丁澤紅 付莉莉 顏彥 鐵韋韋 胡偉
(中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院熱帶生物技術(shù)研究所,???571101)
木薯(Manihot esculentaCrantz)是大戟科熱帶和亞熱帶地區(qū)重要的薯類(lèi)作物,具有高產(chǎn)、高淀粉和耐貧瘠等特點(diǎn),在現(xiàn)代工業(yè)和農(nóng)業(yè)中起著非常重要的作用。木薯具有發(fā)達(dá)的根系,可以忍受長(zhǎng)達(dá)4-6個(gè)月的干旱脅迫[1]。然而,在這種長(zhǎng)時(shí)間(或較為嚴(yán)重)的干旱脅迫條件下,木薯的生長(zhǎng)和發(fā)育受到顯著了的影響,最終導(dǎo)致其塊根產(chǎn)量減少[2]。作為典型的熱帶塊根作物,木薯主要種植在南北緯30°之間的熱帶和亞熱帶地區(qū)。木薯對(duì)溫度非常敏感,低于14℃時(shí)木薯生長(zhǎng)會(huì)明顯變緩,低于10℃時(shí)木薯將停止生長(zhǎng)。更為嚴(yán)重的是,在極端的低溫天氣下木薯塊根產(chǎn)量會(huì)急劇下降甚至絕收[3]。因此,提高木薯抵御干旱和低溫等脅迫的抗性,對(duì)減少木薯在不良生長(zhǎng)環(huán)境下的產(chǎn)量損失具有重要指導(dǎo)意義。
脯氨酸是重要的滲透調(diào)節(jié)物質(zhì),在植物體內(nèi)起著調(diào)節(jié)細(xì)胞滲透平衡、維持細(xì)胞結(jié)構(gòu)穩(wěn)定和清除活性氧等作用[4]。在干旱、低溫、高鹽等脅迫條件下,植物體內(nèi)脯氨酸含量會(huì)顯著增加[5-6],其含量和植物的抗逆性呈正相關(guān)[7]。植物脯氨酸合成途徑可以分為兩種:鳥(niǎo)氨酸途徑和谷氨酸途徑。有趣地是,這兩種途徑的最后一步反應(yīng)相同,均由吡咯啉-5-羧酸還原酶(P5CR)催化完成,可見(jiàn)P5CR是脯氨酸生物合成途徑的關(guān)鍵酶,由其催化的反應(yīng)對(duì)植物生長(zhǎng)可能至關(guān)重要,例如在擬南芥中敲除P5CR后可引起植株胚胎致死[8]。此外,在植物中超表達(dá)P5CR后,轉(zhuǎn)基因植株在脅迫條件下脯氨酸含量顯著增加,其抗逆性顯著增強(qiáng)[9]。
大多數(shù)植物中P5CR僅由1個(gè)基因編碼,它們?cè)谶M(jìn)化過(guò)程中比較保守,屬于看家基因(Housekeeping genes)[10]。P5CR的表達(dá)在不同組織中存在顯著差異。例如,擬南芥中AtP5CR在根中表達(dá)量最高,其次是果莢、花和葉,而莖中的表達(dá)量最低[11]。P5CR的表達(dá)還受到干旱、低溫、鹽和ABA等的誘導(dǎo)。例如,擬南芥AtP5CR的表達(dá)量受到低溫、高溫和鹽脅迫的誘導(dǎo)[12-13];黑麥草LpP5CR的表達(dá)受到鹽、PEG(Polyethylene glycol)、低溫和ABA(Abscisic acid)處理的誘導(dǎo)[14];而小麥TaP5CR的表達(dá)則受到鹽、PEG和ABA處理的誘導(dǎo)[9]。這些研究成果為在其他植物中挖掘和鑒定P5CR的功能奠定了重要基礎(chǔ)。
迄今為止,在木薯中已經(jīng)克隆了一個(gè)P5CR,其表達(dá)在轉(zhuǎn)錄水平受到滲透脅迫的調(diào)控[6]。然而,在木薯中是否還存在其他的P5CR,它們和其他植物中P5CR的進(jìn)化關(guān)系如何以及它們是否參與了木薯干旱、低溫等脅迫響應(yīng),仍不清楚。本研究擬采用生物信息學(xué)的方法從已完成基因組測(cè)序的植物中鑒定P5CR,并對(duì)其序列特征和進(jìn)化模式進(jìn)行分析;之后主要針對(duì)木薯MeP5CR,分析其在不同組織以及干旱、低溫等脅迫條件下的表達(dá)模式,旨在為進(jìn)一步研究MeP5CR在木薯非生物脅迫中的功能奠定基礎(chǔ),同時(shí)也為其他植物中P5CR的功能研究提供參考。
試驗(yàn)所用木薯材料為主推廣品種Ku50,由中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院熱帶生物技術(shù)研究所提供。
1.2.1 材料種植與處理 參照丁澤紅等[15]方法進(jìn)行木薯種植:將具有3-4個(gè)芽眼且粗細(xì)勻稱(chēng)的木薯莖段(長(zhǎng)度約15 cm)扦插于塑料盆(高×上直徑×下直徑 = 18.8 cm×18.5 cm×14.8 cm)中,每盆1個(gè)莖段?;|(zhì)采用蛭石與營(yíng)養(yǎng)土按照1:1的體積比進(jìn)行混合。木薯種植約10 d后進(jìn)行間苗,每盆保留1棵苗。
木薯種植60 d后,選取長(zhǎng)勢(shì)一致植株分別進(jìn)行(1)干旱處理:采用20%的PEG-6000溶液模擬干旱脅迫,在處理0、3和24 h后,分別收集老葉、第一片完全展開(kāi)葉、未展開(kāi)葉和根的樣品,-80℃保存待用;(2)低溫處理:采用4℃進(jìn)行低溫脅迫處理,在0、6和24 h后分別收集第一片完全展開(kāi)葉、未展開(kāi)葉和根的樣品,-80℃保存待用。
為考察MeP5CR在不同組織中的表達(dá)變化,收集正常種植條件下木薯Ku50的葉片、葉柄、莖、須根和儲(chǔ)藏根的樣本,進(jìn)行qRT-PCR分析。
1.2.2 RNA提取與qRT-PCR 用天根生化科技有限公司RNA提取試劑盒提取木薯總RNA。用Fermentas公司反轉(zhuǎn)錄試劑盒將總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,-20℃保存待用。用Primer 6.0設(shè)計(jì)引物,由上海生工生物工程股份有限公司合成(表1)。qRTPCR在Mx 3005P熒光定量PCR儀(Stratagene,美國(guó))上進(jìn)行,每個(gè)樣品3次生物學(xué)重復(fù),按照2-ΔΔCt方法計(jì)算基因相對(duì)表達(dá)量[6]。
1.2.3 生物信息學(xué)分析 以擬南芥[16]、水稻[17]中P5CR的蛋白質(zhì)序列為參考,用BLASTP搜索Phytozome數(shù)據(jù)庫(kù)獲取其他物種的P5CR同源序列。在去除冗余序列之后,用NCBI-CDD數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行保守結(jié)構(gòu)域分析,確保每條序列都含有P5CR保守結(jié)構(gòu)域。之后,用ClustalX進(jìn)行序列比對(duì);用MEGA5.2構(gòu)建Neighbor-Joining系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù);用ExPASy ProtParam分析蛋白質(zhì)的分子量和等電點(diǎn)。
表1 qRT-PCR引物
以擬南芥和水稻中P5CR為查詢序列,搜索Phytozome數(shù)據(jù)庫(kù),在45個(gè)物種中共找到54條P5CR序列,其中蘋(píng)果P5CR數(shù)目最多,為3個(gè),其次是柳枝稷、卷心菜、白菜型油菜、落地生根、巴旦木、亞麻、大豆,為2個(gè),在主要單子葉植物(如水稻、玉米、小米、高粱等)和雙子葉植物(如擬南芥及其近緣種鼠耳芥等)中有且僅有1個(gè)P5CR(圖1和表2)。木薯與杞柳、毛果楊親緣關(guān)系較近,它們僅有1個(gè)P5CR。除此之外,在許多低等生物如團(tuán)藻、萊菌衣藻、鹽生杜氏藻、小立碗蘚和泥炭蘚中也只有1個(gè)P5CR(圖1)。
序列特征分析表明,P5CR平均氨基酸長(zhǎng)度為282.6,最大值為347,最小值為208;平均外顯子數(shù)目為7.2,最大值為9,最小值為6(表2)。P5CR的分子量和等電點(diǎn)在不同物種之間的差別不大。相比之下,P5CR長(zhǎng)度的最大值為9 797 bp,最小值為1 174 bp,兩者相差9倍之多(表2)??梢?jiàn),P5CR在基因長(zhǎng)度上差別較大,且這種差異主要是由內(nèi)含子長(zhǎng)度上的差異造成的。
圖1 P5CR基因在不同物種中的分布
將54條P5CR氨基酸序列進(jìn)行比對(duì)、聚類(lèi)后發(fā)現(xiàn),它們可以分成12個(gè)主要組群(圖2)。其中,木薯與巨桉中P5CR的親緣關(guān)系較近,聚類(lèi)在一起(圖2-K)??梢郧宄目吹剑魑锓N中P5CR的親緣關(guān)系與物種之間的進(jìn)化關(guān)系呈現(xiàn)很好的一致性:低
等藻類(lèi)和蘚類(lèi)植物(如團(tuán)藻、萊菌衣藻、泥炭蘚和小立碗蘚等)都聚類(lèi)在A組,單子葉植物(如水稻、高粱、玉米和二穗短柄草等)都聚類(lèi)在B組,雙子葉植物(如擬南芥、琴葉擬南芥和鼠耳芥等)都聚類(lèi)在D組,豆科植物(如大豆、菜豆和蒺藜苜蓿等)都聚類(lèi)在L組,且大多數(shù)植物中都只有1個(gè)P5CR(圖2)。不同組群之間P5CR長(zhǎng)度的統(tǒng)計(jì)結(jié)果顯示,除了個(gè)別組群中P5CR的長(zhǎng)度要顯著的低于或高于其他組群,如D組(雙子葉植物)中P5CR長(zhǎng)度最?。ā? 600 bp)、F組(茄科植物)和J組(可可和雷蒙德氏棉)中P5CR長(zhǎng)度最大(>6 000 bp),大多數(shù)組群中P5CR的長(zhǎng)度都保持在4 000 bp左右,差異不顯著(圖3)。結(jié)果表明,P5CR在各物種之間非常保守,且是單基因起源的。
表2 本研究中鑒定到的P5CR
續(xù)表
在少數(shù)物種中P5CR仍發(fā)生了2-3次重復(fù),并可以將它們歸納成3種進(jìn)化模式。模式I:種內(nèi)進(jìn)化模式,即只在兩近緣物種中的某一物種發(fā)生重復(fù)。例如,大豆和菜豆都屬于豆科植物,親緣關(guān)系較近,大豆中有2個(gè)P5CR(GmP5CR1和GmP5CR2),而菜豆中只有1個(gè)P5CR(PvP5CR),且它們聚類(lèi)在一起(圖2-L);模式Ⅱ:種間進(jìn)化模式,即在兩近緣物種中均發(fā)生重復(fù)。例如,卷心菜和白菜型油菜都屬于蕓苔屬植物,親緣關(guān)系較近,卷心菜和白菜型油菜中均有2個(gè)P5CR,且卷心菜BoP5CR1和BoP5CR2分別和白菜型油菜BrP5CR1和BrP5CR2聚類(lèi)在一起(圖2-D);模式Ⅲ:種間與種內(nèi)進(jìn)化模式共存。巴旦木和蘋(píng)果親緣關(guān)系較近,本研究發(fā)現(xiàn)巴旦木PpeP5CR1和蘋(píng)果MdP5CR1、MdP5CR3聚類(lèi)在一起(圖2-C),而巴旦木PpeP5CR2和蘋(píng)果MdP5CR2聚類(lèi)在一起(圖2-H)。以上結(jié)果表明,P5CR呈現(xiàn)多樣性的進(jìn)化模式。
采用qRT-PCR方法檢測(cè)MeP5CR在木薯不同組織中的表達(dá)情況。結(jié)果(圖4)表明,MeP5CR在葉片、須根和儲(chǔ)藏根中表達(dá)量最高,且三者之間的表達(dá)量無(wú)顯著差異;MeP5CR在葉柄和莖中的表達(dá)量最低,僅是葉片中表達(dá)量的48%和51%。說(shuō)明MeP5CR主要是在木薯葉片、須根和儲(chǔ)藏根中起作用。
采用qRT-PCR方法在木薯不同葉片(如第一片完全展開(kāi)葉、未展開(kāi)葉及老葉)和根中,分別檢測(cè)MeP5CR對(duì)干旱(PEG模擬)和低溫脅迫的響應(yīng)情況。在PEG脅迫條件下,在老葉中MeP5CR呈現(xiàn)先不變后下降的變化趨勢(shì),在24 h其表達(dá)量顯著下降約36%;在第一片完全展開(kāi)葉MeP5CR呈現(xiàn)先下降后上升的變化趨勢(shì),在3 h和24 h其表達(dá)量分別下降20%和提高1.3倍;在未展開(kāi)葉和根中,MeP5CR呈現(xiàn)持續(xù)下降的變化趨勢(shì),在24 h其表達(dá)量分別下降23%和9%(圖5-A)。
在低溫脅迫條件下,在未展開(kāi)葉中MeP5CR的表達(dá)量呈現(xiàn)先上升后下降的變化趨勢(shì),在6 h其表達(dá)量提高3.7倍,在24 h其表達(dá)量又回復(fù)到初始水平;在根中MeP5CR的表達(dá)量也呈現(xiàn)先上升后下降的變化趨勢(shì),在6 h和24 h其表達(dá)量分別提高1.9倍和下降59%;在第一片完全展開(kāi)葉中,MeP5CR的表達(dá)量呈現(xiàn)持續(xù)上升的變化趨勢(shì),在6和24 h其表達(dá)量分別提高3.4倍和5.9倍(圖5-B)。
綜上所述,MeP5CR在轉(zhuǎn)錄水平參與木薯干旱和低溫脅迫響應(yīng)。
圖2 植物中P5CR的進(jìn)化樹(shù)分析
圖3 不同組群中P5CR長(zhǎng)度的變化
圖4 MeP5CR在不同組織中的表達(dá)
P5CR屬于看家基因,在大多數(shù)植物中有且僅有1個(gè)拷貝[10]。盡管目前已陸續(xù)從擬南芥、水稻、黑麥草、木薯等植物中克隆了P5CR[6,14,17],但這些研究?jī)H關(guān)注于少數(shù)幾個(gè)物種的P5CR親緣關(guān)系,無(wú)法全面系統(tǒng)地了解P5CR的進(jìn)化歷史。本研究采用生物信息學(xué)方法,從已經(jīng)完成基因組測(cè)序的45個(gè)植物中共鑒定出54條P5CR序列,并考察了它們?cè)诓煌参镏械姆植记闆r(圖1)。結(jié)果表明,在主要農(nóng)作物(水稻、玉米、小米、高粱)和模式植物擬南芥中都僅有1個(gè)P5CR,與前人研究結(jié)果一致[10]。在木薯中也只有1個(gè)P5CR成員。與前人報(bào)道不同的是,本研究發(fā)現(xiàn)至少在8種植物(包括蘋(píng)果、柳枝稷、卷心菜、白菜型油菜、落地生根、巴旦木、亞麻、大豆)中存在2-3個(gè)P5CR(圖1),暗示P5CR在這些植物中存在不一樣的進(jìn)化過(guò)程。序列特征分析表明,各植物中P5CR的氨基酸長(zhǎng)度、分子量大小、和外顯子數(shù)目相差不大,但基因長(zhǎng)度的變化幅度非常大。進(jìn)一步分析表明,基因長(zhǎng)度的變化主要是由內(nèi)含子長(zhǎng)度的變化引起的,且這種變化與物種進(jìn)化的關(guān)系非常密切(圖3)。
圖5 MeP5CR對(duì)干旱和低溫脅迫的響應(yīng)
聚類(lèi)分析表明,各物種中P5CR的親緣關(guān)系與物種之間的進(jìn)化關(guān)系呈現(xiàn)很好的一致性。而且,無(wú)論是在低等藻類(lèi)蘚類(lèi)植物中,還是在高等單子葉和雙子葉植物中,大多數(shù)物種有且僅有1個(gè)P5CR,與前人研究結(jié)果一致[10]。說(shuō)明P5CR是單基因起源的,且在各物種之間非常保守。盡管如此,仍有少數(shù)物種中的P5CR發(fā)生了2-3次重復(fù):這些重復(fù)或只發(fā)生在某一物種內(nèi)部,如P5CR基因在大豆(GmP5CR1和GmP5CR2)中發(fā)生了一次重復(fù),但在菜豆中沒(méi)有發(fā)生重復(fù);或發(fā)生在某兩近緣物種分化之前,并在分化之后繼續(xù)保留在兩近緣物種中,如卷心菜BoP5CR1和BoP5CR2和白菜型油菜BrP5CR1和BrP5CR2;或以上2種情況同時(shí)發(fā)生,如巴旦木和蘋(píng)果中的P5CR基因(圖2):產(chǎn)生這種結(jié)果的最大可能性是,在巴旦木和蘋(píng)果分化之前,P5CR基因發(fā)生一次重復(fù),使得巴旦木和蘋(píng)果中分別保留有2個(gè)P5CR基因(PpeP5CR1和PpeP5CR2,和MdP5CR1和MdP5CR2);在巴旦木和蘋(píng)果分化之后,巴旦木中的P5CR基因維持不變,而蘋(píng)果中的P5CR基因再次發(fā)生一次重復(fù)(如MdP5CR1發(fā)生重復(fù)獲得MdP5CR3)。這一推測(cè)從基因組結(jié)構(gòu)分析上也得到了驗(yàn)證:PpeP5CR1和PpeP5CR2、MdP5CR1和MdP5CR2在染色體上分別成串聯(lián)重復(fù)排列,且相互之間具有共線性。值得強(qiáng)調(diào)的是,本研究并沒(méi)有發(fā)現(xiàn)在某一植物不存在P5CR,這可能是因?yàn)镻5CR丟失后會(huì)引起植株致死[8]。以上結(jié)果比較系統(tǒng)地闡述了P5CR在植物中的進(jìn)化方式,為進(jìn)一步研究其在不同物種中的功能奠定基礎(chǔ)。
P5CR在不同植物中非常保守,暗示它們可能具有相同的功能,在基因表達(dá)水平上通常表現(xiàn)為相同的表達(dá)模式。擬南芥中AtP5CR在莖中的表達(dá)量最低,而在根中表達(dá)量最高[11];木薯中MeP5CR也表現(xiàn)出相同的表達(dá)模式,支持“根是脯氨酸生物合成的主要場(chǎng)所,而莖則主要是負(fù)責(zé)脯氨酸的運(yùn)輸”的結(jié)論[11]。研究表明,P5CR的表達(dá)還受到干旱、低溫、鹽和ABA等處理的誘導(dǎo)。例如,在低溫脅迫條件下,AtP5CR的表達(dá)量上升了約3倍[12];在鹽、PEG、低溫和ABA處理?xiàng)l件下,LpP5CR的表達(dá)量被誘導(dǎo)了約2-4倍[14]。本研究發(fā)現(xiàn),在低溫脅迫條件下,MeP5CR的表達(dá)量在未展開(kāi)葉、第一片完全展開(kāi)葉、和根中分別上升了3.7倍、5.9倍和1.9倍;然而,在干旱條件下,MeP5CR的表達(dá)量卻被顯著的抑制了,暗示不同植物中P5CR對(duì)同一脅迫的響應(yīng)可能是不一樣的。本研究結(jié)果將有助于深入了解P5CR在不同植物中的進(jìn)化模式,同時(shí)也為進(jìn)一步研究MeP5CR在木薯干旱和低溫等逆境脅迫中的功能奠定基礎(chǔ)。
在不同植物中,P5CR內(nèi)含子長(zhǎng)度差別較大,而在氨基酸長(zhǎng)度、外顯子數(shù)目、等電點(diǎn)和分子量方面差別不大。在大多數(shù)植物(如木薯)中,P5CR有且僅有1個(gè)拷貝,在進(jìn)化上比較保守;而在某些植物(如大豆、蘋(píng)果等)中有2-3個(gè)拷貝,并將其進(jìn)化方式歸納為3種模式。木薯MeP5CR在葉片、須根和儲(chǔ)藏根中表達(dá)量最高,而在葉柄和莖中的表達(dá)量最低。此外,MeP5CR表達(dá)量受到低溫脅迫誘導(dǎo)、但被干旱脅迫抑制。
[1] Lokko Y, Anderson JV, et al.Characterization of an 18, 166 EST dataset for cassava(Manihot esculentaCrantz)enriched for droughtresponsive genes[J]. Plant Cell Rep, 2007, 26(9):1605-1618.
[2] Okogbenin E, Setter TL, Ferguson M, et al.Phenotypic approaches to drought in cassava:review[J]. Frontiers in Physiology, 2013,4(1):93.
[3] 盧賽清, 盤(pán)歡, 馬崇熙, 等. 2008年廣西木薯低溫凍害情況及應(yīng)對(duì)措施[J]. 廣西熱帶農(nóng)業(yè), 2009, 1(1):21-22.
[4] 顏志明, 孫錦, 郭世榮. 外源脯氨酸對(duì)NaCl脅迫下甜瓜幼苗生長(zhǎng)和活性氧物質(zhì)代謝的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2011, 27(1):141-145.
[5] 鄧?guó)P飛, 楊雙龍, 龔明. 外源ABA對(duì)低溫脅迫下小桐子幼苗脯氨酸積累及其代謝途徑的影響[J]. 植物生理學(xué)報(bào), 2015, 51(2):221-226.
[6] 付莉莉, 韓冰瑩, 譚德冠, 等. 木薯MeP5CS和MeP5CR基因克隆及其干旱脅迫下的表達(dá)分析[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學(xué), 2016, 55(15):4024-4028.
[7] Claussen W. Proline as a measure of stress in tomato plants[J].Plant Science, 2005, 168(1):241-248.
[8] Funck D, Winter G, Baumgarten L, et al.Requirement of proline synthesis duringArabidopsisreproductive development[J]. BMC Plant Biology, 2012, 12(1):191.
[9] Ma L, Zhou E, Gao L, et al.Isolation, expression analysis and chromosomal location of P5CR gene in common wheat(Triticum aestivumL.)[J]. South African Journal of Botany, 2008, 74(4):705-712.
[10] Forlani G, Makarova KS, Ruszkowski M, et al.Evolution of plant δ1-pyrroline-5-carboxylate reductases from phylogenetic and structural perspectives[J]. Front Plant Sci, 2015, 6(1):567.
[11] Hua XJ, van de CB, Montagu MV, et al.Developmental regulation of pyrroline-5-carboxylate reductase gene expression inArabidopsis[J]. Plant Physiol, 1997, 114(4):1215-1224.
[12] Xue Y, Peng R, Xiong A, et al.Yeast heat-shock protein gene HSP26 enhances freezing tolerance inArabidopsis[J]. Journal of Plant Physiology, 2009, 166(8):844.
[13] Yoshiba Y, Kiyosue T, Katagiri T, et al.Correlation between the induction of a gene for delta 1-pyrroline-5-carboxylate synthetase and the accumulation of proline inArabidopsis thalianaunder osmotic stress[J]. Plant J, 1995, 7(5):751-760.
[14] Cao L, Wei S, Han L, et al.Gene cloning and expression of the pyrroline-5-carboxylate reductase gene of perennial ryegrass(Lolium perenne)[J]. Horticultural Plant Journal, 2015, 1(2):113-120.
[15] 丁澤紅, 付莉莉, 鐵韋韋, 等. 木薯MeHB2轉(zhuǎn)錄因子的克隆與表達(dá)分析[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 2016, 36(8):1522-1527.
[16] Miller G, Honig A, Stein H, et al.Unraveling Δ1-pyrroline-5-carboxylate-proline cycle in plants by uncoupled expression of proline oxidation enzymes[J]. J Biol Chem, 2009, 284(39):26482-26492.
[17] Sripinyowanich S, Klomsakul P, Boonburapong B, et al.Exogenous ABA induces salt tolerance in indica rice(Oryza sativaL.):The role of OsP5CS1 and OsP5CR gene expression during salt stress[J]. Environmental and Experimental Botany, 2013, 86(2):94-105.