亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        基于甘油的1,3-丙二醇生物合成的代謝局限及其改造策略

        2018-07-30 09:51:32楊苗苗員君華張歡歡張國(guó)艷HossainZabed齊向輝
        生物工程學(xué)報(bào) 2018年7期
        關(guān)鍵詞:丙酮酸丙二醇副產(chǎn)物

        楊苗苗,員君華,張歡歡,張國(guó)艷,Hossain Zabed,齊向輝

        ?

        基于甘油的1,3-丙二醇生物合成的代謝局限及其改造策略

        楊苗苗*,員君華*,張歡歡,張國(guó)艷,Hossain Zabed,齊向輝

        江蘇大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,江蘇 鎮(zhèn)江 212013

        金城. 2018酶工程專刊序言. 生物工程學(xué)報(bào), 2018, 34(7): 1021?1023.Jin C. Preface for special issue on enzyme engineering (2018). Chin J Biotech, 2018, 34(7): 1021?1023.

        粗甘油是生物柴油生產(chǎn)中的主要副產(chǎn)物,一些微生物可將甘油轉(zhuǎn)化為重要化工原料1,3-丙二醇 (1,3-PD),而利用這些微生物野生菌株生物合成1,3-PD會(huì)存在一些局限性,如底物抑制、產(chǎn)物抑制等。文中從1,3-丙二醇的甘油生物轉(zhuǎn)化途徑與這些局限性出發(fā),總結(jié)了生物合成中存在的問(wèn)題,并針對(duì)這些問(wèn)題提出了一些基于基因敲除或基因過(guò)表達(dá)等基因工程技術(shù)的改造方法,綜述了利用基因工程菌生物轉(zhuǎn)化甘油生成1,3-丙二醇的最新研究進(jìn)展。

        甘油,1,3-丙二醇,生物轉(zhuǎn)化,生物合成,基因工程

        1,3-丙二醇 (1,3-propanediol,1,3-PD) 是一種無(wú)色物質(zhì),味道微甜,具有粘性,易溶于水和乙醇,在化工、食品、醫(yī)學(xué)、化妝品等領(lǐng)域具有十分廣泛的應(yīng)用[1-5]。1,3-PD可以通過(guò)化學(xué)途徑合成,但合成工藝條件苛刻、能耗高、釋放有毒中間體且產(chǎn)品精制難度較大,這些都增加了1,3-PD的生產(chǎn)成本[6]。因此,尋找一種低成本、低能耗的代替方法,將為1,3-PD的生產(chǎn)帶來(lái)巨大效益。粗甘油是生物柴油生產(chǎn)中的一種主要副產(chǎn)物[7-9],自然條件下一些微生物可以直接利用甘油作為底物,高效地合成1,3-PD,這不僅解決了1,3-PD化學(xué)法生產(chǎn)成本較高的問(wèn)題,又有效地回收利用了生物柴油生產(chǎn)中的副產(chǎn)品。這些1,3-PD生產(chǎn)菌株包括短乳桿菌、肺炎克雷伯菌、巴氏梭狀芽孢桿菌、丁酸梭菌和弗氏檸檬菌等[10-16]。盡管上述自然界中分離的野生菌用于生產(chǎn)1,3-PD具有較高的效率,但這些菌本身的某些性質(zhì)限制了其產(chǎn)率的繼續(xù)提高,利用基因工程的技術(shù)對(duì)這些野生菌進(jìn)行定向改造[17],可以打破這些限制,甚至可以對(duì)本身不能進(jìn)行甘油轉(zhuǎn)化生成1,3-PD的菌株進(jìn)行基因工程手段的改造,引入1,3-PD代謝途徑來(lái)生產(chǎn)1,3-PD。例如,美國(guó)杜邦公司利用利用玉米中的糖分為底物,將、和可轉(zhuǎn)化糖為甘油的基因克隆到工程菌中,實(shí)現(xiàn)了以葡萄糖為底物生產(chǎn)1,3-PD,并用于工業(yè)化生產(chǎn),被公認(rèn)為是利用基因工程方法使代謝物產(chǎn)業(yè)化的典范?;蚬こ谭椒ㄈ缜贸拖嚓P(guān)基因的過(guò)表 達(dá)均可被用來(lái)構(gòu)建高效或高產(chǎn)的1,3-PD工程菌株。

        1 1,3-PD的生物合成

        1.1 生物合成途徑

        在自然條件中,甘油歧化是1,3-PD的唯一生成途徑,一般在厭氧條件下進(jìn)行[18-21]。在這些微生物中,甘油可以通過(guò)簡(jiǎn)單擴(kuò)散或促進(jìn)擴(kuò)散兩種不同方式滲透到膜中[22],當(dāng)甘油跨過(guò)細(xì)胞膜后,會(huì)進(jìn)入兩個(gè)平行的代謝途徑:氧化代謝途徑和還原代謝途徑(圖1)。

        在氧化途徑分支中,甘油在甘油脫氫酶 (Glycerol dehydrogenase,GDH)的催化下,生成二羥丙酮 (Dihydroxyacetone,DHA),這步反應(yīng)需要NAD+作為輔酶;之后,DHA在ATP的參與下,經(jīng)磷酸二羥丙酮激酶 (Dihydroxyacetone kinase,DHAK) 催化生成磷酸二羥丙酮 (Dihydroxyacetone phosphate,DHAP),再在NAD+輔酶參與下,生成磷酸烯醇式丙酮酸(Phosphoenolpyruvate,PEP),之后進(jìn)入碳代謝如糖酵解、三羧酸循環(huán)等主流代謝途徑和其他代謝途徑[23-24]。由PEP轉(zhuǎn)化產(chǎn)生的丙酮酸會(huì)進(jìn)一步產(chǎn)生次級(jí)代謝產(chǎn)物,如乙酸、琥珀酸、乳酸、丁酸、正丁醇、乙醇、2,3-丁二醇 (2,3-butanediol,2,3-BD) 等,這些代謝產(chǎn)物構(gòu)成了利用微生物生產(chǎn)1,3-PD的主要副產(chǎn)物。

        另一分支是還原途徑分支。甘油首先在甘油脫水酶 (GDHt,glycerol dehydratase) 的作用下生成3-羥基丙醛 (3-hydroxypropanaldehyde,3- HPA),GDHt是控制甘油分解的限速酶,對(duì)甘油轉(zhuǎn)化起著至關(guān)重要的作用。隨后,經(jīng)1,3-丙二醇氧化還原酶 (1,3-propanediol oxidoreductase,PDOR) 催化,3-HPA轉(zhuǎn)化為1,3-PD[25]。在從甘油到1,3-PD厭氧轉(zhuǎn)化的過(guò)程中,當(dāng)所有的乙酰CoA均進(jìn)入TCA循環(huán),未經(jīng)氧化磷酸化生成乙酸,其最大理論產(chǎn)量為0.875 mol/mol甘油。然而,在大多數(shù)情況下,為了產(chǎn)生更多的ATP,乙酸大量生成,此時(shí)以乙酸為唯一副產(chǎn)物的最大理論收率為0.72 mol/mol[17]。鑒于通過(guò)生物合成1,3-PD的諸多優(yōu)點(diǎn),利用甘油合成1,3-PD是目前的研究熱點(diǎn)。然而,生物轉(zhuǎn)化甘油生成1,3-PD亦存在著一些局限性,利用基因工程的方法來(lái)改造微生物菌株,可以有效改善這些問(wèn)題,表1列出了這些工程菌生產(chǎn)1,3-PD的情況。

        圖1 甘油的代謝通路圖[26]

        1.2 轉(zhuǎn)化途徑中的關(guān)鍵酶及其基因

        由上述甘油的還原途徑可見(jiàn),GDHt (EC 4.2.1.30) 和PDOR (EC 1.1.1.202) 是生物法生產(chǎn)1,3-PD的兩種關(guān)鍵酶,而編碼該關(guān)鍵酶的基因存在于dha調(diào)節(jié)子上,該調(diào)節(jié)子包括GDHt的編碼基因 ()、PDOR的編碼基因 ()、GDH的編碼基因 ()、DHAK的編碼基因 ()和調(diào)節(jié)基因 (),不同1,3-PD生產(chǎn)菌的調(diào)節(jié)子構(gòu)成亦不同。

        GDHt是甘油歧化途徑中的關(guān)鍵功能性分子,是1,3-PD生物轉(zhuǎn)化中的限速酶。在的調(diào)節(jié)子中,編碼GDHt的基因是,由3個(gè)閱讀框 (、、) 分別編碼該酶的3個(gè)功能亞基,即α、β和γ亞基,它們共用一個(gè)啟動(dòng)子,以α2β2γ2二聚體的形式存在。而的GDHt是由、編碼的,其結(jié)構(gòu)與中的GDHt同源,具有較高的相似性,這兩種GDHt均以輔酶維生素B12為輔基,在1,3-PD發(fā)酵過(guò)程中微量流加B12,可以滿足微生物轉(zhuǎn)化的需要。而在中,GDHt的編碼基因由1、2組成,1編碼2的激活蛋白,該菌中的GDHt對(duì)氧氣極其敏感,與細(xì)胞膜的通透性有關(guān),但中的GDHt并不是輔酶維生素B12依賴型,由于輔酶B12成本較高,這也使得工業(yè)上利用生物轉(zhuǎn)化1,3-PD具有獨(dú)特的優(yōu)勢(shì)。

        PDOR由基因編碼,是甘油與1,3-PD代謝途徑中的另一關(guān)鍵性酶,直接將甘油還原途徑中的中間產(chǎn)物3-HPA還原為1,3-PD,同時(shí)消耗NADH生產(chǎn)NAD+,微生物通過(guò)該反應(yīng)步驟消耗還原力NADH,使微生物細(xì)胞內(nèi)的還原力達(dá)到平衡。在中由連續(xù)基因編碼,轉(zhuǎn)錄方向與甘油脫水酶基因相反,由另一啟動(dòng)子控制;而在調(diào)節(jié)子中,兩種酶的編碼基因在同一方向轉(zhuǎn)錄。在1,3-PD生產(chǎn)途徑中,PDOR酶的活性會(huì)受到許多抑制,導(dǎo)致1,3-PD產(chǎn)量降低,因此,為實(shí)現(xiàn)、基因的高效表達(dá),構(gòu)建載體時(shí)須借鑒自然菌中基因簇的排布模式。表2列出了應(yīng)用不同的蛋白改造方法對(duì)以上兩種酶的改造策略。

        2 甘油轉(zhuǎn)化生成1,3-PD過(guò)程中的底物抑制與產(chǎn)物抑制

        甘油以及1,3-PD產(chǎn)物的積累都對(duì)細(xì)胞的生長(zhǎng)具有抑制作用,且導(dǎo)致了GDHt不可逆的失活,降低了1,3-PD的產(chǎn)率。Colin等[27]研究了CNCM1211中甘油和1,3-PD對(duì)細(xì)菌的抑制作用,結(jié)果表明,細(xì)菌的生長(zhǎng)速率與甘油的濃度成反比,當(dāng)甘油初始添加濃度達(dá)到150 g/L時(shí)菌體的生長(zhǎng)受到明顯抑制,濃度達(dá)到160 g/L時(shí),細(xì)菌幾乎不生長(zhǎng);當(dāng)1,3-PD的初始添加量達(dá)到65 g/L時(shí),細(xì)菌的生長(zhǎng)率達(dá)到最大值,由于甘油的代謝產(chǎn)生1,3-PD,1,3-PD在培養(yǎng)基中的終濃度為70 g/L。Daria等[28]也研究了1,3-PD對(duì)DSP1生產(chǎn)性能的影響,在接種之前將1,3-PD添加到培養(yǎng)基中,得出了相近的結(jié)果,當(dāng)外源添加的1,3-PD濃度達(dá)到60 g/L時(shí),菌株的活性相對(duì)較高,添加的初始濃度達(dá)到80 g/L時(shí),對(duì)菌體來(lái)說(shuō)是致命的。

        由于GDHt是1,3-PD發(fā)酵過(guò)程中的關(guān)鍵酶,尤其是在甘油濃度較高時(shí),提高酶的濃度或活性可以有效提高1,3-PD的產(chǎn)率[29]。首先,利用基因工程的技術(shù)對(duì)GDHt編碼基因進(jìn)行過(guò)表達(dá)是一個(gè)有效的解決方案。Oh等[30]首先獲得了一株不產(chǎn)生副產(chǎn)物的突變株,命名為AK-VOT,通過(guò)去除甘油氧化途徑,阻斷除乙酸外其他副產(chǎn)物的生成,獲得了1,3-PD高產(chǎn)菌株,之后,過(guò)表達(dá)和/或基因,進(jìn)一步研究以期提高1,3-PD產(chǎn)量。結(jié)果表明,相比于和基因同時(shí)過(guò)表達(dá),單獨(dú)過(guò)表達(dá)的突變株1,3-PD的產(chǎn)量較高。其次,采用定向進(jìn)化、理性設(shè)計(jì)或非理性設(shè)計(jì)的方法對(duì)酶分子進(jìn)行改造,獲得活性更高、穩(wěn)定性更好的新型GDHt,也可將甘油底物盡快轉(zhuǎn)化。Qi等[31-32]采用生物信息學(xué)的方法對(duì)GDHt進(jìn)行理性設(shè)計(jì)和非理性設(shè)計(jì),并研究了重組酶在不同pH值下的酶活力及穩(wěn)定性,酶學(xué)性質(zhì)的分析表明,相比于原始酶,經(jīng)過(guò)定點(diǎn)突變理性設(shè)計(jì)的酶的活力提高到1.5–2.0倍, 對(duì)pH的穩(wěn)定性也提高到原始酶的1.5–2.0倍;采用易錯(cuò)PCR的非理性改造和定點(diǎn)飽和突變理性改造相結(jié)合的方法得到的改造GDHt酶活力提高到8.3倍。利用這種改造后的酶進(jìn)行1,3-PD的發(fā)酵,也可以促進(jìn)底物的盡快轉(zhuǎn)化,減少抑制。一些對(duì)1,3-PD具有較高耐受性的菌種也被分離獲得,例如,Papanikolaou等[33]選用的是從死水池中分離得到的F2b,該菌株表現(xiàn)出良好的1,3-PD耐受性,耐受水平達(dá)到80 g/L。VPI 3266和DSM 5431也具有較高的1,3-PD耐受性[23],其1,3-PD產(chǎn)量確有提高。利用誘變育種的方式對(duì)菌株進(jìn)行定向進(jìn)化,經(jīng)過(guò)高通量篩選也可能獲得1,3-PD的高耐受菌株,同時(shí)這也是解決底物抑制的方法之一。另外,采用連續(xù)發(fā)酵的方式將代謝產(chǎn)物移除,對(duì)于提高產(chǎn)量也有一定的益處。

        3 中間產(chǎn)物3-HPA的及時(shí)轉(zhuǎn)化

        3-HPA能夠阻止細(xì)菌細(xì)胞生長(zhǎng),廣泛應(yīng)用于生物殺菌劑和抗感染治療劑。其確切機(jī)制目前尚不十分清楚[34]。在甘油還原生成1,3-PD時(shí),3-HPA是其中間產(chǎn)物,它不僅會(huì)延緩細(xì)菌的生長(zhǎng),而且GDHt和PDOR都對(duì)高濃度的3-HPA極其敏感,培養(yǎng)基中3-HPA的積累會(huì)導(dǎo)致微生物中的反饋機(jī)制的觸發(fā),降低GDHt的合成以降低3-HPA的生成水平,減少對(duì)菌體的毒害作用[35],從而導(dǎo)致1,3-PD的生成水平也相應(yīng)降低,這個(gè)過(guò)程會(huì)導(dǎo)致代謝活動(dòng)中不可逆轉(zhuǎn)的后果,成為1,3-PD生產(chǎn)中的一個(gè)嚴(yán)重缺陷,也是1,3-PD生產(chǎn)中一個(gè)主要的影響因素[36]。因此,PDOR的濃度或活性是代謝中的關(guān)鍵影響因子,在保證GDHt一定活力的情況下,研究者們主要采取以下方法來(lái)降低3-HPA的影響。

        3.1 提高PDOR活力

        PDOR是一種氧化還原酶,許多學(xué)者研究了其氧化與還原活性。Qi等[37]從中克隆出PDOR編碼基因,轉(zhuǎn)化獲得高效表達(dá)的PDOR,研究了其酶學(xué)性質(zhì),發(fā)現(xiàn)相比于其氧化活力,PDOR的還原活力的作用條件更溫和,最適反應(yīng)pH為7.0,溫度為37 ℃。Qi等[38]還從中克隆到,獲得新型重組PDOR,最適反應(yīng)pH為7.5,溫度為37 ℃,這對(duì)于1,3-PD的最終生成是有利的,對(duì)酶的3D結(jié)構(gòu)分析表明,不同來(lái)源的兩種PDOR均屬于Ⅲ型乙醇脫氫酶。

        將進(jìn)行原始菌株中的過(guò)表達(dá)是提高PDOR活力的最直接的一種方法。由于PDOR的酶促反應(yīng)依賴于輔酶NADH[39],當(dāng)副產(chǎn)物途徑被阻斷時(shí),這些突變體內(nèi)細(xì)胞的氧化還原力NADH/NAD+較高,因此,進(jìn)一步研究過(guò)表達(dá)基因和,使用這些多余的NADH,以提高1,3-PD產(chǎn)量。Cui等[12]在兩株KG1-3 (只阻斷2,3-丁二醇途徑的突變株) 和KG1-5 (阻斷2,3-BD和乳酸途徑的突變株) 中將基因過(guò)表達(dá)。結(jié)果表明,在菌株KG1-5中,氧化還原平衡力恢復(fù)正常,產(chǎn)量提高明顯,甘油1,3-PD的產(chǎn)量也恢復(fù)到正常水平的60%。

        還有學(xué)者將PDOR編碼基因轉(zhuǎn)化大腸桿菌,采用共轉(zhuǎn)化的方法,達(dá)到提高酶濃度與活力的目的。Yun等[40]從中克隆得到基因,使其在BL21中高效表達(dá),將轉(zhuǎn)化與混合,采用全細(xì)胞生物催化的方法進(jìn)行甘油到1,3-PD的轉(zhuǎn)化,由于PDOR的催化需要輔酶NADH,因此額外添加了NADH來(lái)實(shí)現(xiàn)還原力的平衡。結(jié)果表明,PDOR的全細(xì)胞生物催化有效提高了1,3-PD的產(chǎn)量,相比于單獨(dú)利用發(fā)酵提高了2倍,1,3-PD的產(chǎn)量為25.88 g/L,轉(zhuǎn)化率為0.54 g/g甘油。

        許多研究人員還在尋找生產(chǎn)1,3-PD自然菌株中原始酶以外的方法來(lái)轉(zhuǎn)化3-HPA。其中一種方法是從其他的菌株中尋找可以催化3-HPA為1,3-PD的酶,通過(guò)代謝工程構(gòu)建異源重組菌株。例如,大腸桿菌中存在一種PDOR的同工酶,被命名為PDORI,由基因編碼,該酶被證實(shí)是與中的PDOR有相同功能的氧化還原酶。許多研究人員研究了該基因,并構(gòu)建了含有該基因的工程菌來(lái)增加1,3-PD的產(chǎn)量。Zhu等[41]構(gòu)建了的重組菌體,將原始菌株中導(dǎo)入基因來(lái)提高酶的濃度。重組突變體最終的1,3-PD濃度達(dá)到67.6 g/L,與原始株相比,產(chǎn)量提高了125.33%,摩爾轉(zhuǎn)化率達(dá)到了0.62 mol / mol。重組酶活性檢測(cè)表明,相比原始菌株,酶活力提高了10倍。此外,3-HPA濃度與原始菌株相比降低了22.4%。因此,利用基因的過(guò)表達(dá)相關(guān)基因是解決1,3-PD生物生產(chǎn)中中間代謝產(chǎn)物3-HPA對(duì)細(xì)菌的抑制問(wèn)題的一種有效方法。

        3.2 構(gòu)建輔酶再生系統(tǒng)

        如上所述,NADH/NAD+比較高時(shí),NADH作為還原當(dāng)量對(duì)1,3-PD的生物合成起著關(guān)鍵的作用,構(gòu)建輔酶再生系統(tǒng),將有利于1,3-PD的生產(chǎn)。黃志華等[42-43]選取NAD+依賴型的甲酸脫氫酶(Formate dehydrogenase,F(xiàn)DH) 為研究對(duì)象,利用基因工程的手段構(gòu)建了含有該基因的重組質(zhì)粒,在中表達(dá)了的甲酸脫氫酶的基因,構(gòu)建了NADH再生系統(tǒng),對(duì)甘油代謝過(guò)程進(jìn)行調(diào)控。結(jié)果表明,通過(guò)分批補(bǔ)料發(fā)酵,1,3-PD的產(chǎn)量達(dá)到78.6 g/L,與原始菌株相比,產(chǎn)量提高了12.5 %。

        3.3 3-HPA流向其他途徑

        減少1,3-PD發(fā)酵中3-HPA濃度的另一種方法是將其部分轉(zhuǎn)化為其他代謝物。例如,中存在一種NAD+依賴型的γ-谷氨酰-γ-氨基丁酸醛脫氫酶(PuuC),由基因編碼,可以將3-HPA氧化為3-羥基丙酸 (3-HP),3-HP也是一種重要的化工產(chǎn)品[10]。由于原始菌中的表達(dá)量較少,Ashok等[44]將DSM 2026中的基因過(guò)表達(dá),PuuC催化3-HPA生成3-HP時(shí),會(huì)產(chǎn)生較多的NADH,這些NADH也可以用于1,3-PD的合成,達(dá)到了還原當(dāng)量的充分利用。分批補(bǔ)料發(fā)酵中,重組() 菌株產(chǎn)生16.0 g/L 3-HP和16.8 g/L 1,3-PD,經(jīng)過(guò)24 h轉(zhuǎn)化,甘油到1,3-PD的轉(zhuǎn)化率可達(dá)0.51 mol/mol,轉(zhuǎn)化率較高。這種將3-HPA流向其他途徑的方式不僅降低了3-HPA對(duì)細(xì)胞的毒性,使細(xì)菌代謝正常有序地進(jìn)行,而且為3-HP和1,3-PD的聯(lián)產(chǎn)提供了參考。

        4 生物轉(zhuǎn)化中的副產(chǎn)物與應(yīng)對(duì)策略

        副產(chǎn)物的形成和維持氧化還原平衡是1,3-PD生產(chǎn)中的又一個(gè)瓶頸。如圖1所示,在甘油的歧化過(guò)程中,除1,3-PD外可產(chǎn)生多種代謝產(chǎn)物如乙酸、琥珀酸、乳酸、丁酸等,這些物質(zhì)成為1,3-PD生產(chǎn)中的主要副產(chǎn)物。在甘油氧化分支,甘油經(jīng)幾個(gè)ATP依賴的氧化還原酶催化,轉(zhuǎn)化為磷酸烯醇式丙酮酸 (PEP)。同時(shí),在糖酵解代謝途徑中,葡萄糖也會(huì)轉(zhuǎn)化為PEP。以上生成的PEP可由丙酮酸激酶轉(zhuǎn)化為丙酮酸,生成一系列副產(chǎn)物。許多因素可以影響這一過(guò)程,如外部條件和遺傳條件等[45]。因此,改變其中的任何一個(gè)環(huán)節(jié),這些副產(chǎn)品的質(zhì)量和數(shù)量都將受到影響。這些副產(chǎn)物的形成會(huì)消耗甘油或葡萄糖中的碳,從而導(dǎo)致流向其他產(chǎn)物的碳減少,使1,3-PD的產(chǎn)量下降[46]。另外,這些副產(chǎn)物對(duì)細(xì)胞的生長(zhǎng)也有抑制作用。因此,利用基因工程的手段,通過(guò)敲除相關(guān)基因來(lái)降低這些副產(chǎn)物的生成是一個(gè)較好的應(yīng)對(duì)策略。然而,這些途徑可以調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)氧化還原力的平衡,因此,在敲除這些相關(guān)基因時(shí),應(yīng)保持氧化還原電位以滿足目標(biāo)代謝反應(yīng)的正常運(yùn)轉(zhuǎn)。要避免不必要的代謝產(chǎn)物的產(chǎn)生,同時(shí)需保持氧化還原力的平衡,這對(duì)提高1,3-PD產(chǎn)量也是一個(gè)挑戰(zhàn)。在保證其氧化還原力的前提下,研究者們主要采取以下方法來(lái)降低副產(chǎn)物的形成。

        4.1 與DHA或DHAP相關(guān)的基因敲除

        GDH是由基因編碼的,需要輔酶NAD+的參與,可將甘油氧化為DHA;DHAK是由基因編碼的,參與催化DHA的磷酸化,生成DHAP。這是甘油氧化分支的第一步。阻斷1,3-PD的生物生產(chǎn)中副產(chǎn)物生成的途徑,最直接的是敲除與DHA和DHAP合成相關(guān)基因。Horng等[47]利用同源重組將中的和基因敲除,命名為TC100,采用的方法是將操縱子中的-基因中插入一段鏈霉素抗性基因,以便后續(xù)重組子的篩選。利用重組的TC100在50 mL三角瓶進(jìn)行1,3-PD的搖瓶發(fā)酵,實(shí)驗(yàn)表明,在37 ℃下孵育48 h后,相比于野生菌株,TC100的產(chǎn)量增加了1.06倍;副產(chǎn)物如乳酸、2,3-丁二醇、乙醇均未檢出。然而,這一突變菌株與野生菌株相比細(xì)胞的生長(zhǎng)狀況較差,生 物量少,生產(chǎn)1,3-PD的生產(chǎn)強(qiáng)度低,他們通過(guò)基因的過(guò)表達(dá)對(duì)其進(jìn)行了優(yōu)化,并調(diào)整了培養(yǎng)條件來(lái)解決這個(gè)問(wèn)題,獲得了較高的1,3-PD生產(chǎn)強(qiáng)度。

        完全敲除甘油歧化的氧化分支來(lái)降低副產(chǎn)物形成方法使還原力NADH降低,導(dǎo)致生物量降低,反過(guò)來(lái)影響了甘油的還原分支,會(huì)對(duì)1,3-PD的生產(chǎn)造成一定影響。這一問(wèn)題可通過(guò)割裂1,3-PD生成途徑和生物量增長(zhǎng)途徑的方式來(lái)解決。Maervoet等[48]研究了的1,3-PD生產(chǎn)過(guò)程,利用基因工程的手段來(lái)構(gòu)建DSM17579 ?,即敲除基因,同時(shí),利用葡萄糖作為共發(fā)酵底物,保證細(xì)菌主流代謝途徑的正常運(yùn)作,以增加生物量。最終使1,3-PD產(chǎn)量提高了1.5倍。

        4.2 與丙酮酸還原相關(guān)基因的敲除

        乳酸是丙酮酸的還原產(chǎn)物之一,每生成一個(gè)單位的乳酸,需要一個(gè)單位的NADH。它是在甘油歧化途徑中從丙酮酸出發(fā)碳分流的主要產(chǎn)物,屬于1,3-PD生產(chǎn)中的副產(chǎn)物。在細(xì)胞生長(zhǎng)過(guò)程中,乳酸在指數(shù)期后期累積,抑制細(xì)胞生長(zhǎng)。因此,許多研究人員通過(guò)敲除乳酸脫氫酶基因,獲得乳酸缺陷突變體以抑制乳酸的合成,對(duì)1,3-PD發(fā)酵具有重要意義。Durgapal等[1]對(duì)J2B利用甘油產(chǎn)1,3-PD的能力進(jìn)行了研究,他們構(gòu)建了一個(gè)基因缺失突變體,比較野生型菌株和?突變株在不同培養(yǎng)條件、不同培養(yǎng)模式下 (分批或補(bǔ)料培養(yǎng)) 的生長(zhǎng)狀況以及1,3-PD生成水平。當(dāng)?以補(bǔ)料培養(yǎng)方式發(fā)酵甘油時(shí),1,3-PD的產(chǎn)量為58 g/L,產(chǎn)率為0.35 g/g,生產(chǎn)強(qiáng)度為1.3 g/(L·h)。碳流分析表明,?突變株產(chǎn)生極其微量的乳酸,2,3-丁二醇 (2,3-BD) 比野生株產(chǎn)量高,產(chǎn)量為26.6 g/L,成為主要副產(chǎn)物。

        2,3-BD也是從丙酮酸出發(fā)生成的另一個(gè)產(chǎn)物,成為甘油發(fā)酵生產(chǎn)1,3-PD中的又一個(gè)主要副產(chǎn)品。2,3-BD也是二醇,與1,3-PD有相似的沸點(diǎn),且都與水互溶。因此,2,3-PD的這一性質(zhì)導(dǎo)致了1,3-PD生產(chǎn)與純化中一個(gè)棘手的問(wèn)題[49],使獲得純度較高的1,3-PD成本大大增加[49-50]。通過(guò)敲 除合成2,3-丁二醇的編碼基因,阻斷其合成途 徑,可以有效解決這一問(wèn)題。Kumar等[2]在得到J2B ?突變株后,為了改善2,3-BD的問(wèn)題,進(jìn)一步敲除了2,3-BD代謝相關(guān)的基因,包括整個(gè)bud操縱子上的、、和基因。結(jié)果表明,這種敲除完全阻斷了2,3-BD的合成,不過(guò)1,3-PD的產(chǎn)量也下降了。他們認(rèn)為,丙酮酸的大量積累是導(dǎo)致其產(chǎn)量下降的主要原因,細(xì)胞生長(zhǎng)減慢。由于丙酮酸的積累,觸發(fā)負(fù)反饋機(jī)制,導(dǎo)致上游產(chǎn)物如二羥基丙酮、3-磷酸甘油醛等的積累。GDHt活力測(cè)定表明,3-磷酸甘油醛抑制了該酶活力從而降低了1,3-PD的產(chǎn)量。也有其他學(xué)者研究了其他2,3-BD相關(guān)基因的敲除,如基因,該基因編碼乙酰乳酸合酶,如圖1所示,α-乙酰乳酸是2,3-BD的中間產(chǎn)物之一。Lee等[51]將中的基因敲除后,將異源的(編碼丙酮酸脫羧化酶) 和(編碼乙醛脫氫酶) 基因?qū)?,減少了2,3-BD的積累,1,3-PD的產(chǎn)量也有一定提高。

        4.3 與乙酰CoA還原相關(guān)的基因敲除

        丙酮酸還原后,除了一部分流向生成乳酸和丙酮酸,還有大部分流入乙酰CoA,乙酰CoA是丙酮酸代謝過(guò)程中的重要中間產(chǎn)物,由丙酮酸脫氫酶催化,之后生成了更多的次級(jí)代謝物,如乙酸、乙醇和丁酸等。這些代謝物或多或少都對(duì)細(xì)菌的生長(zhǎng)具有抑制作用,成為1,3-PD生物合成工業(yè)中的副產(chǎn)品[52]。目前,很多學(xué)者采取基因敲除的方法構(gòu)建缺失菌株以減少這些副產(chǎn)物的產(chǎn)生,取得了較好的結(jié)果。

        乙酸是抑制細(xì)胞生長(zhǎng)的代謝產(chǎn)物之一。在乙酰CoA的代謝物中,乙酸對(duì)細(xì)菌的毒性最強(qiáng)[53]。因此,乙酸合成途徑的阻斷是基因工程改造的最重要的目標(biāo)。Lin等[54]敲除了中乙酸合成兩條途徑中相關(guān)酶的編碼基因、和,這些基因分別編碼丙酮酸氧化酶、磷酸轉(zhuǎn)乙?;负鸵宜峒っ福⒀芯炕蛉笔Ь陮?duì)細(xì)胞生長(zhǎng)和1,3-PD生產(chǎn)的影響。分批發(fā)酵生產(chǎn)1,3-PD的最終產(chǎn)量達(dá)到76.8 g/L,與相同發(fā)酵條件下野生株的產(chǎn)量提高了15%。這些基因的缺失極大降低了乙酸的合成,使更多的碳流向TCA等代謝途徑,不但增加了生物量,也提高了1,3-PD的產(chǎn)量。乙醇是1,3-PD形成的另一種主要產(chǎn)物,乙酰CoA在乙醛脫氫酶 (由基因編碼) 催化下生成乙醛;之后在乙醇脫氫酶 (由基因編碼) 催化下,乙醛還原成乙醇。這一過(guò)程需要消耗甘油還原途徑中產(chǎn)生的NADH,因此許多學(xué)者同時(shí)阻斷乳酸和乙醇的合成途徑來(lái)提高1,3-PD產(chǎn)量。Chen等[55]采用λ Red重組技術(shù)對(duì)進(jìn)行改造,獲得2-1 ?、2-1 ?和2-1 ??突變株。分批發(fā)酵結(jié)果表明,以上3株重組菌的副產(chǎn) 物濃度與原始菌株相比顯著降低,1,3-PD的產(chǎn)量 也分別提高至85.7、82.5、87.5 g/L,而原始菌株提高至78.8 g/L。

        表1 不同基因工程菌株生產(chǎn)1,3-PD情況比較表

        表2 不同方法改造K. pneumoniae來(lái)源關(guān)鍵酶的酶學(xué)數(shù)據(jù)

        5 展望

        利用生物柴油的副產(chǎn)物粗甘油進(jìn)行1,3-PD的生物合成符合可持續(xù)發(fā)展的趨勢(shì)?;蚬こ毯蜕锛夹g(shù)的發(fā)展可有效解決1,3-PD生產(chǎn)中的局限,但是基因工程菌的潛力還有待發(fā)掘,具有較廣闊的研究應(yīng)用前景。首先,利用宏基因組中獲得的新型相關(guān)基因構(gòu)建高效基因工程菌,可進(jìn)一步解決相關(guān)抑制問(wèn)題。其次,上述提到的方法聯(lián)合使用可以達(dá)到綜合改善微生物特征的目的。此外,結(jié)合一些化學(xué)誘變、ARTP誘變、genome shuffling等育種技術(shù),也可以最大限度地提高菌株耐受性從而提高1,3-PD的產(chǎn)量。再次采用更多理性、非理性或半理性的方法將1,3-PD發(fā)酵途徑中的關(guān)鍵酶進(jìn)行改造優(yōu)化,可提高酶的催化活性,從而提高產(chǎn)量。另外,還可從發(fā)酵工藝入手,通過(guò)連續(xù)發(fā)酵或半連續(xù)發(fā)酵降低底物和產(chǎn)物對(duì)生產(chǎn)菌株的抑制作用,提高1,3-丙二醇的產(chǎn)量。

        [1] Durgapal M, Kumar V, Yang TH, et al. Production of 1,3-propanediol from glycerol using the newly isolatedJ2B. Bioresour Technol, 2014, 159: 223–231.

        [2] Kumar V, Durgapal M, Sankaranarayanan M, et al. Effects of mutation of 2,3-butanediol formation pathway on glycerol metabolism and 1,3-propanediol production byJ2B. Bioresour Technol, 2016, 214: 432–440.

        [3] Otte B, Grunwaldt E, Mahmoud O, et al. Genome shuf?ing inDSM 15410 for improved 1,3-propanediol production. Appl Environ Microbiol, 2009, 75(24): 7610–7616.

        [4] Kaur G, Srivastava AK, Chand S. Bioconversion of glycerol to 1,3-propanediol: A mathematical model-based nutrient feeding approach for high production using. Bioresour Technol, 2013, 142: 82–87.

        [5] Guo Q, An YF, Yun JM, et al. Enhanced D-tagatose production by spore surface-displayed L-arabinose isomerase from isolatedPC16 and biotransformation. Biores Technol, 2017, 247: 940–946.

        [6] Li XS, Zhang L, Gao DC, et al. Progress on the production of 1,3-propanediol by fermentation. Chem Ind Eng Prog, 2014, 36(4): 1395–1403 (in Chinese). 李曉姝, 張霖, 高大成, 等. 發(fā)酵法生產(chǎn)1,3-丙二醇的研究進(jìn)展. 化工進(jìn)展, 2014, 36(4): 1395–1403.

        [7] Oh BR, Hong WK, Heo SY, et al. The production of 1,3-propanediol from mixtures of glycerol and glucose by amutant deficient in carbon catabolite repression. Bioresour Technol, 2013, 130: 719–724.

        [8] Wang BG, Liu M, Du CY, et al. Screening ofmutation for the production of 1,3-propanediol. China Biotechnol, 2006, 26(6): 59–65 (in Chinese). 王寶光, 劉銘, 杜晨宇, 等. 產(chǎn)1,3-丙二醇菌株的誘變和篩選. 中國(guó)生物工程雜志, 2006, 26(6): 59–65.

        [9] Dishisha T, Pereyra LP, Pyo SH, et al. Flux analysis of thepropanediol-utilization pathway for production of 3-hydroxypropionaldehyde, 3-hydroxypropionic acid and 1,3-propanediol from glycerol. Microb Cell Fact, 2014, 13: 76.

        [10] Wang YP, Sun T, Gao XY, et al. Biosynthesis of platform chemical 3-hydroxypropionic acid (3-HP) directly from CO2in cyanobacteriumsp. PCC 6803. Metab Eng, 2016, 34: 60–70.

        [11] Dong XY, Xiu ZL, Li S, et al. Dielectric barrier discharge plasma as a novel approach for improving 1,3-propanediol production in. Biotechnol Lett, 2010, 32(9): 1245–1250.

        [12] Cui YL, Zhou JJ, Gao LR, et al. Utilization of excess NADH in 2,3-butanediol-deficientfor 1,3-propanediol production. J Appl Microbiol, 2014, 117(3): 690–698.

        [13] Tsuruno K, Honjo H, Hanai T. Enhancement of 3-hydroxypropionic acid production from glycerol by using a metabolic toggle switch. Microb Cell Fact, 2015, 14(1):155.

        [14] Pyne ME, Sokolenko S, Liu XJ, et al. Disruption of the reductive 1,3-propanediol pathway triggers production of 1,2-propanediol for sustained glycerol fermentation by. Appl Environ Microbiol, 2016, 82(17): 5375–5388.

        [15] Przysta?owska H, Zeyland J, Szymanowska- Powa?owska D, et al. 1,3-Propanediol production by new recombinantcontaining genes from pathogenic bacteria. Microbiol Res, 2015, 171: 1–7.

        [16] Dro?d?yńska A, Pawlicka J, Kubiak P, et al. Conversion of glycerol to 1,3-propanediol byand—newly isolated strains from the enterobacteriaceae. Nat Biotechnol, 2014, 31(5): 402–410.

        [17] Maervoet VET, de Mey M, Beauprez J, et al. Enhancing the microbial conversion of glycerol to 1,3-propanediol using metabolic engineering. Org Process Res Dev, 2011, 15(1): 189–202.

        [18] Zhu CJ, Fang BS, Wang SZ. Bioresource Technology Effects of culture conditions on the kinetic behavior of 1,3-propanediol fermentation bywith a kinetic model. Bioresour Technol, 2016, 212: 130–137.

        [19] Dong XY, Xiu ZL, Hou YM, et al. Enhanced production of 1,3-propanediol ininduced by dielectric barrier discharge plasma in atmospheric air. IEEE Trans Plasma Sci, 2009, 37(6): 920–926.

        [20] Gungormusler-Yilmaz M, Cicek N, Levin DB, et al. Cell immobilization for microbial production of 1,3-propanediol. Crit Rev Biotechnol, 2015, 36(3): 482–484.

        [21] Celińska E, Dro?d?yńska A, Jankowska M, et al. Genetic engineering to improve 1,3-propanediol production in an isolatedstrain. Process Biochem, 2015, 50(1): 48–60.

        [22] Saxena RK, Anand P, Saran S, et al. Microbial production of 1,3-propanediol: recent developments and emerging opportunities. Biotechnol Adv, 2009, 27(6): 895–913.

        [23] Tan PF, Tan TW. Progress in metabolism and crucial enzymes of glycerol conversion to 1,3-propanediol. Chin J Biotech, 2007, 23(2): 201–205 (in Chinese). 田平芳, 譚天偉. 甘油歧化為1,3-丙二醇的代謝及關(guān)鍵酶研究進(jìn)展. 生物工程學(xué)報(bào), 2007, 23(2): 201–205.

        [24] Jiang W, Wang SZ, Wang YP, et al. Key enzymes catalyzing glycerol to 1,3-propanediol. Biotechnol Biofuels, 2016, 9(1): 57.

        [25] Kaur G, Srivastava AK, Chand S. Advances in biotechnological production of 1,3-propanediol. Biochem Eng J, 2012, 64: 106–118.

        [26] Qi XH, Qi YL, Yun JH, et al. Research progress on the microbial fermentation of 1,3-propandiol from crude glycerol. J Food Saf Qual, 2015, 6(10): 3923–3927 (in Chinese). 齊向輝, 齊一琳, 員君華, 等. 微生物發(fā)酵粗甘油生成1,3-丙二醇的研究進(jìn)展. 食品安全質(zhì)量檢測(cè)學(xué)報(bào), 2015, 6(10): 3923–3927.

        [27] Colin T, Bories A, Moulin G. Inhibition ofby 1,3-propanediol and diols during glycerol fermentation. Appl Microbiol Biotechnol, 2000, 54(2): 201–205.

        [28] Daria SP, Piotr K. Effect of 1,3-propanediol, organic acids, and ethanol on growth and metabolism ofDSP1. Appl Microbiol Biotechnol, 2015, 99(7): 3179–3189.

        [29] Zeng AP, Menzel K, Deckwer WD. Kinetic, dynamic, and pathway studies of glycerol metabolism byin anaerobic continuous culture: II. Analysis of metabolic rates and pathways under oscillation and steady-state conditions. Biotechnol Bioeng, 1996, 52(5): 561–571.

        [30] Oh BR, Seo JW, Heo SY, et al. Efficient production of 1,3-propanediol from glycerol upon constitutive expression of the 1,3-propanediol oxidoreductase gene in engineeredwith elimination of by-product formation. Bioprocess Biosyst Eng, 2013, 36(6): 757–763.

        [31] Qi XH, Chen YL, Jiang K, et al. Saturation-mutagenesis in two positions distant from active site of aglycerol dehydratase identifies some highly active mutants. J Biotechnol, 2009, 144(1): 43–50.

        [32] Qi XH, Guo Q, Wei YT, et al. Enhancement of pH stability and activity of glycerol dehydratase fromby rational design. Biotechnol Lett, 2012, 34(2): 339–346.

        [33] Papanikolaou S, Fick M, Aggelis G. The effect of raw glycerol concentration on the production of 1,3-propanediol by. J Technol Biotechnol, 2004, 79(11): 1189–1196.

        [34] Kumar V, Ashok S, Park S. Recent advances in biological production of 3-hydroxypropionic acid. Biotechnol Adv, 2013, 31(6): 945–961.

        [35] Guo NN, Zheng ZM, Mai YL, et al. Consequences of cps mutation ofon 1,3-propanediol fermentation. Appl Microbiol Biotechnol, 2010, 86(2): 701–707.

        [36] Stevens MJA, Vollenweider S, Meile L, et al. 1,3-Propanediol dehydrogenases in: impact on central metabolism and 3-hydroxypropionaldehyde production. Microb Cell Fact, 2011, 10: 61.

        [37] Qi XH, Deng WY, Wang F, et al. Molecular Cloning, co-expression, and characterization of glycerol dehydratase and 1,3-propanediol dehydrogenase from. Mol Biotechnol, 2013, 54(2): 469–474.

        [38] Qi XH, Yun JH, Qi YL, et al. Expression and characterization of a novel 1,3-propanediol dehydrogenase from. Appl Biochem Biotechnol, 2016, 179(6): 959–972.

        [39] Wang BG, Liu M, Du CY, et al. Recent developments in microbial metabolic engineering for the production of 1,3-propanediol. Chin J Proc Eng, 2006, 6(1): 144–149 (in Chinese).王寶光, 劉銘, 杜晨宇. 微生物法生產(chǎn)1,3-丙二醇過(guò)程的代謝工程研究進(jìn)展. 過(guò)程工程學(xué)報(bào), 2006, 6(1): 144–149.

        [40] Yun JH, Yang MM, Magocha TA, et al. Production of 1,3-propanediol using a novel 1,3-propanediol dehydrogenase from isolatedand co-biotransformation of whole cells. Bioresour Technol, 2018, 247: 838–843.

        [41] Zhu JG, Li S, Ji XJ, et al. Enhanced 1,3-propanediol production in recombinantcarrying the geneencoding 1,3-propanediol oxidoreductase isoenzyme. World J Microbiol Biotechnol, 2009, 25(7): 1217–1223.

        [42] Huang ZH, Liu M, Zhang YP, et al. Improvement of 1,3-propanediol production by recombinant formate dehydrogenase in. J Chem Ind Eng, 2007, 58(4): 919–924 (in Chinese). 黃志華, 劉銘, 張延平, 等. 重組甲酸脫氫酶對(duì)合成1,3-丙二醇的促進(jìn)作用. 化工學(xué)報(bào), 2007, 58(4): 919–924.

        [43] Huang ZH, Zhang YP, Liu M, et al. Expression and characterization of formate dehydrogenase gene in. Acta Microb Sin, 2007, 47(1): 64–68 (in Chinese). 黃志華, 張延平, 劉銘, 等. 甲酸脫氫酶在中的表達(dá)和功能分析. 微生物學(xué)報(bào), 2007, 47(1): 64–68.

        [44] Ashok S, Raj SM, Rathnasingh C, et al. Development of recombinantΔstrain for the co-production of 3-hydroxypropionic acid and 1,3-propanediol from glycerol. Appl Microbiol Biotechnol, 2011, 90(4): 1253–1265.

        [45] Seo MY, Seo JW, Heo SY, et al. Elimination of by-product formation during production of 1,3-propanediol inby inactivation of glycerol oxidative pathway. Appl Microbiol Biotechnol, 2009, 84(3): 527–534.

        [46] Abbad-Andaloussi S, Manginot-Durr C, Amine J, et al. Isolation and characterization ofDSM 5431 mutants with increased resistance to 1,3-propanediol and altered production of acids. Appl Environ Microb, 1995, 61(12): 4413–4417.

        [47] Horng YT, Chang KC, Chou TC, et al. Inactivation ofandabolishes by-product accumulation during 1,3-propanediol production in. J Ind Microbiol Biotechnol, 2010, 37(7): 707–716.

        [48] Maervoet VET, De Maeseneire SL, Avci FG, et al. 1,3-propanediol production withDSM17579: effect of aknock-out. Microb Cell Fact, 2014, 13(1): 70.

        [49] Guo XK, Fang HY, Zhuge B, et al. Effects of knockout of 2,3-butanediol synthesis key enzyme genes on 1,3-propandediol production in. Chin J Biotech, 2013, 29(9): 1290–1300 (in Chinese). 郭欣坤, 方慧英, 諸葛斌, 等. 2,3-丁二醇代謝途徑關(guān)鍵酶基因敲除對(duì)克雷伯氏菌發(fā)酵產(chǎn)1,3-丙二醇的影響. 生物工程學(xué)報(bào), 2013, 29(9): 1290–1300.

        [50] Qi XH, Zhang HH, Magocha TA, et al. Improved xylitol production by expressing a novel D-arabitol dehydrogenase from isolatedsp. JX-05 and co-biotransformation of whole cells. Bioresource Technol, 2017, 235: 50–58.

        [51] Lee SM, Hong WK, Heo SY, et al. Enhancement of 1,3-propanediol production by expression of pyruvate decarboxylase and aldehyde dehydrogenase fromin the acetolactate-synthase- deficient mutant of. J Ind Microbiol Biotechnol, 2014, 41(8): 1259–1266.

        [52] Jin P, Lu SG, Huang H, et al. Enhanced reducing equivalent generation for 1,3-propanediol production through cofermentation of glycerol and xylose by. Appl Biochem Biotechnol, 2011, 165(7/8): 1532–1542.

        [53] Xu YZ, Guo NN, Zheng ZM, et al. Metabolism in 1,3-propanediol fed-batch fermentation by a D-lactate deficient mutant of. Biotechnol Bioeng, 2009, 104(5): 965–972.

        [54] Lin J, Zhang YQ, Xu DF, et al. Deletion of,, andimproves 1,3-propanediol production by. Appl Microbiol Biotechnol, 2016, 100(6): 2775–2784.

        [55] Chen LF, Ma CL, Wang RM, et al. Deletion ofandgenes into enhance 1,3-propanediol production. Biotechnol Lett, 2016, 38(10): 1769–1774.

        [56] Ma CW, Zhang L, Dai JY, et al. Relaxing the coenzyme specificity of 1,3-propanediol oxidoreductase from, by rational design. J Biotechnol, 2010, 146(4): 173–178.

        [57] Wei J, Yuan Z, Wang SZ, et al. Directed evolution and resolution mechanism of 1,3-propanediol oxidoreductase fromtoward higher activity by error-prone PCR and bioinformatics. PLoS ONE, 2015, 10(11): e0141837.

        (本文責(zé)編 郝麗芳)

        Bottlenecks and modification strategies of 1,3-propanediol biosynthesis from glycerol

        Miaomiao Yang*, Junhua Yun*, Huanhuan Zhang, Guoyan Zhang, Hossain Zabed, and Xianghui Qi

        School of Food and Biological Engineering, Jiangsu University, Zhenjiang 212013, Jiangsu, China

        Crude glycerol is the main by-product of biodiesel production. A few microorganisms can transfer crude glycerol to 1,3-propanediol (1,3-PD) that is an important chemical material. There exist many limitations such as substrate inhibition, product inhibition when wild strains are used in 1,3-PD biosynthesis. In this review, based on the microbial transformation of 1,3-propanediol from glycerol and its limitations, some strategies using genetic engineering such as knockout or gene overexpression were summarized. The latest research progresses in biosynthesis of 1,3-propanediol from glycerol by genetically engineered strains are discussed.

        glycerol, 1,3-propanediol, bioconversion, biosynthesis, genetic engineering

        December 25, 2017;

        February 28, 2018

        National Natural Science Foundation of China (No. 31571806), National Key Research and Development Program (No. 2017YFC1600806), China Postdoctoral Science Foundation (No. 2017M621657), High-level Talents Project of Six Talent Peaks in Jiangsu Province (No. SWYY-018).

        Xianghui Qi. Tel: +86-511-88797059; Fax: +86-511-88780201; E-mail: qxh@ujs.edu.cn

        *These authors contributed equally to this work.

        國(guó)家自然科學(xué)基金 (No. 31571806),國(guó)家重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃(No. 2017YFC1600806),中國(guó)博士后基金 (No. 2017M621657),江蘇省“六大人才高峰”項(xiàng)目 (No. SWYY-018) 資助。

        2018-03-26

        http://kns.cnki.net/kcms/detail/11.1998.Q.20180326.0836.001.html

        10.13345/j.cjb.170516

        猜你喜歡
        丙酮酸丙二醇副產(chǎn)物
        丙酮酸的微生物發(fā)酵生產(chǎn)中的菌種篩選與改良
        陶氏推出可持續(xù)丙二醇生產(chǎn)技術(shù)
        優(yōu)化穩(wěn)定劑提高丙酮酸氧化酶穩(wěn)定性的研究
        丙酮酸鈉藥理作用及其臨床應(yīng)用前景研究進(jìn)展
        桃果深加工及其副產(chǎn)物綜合利用研究進(jìn)展
        保鮮與加工(2021年1期)2021-02-06 06:43:22
        金銀花及其副產(chǎn)物的營(yíng)養(yǎng)研究進(jìn)展
        廣東飼料(2016年5期)2016-12-01 03:43:22
        飲用水中含氮消毒副產(chǎn)物的形成與控制
        丙二醇頭孢曲嗪的有關(guān)物質(zhì)檢查
        用濕巾擦手后吃東西等于吃毒,是真的嗎?
        工業(yè)副產(chǎn)物廢氫溴酸的回收與利用
        狠狠色欧美亚洲狠狠色www| 亚洲日韩精品AⅤ片无码富二代| 亚洲精品在线观看自拍| 不卡的高清av一区二区三区| 中文在线8资源库| 日韩毛片基地一区二区三区| 中日韩字幕中文字幕一区| 青青草原综合久久大伊人精品| 精品国产青草久久久久福利| 亚洲av色先锋资源电影网站| 日韩人妻无码精品系列专区无遮 | 色se在线中文字幕视频| 久久国产黄色片太色帅| 久久久久波多野结衣高潮| 亚洲熟妇色xxxxx欧美老妇| 国产一区二区三区乱码在线| 先锋影音人妻啪啪va资源网站| 情侣黄网站免费看| 岛国精品一区二区三区| 亚洲永久免费中文字幕| 国产欧美成人一区二区a片| 中文字幕影片免费在线观看| 日本女同伦理片在线观看| 亚洲高清中文字幕视频| 精品国产午夜理论片不卡| 国产成人免费一区二区三区| 麻豆国产精品久久天堂| 99热在线观看| 午夜大片又黄又爽大片app | 国产精品高湖呻呤久久av| 无码爆乳护士让我爽| 国产av日韩a∨亚洲av电影 | 高清不卡av一区二区| 日韩aⅴ人妻无码一区二区| 亚洲美女影院| 一级a免费高清免在线| 日韩久久无码免费毛片软件| 香蕉久久人人97超碰caoproen| 日本女优一区二区在线免费观看 | 日本视频一区二区这里只有精品| 亚洲午夜av久久久精品影院色戒|