李惠，陳曦，劉暢，黃晶，洪淼，郝麗萍，楊雪鋒

（1.華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院公共衛(wèi)生學(xué)院營養(yǎng)與食品衛(wèi)生學(xué)系，食品營養(yǎng)與安全湖北省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，湖北武漢430030）（2.武漢躍萊健康產(chǎn)業(yè)有限公司研究院，湖北武漢 430023）

Ⅱ型糖尿病（Type 2 diabetes mellitus，T2DM）發(fā)病率逐年升高[1]，成為威脅全球人類健康的重要公共衛(wèi)生問題。2016年世界衛(wèi)生組織公布的數(shù)據(jù)顯示：2014年全球糖尿病發(fā)病率為8.5%，約有4.22億患者。而2型糖尿病更是占其中的90%，中國目前Ⅱ型糖尿病的發(fā)病率已超過全球平均水平，高達(dá) 11.6%[2]。糖尿病患病率逐年增加對(duì)于我國經(jīng)濟(jì)發(fā)展、人民健康和生活水平都是一項(xiàng)巨大的挑戰(zhàn)。長期高能量膳食導(dǎo)致的糖脂代謝紊亂和胰島素抵抗在2型糖尿病的發(fā)生發(fā)展中具有重要的作用，尋求有效的膳食干預(yù)措施防治Ⅱ型糖尿病成為研究者關(guān)注的熱點(diǎn)。

研究表明，普洱茶具有一定程度的降糖降脂作用。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明，普洱茶水提物能夠促進(jìn)Wistar大鼠骨骼肌葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)，改善大鼠胰島素抵抗[3]，還可以降低小鼠內(nèi)臟脂肪含量，但是對(duì)小鼠的體重不產(chǎn)生影響[4]。也有研究表明，普洱茶提取物和綠茶提取物能夠降低STZ糖尿病模型大鼠空腹血糖，同時(shí)均能降低血糖曲線下面積，但是普洱茶提取物在降低動(dòng)物空腹血糖和血糖曲線下面積方面要優(yōu)于綠茶提取物[5]。菊粉低聚果糖又稱為菊糖，是一種功能性植物多糖，水解后生成低聚果糖[6]，也具有一定調(diào)節(jié)糖脂代謝的功效。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)，低聚果糖能夠增加胰島素敏感性，改善大鼠的胰島素抵抗?fàn)顟B(tài)[7]，并且能夠調(diào)節(jié)腸道菌群的構(gòu)成，增加乳酸桿菌、雙歧桿菌等有益菌的含量，從而調(diào)節(jié)糖尿病大鼠的血糖水平[8,9]。另有研究發(fā)現(xiàn)，低聚果糖可以增加Wistar大鼠的排便量以及糞便脂肪含量，減少脂肪攝取，達(dá)到降脂的效果[10]。玉米須含有多種對(duì)人體有益的化學(xué)成分及營養(yǎng)物質(zhì)，我國傳統(tǒng)醫(yī)學(xué)記載其有顯著的利尿、降血糖、抑菌等功效[11]。也有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明，玉米須可以降低小鼠的基礎(chǔ)血糖水平，并且抑制外源葡萄糖刺激下的血糖升高[12]。玉米須水提物則可以降低2型糖尿病大鼠血清游離脂肪酸、膽固醇和甘油三酯水平，改善大鼠脂代謝[13]。可見，普洱茶提取物、低聚果糖和玉米須提取物對(duì)于糖脂代謝紊亂具有一定的調(diào)節(jié)作用，但其復(fù)合配方改善糖/脂代謝紊亂和胰島素抵抗的研究尚未見報(bào)道。本文將著重探討三者復(fù)合配方對(duì)糖尿病大鼠糖/脂代謝紊亂和胰島素抵抗的影響，為開發(fā)新的保健食品提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 受試物

普洱茶提?。ㄗ厣勰?000 g/袋，茶多酚含量≥10%），由大閩食品（漳州）有限公司提供，人體推薦攝入量2 g/d，按成人60 kg·bw計(jì)為0.033 g/(kg·bw)。

低聚果糖，（菊粉，白色粉末，4000 g/袋，低聚果糖含量≥95%）；由河南旗諾食品配料有限公司提供，人體推薦攝入量6 g/d，按成人60 kg·bw計(jì)為0.100 g/(kg·bw)。

玉米須提取物，（淺棕色粉末，3000 g/袋，葡萄聚糖≥60%），由南京澤朗生物科技有限公司提供，人體推薦攝入量 2 g/d，按成人 60 kg·bw 計(jì)為 0.033 g/(kg·bw)。

復(fù)合配方，普洱茶粉、低聚果糖、玉米須提取物按一定的比例混合，人體推薦攝入量10 g/d，按成人60 kg·bw 計(jì)為 0.167 g/(kg·bw)。

1.2 試劑和儀器

鏈脲佐菌素（Streptozocin，STZ）、無水檸檬酸，上海凌峰化學(xué)試劑有限公司；檸檬酸三鈉，上海凌峰化學(xué)試劑有限公司；葡萄糖試劑盒，北京中生北控生物科技股份有限公司；血清胰島素ELISA試劑盒，瑞典Mercodia公司；總膽固醇試劑盒，北京中生北控生物科技股份有限公司；甘油三酯試劑盒，北京中生北控生物科技股份有限公司；SpectraMax M2全自動(dòng)酶標(biāo)儀，美國Molecular Devices/MD公司；低溫高速離心機(jī)，德國Eppendorf 5804R；血糖儀及血糖試紙，羅氏診斷產(chǎn)品有限公司；ZW-A微量震蕩器，中外合資深圳天南海北有限公司；電動(dòng)勻漿器，美國Terre Haute公司。

1.3 飼料

大鼠飼料購自北京華阜康生物科技股份有限公司。高熱能飼料組成為：豬油10%、蔗糖15%、蛋黃粉15%、酪蛋白5%、膽固醇1.2%、膽酸鈉0.2%、磷酸氫鈣0.6%、石粉0.4%、小鼠維持飼料52.6%。

1.4 動(dòng)物實(shí)驗(yàn)

本次實(shí)驗(yàn)糖/脂代謝紊亂、胰島素抵抗模型造模方法，參照國食藥監(jiān)保化[2012]107號(hào)《輔助降血糖功能評(píng)價(jià)方法》。

健康成年雄性Sprague Dawley大鼠80只，體重為 130～150 g，由北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司提供（批準(zhǔn)證號(hào)：SCXK＜京＞2016-0011）。飼養(yǎng)于華中科技大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心（實(shí)驗(yàn)動(dòng)物設(shè)施許可證號(hào)：SYXK（鄂）2016-0057）。環(huán)境溫度 20～26 ℃，相對(duì)濕度40%～70%。適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后，按體重隨機(jī)分為8組：正常對(duì)照組、模型對(duì)照組及6個(gè)受試物組。正常對(duì)照組給予普通飼料，模型對(duì)照組和受試物組給予高脂飼料。普洱茶、低聚果糖、玉米須組分別按人體推薦攝入量的 20 倍（0.667 g/(kg·bw)、2.000 g/(kg·bw)、0.667 g/(kg·bw)）經(jīng)口灌喂給予受試物，低、中、高劑量復(fù)合配方組分別按人體推薦配方劑量的5倍（0.833 g/(kg·bw)）、10 倍（1.667 g/(kg·bw)）、20 倍（3.333 g/(kg·bw)）經(jīng)口灌胃給予受試物，正常對(duì)照組和模型對(duì)照組同時(shí)經(jīng)口灌喂給予同體積的溶劑。大鼠灌胃量0.75 mL/(100 g·bw)。

飼養(yǎng)期間，每周記錄實(shí)驗(yàn)大鼠的體重變化。飼養(yǎng)4周后，模型對(duì)照組和6個(gè)受試物組禁食12 h（不禁水），給予鏈脲佐菌素30 mg/(kg·bw)腹腔注射，注射量1 mL/(100 g·bw)。注射后繼續(xù)給予高熱能飼料喂飼3～5 d，進(jìn)行葡萄糖耐量試驗(yàn)。實(shí)驗(yàn)結(jié)束，各組動(dòng)物禁食3～4 h處死，取腹壁脂肪稱重，計(jì)算臟體比。取血清及組織樣品-80 ℃保存，測(cè)定血清胰島素、血清及肝臟總膽固醇、甘油三酯水平。

1.5 指標(biāo)檢測(cè)

1.5.1 葡萄糖耐量試驗(yàn)

實(shí)驗(yàn)開始和實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí)，分別進(jìn)行葡萄糖耐量試驗(yàn)。各組動(dòng)物禁食 3～4 h，進(jìn)行尾靜脈采血，棄去第一滴血，采用羅氏血糖儀測(cè)定空腹血糖即給葡萄糖前（0 h）血糖值，各受試物組給予不同濃度受試物，模型對(duì)照組給予同體積溶劑，正常對(duì)照組不做處理，15 min后各組經(jīng)口給予葡萄糖2.5 g/(kg·bw)，測(cè)定給葡萄糖后各組0.5、2 h的血糖值。觀察各組空腹血糖、給葡萄糖后（0.5、2 h）血糖及血糖曲線下面積（Area under curve of glucose，AUC）的變化。AUC=(0 h血糖+0.5 h)×0.5/2+(2 h+0.5 h)×1.5/2。

1.5.2 血清葡萄糖、胰島素檢測(cè)

1.5.2.1 血清葡萄糖檢測(cè)

采用葡萄糖試劑盒測(cè)定大鼠血清葡萄糖濃度。將葡萄糖校準(zhǔn)品分別進(jìn)行0、2、4、8、16倍稀釋，制作標(biāo)準(zhǔn)曲線；

血清8倍稀釋后加入96孔板混勻，波長505 nm，全自動(dòng)酶標(biāo)儀讀取各孔吸光度。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線和各孔吸光度值計(jì)算血清葡萄糖濃度。

1.5.2.2 血清胰島素檢測(cè)

各組動(dòng)物禁食3 h，采用大鼠ELISA試劑盒檢測(cè)血清胰島素。將胰島素校準(zhǔn)品分別進(jìn)行0、2、4、8、16倍稀釋，制作標(biāo)準(zhǔn)曲線，將血清和酶結(jié)合液加入96孔板混勻，孵育2 h，洗脫6次，加入底物孵育15 min后終止反應(yīng)。波長450 nm，全自動(dòng)酶標(biāo)儀讀取各孔吸光度。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線和各孔吸光度值計(jì)算血清胰島素濃度。根據(jù)血清葡萄糖濃度和胰島素濃度計(jì)算胰島素抵抗指數(shù)（Homeostasis model assessment，HOMA-IR）。胰島素抵抗指數(shù)(HOMA-IR)=胰島素/22.5e-ln血糖≈血清葡萄糖濃度×胰島素濃度/22.5。

1.5.3 血清以及肝臟TC、TG檢測(cè)

采用膽固醇和甘油三酯檢測(cè)試劑盒測(cè)定大鼠血清和肝臟總膽固醇（Total cholesterol，TC）、甘油三酯（Triglycerides，TG）濃度。將校準(zhǔn)品分別進(jìn)行0、2、4、8、16倍稀釋，制作標(biāo)準(zhǔn)曲線；血清4倍稀釋后加入96孔板混勻，37 ℃孵育10 min，波長510 nm，全自動(dòng)酶標(biāo)儀讀取各孔吸光度。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線和各孔吸光度值計(jì)算血清TC、TG濃度。準(zhǔn)確稱取大鼠肝臟樣品100 mg，置于900 μL異丙醇中，冰上勻漿后于4 ℃冰箱靜置48 h，隨后3000 r離心15 min，取上清，測(cè)定步驟同血清TC、TG測(cè)定。

1.6 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

采用Excel進(jìn)行數(shù)據(jù)錄入，統(tǒng)計(jì)分析采用T檢驗(yàn)、方差分析SNK檢驗(yàn)（方差齊時(shí)）及DunnettT3檢驗(yàn)（方差不齊時(shí)）（SPSS 23.0）。

2 結(jié)果與討論

2.1 大鼠體重變化及臟體比

大鼠體重變化情況如表1所示。各組大鼠初始體重?zé)o顯著性差異，模型對(duì)照組體重從第一周末開始顯著高于正常對(duì)照組(p＜0.05)；普洱茶組和高劑量復(fù)方組體重從第一周末開始顯著低于模型對(duì)照組(p＜0.05)，中劑量復(fù)方組體重從第二周末開始顯著低于模型對(duì)照組(p＜0.05)，低劑量復(fù)方組體重從第四周末開始也顯著低于模型對(duì)照組(p＜0.05)。模型對(duì)照組及各受試物組經(jīng)STZ造模后，出現(xiàn)多食、多飲、多尿以及體重下降“三多一少”的2型糖尿病癥狀，所以實(shí)驗(yàn)?zāi)┢诖笫篌w重出現(xiàn)下降的趨勢(shì)。

實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí)，各組大鼠腹壁脂肪重量及腹壁脂肪占體重的比值（臟體比）見表 2。模型對(duì)照組腹壁脂肪重量及臟體比顯著高于正常對(duì)照組(p＜0.05)。經(jīng)方差分析，與模型對(duì)照組相比，普洱茶組、低聚果糖組、低、中、高劑量復(fù)方組腹壁脂肪重量及臟體比明顯降低(p＜0.05)，而玉米須組沒有顯著差異。

表1 受試物對(duì)大鼠體重的影響Table 1 Effects of test substances on body weight in rats（±SD，g）

表1 受試物對(duì)大鼠體重的影響Table 1 Effects of test substances on body weight in rats（±SD，g）

注：*p＜ 0.05，與正常對(duì)照組比較；#p＜ 0.05，與模型對(duì)照組比較。

組別 動(dòng)物數(shù)量/n 始重 第一周末 第二周末 第三周末 第四周末 末重正常對(duì)照組 10 239.80±6.75 298.80±8.34 353.20±16.99 376.40±13.16 416.40±12.83 427.20±17.20模型對(duì)照組 8 242.80±6.61 310.00±10.66* 370.90±16.75* 413.30±17.97* 455.00±24.15* 428.30±28.28普洱茶組 8 246.40±11.06 285.50±21.19# 334.00±30.30# 362.50±32.65# 390.60±47.36# 364.60±39.65#低聚果糖組 8 242.80±8.45 293.80±24.33 345.40±33.68 384.40±42.62 427.90±44.42 415.60±34.55玉米須組 8 245.60±9.26 309.10±20.38 376.30±28.27 403.60±42.56 439.30±48.99 419.10±48.95低劑量復(fù)方組 8 240.80±3.37 297.30±10.19 346.00±16.7 379.60±18.35 404.10±21.94# 387.10±46.5中劑量復(fù)方組 8 240.40±5.37 291.90±15.63 338.30±15.45# 372.00±16.85# 404.60±24.4# 379.00±25.14#高劑量復(fù)方組 8 241.00±6.87 281.60±7.54# 315.50±9.68# 334.10±7.12# 360.00±6.00# 337.40±11.94#

表2 受試物對(duì)大鼠腹壁脂肪重量和臟體比的影響Table 2 Effects of test substances on abdominal fat weight and organ coefficient in rats（±SD）

表2 受試物對(duì)大鼠腹壁脂肪重量和臟體比的影響Table 2 Effects of test substances on abdominal fat weight and organ coefficient in rats（±SD）

組別 動(dòng)物數(shù)量/n 腹壁脂肪/g 臟體比/%正常對(duì)照組 10 2.58±1.48 0.61±0.35模型對(duì)照組 8 5.55±1.16* 1.29±0.23*普洱茶組 8 2.05±0.38# 0.57±0.11#低聚果糖組 8 3.83±1.39# 0.91±0.29#玉米須組 8 5.09±1.69 1.22±0.39低劑量復(fù)方組 8 1.58±0.49# 0.40±0.10#中劑量復(fù)方組 8 2.62±1.47# 0.69±0.40#高劑量復(fù)方組 8 1.64±0.71# 0.49±0.21#

注：*p＜ 0.05，與正常對(duì)照組比較；#p＜ 0.05，與模型對(duì)照組比較。

2.2 受試物對(duì)大鼠葡萄糖耐量的影響

大鼠實(shí)驗(yàn)前后糖耐量試驗(yàn)結(jié)果的比較見表 3。實(shí)驗(yàn)后模型對(duì)照組0.5小時(shí)血糖值≥10 mmol/L，模型對(duì)照組0.5 h、2 h任一時(shí)間點(diǎn)血糖值、血糖曲線下面積顯著高于正常對(duì)照組(p＜0.05)，可見本實(shí)驗(yàn)糖代謝紊亂模型成立。經(jīng)方差分析，與模型對(duì)照組相比：中劑量復(fù)方組0.5 h血糖顯著降低(p＜0.05)，其他受試物組未見明顯變化。血糖曲線下面積出現(xiàn)下降的趨勢(shì)，但是也未見顯著差異。

2.3 受試物對(duì)大鼠胰島素抵抗指數(shù)（HOMA-IR）的影響

實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí)，各組大鼠血清葡萄糖濃度、胰島素濃度和胰島素抵抗指數(shù)結(jié)果見表 4。經(jīng)方差分析，模型對(duì)照組血清葡萄糖濃度和胰島素濃度顯著高于正常對(duì)照組(p＜0.05)，可見胰島素抵抗模型成立。與模型對(duì)照組相比，各受試物組血清葡萄糖濃度沒有顯著差異；普洱茶組、低聚果糖組及低、中、高劑量復(fù)方組胰島素濃度和胰島素抵抗指數(shù)呈顯著下降(p＜0.05)。

表3 實(shí)驗(yàn)前后大鼠空腹血糖及血糖曲線下面積Table 3 Fasting glucose and the area under curve of glucose before and after the experiment（±SD，mmol/L）

表3 實(shí)驗(yàn)前后大鼠空腹血糖及血糖曲線下面積Table 3 Fasting glucose and the area under curve of glucose before and after the experiment（±SD，mmol/L）

注：*p＜ 0.05，與正常對(duì)照組比較；#p＜ 0.05，與模型對(duì)照組比較。

組別 實(shí)驗(yàn)前(±SD) 實(shí)驗(yàn)后(±SD)空腹血糖 0.5 h血糖 2 h血糖 AUC 空腹血糖 0.5 h血糖 2 h血糖 AUC正常對(duì)照組 6.62±0.42 8.90±0.61 7.74±0.86 16.37±0.95 6.18±0.23 8.15±0.56 7.64±0.64 15.39±0.80模型對(duì)照組 6.63±0.37 8.36±0.30 7.91±0.47 15.96±0.26 23.04±2.07* 31.98±1.34* 25.68±4.96* 56.99±4.63*普洱茶組 7.00±0.35 8.94±0.34 8.24±0.89 16.89±0.82 21.58±5.80 30.50±3.64 26.49±4.09 55.78±6.91低聚果糖組 6.78±0.36 8.43±0.77 7.53±0.62 15.78±1.20 22.23±7.72 25.11±9.31 22.76±8.22 47.75±16.71玉米須組 7.05±0.31 8.73±0.71 8.24±1.53 16.68±1.78 24.05±6.43 29.71±4.30 25.84±6.72 56.48±10.92低劑量復(fù)方組 6.80±0.30 9.09±0.99 7.48±0.85 16.41±1.15 19.78±8.42 25.68±7.09 22.71±7.90 49.11±14.14中劑量復(fù)方組 6.71±0.53 8.65±0.74 7.76±0.77 16.18±1.07 16.21±7.51 23.29±7.28# 20.71±7.29 42.88±12.94高劑量復(fù)方組 7.08±0.38 8.71±0.46 7.54±0.89 16.16±1.43 22.55±3.56 28.68±6.18 22.21±9.06 50.99±11.39

表4 受試物對(duì)大鼠胰島素抵抗指數(shù)的影響Table 4 Effects of test substances on insulin resistance index in rats

2.4 受試物對(duì)血清及肝臟總膽固醇（TC）和甘油三酯（TG）的影響

實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí)，各組大鼠血清及肝臟總膽固醇和甘油三酯水平見表 5。模型對(duì)照組血清及肝臟 TC、TG濃度顯著高于正常對(duì)照組(p＜0.05)，可見脂代謝紊亂模型成立。經(jīng)方差分析，與模型對(duì)照組相比：普洱茶組、低、中、高劑量復(fù)方組血清TG呈明顯下降(p＜0.05)；普洱茶組以及中、高劑量復(fù)方組肝臟TC呈顯著下降(p＜0.05)；普洱茶組、玉米須組及高劑量復(fù)方組肝臟TG呈顯著下降(p＜0.05)。

表5 受試物對(duì)大鼠血清及肝臟中總膽固醇和甘油三酯的影響Table 5 Effects of test substances on serum and liver total cholesterol, triglyceride in rats

3 結(jié)論

3.1 超重或肥胖是Ⅱ型糖尿病發(fā)生發(fā)展的一個(gè)危險(xiǎn)因素[14]。研究發(fā)現(xiàn)，200 mg/(kg·bw)或 400 mg/(kg·bw)普洱茶提取物分別能夠使db/db小鼠體重降低9.83%和14.89%[15]，低聚果糖能夠增加排便次數(shù)以及糞便脂肪含量，降低高碳水化合物高脂飼料喂養(yǎng)大鼠12.3%的體重[10]，玉米須多糖則可能通過延長胃排空時(shí)間，降低食欲，加速腸蠕動(dòng)，促進(jìn)排便等作用降低體重[16]。本文觀察到，普洱茶組和低、中、高劑量復(fù)方組大鼠體重均顯著低于模型對(duì)照組，分別降低了 14.87%、9.62%、11.51%、21.22%，表明普洱茶提取物及復(fù)合配方能夠有效減緩高脂喂養(yǎng)導(dǎo)致的大鼠超重或肥胖的發(fā)展。低聚果糖顯著降低了大鼠腹壁脂肪重量及臟體比，但對(duì)大鼠體重的影響不明顯，玉米須則對(duì)大鼠體重和脂肪含量均無顯著影響。

3.2 研究發(fā)現(xiàn)，普洱茶水提物能夠增加 HepG2細(xì)胞葡萄糖的攝取，抑制大鼠腸道蔗糖酶、麥芽糖酶和豬胰腺淀粉酶的活性，抑制db/db小鼠血清胰島素和葡萄糖水平的升高，糖耐量試驗(yàn)中，400 mg/(kg·bw)普洱茶水提物能夠使db/db小鼠1 h和3 h血糖升高值比對(duì)照組低46.39%和53.06%，有效改善小鼠糖耐量損傷和胰島素敏感性[15]。低聚果糖是一種重要的益生元[17]。有研究發(fā)現(xiàn)，低聚果糖能夠增加STZ誘導(dǎo)的2型糖尿病Wistar大鼠的糖耐量，增加胰島素的分泌，有效降低空腹血糖水平[18]，并且可提高β細(xì)胞的葡萄糖敏感性，降低餐后血糖[19]。玉米須多糖能夠使糖尿病小鼠血糖降低46.47%，促進(jìn)肝糖原合成[20]。玉米須皂苷也具有較好的降糖活性，能降低正常小鼠血糖水平，對(duì)腎上腺素、四氧嘧啶、鏈脲佐菌素所致的小鼠高血糖模型都有較好的降糖作用，但是玉米須水提物對(duì)小鼠血漿胰島素水平?jīng)]有產(chǎn)生影響[21]。本次研究的葡萄糖耐量試驗(yàn)中，中劑量復(fù)方組0.5 h血糖比模型對(duì)照組降低了27.17%。而普洱茶組、低聚果糖組及低、中、高劑量復(fù)方組大鼠胰島素濃度比模型對(duì)照組分別降低了66.44%、47.27%、65.46%、48.81%和69.42%，胰島素抵抗指數(shù)分別降低了79.88%、57.09%、76.95%、78.45%和75.26%，提示普洱茶粉、低聚果糖以及低、中、高劑量復(fù)方組可能具有降糖和改善胰島素抵抗的作用，而玉米須單品沒有表現(xiàn)出顯著的影響。苗明三等人的研究中發(fā)現(xiàn)，玉米須皂苷能夠顯著降低STZ誘導(dǎo)的高糖模型小鼠血糖水平，中劑量組（0.2 g/(kg·bw)）效果最佳，血糖下降率達(dá)39.64%[21]，而本次實(shí)驗(yàn)并沒有觀察到玉米須提取物顯著的降糖作用，可能是與受試物劑量和降糖活性成分含量有關(guān)。

3.3 普洱茶提取物可以顯著下調(diào)固醇調(diào)節(jié)元件結(jié)合蛋白-1c等脂質(zhì)合成相關(guān)基因的表達(dá)，使大鼠腎周脂肪和睪周脂肪組織的重量分別降低 48.23%和43.34%[22]。低聚果糖可以增加胃內(nèi)容物的黏度，延長胃排空時(shí)間，有效降低Zucker Fa/Fa大鼠的自主進(jìn)食和脂肪變性，使肝臟甘油三酯含量降低36.73%[23]，低聚果糖還能夠減少肝臟甘油三酯和膽固醇的合成，促進(jìn)膽固醇轉(zhuǎn)化為膽汁酸，飼料中添加 8%的低聚果糖可以使糞便膽汁酸的排泄增加56.25%[24]。玉米須水提物則能夠通過降低膽固醇合成產(chǎn)生降血脂的功效[25]。本次實(shí)驗(yàn)中，與模型對(duì)照組相比，普洱茶組以及低、中、高劑量復(fù)方組血清 TG分別降低了 77.59%、67.67%、69.40%和 74.57%；普洱茶組以及中、高劑量復(fù)方組肝臟 TC分別降低了 40.18%、26.56%和38.25%；普洱茶組、玉米須組以及高劑量復(fù)方組肝臟TG分別降低了39.18%、36.06%和32.36%。普洱茶組、低聚果糖組、低、中、高劑量復(fù)方組腹壁脂肪重量分別降低了63.06%、30.99%、71.53%、52.79%和70.45%，臟體比分別降低了55.81%、29.46%、68.99%、46.51%和62.02%。提示普洱茶粉、低聚果糖、玉米須以及低、中、高劑量復(fù)方組均具有一定改善大鼠脂代謝紊亂的作用。

3.4 綜上所述，本研究采用高脂聯(lián)合小劑量 STZ建立糖/脂代謝紊亂、胰島素抵抗模型，普洱茶提取物對(duì)該模型大鼠表現(xiàn)出顯著的減重、降脂以及改善胰島素抵抗的良好效果；低聚果糖則能夠有效降低大鼠腹壁脂肪重量和臟體比，改善胰島素抵抗?fàn)顟B(tài)；而玉米須在降低肝脂方面具有一定的功效。三種受試物的復(fù)合配方則能夠顯著降低大鼠體重、血脂、肝脂、腹壁脂肪含量和臟體比，并能有效改善大鼠葡萄糖耐量和胰島素抵抗。本研究的結(jié)果為輔助降血糖和降血脂的保健食品開發(fā)提供了重要的理論依據(jù)。