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        大米飴糖生產(chǎn)工藝的優(yōu)化研究

        2018-05-17 05:25:55劉軍李麗劉利
        中國調(diào)味品 2018年5期
        關(guān)鍵詞:飴糖波美糖化酶

        劉軍,李麗,劉利

        (四川理工學(xué)院 生物工程學(xué)院,四川 自貢 643000)

        飴糖,又名麥芽糖飴或麥芽糖漿,是歷史最為悠久的淀粉糖品,主要成分是麥芽糖和糊精,呈粘稠狀微透明液體,淡黃色或棕黃色,清香濃郁,調(diào)味柔和,既可直接食用,又是飲食、糖果、糕點(diǎn)食品、醫(yī)藥化工級(jí)鑄造等工業(yè)的原料[1-3]。

        傳統(tǒng)的飴糖生產(chǎn)工藝多是以家庭作坊式的手工生產(chǎn),該方法工藝流程比較簡單,勞動(dòng)強(qiáng)度大,生產(chǎn)周期長,出糖率低,不易實(shí)現(xiàn)大生產(chǎn)[4]。目前工業(yè)上一般用酶法連續(xù)化生產(chǎn)飴糖,將大米磨漿時(shí),通過調(diào)節(jié)pH,加入α-淀粉酶和糖化酶進(jìn)行液化和糖化,將糊精和低聚糖分解成短鏈糊精、麥芽糖、葡萄糖等。再經(jīng)煮沸滅酶后,進(jìn)行過濾、真空濃縮得到固形物含量為75%~85%的飴糖[5]。本研究在酶法的基礎(chǔ)上進(jìn)行工藝條件的優(yōu)化,希望在低成本的情況下生產(chǎn)出高質(zhì)量的飴糖;同時(shí)控制其干燥工藝條件,使得生產(chǎn)出的飴糖外觀色澤更好。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        大米:市售;α-耐高溫淀粉酶、糖化酶、氯化鈣、三乙醇胺鹽酸鹽、醋酸鈉、己糖激酶、葡萄糖-6-磷酸脫氫酶、3,5-二硝基水楊酸、碘、碘化鉀、酒石酸鉀鈉、苯酚、碳酸氫鈉、α-葡糖苷酶、鹽酸、無水乙醇:成都科龍化工試劑公司。

        Cintra4040紫外可見分光光度計(jì) GBC科學(xué)儀器公司;CP114電子天平 奧豪斯儀器(上海)有限公司;B-220恒溫水浴鍋 上海亞萊生化儀器廠;SHZ-D真空泵 上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司。

        1.2 實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1 實(shí)驗(yàn)試劑的配制

        1.2.1.1 0.1 mol/L碘試劑的配制

        取13 g碘及35 g碘化鉀于少量蒸餾水中,待全部溶解后,用蒸餾水稀釋至100 mL,混勻,此溶液保存于具有磨口塞的棕色瓶中。

        1.2.1.2 DNS試劑的配制

        酒石酸鉀鈉18.2 g,溶于50 mL蒸餾水中,加熱,于熱水溶液中依次加入3,5-二硝基水楊酸0.63 g、氫氧化鈉 2.1 g、苯酚0.5 g、亞硫酸氫鈉0.5 g,攪拌至溶解,冷卻后用蒸餾水定容至100 mL, 貯于棕色瓶中,室溫保存。

        1.2.1.3 測定葡萄糖曲線標(biāo)準(zhǔn)試劑的配制

        準(zhǔn)確稱取干燥恒重的葡萄糖100 mg,加入少量蒸餾水溶解后,以蒸餾水定容至100 mL,即含葡萄糖為1 mg/mL。

        1.2.1.4 醋酸緩沖液(0.1 g/L,pH 6.6)

        稱取三水醋酸鈉0.68 g溶解于40 mL蒸餾水中,用醋酸調(diào)pH至6.6,再用蒸餾水定容至50 mL。

        1.2.1.5 α-葡糖苷酶液

        用67 mmol/L磷酸鉀緩沖液配制0.04 mg/mL的α-葡糖苷酶溶液。

        1.2.1.6 三乙醇胺緩沖液

        稱取三乙醇胺鹽酸鹽14.0 g與七水硫酸鎂 0.25 g溶解于80 mL蒸餾水中,用NaOH約5 mL(5 g/L)調(diào)pH至7.6,再用重蒸餾水定容至100 mL。

        1.2.1.7 還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸液

        稱取NADP-Na260 mg溶解于6mL重蒸餾水中,配成濃度為12.5 mg/L的溶液。

        1.2.1.8 三磷酸腺苷液

        稱取ATP-Na2H2300 mg與碳酸氫鈉300 mg溶解于6 mL重蒸餾水中,配成濃度為51 mg/L的溶液。

        1.2.1.9 己糖激酶液

        稱取己糖激酶1 mg溶于5 mL蒸餾水中。

        1.2.1.10 葡萄糖-6-磷酸脫氫酶液

        稱取葡萄糖-6-磷酸脫氫酶1 mg溶于10 mL蒸餾水中。

        1.2.2 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的測定

        葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線:采用DNS法;從標(biāo)準(zhǔn)曲線查出葡萄糖mg/mL數(shù),求出樣品中還原糖含量,并且算出DE值。

        還原糖含量= [H·N·(V1/ V2)]/M。

        式中:H為還原糖質(zhì)量(mg);N為樣品稀釋倍數(shù);V1為提取液總體積(mL);V2為測定時(shí)用的體積(mL);M為樣品質(zhì)量(g)。

        DE=Y/G。

        式中:Y為還原糖含量;G為干物質(zhì)的量(g干物質(zhì)/100 mL糖液)。

        1.2.3 樣品中葡萄糖和麥芽糖含量測定

        酶法測定樣品中葡萄糖含量;酶法測定樣品中麥芽糖含量[6]。

        1.2.4 樣品波美度的測定

        將樣品冷卻到室溫,倒入50 mL的量筒中,將干凈的波美計(jì)放入樣品溶液中使得波美計(jì)懸浮,并記錄數(shù)據(jù)。

        1.2.5 樣品粘度的測定

        采用旋轉(zhuǎn)粘度計(jì)測定[7]。

        1.2.6 耐高溫α-淀粉酶用量對飴糖質(zhì)量的影響

        準(zhǔn)確稱取100 g大米4份,分別裝入500 mL燒杯中,加水比為1∶3,編號(hào)為1,2,3,4,調(diào)節(jié)pH至6.5~7.5,分別添加α-淀粉酶0.3,0.5,0.8,1.0 g,液化15 min。液化完成后迅速過濾,取濾液稀釋測定葡萄糖、麥芽糖、粘度、DE值、波美度。

        1.2.7 耐高溫α-淀粉酶作用時(shí)間對飴糖質(zhì)量的影響

        稱取100 g大米4份,分別裝入500 mL燒杯中,加水比為1∶3,編號(hào)為1,2,3,4,調(diào)節(jié)pH至6.5~7.5,分別加入1.2.6所確定的最適淀粉酶用量。分別液化8,12,20,24 min,之后的操作同1.2.6。

        1.2.8 糖化酶用量對飴糖質(zhì)量的影響

        稱取100 g大米4份,分別裝入500 mL燒杯中,加水比為1∶3,編號(hào)為1,2,3,4。分別加入1.2.6所確定的最適淀粉酶用量。液化完成后迅速冷卻到58~62 ℃,同時(shí)調(diào)節(jié)pH至4~4.5。分別加入糖化酶34 ,40,45,50 μL糖化3 h。糖化后過濾,之后的操作同1.2.6。

        1.2.9 糖化酶作用時(shí)間對飴糖質(zhì)量的影響

        稱取100 g大米4份,分別裝入500 mL燒杯中,加水比為1∶3,編號(hào)為1,2,3,4,調(diào)節(jié)pH至6.5~7.5,加入1.2.6所確定的最適淀粉酶用量。液化完成后迅速冷卻到58~62 ℃,同時(shí)調(diào)節(jié)pH至4~4.5。加入糖化酶50 μL,分別反應(yīng)2,3,4,5 h。糖化后過濾,之后的操作同1.2.6。

        1.2.10 不同的大米和水的比例對飴糖質(zhì)量的影響

        稱取100 g大米4份,分別裝入500 mL燒杯中,編號(hào)為1,2,3,4。按加水比為1∶2,1∶2.5,1∶3,1∶3.5進(jìn)行糊化,加入1.2.6所確定的最適淀粉酶用量,液化12 min。液化完成后迅速冷卻到58~62 ℃,同時(shí)調(diào)節(jié)pH至4~4.5。分別加入50 μL糖化酶液糖化2 h。糖化后過濾,之后的操作同1.2.6。

        1.2.11 真空干燥時(shí)間對飴糖質(zhì)量的影響

        稱取100 g大米4份,分別裝入500 mL燒杯中,編號(hào)為1,2,3,4組。以1.2.10所確定的最適加水比進(jìn)行糊化,糊化后加入1.2.6所確定的最適淀粉酶用量,液化12 min。液化完成后迅速冷卻到58~62 ℃,同時(shí)調(diào)節(jié)pH至4~4.5。分別加入糖化酶50 μL糖化2 h。糖化后過濾,取濾液進(jìn)行真空干燥,分別干燥3,4,5,6 h。干燥好后取適當(dāng)質(zhì)量的飴糖進(jìn)行稀釋,之后的操作同1.2.6。

        1.2.12 正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

        通過液化酶用量、糖化酶用量等單因素實(shí)驗(yàn),選定正交實(shí)驗(yàn)的因素和水平,見表1。正交實(shí)驗(yàn)采用 L8(32)設(shè)計(jì),實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。

        表1 正交實(shí)驗(yàn)因素水平表Table 1 Factors and levels of orthogonal experiment

        表2 正交實(shí)驗(yàn)組合表Table 2 Orthogonal experimental combination

        根據(jù)實(shí)驗(yàn)組合,按1∶3加水比進(jìn)行實(shí)驗(yàn),液化酶和糖化酶用量見表2,作用時(shí)間分別是12 min和2 h。糖化后過濾,取濾液稀釋測定葡萄糖、麥芽糖、粘度、DE值、波美度。

        1.3 數(shù)據(jù)處理

        采用Excel、Origin 9.1等軟件對單因素結(jié)果進(jìn)行分析、作圖,單因素平行實(shí)驗(yàn)進(jìn)行3組,正交實(shí)驗(yàn)采用平均值及標(biāo)準(zhǔn)差表示[8,9]。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

        分別取1 mg/mL葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0 mL于15 mL試管中,準(zhǔn)確加入DNS試劑2 mL,在540 nm波長下測定吸光度,得到標(biāo)準(zhǔn)曲線,見圖1。

        圖1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Glucose standard curve

        2.2 耐高溫α-淀粉酶用量對飴糖質(zhì)量的影響

        耐高溫α-淀粉酶用量對飴糖成分中麥芽糖、葡萄糖、DE值、粘度和波美度的影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖2和圖 3。

        圖2 液化酶用量對麥芽糖、葡萄糖的影響Fig.2 Effect of liquifying enzyme dosage on maltose and glucose

        圖3 液化酶用量實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.3 Analysis of experimental data of liquifying enzyme dosage

        由圖2和圖3可知,酶用量在0.2~1.1 g范圍內(nèi),飴糖中麥芽糖的含量隨耐高溫α-淀粉酶用量增加而減少,葡萄糖含量隨耐高溫α-淀粉酶用量增加而減少,DE值隨耐高溫α-淀粉酶用量增加而呈上升趨勢,且在17~28的范圍內(nèi)。波美度在9~10 °Be′范圍內(nèi)小幅度變化,當(dāng)耐高溫α-淀粉酶用量為0.2 g時(shí),液化液中麥芽糖含量最高為15.4 g/L,葡萄糖含量最低為2.6 g/L。

        2.3 耐高溫α-淀粉酶作用時(shí)間對飴糖質(zhì)量的影響

        耐高溫α-淀粉酶作用時(shí)間對飴糖質(zhì)量影響的實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖4和圖5。

        圖4 液化酶作用時(shí)間實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.4 Analysis of action time of liquifying enzyme

        圖5 液化酶作用時(shí)間實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.5 Analysis of action time of liquifying enzyme

        由圖 4和圖5可知,在8~12 min時(shí),葡萄糖含量、麥芽糖含量都隨耐高溫α-淀粉酶作用時(shí)間延長而增大。在12~24 min時(shí),α-淀粉酶作用時(shí)間增長,麥芽糖含量減少,而葡萄糖含量增加,DE值隨耐高溫α-淀粉酶作用時(shí)間延長而增大。波美度基本沒有變化。耐高溫α-淀粉酶作用時(shí)間在 12 min時(shí)麥芽糖達(dá)到最大值15.6 g/L。

        2.4 糖化酶用量對飴糖質(zhì)量的影響

        糖化酶用量對飴糖質(zhì)量的影響的實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖6和圖7。

        圖6 糖化酶用量實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.6 Analysis of experimental data of saccharifying enzyme

        圖7 糖化酶用量實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.7 Analysis of experimental data of saccharifying enzyme

        由圖 6和圖7可知,糖化酶添加量為34~45 μL時(shí),麥芽糖的含量隨糖化酶添加量的增加而增大,當(dāng)糖化酶添加量50 μL時(shí),麥芽糖含量增大,葡萄糖隨著糖化酶的添加量增加而增大,DE值也隨糖化酶量的添加而增大,波美度幾乎沒有變化。

        在添加量為34,40 μL時(shí)因?yàn)樘腔傅奶砑恿坎粔?,所以麥芽糖和葡萄糖的含量都不多。?dāng)酶量增加以后麥芽糖和葡萄糖的含量增加,隨著麥芽糖和葡萄糖量的增加,DE值也增加,粘度也增大。

        2.5 糖化酶作用時(shí)間對飴糖質(zhì)量的影響

        糖化酶作用時(shí)間對飴糖質(zhì)量的影響的實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖8和圖9。

        圖8 糖化酶作用時(shí)間實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.8 Analysis of action time of saccharifying enzyme

        圖9 糖化酶作用時(shí)間實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.9 Analysis of action time of saccharifying enzyme

        由圖8和圖9可知,糖化酶作用時(shí)間越長,麥芽糖含量越低,但是飴糖中葡萄糖含量越高。DE值和葡萄糖呈同樣的趨勢變化。粘度、波美度幾乎沒有變化。

        2.6 不同的料水比對飴糖質(zhì)量的影響

        不同的大米和水的比例對飴糖質(zhì)量的影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖10和圖11。

        圖10 大米和水比例的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.10 Analysis of experimental data for the ratio of rice and water

        圖11 大米和水比例的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.11 Analysis of experimental data for the ratio of rice and water

        由圖10和圖11可知,麥芽糖的含量隨大米與水的比例增大而增大,葡萄糖的含量隨大米與水的比例增大而減小,DE值也隨大米與水的比例在減小。波美度隨大米與水的比例增加而減小。加水比會(huì)影響淀粉的糊化階段,在糊化階段淀粉加熱吸水膨脹,增加淀粉鏈和液化酶反應(yīng)的機(jī)會(huì),在相同液化時(shí)間內(nèi)淀粉水解所得麥芽糖越多,所得的淀粉糊精就相對比較少,糖化酶作用時(shí)所產(chǎn)生的葡萄糖就會(huì)比較少。

        2.7 真空濃縮時(shí)間對飴糖質(zhì)量的影響

        真空濃縮時(shí)間對飴糖質(zhì)量的影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖12和圖13。

        圖12 真空濃縮時(shí)間的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.12 Experimental data analysis of vacuum concentration time

        圖13 真空濃縮時(shí)間的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析Fig.13 Experimental data analysis of vacuum concentration time

        由圖12和圖13可知,真空干燥時(shí)間越長,飴糖中麥芽糖含量越高,葡萄糖的含量也越高,干燥時(shí)間越長糖液的粘度越大。但是干燥時(shí)間過長也會(huì)影響飴糖的色澤,干燥6 h 的飴糖與干燥時(shí)間短的飴糖相比較色澤較暗。這是由于糖液長時(shí)間置于高溫度下蒸發(fā),易受熱破壞其分子結(jié)構(gòu)、分解和焦化。

        2.8 正交實(shí)驗(yàn)的數(shù)據(jù)分析

        通過液化酶用量、糖化酶用量、大米與水的比例等單因素實(shí)驗(yàn),選定正交實(shí)驗(yàn)的因素和水平,采用L8(32)正交設(shè)計(jì),實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表3。

        表3 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果表Table 3 Orthogonal experimental results table

        續(xù) 表

        通過對表3正交實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的處理可以分析得出制備飴糖生產(chǎn)工藝條件的最優(yōu)組合。即在制備飴糖時(shí),飴糖中麥芽糖含量的影響因素,液化酶用量>糖化酶用量。制備飴糖的最適工藝條件:α-耐高溫液化酶用量為0.2 g,作用時(shí)間為12 min;糖化酶用量為50 μL,作用時(shí)間為2 h ;大米與水的比例為1∶3。

        3 結(jié)論

        在使用大米制作飴糖時(shí),在液化階段,耐高溫α-淀粉酶用量為0.2 g,作用時(shí)間為12 min時(shí)麥芽糖含量最高。且波美度和DE值有利于后面的糖化、過濾等操作。

        在糖化階段糖化酶用量為50 μL,作用時(shí)間為2 h時(shí),糖化結(jié)束時(shí)淀粉溶液的麥芽糖含量最高。

        以大米∶水為1∶3,以上述的工藝條件制備飴糖時(shí),所得淀粉漿中麥芽糖含量比較高,也利于控制波美度和DE值。由正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析出制備飴糖時(shí)麥芽糖含量最高的工藝條件是:α-耐高溫液化酶用量為0.2 g,作用時(shí)間為12 min;糖化酶用量為50 μL,作用時(shí)間為2 h;大米與水的比例為1∶3。

        對飴糖進(jìn)行真空干燥的時(shí)間對飴糖的麥芽糖含量和葡萄糖含量都有影響,真空干燥6 h所得飴糖中麥芽糖含量較高,并且對飴糖的外觀色澤也有影響。

        參考文獻(xiàn):

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        [3]扶雄,羅發(fā)興,楊連生.利用木薯酶法生產(chǎn)飴糖[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2001,27(1):78-80.

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