梅啟享 曾悅 陸穎影
Fundprogram:National Natural Science Foundation of China(81200322,81600500)
急性胰腺炎(AP)是臨床常見且預(yù)后較差的疾病之一,它的發(fā)病機(jī)制一直屬于研究熱點(diǎn)。目前多認(rèn)為它的發(fā)生是由于胰酶酶原在胰腺腺泡細(xì)胞內(nèi)的提前激活所致,而胰腺腺泡細(xì)胞內(nèi)胰蛋白酶原激活被認(rèn)為與自噬紊亂有關(guān)。作為AP中胰腺腺泡細(xì)胞的早期事件,自噬活性的調(diào)節(jié)可影響AP病情的嚴(yán)重程度[1]。高三酰甘油血癥在胰腺炎發(fā)病因素中名列第3位,是促進(jìn)胰腺炎重癥化的一個重要因素[2]。有研究發(fā)現(xiàn)自噬可能參與高脂誘導(dǎo)的疾病進(jìn)程[3]。然而目前高脂因素對于胰腺腺泡細(xì)胞自噬影響的研究尚屬空白。自噬相關(guān)基因(autophagy-related gene,ATG)蛋白的表達(dá)在自噬的發(fā)生發(fā)展過程中尤為重要,其中定位于自噬體膜的微管相關(guān)蛋白輕鏈3(microtubule associated protein light chain 3, LC3)、與自噬溶酶體功能相關(guān)的溶酶體相關(guān)膜蛋白2(lysosome associated membrane protein 2,LAMP-2)以及識別降解底物相關(guān)的p62被認(rèn)為是自噬作用的標(biāo)志物,它們的改變預(yù)示了自噬活性的改變[4]。本研究觀察AP及高脂血癥相關(guān)性AP胰腺腺泡細(xì)胞自噬的變化,探討高脂對AP時自噬活性的影響。
一、動物模型制備和實(shí)驗(yàn)分組
40只雄性SD大鼠,SPF級,體重200~220 g,購自上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動物有限公司。按數(shù)字表法隨機(jī)分為假手術(shù)對照組、急性壞死性胰腺炎(acute necrotizing pancreatitis, ANP)組、高脂血癥(hyperlipidemia,HL)組、高脂血癥性ANP(hyperlipidemia ANP,HANP)組,每組10只。對照組給予正常飲食喂養(yǎng);ANP組給予正常飲食喂養(yǎng)2周后采用胰膽管逆行注射3.5%牛黃膽酸鈉溶液的方法制備ANP模型;HL組給予高脂飼料(正常飼料77%+豬油20%+膽固醇3%)喂養(yǎng)2周;HANP組給予高脂飼料喂養(yǎng)2周后同上述方法制備ANP模型。對照組和HL組腹腔內(nèi)注射等容積生理鹽水。各組大鼠于喂養(yǎng)2周后尾靜脈采血,分離血清,置-20℃保存。造模后48 h處死大鼠,腹主動脈采血,分離血漿,置-20℃保存;取胰腺組織,部分立即置液氮保存,部分用10%甲醛固定備用。
二、方法
1.血三酰甘油(TG)、總膽固醇(TC)、淀粉酶水平檢測:血標(biāo)本送上海市第一人民醫(yī)院生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)室檢測TG、TC及淀粉酶水平。
2.胰腺組織病理檢查:取固定的胰腺組織,常規(guī)脫水、石蠟包埋、切片及HE染色,光鏡下讀片,并參照Schmidt等[5]的標(biāo)準(zhǔn)對胰腺組織進(jìn)行病理評分。
3.胰腺組織LC3Ⅰ、LC3Ⅱ、p62、LAMP-2蛋白檢測:應(yīng)用RIPA裂解液提取胰腺組織總蛋白,應(yīng)用BCA試劑盒(碧云天生物技術(shù)有限公司)測定蛋白濃度。采用蛋白質(zhì)印跡法檢測LC3Ⅰ、LC3Ⅱ、p62、LAMP-2蛋白表達(dá)量,以GAPDH為內(nèi)參。兔抗大鼠LC3Ⅰ、LC3Ⅱ購自CST公司,兔抗大鼠p62購自Proteintech公司,兔抗大鼠LAMP-2購自Abcam公司,工作濃度分別為1∶1 000、1∶1 000、1∶2 000;羊抗兔IgG-HRP二抗購自碧云天公司,工作濃度1∶2 000。最后ECL(Millipore公司)化學(xué)發(fā)光,X片曝光成像。應(yīng)用天能Tanon 5200全自動化學(xué)發(fā)光成像分析系統(tǒng)掃描,以目的條帶與內(nèi)參條帶的灰度值比表示蛋白相對表達(dá)量,并計(jì)算LC3Ⅱ/Ⅰ比值。
4.胰腺腺泡細(xì)胞自噬體及自噬溶酶體觀察:取液氮保存的胰腺組織標(biāo)本,切取大約1 mm×1 mm×1 mm立方體,洗去殘留的血液和組織液后迅速放入新鮮3%的戊二醛(pH7.4)固定4 h以上,而后置入 1%的鋨酸固定液。常規(guī)按電鏡切片方法行超薄切片,厚度約70 nm。經(jīng)醋酸雙氧鈾和檸檬酸鉛雙染色,在日本JEM1230透射電鏡下隨機(jī)選取10個不同視野,觀察并記錄每個視野內(nèi)自噬體和自噬溶酶體的數(shù)量,取均值。
三、統(tǒng)計(jì)學(xué)處理
一、血清TG、TC、淀粉酶水平的變化
對照組、HL組、ANP組、HANP組血清TG水平分別為(0.36±0.17)、 (0.72±0.37)、(0.28±0.13)、(0.82±0.49)mmol/L,TC分別為(1.54±0.25)、(2.07±0.45)、(1.70±0.18)、(1.97±0.06)mmol/L。兩高脂飼料喂養(yǎng)組大鼠的TG、TC水平均顯著高于兩正常飼料喂養(yǎng)組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(TG:t值分別為3.455、3.288,P值均<0.01;TC:t值分別為2.916、4.502,P值均<0.05),表明高脂血癥大鼠模型成功建立。
對照組、HL組、ANP組、HANP組血淀粉酶活性分別為(1 818±167)、(1 895±132)、(4505.60±549.16)、(4 830±328)U/L,對照組與HL組的差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,ANP和HANP組則較對照組顯著升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t值分別為12.417、14.012,P值均<0.01),提示ANP造模成功。
二、胰腺組織病理學(xué)改變
對照組和HL組的胰腺組織無明顯病理改變,病理評分基本為0分。ANP組和HANP組胰腺組織均出現(xiàn)不同程度的水腫、出血、壞死和炎性浸潤(圖1)。ANP組胰腺組織病理評分顯著高于對照組,HANP組胰腺病理評分顯著高于HL組及ANP組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P值均<0.01,表1)。
圖1 對照組(1A)、ANP組(1B)、HL組(1C)、HANP組(1D)大鼠胰腺組織病理改變(HE ×200)
組別只數(shù)總評分水腫出血壞死炎癥浸潤對照組100.20±00.20±000.45 0.45 HL組100.40±0.20±0.20±000.540.45 0.45ANP組105.60±2.20±0.90±1.10±1.40±0.54a0.28 0.420.420.42HANP組108.00±2.90±1.60±1.40±2.20±0.71bd0.42c0.42c0.42c0.76c
注:與對照組比較,aP<0.01;與HL組比較,bP<0.01;與ANP組比較,cP<0.05,dP<0.01
三、胰腺組織的自噬相關(guān)結(jié)構(gòu)改變
根據(jù)細(xì)胞內(nèi)自噬體的數(shù)量可以判斷自噬的活性。透射電鏡觀察顯示,對照組細(xì)胞核呈卵圓形,細(xì)胞核膜結(jié)構(gòu)完整,胞質(zhì)中細(xì)胞器形態(tài)正常,未見自噬體,自噬活性較弱。ANP組細(xì)胞核呈不規(guī)則形,線粒體有輕度腫脹,可見“C”形的雙層膜結(jié)構(gòu)樣的自噬小體及包含降解物的自噬體,并出現(xiàn)自噬小體和溶酶體融合現(xiàn)象,溶酶體內(nèi)可見吞噬內(nèi)容物,自噬活性大大增強(qiáng)。HL組細(xì)胞核呈卵圓形和不規(guī)則形,細(xì)胞連接緊密,細(xì)胞器結(jié)構(gòu)較完整,有疑似自噬小體,自噬活性較弱。HANP組細(xì)胞核呈不規(guī)則形,染色質(zhì)部分凝集,細(xì)胞器形態(tài)較完整,可見分泌顆粒,有疑似自噬小體,自噬活性相對ANP組受到抑制(圖2)。
對照組、ANP組、HL組、HANP組的自噬體數(shù)量分別為(0.30±0.58)、(4.00±1.00)、(0.67±0.58)、(1.70±0.58)個,ANP組顯著多于其他3組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P值均<0.05)。
圖2 對照組(2A)、ANP組(2B)、HL組(2C)、HANP組(2D)大鼠胰腺腺泡細(xì)胞內(nèi)自噬體及自噬溶酶體(A、B、C×10 000,D×5 000)
四、胰腺組織自噬相關(guān)蛋白表達(dá)的變化
對照組大鼠胰腺組織p62、LC3Ⅰ、LC3Ⅱ低表達(dá),LAMP-2高表達(dá)。ANP組大鼠胰腺組織p62表達(dá)及LC3 Ⅱ/Ⅰ比值較對照組增高,LAMP-2表達(dá)降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t值分別為9.062、7.737、3.619,P值均<0.05)。HSAP組大鼠胰腺組織p62表達(dá)及LC3Ⅱ/Ⅰ比值較HL組和ANP組均降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t值分別為23.35、6.801、4.187、19.44,P值均<0.01),LAMP-2表達(dá)與HL組和ANP組差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(表2,圖3)。
表2 各組LC3Ⅱ/Ⅰ比值及p62、LAMP-2蛋白表達(dá)
注:與對照組比較,aP<0.05;與HL組比較,bP<0.01;與ANP組比較,cP<0.01
高脂血癥作為AP病因僅次于膽源性和酒精性因素,高脂血可使胰腺炎趨向重癥化,然而其具體機(jī)制尚未完全闡明[6]。Guo等[7]報(bào)道,在3T3-L1脂肪細(xì)胞的分化過程中可以通過靶向調(diào)節(jié)自噬來影響細(xì)胞的分化,表明自噬可能與肥胖、脂肪代謝紊亂有關(guān)。Dall′Armi 等[8]認(rèn)為脂質(zhì)和脂質(zhì)代謝酶可以通過控制哺乳動物TOR(mTOR)途徑上的信號級聯(lián)來負(fù)調(diào)節(jié)自噬的啟動。
圖3 對照組(1)、ANP組(2)、HL組(3)、HANP組(4)胰腺組織蛋白表達(dá)
自噬通過對細(xì)胞器的有效調(diào)控可以保持胰腺腺泡細(xì)胞的內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定和正常分泌功能[9]。Diakopoulos等[10]通過構(gòu)建自噬相關(guān)基因ATG-5缺陷的小鼠證明自噬對于胰腺的穩(wěn)態(tài)至關(guān)重要,認(rèn)為自噬的損傷是胰腺炎致病的關(guān)鍵。異常自噬的發(fā)生可使得胰蛋白酶原在自噬溶酶體內(nèi)被加快激活為胰蛋白酶,使胰腺腺泡空洞聚集,并且導(dǎo)致胰酶酶原的提早活化,從而加重胰腺炎。自噬是脂質(zhì)代謝的重要途徑之一,自噬活性的降低使脂質(zhì)代謝功能障礙,促使脂質(zhì)蓄積。然而,尚無有關(guān)高脂血癥與AP中自噬相關(guān)性機(jī)制研究的報(bào)道。
溶酶體膜內(nèi)的LAMPs是一種高度糖基化的跨膜蛋白, 在保持溶酶體結(jié)構(gòu)和功能方面扮演著重要角色。它可使細(xì)胞免受酸性水解,并參與調(diào)控溶酶體與自噬體的融合,對自噬進(jìn)程有重要影響。溶酶體相關(guān)膜蛋白2(LAMP-2)被認(rèn)為是自噬體與溶酶體的降解和融合的重要蛋白。Zhu等[11]通過注射精氨酸制備AP模型,發(fā)現(xiàn)LAMP-2的表達(dá)下降,認(rèn)為溶酶體與自噬體的融合障礙是AP異常自噬發(fā)生的原因。LC3是自噬體形成過程中的重要功能蛋白,在自噬啟動中發(fā)揮著重要作用。它存在著兩種互相轉(zhuǎn)化的形式,即LC3-Ⅰ和LC3-Ⅱ。LC3 Ⅱ定位于自噬囊泡體膜上,LC3Ⅱ/Ⅰ的比值可以反映自噬的活性。在自噬降解過程中,p62/SQSTM1是自噬降解能力的重要評價(jià)指標(biāo)[12]。因此,LC3、p62、LAMP2的表達(dá)變化可以代表自噬活性的改變。
本實(shí)驗(yàn)研究結(jié)果顯示,ANP組自噬相關(guān)蛋白LC3、p62表達(dá)增加,LAMP-2表達(dá)下降,證明胰腺炎癥反應(yīng)中自噬增強(qiáng),且自噬溶酶體功能發(fā)生了障礙,HANP組LC3Ⅱ/Ⅰ比值、p62表達(dá)較ANP組下降,提示胰腺自噬活性降低,表明在高脂因素影響下,自噬活性被抑制。但HANP組與ANP組LAMP-2表達(dá)未見明顯差異,提示高脂因素的作用可能與溶酶體對自噬的調(diào)控作用無顯著相關(guān)性。
研究發(fā)現(xiàn),AP時胰腺腺泡細(xì)胞出現(xiàn)自噬小體,并隨著胰腺炎的病情程度加重,自噬的結(jié)構(gòu)發(fā)生改變,自噬小體體積增大,數(shù)量增多,出現(xiàn)自噬小體和溶酶體的融合現(xiàn)象[13]。本研究通過透射電鏡觀察,ANP組可見“C”形的雙層膜結(jié)構(gòu)樣的自噬小體及包含降解物的自噬體,出現(xiàn)自噬小體和溶酶體融合現(xiàn)象,HANP組有疑似自噬小體,自噬活性發(fā)生了改變。HANP組的胰腺病理損傷較對照組和ANP組更嚴(yán)重,然而,它的自噬活性被相對抑制,提示高三酰甘油血癥可能參與了AP異常自噬的發(fā)生發(fā)展過程,并進(jìn)一步導(dǎo)致疾病重癥化。
[1] Gukovsky I, Gukovskaya AS. Impaired autophagy underlies key pathological responses of acute pancreatitis [J]. Autophagy, 2010, 6(3): 428-429.DOI: 10.4161/auto.6.3.11530.
[2] Christian JB, Bourgeois NE, Lowe KA. Cholesterol screening in US adults and awareness of high cholesterol among individuals with severe hypertriglyceridemia: National Health and Nutrition Examination Surveys 2001-2008 [J]. J Cardiovasc Nurs, 2015, 30(1): 26-34. DOI: 10.1097/JCN.0000000000000101.
[3] Liang L, Shou XL, Zhao HK, et al. Antioxidant catalase rescues against high fat diet-induced cardiac dysfunction via an IKKbeta-AMPK-dependent regulation of autophagy [J]. Biochim Biophys Acta, 2015, 1852(2): 343-352. DOI: 10.1016/j.bbadis.2014.06.027.
[4] Sun A, Wei J, Childress C, et al. The E3 ubiquitin ligase NEDD4 is an LC3-interactive protein and regulates autophagy [J]. Autophagy, 2017, 13(3): 522-537.DOI: 10.1080/15548627.2016.1268301.
[5] Schmidt J, Rattner DW, Lewandrowski K, et al. A better model of acute pancreatitis for evaluating therapy [J]. Ann Surg, 1992, 215(1): 44-56.
[6] Zheng J, Wu J, Chen J, et al. Therapeutic effects of quercetin on early inflammation in hypertriglyceridemia-related acute pancreatitis and its mechanism [J]. Pancreatology, 2016, 16(2): 200-210. DOI: 10.1016/j.pan.2016.01.005. Epub 2016 Jan 28.
[7] Guo L, Huang JX, Liu Y, et al. Transactivation of Atg4b by C/EBPbeta promotes autophagy to facilitate adipogenesis [J]. Mol Cell Biol, 2013, 33(16): 3180-3190.DOI: 10.1128/MCB.00193-13.
[8] Dall′armi C, Devereaux KA, Di Paolo G. The role of lipids in the control of autophagy [J]. Curr Biol, 2013, 23(1): R33-R45. DOI: 10.1016/j.cub.2012.10.041.
[9] Gukovskaya AS, Pandol SJ, Gukovsky I. New insights into the pathways initiating and driving pancreatitis [J]. Curr Opinion Gastroenterol,2016.DOI:10.1097/MOG.0000000000000301.
[10] Diakopoulos KN, Lesina M, Wormann S, et al. Impaired autophagy induces chronic atrophic pancreatitis in mice via sex- and nutrition-dependent processes [J]. Gastroenterology, 2015, 148(3): 626-638.e17.DOI: 10.1053/j.gastro.2014.12.003.
[11] Zhu H, Yu X, Zhu S, et al. The fusion of autophagosome with lysosome is impaired in L-arginine-induced acute pancreatitis [J]. Int J Clin Exp Pathol, 2015, 8(9): 11164-11170.
[12] Ryter SW, Cloonan SM, Choi AM. Autophagy: a critical regulator of cellular metabolism and homeostasis [J]. Mol Cells, 2013, 36(1): 7-16. DOI: 10.1007/s10059-013-0140-8. Epub 2013 May 24.
[13] Yu C, Yu X, Zhu HW, et al. Expression pattern of HMGB1 and its association with autophagy in acute necrotizing pancreatitis [J]. Mol Med Rep, 2016, 14(6): 5507-5513. DOI: 10.3892/mmr.2016.5945.