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        番茄紅素檢測方法的改進

        2019-06-27 19:15:58聶院玲李振興
        食品安全導(dǎo)刊 2019年5期
        關(guān)鍵詞:最優(yōu)化番茄紅素

        聶院玲 李振興

        摘 要:番茄紅素是一種優(yōu)良的天然色素,在諸多方面都有很高的應(yīng)用價值,但由于其自身穩(wěn)定性差,因此如何準(zhǔn)確測定其含量成為一大難題。本文采用分光光度法通過在不同條件下進行對比分析,包括紫外色譜不同波長、不同溶劑、不同溫度、不同提取時間和不同溶劑量等,找出最佳分離溶劑、提取溫度、時間的測試方法。并通過標(biāo)準(zhǔn)溶液建立吸光度的回歸方程,按上述最優(yōu)條件進行樣品吸光度測量對比,驗證結(jié)果的可靠性。

        關(guān)鍵詞:番茄紅素 分光分度法 最優(yōu)化

        番茄紅素是一種脂溶性不飽和碳?xì)浠衔?,也是一種不含氧的類胡蘿卜素,是廣泛存在于自然界中的一種天然色素。其化學(xué)分子式為C14H56,分子量為536.85,溶點為174℃,純品是深紅色針式形狀的結(jié)晶體,稍帶些許金屬光澤。番茄紅素具有獨特的分子結(jié)構(gòu)——由11個共軛雙鍵和2個非共軛雙鍵組成,這種獨特的分子結(jié)構(gòu)造成它對光照反映十分敏感,特別是日光和紫外光[1-3]。番茄紅素分布非常廣泛,其中番茄果實中的含量最高,同時胡蘿卜、紅色葡萄柚、木瓜、西瓜等植物的果實和根部中也含有這一成分,由于其最早是從番茄中提取出來的,故被命名為番茄紅素[4]。

        因番茄紅素獨特的分子結(jié)構(gòu),造成其穩(wěn)定性較差——在不同的溫度下容易發(fā)生順反式異構(gòu)化和氧化分解。據(jù)文獻記載,到目前為止共發(fā)現(xiàn)72個與番茄紅素不同的異構(gòu)體[5],其中順式異構(gòu)體熔點低、極性強、易溶解,反式結(jié)構(gòu)稍差,因此氧、光、酸、熱等因素會對番茄紅素的穩(wěn)定性產(chǎn)生很大影響。

        番茄紅素常與其他類胡蘿卜素共同存在于各種果實中,它們的結(jié)構(gòu)十分相似,因此如何準(zhǔn)確、快速地測量出番茄紅素的含量是研究人員一直所面臨的難題。據(jù)文獻報道,目前主要的檢測方法有液相色譜法(HPLC)、分光光度法、色差法及掃描比色法等。由于其中有些方法要求使用高純度標(biāo)準(zhǔn)樣品,有的程序操作繁雜,還有的提取溶劑存在毒性,因此本文采用分光光度法進行測量,通過分析不同條件下的反應(yīng)來確定一種準(zhǔn)確、快速、方便的番茄紅素測定方法。

        1 試驗部分

        1.1 試驗方法

        對番茄紅素進行有機溶劑的提取,對提取液進行過濾,用紫外可見分光光度計測量濾液的吸光度值,然后按測定的吸光值,對比標(biāo)準(zhǔn)樣品的摩爾消光系數(shù)并計算番茄紅素的含量。

        1.2 試劑與設(shè)備

        1.2.1試劑

        乙酸乙酯、三氯甲烷、正己烷、6號溶劑、番茄紅素標(biāo)準(zhǔn)品。

        1.2.2設(shè)備

        精密分析天平(0~80g):賽多利斯(十萬分之一);紫外可見分光光度計:TU 1810SPC。

        2 實驗分析與結(jié)果討論

        2.1 吸收光譜波長的選擇

        由于番茄紅素與β-胡蘿卜素的吸收光譜較為接近,為避免吸收光譜之間的影響,本實驗將番茄紅素樣品和β-胡蘿卜素樣品分別溶入4種不同的溶劑中,即乙酸乙酯、6號溶劑、三氯甲烷、正己烷。然后在300~600nm范圍內(nèi)進行掃描,得出它們的吸收光譜(如圖1)。根據(jù)測量,番茄紅素和β-胡蘿卜素在不同溶劑中對紫外吸收光譜的吸收峰值見表1。

        由以上光譜圖和吸收峰值表可知,番茄紅素和β-胡蘿卜素在不同溶劑中都有類似的吸收峰,且吸收峰的形狀類似,但位置略有變化,吸收峰最高位置均為中間部分。同時可知,在番茄紅素的吸收峰時,β-胡蘿卜素在此位置也有吸收峰,因此造成β-胡蘿卜素對番茄紅素的測定有很大影響。但是,番茄紅素在502nm吸收峰位置時其吸收強度很大,β-胡蘿卜素在這一位置的吸收強度卻很小,故選擇502nm作為吸收光譜可避免β-胡蘿卜素帶來的影響。

        2.2 溶劑的選擇和影響

        根據(jù)工業(yè)中對胡蘿卜素的提取工藝,常用的溶劑有乙酸乙酯、6號溶劑、三氯甲烷、正己烷,為充分了解各種溶劑的性質(zhì)以為后續(xù)測定提供依據(jù),本試驗分別對4種溶劑進行對比分析。

        稱4份重量為1g的番茄紅素,分別加入20mL乙酸乙酯、6號溶劑、三氯甲烷、正己烷中,如果完全溶解,則再稱取4份重量為1g的番茄紅素分別加入4種溶液,保證番茄紅素達到飽和。然后,依據(jù)各溶液沸點(乙酸乙酯77℃、6號溶劑67.5℃、三氯甲烷61℃、正己烷69°C)在20~70℃之間的特性,每隔10℃測量一次吸光值,對比測算出其溶解濃度,進而得出溶解性較好的溶劑。4種不同溶劑的溶解度趨勢如圖2~5。

        從圖2~5中可以看出,三氯甲烷溶解度最大,但毒性亦較大;其次分別為乙酸乙酯、6號溶劑、正己烷,其中乙酸乙酯成本較低且毒性小,因此,選擇乙酸乙酯作為提取劑進行后續(xù)試驗。

        2.3提取溫度的選擇和影響

        稱取6份重量為1g的番茄紅素,分別溶入20mL乙酸乙酯中,分別在25、30、35、40、45、50、55℃的溫度下恒溫2h后,過濾,各取濾液1mL定容到一定體積,測定吸光值,結(jié)果見圖6。

        由圖6可知,溫度對番茄紅素的提取率有明顯影響——不高于50℃時,提取率隨溫度的升高逐漸增大,溶解度也隨之增大,吸光度也在增大;但溫度高于50℃后,吸光度開始逐漸下降。所以,溫度保持在50℃時番茄紅素的提取效果最為適宜。

        2.4提取時間的選擇和影響

        稱取5份重量為1g的番茄紅素,分別溶入20mL乙酸乙酯中,在50℃下恒溫1、1.5、2、2.5、3h后,過濾,各取濾液1mL定容到一定體積,測定吸光值,結(jié)果見圖7。

        由圖7可知,不同時間對番茄紅素的提取率有明顯影響。由于提取過程實質(zhì)上是一個擴散過程,在開始時間段,擴散過程隨時間延長越來越好,但在2h時達到平衡,隨著時間的延長擴散過程不再變化,吸光度也趨于穩(wěn)定,所以提取時間以2h最為適宜。

        2.5溶劑量的選擇和影響

        稱取6份重量為1g的番茄紅素,分別溶入5、10、15、20、25、30mL乙酸乙酯中,在50℃下恒溫2h后,過濾,各取濾液1mL定容到一定體積,測定吸光值,結(jié)果見圖8。

        由圖8可知,不同溶劑量對番茄紅素的提取率也有影響,但不是特別顯著。溶劑量小時,擴散過程容易達到飽和,隨著溶劑量的增加,擴散過程更加完全,但溶劑量超過20mL后,溶劑的增加對吸光度影響不大,所以溶劑量定為20mL較為合理。

        3測試結(jié)果

        綜合考慮到以上試驗條件,并結(jié)合番茄紅素對光和氧比較敏感的特點,為了縮短與光和空氣接觸的時間,故整個浸提過程選擇暗室和微波提取。

        3.1標(biāo)準(zhǔn)樣品

        3.1.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液的制備

        稱取10mg番茄紅素標(biāo)準(zhǔn)品和20mgBHT,取少量乙酸乙酯溶解后,定容至100mL棕色容量瓶中。

        3.1.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線

        將標(biāo)準(zhǔn)溶液稀釋為1、2、4、8、1、12μg/mL,于502nm下測定其吸光度建立回歸曲線(如圖9)。

        3.2樣品加標(biāo)提取及測定

        稱取0.5~2.0g樣品5份,2份加入標(biāo)準(zhǔn)溶液2mL,在暗室中進行提取,其中用乙酸乙酯定容并測定其吸光度,帶入回歸曲線,計算回收率為91.2%、95.4%,回收率滿足要求。

        4 結(jié)論

        經(jīng)試驗驗證,用乙酸乙酯作為溶劑,在50℃溫度下,提取時間為2h等最優(yōu)條件下,于502nm處測定其吸光度,回收率較好,能夠快速準(zhǔn)確地測量出番茄紅素的結(jié)果。

        參考文獻:

        [1] 李雪雁.番茄紅素的生產(chǎn)與檢測研究[J].電子科技大學(xué)學(xué)報2003,32(6):760-763.

        [2] 張連富,丁霄霖.番茄紅素簡便測定方法的建立[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2001,27(3):51–551.

        [3] 侯純明,周鑫,等.紫外分離測定番茄紅素[J].糧食與食品工業(yè),2006,13(2):11-14.

        [4] 滕秀蘭,蒲陸梅,王興民,等.分光光度法測定番茄紅素[J].理化檢驗-化學(xué)分冊,2013,49(11):1385-1389.

        [5] 王鵬,張春枝,李代,等.番茄紅素標(biāo)準(zhǔn)品的制備[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2007,33(2):124-127.

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