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        豬瘟病毒NASBA-RT-LAMP快速檢測方法的建立

        2018-07-04 08:24:58楊平東張明璀曹立廷
        中國動物檢疫 2018年7期
        關(guān)鍵詞:瓊脂糖電泳條帶

        楊平東,張明璀,曹立廷

        (1.重慶榮昌高新技術(shù)產(chǎn)業(yè)開發(fā)區(qū)管委會,重慶 402460;2. 西南大學(xué)榮昌校區(qū),重慶 402460)

        豬瘟(Classical swine fever,CSF)是由豬瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)引起的一種高度接觸性傳染病,在全球范圍內(nèi)造成了巨大經(jīng)濟(jì)損失[1],被世界動物衛(wèi)生組織(OIE)列為必須上報的動物疫病。對其檢測多年來一直是獸醫(yī)界研究的重點(diǎn)。當(dāng)前的CSFV實(shí)驗(yàn)室檢測方法主要有:ELISA、細(xì)胞培養(yǎng)、RT-LAMP[2],以及以PCR技術(shù)為基礎(chǔ)的RT-PCR、RT-nest-PCR、RT-FQ-PCR[4]等。本研究的思路來源于Fukuda等[3]2009年對諾如病毒檢測方法的研究。由于CSFV基因組在總RNA提取過程中會大量損失,因此希望建立一個兩步法反應(yīng),來擴(kuò)增病毒RNA模板,提高檢測靈敏度。首先利用核酸序列依賴性擴(kuò)增技術(shù)(NASBA)可以大量擴(kuò)增RNA的特點(diǎn),來擴(kuò)增病毒RNA模板,增加第二步反應(yīng)中的模板含量,然后通過反轉(zhuǎn)錄環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增技術(shù)(RT-LAMP)進(jìn)一步擴(kuò)增獲得檢測結(jié)果,從而建立一種NASBA和RT-LAMP技術(shù)相結(jié)合的兩步法檢測方法(NASBA-RT-LAMP),為CSF的臨床快速診斷提供一種新思路。

        1 材料與方法

        1.1 毒株與試劑

        CSFV毒株:重慶市畜牧科學(xué)院獸醫(yī)研究所分離保存;dNTP、NTP:購自Promega公司;蛋白酶K、Taq酶:購自上海生工;T7 RNA聚合酶、RNase H和AMV和Bst DNA 聚合酶:購自NEB公司;DTT、Betaine(甜菜堿)、MgSO4:購自Sigma公司;RNA Marker RL1000、MiniBEST Viral RNA/DNA Extraction Kit Ver 4.0與Prime Script One Step RT-PCR Kit Ver 2.0 :購自TaKaRa公司;Nucleasefree water:購自Fermentas公司。

        1.2 引物設(shè)計與合成

        根據(jù)測序結(jié)果,利用Primer Explorer V4設(shè)計外引物和內(nèi)引物。引物序列見表1。

        表1 引物序列

        1.3 NASBA-RT-LAMP方法的建立

        使用RNA提取試劑盒(MiniBEST Viral RNA/DNA Extraction Kit Ver 4.0,TaKaRa) 提 取 模 板RNA,分別優(yōu)化NASBA反應(yīng)中的離子濃度、引物濃度、酶含量,確定最終反應(yīng)體系為20 μL(表2)。反應(yīng)程序:65 ℃加熱5 min,41 ℃冷卻5 min;迅速加入40 U T7 RNase,5 U AMV,0.5 U RnaseH,混勻,置于41 ℃反應(yīng)90 min,-20 ℃終止反應(yīng)。通過5%瓊脂糖電泳鑒定反應(yīng)結(jié)果。

        RT-LAMP反應(yīng)體系(20 μL)見表3。反應(yīng)程序:65 ℃水浴鍋中反應(yīng)1 h。取5 μL反應(yīng)產(chǎn)物用2%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳分析。

        表2 NASBA反應(yīng)體系

        表3 RT-LAMP反應(yīng)體系

        1.4 NASBA-RT-LAMP特異性檢測

        使用建立的NASBA-RT-LAMP方法,對臨床上常見的豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、乙型腦炎病毒(JEV)和CSFV進(jìn)行檢測。

        1.5 NASBA-RT-LAMP、NASBA、LAMP與Nest-PCR靈敏度比較

        以TakaRa公司提供的高純度單鏈RNA片段(200 ng/μL)為標(biāo)準(zhǔn)對照,取2 μL提取的RNA模板,使用Eppendprf 6131 Biophotometer的Traycell超微量核酸檢測模塊測定RNA含量,用無酶水(Nuclease-free water,F(xiàn)ermentas)做10倍梯度稀釋,分別進(jìn)行NASBA-RT-LAMP、NASBA、RT-LAMP與RT-Nest-PCR反應(yīng)。

        2 結(jié)果

        2.1 NASBA-RT-LAMP方法電泳

        通過5%的瓊脂糖電泳后,在900 bp處可見清晰的RNA條帶(圖1),說明第一步NASBA反應(yīng)獲得成功;然后通過2%的瓊脂糖電泳,可見十分清晰的梯形條帶(圖2),說明整個NASBART-LAMP反應(yīng)是可行的。

        圖1 NASBA反應(yīng)的電泳圖

        圖2 NASBA-RT-LAMP反應(yīng)電泳圖

        2.2 NASBA-RT-LAMP特異性檢測

        分別用臨床上常見的PRRSV、JEV和CSFV為模板,在相同條件下同時進(jìn)行擴(kuò)增。經(jīng)瓊脂糖電泳檢測表明,只有以CSFV為模板,才能擴(kuò)增出清晰的梯形條帶,而以PRRSV和JEV為模板,不能擴(kuò)增出條帶,表明此方法對CSFV有很強(qiáng)的特異性。NASBA-RT-LAMP的特異性檢測瓊脂糖凝膠電泳圖像見圖3。

        2.3 4種檢測方法的靈敏度比較

        圖3 NASBA-RT-LAMP反應(yīng)的特異性檢測

        比較結(jié)果顯示:NASBA與RT-LAMP的最小檢測濃度都為 460 pg/μL;NASBA-RT-LAMP 與RT-Nest-PCR的檢測靈敏度相近,都為46 pg/μL;不過NASBA-RT-LAMP在模板濃度從460 ng/μL到46 pg/μL變化過程中,擴(kuò)增條帶的亮度都十分清晰(圖4),而RT-Nest-PCR擴(kuò)增條帶卻逐漸減弱,在模板濃度46 pg/μL時已非常模糊。4種檢測方法的靈敏度比較結(jié)果見表4。

        圖4 NASBA-RT-LAMP反應(yīng)靈敏度的檢測

        3 分析與討論

        本試驗(yàn)結(jié)合NASBA與RT-LAMP技術(shù),探索建立了一種兩步法檢測方法,整個反應(yīng)只需要恒溫水浴鍋即可完成。在反應(yīng)過程中首先通過NASBA技術(shù)提高病毒RNA模板含量,然后進(jìn)行RT-LAMP反應(yīng),最后通過瓊脂糖電泳方式來驗(yàn)證反應(yīng)結(jié)果。這樣既解決了NASBA反應(yīng)產(chǎn)物容易降解,不易電泳觀察的問題,也使RT-LAMP反應(yīng)的模板量增加,讓RT-LAMP反應(yīng)結(jié)果更加清晰、準(zhǔn)確。

        表4 4種檢測方法靈敏度比較

        此方法的敏感性與RT-nest-PCR相當(dāng),最小檢測量為46 pg/μL,與朱俊靈等[5]將LAMP技術(shù)和橫向流動試紙條技術(shù)(LFD)相結(jié)合建立的RTLAMP-LFD的靈敏度相當(dāng),但低于Das等[6]建立的針對CSFV的熒光定量RT-PCR方法。根據(jù)檢測靈敏度結(jié)果分析發(fā)現(xiàn),NASBA-RT-LAMP反應(yīng)對CSFV檢測的敏感性取決于NASBA反應(yīng)的敏感性,當(dāng)模板濃度在46 pg/μL時,NASBA與RT-LAMP反應(yīng)通過瓊脂糖電泳檢測不到目的條帶。這有可能是因RNA擴(kuò)增量太低,不能通過電泳檢測到。而NASBA-RT-LAMP反應(yīng),由于對NASBA反應(yīng)得到的RNA模板進(jìn)一步擴(kuò)增,所以在模板濃度為46 pg/μL時仍能得到非常清晰的梯形條帶。此方法

        在反應(yīng)過程中不需要特別貴重的設(shè)備,從而為基層

        CSFV檢測提供了一種新選擇。

        [1] MOENNIG V. Introduction to classical swine fever:virus,disease and control policy[J].Veterinary microbiology,2000,73(2):93-102.

        [2] CHEN L,F(xiàn)AN X Z,WANG Q,et al. A novel RTLAMP assay for rapid and simple detection of classical swine fever virus[J]. Virologica sinica,2010,25(1):59-64.

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        [5] 朱俊靈,葉佐東,鄧潔汝,等. 豬瘟病毒RT-LAMPLFD檢測方法的建立與應(yīng)用[J]. 華南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2016(1):1-7.

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