劉 洋 劉永亮 葛勝祥
(廈門大學(xué)分子疫苗學(xué)與分子診斷學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,國家傳染病診斷試劑與疫苗工程技術(shù)中心,公共衛(wèi)生學(xué)院,廈門 361102)
1957年,干擾素(Interferon,IFN)作為一種可抑制流感病毒復(fù)制的物質(zhì)首次被發(fā)現(xiàn)[1],其介導(dǎo)的反應(yīng)是機(jī)體抗病毒感染的第一道天然免疫防線。干擾素具有抗病毒、抗菌、抗寄生蟲及免疫調(diào)節(jié)等多重功能,目前臨床上干擾素主要用于治療病毒性肝炎及惡性腫瘤和多發(fā)性硬化癥等自身免疫病[2]。IFN被誘導(dǎo)產(chǎn)生后,通過與靶細(xì)胞受體結(jié)合,經(jīng)一系列信號(hào)傳導(dǎo)激活干擾素刺激基因(Interferon stimulated genes,ISGs)的表達(dá),ISGs及其表達(dá)產(chǎn)物一方面直接或間接發(fā)揮抗病毒等功能,同時(shí)也可作為效應(yīng)因子反過來調(diào)節(jié)干擾素信號(hào)通路(正向或負(fù)向調(diào)控)發(fā)揮免疫調(diào)節(jié)功能。
1.1干擾素受體及其信號(hào)通路 根據(jù)受體類型干擾素家族可分為Ⅰ型干擾素(TypeⅠInterferon,IFN-Ⅰ)、Ⅱ型干擾素(Type Ⅱ Interferon,IFN-Ⅱ) 和Ⅲ型干擾素(Type Ⅲ Interferon,IFN-Ⅲ)。IFN-Ⅰ主要包括IFN-α、-β、-ω、-ε、-κ、其受體為IFNAR-1和IFNAR-2兩個(gè)亞基。IFN-Ⅱ包括IFN-γ,受體為IFNGR1/2兩個(gè)亞基。IFN-Ⅲ于2003年首次發(fā)現(xiàn)報(bào)道,包括IFNL1、IFNL2和IFNL3(也稱IL-29、IL-28A和IL-28B),隨后又發(fā)現(xiàn)了新成員IFNL4,IFN-Ⅲ受體包括IFNLR1和IL-10R2[3]。
干擾素主要通過激活JAK-STAT信號(hào)通路進(jìn)而刺激ISGs的轉(zhuǎn)錄生成,JAK-STAT信號(hào)通路由一種酪氨酸激酶(Janus kinase,JAK)和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)及轉(zhuǎn)錄激活因子(Signal transducer and activator of transcription,STAT)組成[4]。
1.2干擾素信號(hào)通路激活I(lǐng)SGs 研究表明,IFN-Ⅰ和IFN-Ⅲ分別與其受體IFNAR1、IFNAR2和IL-10R2、IFNLR1結(jié)合后,其各自受體上的酪氨酸激酶2(Tyrosine kinase 2,TyK-2)與Janus激酶-1(Janus kinase 1,JAK1)相互靠近結(jié)合發(fā)生磷酸化而被激活,隨后進(jìn)一步活化信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)及轉(zhuǎn)錄激活因子(Signal transducer and activator of transcription)STAT1、STAT2,被磷酸化的STAT1和STAT2與干擾素調(diào)節(jié)因子9(IFN-regulatory factor 9,IRF-9)結(jié)合形成異源三聚體——干擾素調(diào)節(jié)因子3(IFN stimulated gene factor 3,ISGF3),ISGF3 入核與干擾素刺激基因調(diào)節(jié)元件(Interferon stimulated gene regulatory element,ISRE)結(jié)合,激活I(lǐng)SGs轉(zhuǎn)錄。
IFN-Ⅱ受體IFNGR-1、IFNGR-2的胞內(nèi)域分別與Jak1和Jak2激酶結(jié)合,激活Jak1、Jak2,并磷酸化STAT1、STAT2,隨后活化形成同源二聚體GAF(IFN-γ-activated factor),并入核與GAS(IFN-γ-activated sequence)結(jié)合,誘導(dǎo)ISGs轉(zhuǎn)錄(圖1)[5,6]。
1.3病毒感染誘導(dǎo)ISGs轉(zhuǎn)錄 除了經(jīng)典的ISGs誘導(dǎo)產(chǎn)生機(jī)制,即干擾素通過激活下游Jak-STAT信號(hào)通路繼而誘導(dǎo)ISGs轉(zhuǎn)錄外,還有一些ISGs可在無干擾素存在的情況下,直接由病毒感染而誘導(dǎo)生成,這可能是機(jī)體為了在干擾素誘導(dǎo)的免疫應(yīng)答受到限制時(shí)依然可以對(duì)抗感染的一種策略[7]。
ISGs具有多重生物學(xué)功能,一方面IFN誘導(dǎo)產(chǎn)生的ISGs及其表達(dá)產(chǎn)物具有廣泛的抗病毒效應(yīng),同時(shí)ISGs可以正向增強(qiáng)或者負(fù)向調(diào)控IFN介導(dǎo)的病原體識(shí)別及固有免疫應(yīng)答。
圖1 干擾素信號(hào)通路激活I(lǐng)SGsFig.1 Induction of ISGs via interferon (IFN)-signa-ling cascade
2.1干擾素刺激基因(ISGs)的抗病毒功能 病毒侵染細(xì)胞必須經(jīng)歷入胞、轉(zhuǎn)錄、復(fù)制以及出胞,從而感染新的細(xì)胞。ISGs在病毒生命周期的每個(gè)階段均可發(fā)揮其抗病毒功能。
2.1.1抑制病毒入胞 抗黏液病毒1蛋白(The murine myxovirus resistance 1,Mx1)是最早發(fā)現(xiàn)的抑制病毒入胞的效應(yīng)分子,其表達(dá)嚴(yán)格依賴IFN-Ⅰ和IFN-Ⅲ。Mx有一個(gè)大的N端GTPase結(jié)構(gòu)域、一個(gè)CID結(jié)構(gòu)域和C端LZ結(jié)構(gòu)域,病毒入侵機(jī)體后激發(fā)干擾素應(yīng)答,而MX1基因由干擾素刺激應(yīng)答元件(IFN-stimulated response element ,ISRE)誘導(dǎo)表達(dá),隨后其CID和LZ結(jié)構(gòu)域可識(shí)別并結(jié)合病毒類似核衣殼的結(jié)構(gòu),捕獲病毒關(guān)鍵元件并使其降解,從而在早期阻止病毒的復(fù)制[8]。Mx2近期也被發(fā)現(xiàn)可以抑制HIV-Ⅰ的核輸入過程[9]。
膽固醇-25-羥化酶(Cholesterol-25-hydroxylase,CH25H)也可在病毒感染的早期發(fā)揮抗病毒作用,當(dāng)病毒入侵時(shí),IFN-Ⅰ和IFN-Ⅱ通過其介導(dǎo)的Jak-STAT通路正向調(diào)控CH25H在宿主細(xì)胞中的表達(dá)。CH25H可以將膽固醇轉(zhuǎn)化為羥基膽甾醇(25HC),而25HC可通過阻斷病毒和宿主細(xì)胞間的膜融合過程影響病毒入胞[10]。干擾素誘導(dǎo)的跨膜(IFN-inducible transmembrane,IFITM)蛋白家族在病毒感染后,由IFN誘導(dǎo)的Jak-STAT信號(hào)通路刺激而表達(dá)上調(diào),隨后IFITM蛋白家族通過抑制病毒與宿主細(xì)胞膜的融合,抑制病毒內(nèi)吞入胞,從而抑制病毒復(fù)制過程,具有廣譜的抗病毒作用[11]。
TRIM蛋白家族,即三結(jié)構(gòu)域(The tripartite motif ,TRIM)蛋白家族,同樣屬于病毒感染初期抑制物。對(duì)人類及小鼠TRIM家族表達(dá)模式分析,發(fā)現(xiàn)該家族中多數(shù)基因如TRIM5、TRIM19、TRIM22和TRIM25等受IFN誘導(dǎo)表達(dá)上調(diào),且小鼠的一些TRIM家族基因表達(dá)依賴于IFN-Ⅰ誘導(dǎo)。當(dāng)病毒入侵后,被激活的干擾素應(yīng)答通路將誘導(dǎo)及上調(diào)TRIM蛋白的表達(dá)。其中TRIM5α入胞后可直接結(jié)合在病毒衣殼蛋白,抑制病毒RNA脫殼[12]。TRIM家族另一成員TRIM22則可以抑制HIV-Ⅰ的Gag蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)至宿主細(xì)胞質(zhì)膜,減少病毒顆粒生成[13]。
2.1.2抑制病毒轉(zhuǎn)錄、復(fù)制 病毒依賴宿主核糖體進(jìn)行蛋白合成,眾多ISGs通過抑制病毒入胞后的轉(zhuǎn)錄和翻譯發(fā)揮抗病毒效應(yīng)。
人體2′-5′寡聚腺苷酸合成酶(2′-5′oligoadenylates synthesis,OAS)家族有4個(gè)成員OAS1、OAS2、OAS3、OAS-L。當(dāng)病毒入胞開始復(fù)制時(shí),無活性的2′-5′OAS單體被病毒dsRNA激活,隨后以ATP為底物,催化合成大量以2′-5′磷酸二酯鍵相連接的寡聚腺苷酸片段,即2-5A,2-5A使無活性的RNase L單體分子活化為二聚體形式,激活后的RNase L通過剪切病毒3′端的-Up-Xp-序列,使病毒dsRNA降解,抑制病毒復(fù)制起到抗病毒的作用[14,15]。
PKR(Protein kinase R)是一種雙鏈RNA依賴性蛋白激酶,由IFN-Ⅰ和IFN-Ⅲ誘導(dǎo)高表達(dá),被病毒dsRNA等激活后,使其發(fā)生自我磷酸化,而活化的PKR進(jìn)一步促進(jìn)IFN 的產(chǎn)生。隨后PKR通過磷酸化真核細(xì)胞翻譯起始因子2α( EIF2α),阻止GDP的交換循環(huán),抑制病毒翻譯[16]。
由圖2可知,感官評(píng)分隨著十三香濃度的增大呈先增大后減小的趨勢(shì),在3 g時(shí)感官評(píng)分達(dá)到最大值,隨后迅速下降。究其原因可能是十三香添加量過低,“貢椒魚”火鍋的風(fēng)味沒有層次感;十三香的濃度較高時(shí),丁香、八角、砂仁、白芷等香料的苦味溶出,從而對(duì)“貢椒魚”火鍋的風(fēng)味產(chǎn)生不利的影響。所以,十三香添加量控制在 2~4 g 之間,此時(shí)“貢椒魚”火鍋的風(fēng)味最好。
除了抑制轉(zhuǎn)錄翻譯,ISGs還可通過其介導(dǎo)的蛋白翻譯后修飾發(fā)揮抗病毒功能。其中干擾素刺激基因15(Interferon-stimulated gene 15,ISG15)在被干擾素誘導(dǎo)的E1、E2、E3 泛素連接酶(interferon -inducible E1,E2,and E3 ubiquitinligases)活化后,可以共價(jià)結(jié)合病毒和宿主蛋白等靶蛋白進(jìn)行類泛素化修飾,從而影響病毒的復(fù)制與感染[17]。
2.1.3抑制病毒出胞 蝰蛇毒素(Viperin),也叫S-腺苷甲硫氨酸基區(qū)域蛋白2(Radical S-adenosyl methionine domain 2,RSAD2),可被Jak-STAT通路誘導(dǎo)和IRF1/3直接激活表達(dá),其對(duì)多種包膜病毒具有抑制作用,例如可通過抑制類異戊二烯生物合成中的法呢基焦磷酸合酶(Farnesyl diphosphate synthase,F(xiàn)PPS )來抑制HIV-1和甲型流感病毒等在宿主細(xì)胞膜上的出芽,從而對(duì)抗病毒感染[18,19]。
骨髓基質(zhì)細(xì)胞抗原2(Tetherin)是IFN-Ⅰ誘導(dǎo)產(chǎn)生的Ⅱ型跨膜蛋白,其具有特殊的拓?fù)浣Y(jié)構(gòu),在病毒出芽過程中通過細(xì)胞質(zhì)膜上的兩個(gè)穿膜區(qū)捕獲病毒粒子來抑制病毒的有效釋放,對(duì)眾多包膜病毒具有抑制作用[20]。
2.2干擾素刺激基因(ISGs)介導(dǎo)的免疫調(diào)控 干擾素刺激基因除具有廣泛抗病毒作用外,還可以正向調(diào)控IFN誘導(dǎo)的固有免疫應(yīng)答信號(hào),增強(qiáng)機(jī)體細(xì)胞的病原體識(shí)別檢測(cè)能力,同時(shí)一些ISGs(如SOCS、USP18)還可負(fù)向調(diào)控IFN信號(hào)通路。
2.2.1正向調(diào)控IFN免疫應(yīng)答 機(jī)體內(nèi)眾多模式識(shí)別受體(Pattern-recognition receptor,PRR)、干擾素調(diào)控因子(IFN-regulatory factor,IRF)和其他信號(hào)傳導(dǎo)蛋白如PKR、維甲酸誘導(dǎo)基因1(Retinoic acid-inducible gene 1,RIG-Ⅰ)等的基線含量處于較低水平,干擾素可以刺激這些ISGs的高表達(dá),增強(qiáng)機(jī)體的病原識(shí)別和檢測(cè)能力,同時(shí)這些ISGs可以重新加強(qiáng)IFN的免疫應(yīng)答信號(hào)。常見的具有正調(diào)控功能的ISGs包括STAT1/2、維甲酸誘導(dǎo)基因Ⅰ樣受體家族(RIG-Ⅰ-like receptors ,RLRs)、循環(huán)GMP-AMP合成酶(cyclic GMP-AMP synthase,cGAS)、OAS/RNaseL、PKR、Viperin、IRF3,7,9、IRF1等[6]。
2.2.2負(fù)向調(diào)控IFN免疫應(yīng)答 一些ISGs通過抑制干擾素介導(dǎo)的Jak-STAT信號(hào)通路負(fù)向調(diào)控干擾素免疫應(yīng)答。
泛素特異性蛋白酶18(USP18/UBP43)是泛素特異性蛋白酶家族成員之一,USP18能特異性的從ISGlation的蛋白結(jié)合物中移除干擾素刺激基因15(ISG15),并進(jìn)一步水解ISG15[22]。USP18通過與IFNAR2 亞基結(jié)合,抑制JAK1與IFNAR2結(jié)合,進(jìn)而抑制IFN-Ⅰ誘導(dǎo)的Jak-STAT信號(hào)通路[23]。
干擾素具有抗病毒、抗菌、抗寄生蟲及免疫調(diào)節(jié)等多重功能,目前臨床上主要用于治療病毒性肝炎及惡性腫瘤和多發(fā)性硬化癥等。研究發(fā)現(xiàn)ISGs的表達(dá)、活性等與IFN的臨床治療有顯著關(guān)聯(lián),具有重要臨床意義和潛在臨床應(yīng)用價(jià)值。
3.1ISGs的表達(dá)在病毒性肝炎治療中的臨床意義 IFN-α是目前治療乙型、丙型肝炎的首選藥物之一,已有研究發(fā)現(xiàn)ISGs可作為IFN刺激后產(chǎn)生的效應(yīng)因子直接發(fā)揮抗病毒作用,如MxA、OAS、PKR等[16,24,25]。
此外臨床上慢性乙型肝炎和慢性丙型肝炎患者的IFN-α治療持續(xù)應(yīng)答率分別為30%和50%左右,研究表明某些ISGs的表達(dá)對(duì)于預(yù)測(cè)干擾素治療效果也具有重要意義,Kim等[26]和Shindo等[27]研究了丙型肝炎患者在使用干擾素治療前后的OAS活性變化,結(jié)果都表明在治療有效組用藥后OAS活性有顯著升高。相反,Xiao等[28]利用芯片技術(shù)對(duì)13例慢性乙型肝炎患者IFN-α治療前的肝組織進(jìn)行了基因譜的差異研究,發(fā)現(xiàn)應(yīng)答組和無應(yīng)答組肝細(xì)胞有3 592個(gè)基因有明顯差異表達(dá),其中無應(yīng)答組中,干擾素刺激基因USP18、CEB1、ISG20等在治療前高表達(dá),Chen等[29]應(yīng)用 RT-PCR技術(shù)檢測(cè)干擾素治療丙型肝炎應(yīng)答組和無應(yīng)答組肝組織中基因水平的差異表達(dá),同樣發(fā)現(xiàn)USP18等ISGs在無應(yīng)答組中顯著上調(diào)。
最新研究發(fā)現(xiàn),在體外穩(wěn)定轉(zhuǎn)染HBV的細(xì)胞模型中,抑制USP18表達(dá)會(huì)增強(qiáng)IFN-α的抗HBV能力[30];相反,過表達(dá)ISG15會(huì)刺激HBV的DNA產(chǎn)生,這可能比較合理的解釋了HBV持續(xù)感染和IFN-α治療不應(yīng)答的現(xiàn)象,同時(shí)也為IFN-α治療HBV提供了一個(gè)可能的療效預(yù)測(cè)指標(biāo)和HBV抗病毒治療的一個(gè)潛在靶點(diǎn)[31]。
以上研究一方面闡明了ISGs在臨床治療病毒性肝炎時(shí)所發(fā)揮的抗病毒功能,同時(shí)也提示ISGs表達(dá)水平及活性可能用于IFN抗病毒治療效果的預(yù)測(cè)。
3.2ISGs的表達(dá)在自身免疫疾病診療中的意義 自身免疫疾病主要由機(jī)體免疫系統(tǒng)紊亂引起,病因復(fù)雜,病程遷延不愈,嚴(yán)重危害患者健康,準(zhǔn)確的診療對(duì)疾病控制和治愈格外重要。IFN-Ⅰ在免疫失調(diào)導(dǎo)致的自身免疫疾病的發(fā)生發(fā)展進(jìn)程中扮演重要角色,眾多針對(duì)干擾素信號(hào)通路的自身免疫疾病治療藥物的開發(fā)正處于臨床實(shí)驗(yàn)階段[32]。而基于IFN對(duì)ISGs的誘導(dǎo)刺激作用以及ISGs對(duì)IFN免疫應(yīng)答的調(diào)控功能,眾多研究發(fā)現(xiàn)ISGs的表達(dá)與自身免疫疾病也具有密切關(guān)聯(lián)性。
系統(tǒng)性紅斑狼瘡(Systemic lupus erythematosus,SLE)的實(shí)驗(yàn)室診斷和病情判斷主要依賴于抗核抗體、抗雙鏈DNA(dsDNA)、抗Sm、抗磷脂抗體等自身抗體,但這些自身抗體存在敏感性或特異性差的缺陷,大大限制其臨床應(yīng)用價(jià)值。研究發(fā)現(xiàn),SLE患者體內(nèi)OAS家族尤其是OAS2的表達(dá)水平明顯高于健康人群和非SLE的自身免疫病患者[33];同樣ISG15也被發(fā)現(xiàn)在SLE患者體內(nèi)特異性高表達(dá),并且與患者治療前病情活動(dòng)度相關(guān),ROC曲線分析顯示ISG15可能作為有效診斷SLE的一種新靶標(biāo)[34]。
同樣在皮肌炎(Dermatomyositis,DM)、多發(fā)性硬化癥(Multiple sclerosis,MS)研究中,相對(duì)于正常組和對(duì)照組,ISG15、USP18在患者體內(nèi)特異性表達(dá)[35,36]。此外在類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎(Rheumatoid arthritis,RA)患者滑膜組織中發(fā)現(xiàn)ISG20特異性表達(dá)[37]。
臨床上IFN-β用于多重性硬化癥的治療,但伴有較多臨床副反應(yīng),且只有部分患者治療后有應(yīng)答,而有研究發(fā)現(xiàn)包括RSAD2、IFIT1在內(nèi)的28種ISGs基線表達(dá)水平與IFN-β的應(yīng)答水平呈現(xiàn)負(fù)相關(guān)[38]。
以上研究均表明ISGs可能作為臨床上自身免疫疾病發(fā)病診斷及療效預(yù)測(cè)的新靶標(biāo)。
3.3ISGs的表達(dá)與腫瘤的關(guān)系 研究表明,免疫系統(tǒng)的失能對(duì)惡性腫瘤的生長和轉(zhuǎn)移具有重要影響,不斷生長的腫瘤獲得逃避免疫識(shí)別和免疫殺傷的能力[39],IFN能通過直接作用于腫瘤細(xì)胞本身,或間接影響抗腫瘤免疫反應(yīng)來發(fā)揮抗腫瘤活性[40],而ISGs對(duì)于IFN的重要免疫調(diào)控作用提示其與腫瘤的發(fā)生發(fā)展進(jìn)程也具有重要關(guān)聯(lián)。研究發(fā)現(xiàn)敲除USP18可以抑制急性早幼粒細(xì)胞白血病(APL)發(fā)生發(fā)展進(jìn)程中重要轉(zhuǎn)錄因子——PML/RARα的表達(dá),從而抑制腫瘤細(xì)胞生長[41];體外實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)抑制USP18表達(dá)可以減少細(xì)胞周期蛋白D1(Cyclin D1)的表達(dá),從而促進(jìn)肺癌細(xì)胞凋亡[42];此外USP18缺陷的乳腺上皮細(xì)胞可以產(chǎn)生抗腫瘤環(huán)境[43]。在多種腫瘤的發(fā)生發(fā)展進(jìn)程中,表皮生長因子受體(Epidermal growth factor receptor,EGFR)具有促進(jìn)作用,敲除USP18可以使EGFR表達(dá)調(diào)控因子MiR-7的水平上調(diào),而導(dǎo)致EGFR的表達(dá)受到抑制,繼而抑制腫瘤細(xì)胞增殖,促進(jìn)腫瘤細(xì)胞凋亡[44]。另有研究表明一些干擾素刺激基因如OAS家族等,在對(duì)抗腫瘤發(fā)生發(fā)展進(jìn)程中有重要作用,其表達(dá)水平與腫瘤細(xì)胞的生長、凋亡具有重要關(guān)聯(lián)[45],如最新研究發(fā)現(xiàn)OAS家族成員OAS1的表達(dá)與前列腺癌、乳腺癌的發(fā)展進(jìn)程呈負(fù)相關(guān)[46]。
以上研究提示,ISGs在腫瘤的發(fā)生發(fā)展進(jìn)程中具有重要作用,為我們發(fā)現(xiàn)臨床上腫瘤診療的新靶點(diǎn)提供了思路。
從干擾素刺激基因(ISGs)最初發(fā)現(xiàn)到現(xiàn)在其種類已經(jīng)有數(shù)百種,無論是在抗病毒還是免疫調(diào)節(jié)方面都顯示出其重要的生物學(xué)功能和潛在的臨床意義,因而有必要對(duì)其進(jìn)行更深一步的探究。同時(shí)新的研究手段的應(yīng)用如基因編輯、下一代測(cè)序(Next generation sequencing,NGS)等將會(huì)有助于我們對(duì)ISGs的功能和作用機(jī)制有更精準(zhǔn)的認(rèn)識(shí),同時(shí)在臨床上相關(guān)疾病的個(gè)性化診治上也將發(fā)揮更加廣泛的應(yīng)用;此外,除了目前在基因組學(xué)、轉(zhuǎn)錄組學(xué)水平進(jìn)行研究外,還可以綜合蛋白質(zhì)組學(xué)乃至代謝組學(xué)水平的研究,應(yīng)用系統(tǒng)生物學(xué)的方法,對(duì)干擾素刺激基因作用機(jī)制和生物學(xué)功能進(jìn)行更系統(tǒng)全面的描述。
[1] Isaacs A,Lindenmann J.Pillars article:virus interference.I.The interferon.Proc R Soc Lond B Biol Sci.1957.147:258-267[J].J Immunol,2015,195(5):1911-1920.
[2] Sj?strand,Maria.The role of interferon-regulated genes in the immune system.[J/OL].Solna:Karolinska Institutet,2017.https://openarchive.ki.se/xmlui/handle/10616/45465.
[3] Hoffmann HH,Schneider WM,Rice CM.Interferons and viruses:an evolutionary arms race of molecular interactions[J].Trends Immunol,2015,36(3):124.
[4] Stark GR,Jr DJ.The JAK-STAT pathway at twenty[J].Immunity,2012,36(4):503-514.
[5] Schneider WM,Chevillotte MD,Rice CM.Interferon-stimulated genes:a complex web of host defenses[J].Annual Rev Immunol,2014,32(1):513-545.
[6] Oon S,Wilson NJ,Wicks I.Targeted therapeutics in SLE:emerging strategies to modulate the interferon pathway[J].Clin Trans Immunol,2016,5(5):e79.
[7] Sen GC,Peters GA.Viral stress-inducible genes[J].Adv Virus Res,2007,70(70):233-263.
[8] Haller O,Staeheli P,Schwemmle M,etal.Mx GTPases:dynamin-like antiviral machines of innate immunity[J].Trends Microbiol,2015,23(3):154.
[9] Goujon C.MX2 and HIV-1 Restriction[M].New York:Springer,2015:1-8.
[10] Anggakusuma,Romerobrey I,Berger C,etal.Interferon-inducible cholesterol-25-hydroxylase restricts hepatitis C virus replication through blockage of membranous web formation[J].Hepatology,2015,62(3):702-714.
[11] Savidis G,Perreira JM,Portmann JM,etal.The IFITMs Inhibit Zika Virus Replication[J].Cell Rep,2016,15(11):2323.
[12] Stremlau M,Owens CM,Perron MJ,etal.The cytoplasmic body component TRIM5[alpha]restricts HIV-1 infection in Old World monkeys[J].Nature,2004,427(6977):848-853.
[13] Barr SD,Smiley JR,Bushman FD.The Interferon response inhibits HIV particle production by induction of TRIM22[J].PLoS Patho,2008,4(2):e1000007.
[14] Silverman RH.Viral encounters with 2′,5′-oligoadenylate synthetase and RNase L during the interferon antiviral response[J].J Virol,2007,81(23):12720-12729.
[15] Ibsen MS,Gad HH,Andersen LL,etal.Structural and functional analysis reveals that human OASL binds dsRNA to enhance RIG-I signaling[J].Nucleic Acids Res,2015,43(10):5236.
[16] 王愛華,管世鶴,楊 凱,等.干擾素誘導(dǎo)的雙鏈 RNA 依賴性蛋白激酶體外抗乙型肝炎病毒活性的研究[J].中國藥理學(xué)通報(bào),2015,31(9):1254-1258.
Wang AH,Guan SH,Yang K,etal.Study of IFN-inducible double-stranded RNA dependent protein kinase on antiviral activity of HBV in vitro[J].Chin Pharmacological Bullet,2015,31(9):1254-1258.
[17] Bianco C,Mohr I.Restriction of HCMV replication by ISG15,a host effector regulated by cGAS-STING dsDNA sensing[J].J Virol,2017,91(9):e0483.
[18] Nasr N,Maddocks S,Turville SG,etal.HIV-1 infection of human macrophages directly induces viperin which inhibits viral production[J].Blood,2012,120(4):778-788.
[19] 朱春輝,湯艷東,徐 方,等.抗病毒免疫因子Viperin的研究進(jìn)展[J].病毒學(xué)報(bào),2015,13(1):91-96.
Zhu CH,Tang YD,Xu F,etal.Progress in studies of Viperin, an important cellular antiviral factor[J].Chin J Virol, 2015,13(1):91-96.
[20] Liu Y,Luo S,He S,etal.Tetherin restricts HSV-2 release and is counteracted by multiple viral glycoproteins[J].Virology,2015,475:96-109.
[21] Piganis RA.Suppressor of cytokine signaling(SOCS)1 inhibits type I interferon(IFN)signaling via the interferon alpha receptor(IFNAR1)-associated tyrosine kinase Tyk2[J].Biol Chem,2011,28(39):33811-33818.
[22] Basters A,Geurink PP,Oualid FE,etal.Molecular characterization of ubiquitin-specific protease 18 reveals substrate specificity for interferon-stimulated gene 15[J].Febs J,2014,281(7):1918-1928.
[23] Macparland SA,Ma XZ,Chen L,etal.Lipopolysaccharide and tumor necrosis factor alpha inhibit interferon signaling in hepatocytes by increasing ubiquitin-like protease 18 (USP18) expression[J].J Virol,2016,90(12):5549-5560.
[24] Ning Li,Lei Zhang,Chen L,etal.MxA inhibits hepatitis B virus replication by interaction with hepatitis B core antigen[J].Hepatology,2012,56(3):803-811.
[25] Park IH,Kwon YC,Ryu WS,etal.Inhibition of hepatitis B virus replication by ligand-mediated activation of RNase L[J].Antiviral Res,2014,104(1):118-127.
[26] Kim KI,Kim SR,Sasase N,etal.2′-,5′-Oligoadenylate synthetase response ratio predicting virological response to PEG-interferon-alpha2b plus ribavirin therapy in patients with chronic hepatitis C[J].J Clin Pharm Therap,2006,31(5):441-446.
[27] Shindo M,Hamada K,Morikawa T,etal.In vivo interferon system assessed by 2′-5′ oligoadenylate synthetase activity in chronic hepatitis C virus patients treated with pegylated interferon and ribavirin[J].Hepatol Res Official J Japan Soc Hepatol,2008,38(12):1213-1220.
[28] Xiao C,Qin B,Chen L,etal.Preactivation of the interferon signalling in liver is correlated with nonresponse to interferon alpha therapy in patients chronically infected with hepatitis B virus[J].J Viral Hepatitis,2012,19(2):e1-e10.
[29] Chen L,Borozan I,Feld J,etal.Hepatic gene expression discri minates responders and nonresponders in treatment of chronic hepatitis C viral infection[J].Gastroenterology,2005,128(5):1437-1444.
[30] Li L,Lei QS,Zhang SJ,etal.Suppression of USP18 potentiates the anti-HBV activity of interferon alpha in HepG2.2.15 cells via JAK/STAT signaling[J].PLoS One,2016,11(5):e0156496.
[31] Li Y,Li S,Duan X,etal.Interferon-stimulated gene 15 conjugation stimulates hepatitis B virus production independent of type I interferon signaling pathway in vitro[J].Mediators Inflamm,2016,2016(6):7417648.
[32] Shereen O,Wilson NJ,Ian W.Targeted therapeutics in SLE:emerging strategies to modulate the interferon pathway:[J].Clin Trans Immunol,2016,5(5):e79.
[33] Grammatikos AP,Kyttaris VC,Kis-Toth K,etal.A T cell gene expression panel for the diagnosis and monitoring of disease activity in patients with systemic lupus erythematosus[J].Clin Immunol,2014,150(2):192-200.
[34] Yuan Y,Ma H,Ye Z,etal.Interferon-stimulated gene 15 expression in systemic lupus erythematosus :Diagnostic value and association with lymphocytopenia[J]Z Rheumatol,2017.doi:10.1007/s00393-017-0274-8.
[35] Salajeheh M,Kong SW,Pinkus JL,etal.Interferon-stimulated gene 15 (ISG15) conjugates proteins in dermatomyositis muscle with perifascicular atrophy[J].Ann Neurol,2010,67(1):53-63.
[36] Malhotra S,Morcillo-Suarcz C,Nurtdinov R,etal.Roles of the ubiquitin peptidase USP18 in multiple sclerosis and the response to interferon-β treatment[J].Eur J Neurol,2013,20(10):1390-1397.
[37] Chang X,Yue L,Liu W,etal.CD38 and E2F transcription factor 2 have uniquely increased expression in rheumatoid arthritis synovial tissues[J].Clin Exp Immunol,2014,176(2):222-231.
[38] Baarsen LGMV,Vosslamber S,Tijssen M,etal.Pharmacogen-omics of interferon-therapy in multiple sclerosis:baseline IFN signature determines pharmacological differences between patients[J].PLoS One,2008,3(4):e1927.
[39] Fridman WH,Pages F,Sautes-Fridman C,etal.The immune contexture in human tumours:impact on clinical outcome[J].Nat Rev Cancer,2012,12(4):298-306.
[40] Stiff A,Carson IW.Investigations of interferon-lambda for the treatment of cancer[J].J Innate Immunity,2015,7(3):243-250.
[41] Guo Y,Dolinko AV,Chinyengetere F,etal.Blockade of the ubiquitin protease UBP43 destabilizes transcription factor PML/RAR alpha and inhibits the gowth of acute promyelocytic leukemia[J].Cancer Res,2010,70(23):9875-9885.
[42] Guo Y,Chinyengetere F,Dolinko AV,etal.Evidence for the ubiquitin protease UBP43 as an antineoplastic target[J].Mole Cancer Therapeutics,2012,11(9):1968-1977.
[43] Burkart C,Arimoto K,Tang T,etal.Usp18 deficient mammary epithelial cells create an antitumour environment driven by hypersensitivity to IFN-λ and elevated secretion of Cxcl10[J].Embo Mole Med,2013,5(7):1035-1050.
[44] Duex JE,Comeau L,Sorkin A,etal.Usp18 regulates epidermal growth factor (EGF) receptor expression and cancer cell survival via MicroRNA-7[J].J Biol Chem,2011,286(28):25377-25386.
[45] Xiang Y,Wang Z,Murakami J,etal.Effects of RNase L mutations associated with prostate cancer on apoptosis induced by 2′,5′-oligoadenylates[J].Cancer Res,2003,63(20):6795-6801.
[46] Maia CJ,Rocha SM,Socorro S,etal.Oligoadenylate synthetase 1 (OAS1) expression in human breast and prostate cancer cases,and its regulation by sex steroid hormones[J].Adv Modern Oncol Res,2016,2(2):97-104.