次。加入生物素化抗體工作液(100 μL/孔),密封室溫孵育60 min,洗板。加入酶結(jié)合物工作液(100 μL /孔),密封室溫孵育20 min,洗板。100 μL /孔顯色劑顯色,密封室溫孵育20 min。加入終止液混勻檢測重癥肺炎組、健康對照組和大鼠對照組、模型組、miR-155組血清中IL-17A、IL-6和IL-10水平。

        1.7 HE染色及形態(tài)學分析 各組大鼠肺組織采用4%多聚甲醛溶液固定后脫水及石蠟包埋,制成厚度約為5 μm的組織切片,行常規(guī)HE染色,中性樹膠封固,顯微鏡下觀察。

        1.8 統(tǒng)計學分析 采用SPSS 20.0統(tǒng)計軟件,計量資料2組間比較采用t檢驗,多組間比較采用方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        2.1 重癥肺炎患者血清中miR-155及炎癥因子水平 重癥肺炎組患者血清中miR-155水平低于健康對照組,IL-17A水平高于健康對照組,IL-10低于健康對照組,IL-6水平高于健康對照組,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見封三圖1。

        2.2 重癥肺炎患者外周血中Th17和Treg的比例 重癥肺炎組患者外周血中Th17細胞比例高于健康對照組,Treg細胞比例低于健康對照組,Th17/Treg的比值高于健康對照組,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見封三圖2。

        2.3 大鼠肺組織的HE染色結(jié)果 HE染色結(jié)果顯示,正常組大鼠肺小葉結(jié)構(gòu)清晰,肺泡腔結(jié)構(gòu)完整,未見炎性細胞浸潤和上皮黏膜脫落現(xiàn)象;模型組大鼠肺泡結(jié)構(gòu)紊亂,可見炎性細胞浸潤及出血癥狀;miR-155組大鼠炎性浸潤減少;見封三圖3。

        2.4 大鼠外周血中Th17和Treg的比例 與正常組相比,模型組大鼠Treg細胞比例降低,Th17細胞比例上升,Th17/Treg的比值上升,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);與模型組相比,miR-155組大鼠Treg細胞比例上升,Th17細胞比例下降,Th17/Treg的比值下降,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);見封三圖4。

        2.5 大鼠血清中miR-155及炎癥因子水平 與正常組大鼠血清中miR-155的相對表達量(1.00±0.13)比較,模型組大鼠miR-155的相對表達量(0.42±0.09)下降,差異有統(tǒng)計學意義(t=6.42,P=0.003);miR-155組大鼠miR-155的相對表達量(1.03±0.16)高于模型組,差異有統(tǒng)計學意義(t=7.07,P<0.001)。與正常組相比,模型組重癥肺炎大鼠血清中IL-17A和IL-6水平上升, IL-10水平下降,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);與模型組相比,miR-155組大鼠血清中IL-17A和IL-6水平下調(diào),IL-10水平上調(diào),差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);見封三圖5。

        3 討論

        病毒性肺炎和細菌性肺炎是導(dǎo)致兒童、老年人、免疫缺陷者和全世界共病者死亡的重要原因[12-13]。肺炎初次感染時,病毒或者細菌潛伏在患者體內(nèi)多個器官中,尤其是肺部。當機體免疫功能受到抑制后,病毒或細菌將成瀑布式暴發(fā),與機體免疫系統(tǒng)形成對抗[14-16],最終發(fā)展成重癥肺炎。重癥肺炎作為一種急性呼吸道感染,是常見的高死亡率疾病之一[17]。目前可用于監(jiān)測肺炎發(fā)展的特異性生物指標尚不完善,迫切需要檢測方便和特異性高的生物指標來監(jiān)測重癥肺炎的發(fā)生發(fā)展,以提高重癥肺炎的確診率。

        miRNAs可通過介導(dǎo)RNA裂解、抑制mRNA翻譯或引起mRNA不穩(wěn)定來調(diào)節(jié)基因表達。miR-155干擾免疫系統(tǒng)的B細胞、T細胞和樹突狀細胞功能,并在多種疾病中具有不同的表達模式[18]。本研究結(jié)果顯示,miR-155在重癥肺炎患者和大鼠模型血清中的相對表達量均明顯下降,肺部損傷明顯;當miR-155過表達時,重癥肺炎大鼠肺部損傷減輕,炎性浸潤減少,表明miR-155過表達對于重癥肺炎大鼠的肺部有一定的保護功效。miR-155對人肺組織的保護作用,仍需進一步研究確定。

        研究[19-20]顯示,雖然具體觸發(fā)重癥肺炎的機制尚不明確,但是炎癥反應(yīng)在重癥肺炎進展中的地位已明確。當初期潛伏的病毒或者細菌被激活后,宿主自身免疫調(diào)節(jié)開始發(fā)揮作用[16],這時多種炎癥因子成瀑布式暴發(fā),最終由局部肺炎發(fā)展成全身炎癥反應(yīng),甚至可導(dǎo)致肺部乃至多器官的衰竭。Th17/Treg失衡是炎癥反應(yīng)的重要特征之一,有研究[21]顯示Th17/Treg平衡在肺炎患者中的重要性。本研究結(jié)果顯示,重癥肺炎患者和大鼠模型外周血中Th17細胞比例明顯增加,Treg細胞比例明顯降低。在宿主體內(nèi),當炎癥發(fā)生時,Th17和Treg細胞顯示出相反的變化趨勢,一方面,Th17細胞主要作用是促進炎癥反應(yīng),這一效應(yīng)通過分泌大量的IL-17并聚集大量炎癥細胞達成[22],此時機體內(nèi)的IL-6等其他炎性因子的表達也會增多;另一方面,Treg細胞的主要作用是負性調(diào)節(jié)免疫細胞,達到抑制T細胞增殖、活化的效應(yīng),防止自身免疫疾病的發(fā)生,這一效應(yīng)主要通過分泌IL-10等炎性細胞因子而發(fā)揮免疫抑制功能。本研究結(jié)果顯示,重癥肺炎患者和大鼠模型血清中IL-17A、IL-6水平明顯上升,IL-10水平明顯下降;過表達miR-155后,重癥肺炎大鼠血清中IL-17A、IL-6水平明顯降低, IL-10水平明顯上升,這一結(jié)果與外周血中Th17/Treg的變化趨勢一致。

        綜上,重癥肺炎患者血清中miR-155的表達明顯下降,過表達miR-155后重癥肺炎大鼠的肺組織損傷減少,具體的保護機制可能與恢復(fù)Th17/Treg的平衡有關(guān)。

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