吳樹金,薩日娜,顧志榮,趙 佩,于 靜,王艷紅,葛 斌
(甘肅省人民醫(yī)院藥劑科,甘肅 蘭州 730000)
肝損傷是人類最常見的疾病之一。動物肝損傷模型種類較多,與其他中毒性肝損傷如CCl4模型等相比,刀豆蛋白A(concanavalin A,ConA)誘發(fā)的肝損傷模型模擬了人類病毒性肝炎引發(fā)的免疫性肝損傷的病理生理過程,更適合研究人類病毒性肝炎。目前研究表明,ConA誘導肝損傷重要機制之一為其活化T淋巴細胞后,由腫瘤壞死因子受體相關因子2(tumor necrosis factor receptor 2,TNF-R2)介導活性氧(reactive oxygen species,ROS)增多,進而誘導肝細胞c-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)活性及表達增多[1-3]。Maeda等[4]證實,JNK在ConA肝損傷中起關鍵作用,在JNK1或JNK2表達缺失的小鼠中,ConA和脂多糖加半乳糖胺誘導的肝損傷被明顯抑制;更為重要的是,抗氧化劑如丁基羥基茴香醚(butylated hydroxyanisole,BHA)等可以明顯抑制ConA損傷小鼠中JNK的活化并保護肝損傷,提示JNK為ROS途徑的下游作用靶點[3-5]。因此,抑制ROS及其介導的JNK的活化是肝損傷,尤其是TNF-α相關依賴性肝損傷的重要環(huán)節(jié)。
目前,治療肝損傷的藥物由于有效性缺乏、不良反應多、安全性低等原因,無法滿足臨床需求,因此,趨向于篩選出具有更好安全性和功效特征的藥物。馬栗種子提取物(Aesculushippocastanumseeds extract,AH)為歐洲七葉樹種子的提取物,主要成分為七葉素,亦是其發(fā)揮藥理作用的主要成分。AH具有較好的臨床使用安全性,主要應用于慢性靜脈功能不全、痔靜脈曲張等。近年來,多項研究發(fā)現(xiàn)其具有抗氧化、抗炎、抗腫瘤等多種藥理作用,尤其AH在體內、體外實驗中均證實為強抗氧化劑,其清除ROS的能力為L-抗壞血酸的20倍之多[6-9]。關于AH的強抗氧化作用主要因其結構分子中含有大量羥基,具有很強的供H+和離子鰲合能力,從而起到清除ROS的作用[10]。近年研究發(fā)現(xiàn),AH可有效改善大鼠腦缺血/再灌注損傷[11];Elmas等[12]研究發(fā)現(xiàn),AH對大鼠糖尿病腎病具有保護作用,機制與AH抑制氧化應激有關。我們前期的研究在四氯化碳誘導的肝損傷模型中,初步觀察到AH可有效降低小鼠肝臟TNF-α水平,可能具有肝損傷保護作用,但具體機制尚不清楚[13]。AH是否對ConA誘導的急性肝損傷具有保護作用,其機制是否與ROS介導的JNK途徑有關尚不清楚?;谖覀兦捌诘难芯炕A,本研究在小鼠體內實驗中,觀察AH對ConA誘導急性肝損傷的作用,同時探討其相關機制是否與AH抗氧化,進而抑制其介導的JNK途徑有關。
1.1材料
1.1.1實驗動物 SPF級昆明小鼠,♂,體質量18~22 g,由甘肅省中醫(yī)藥大學動物實驗中心提供。
1.1.2試劑 ConA為Sigma公司產品;IFN-γ、TNF-α ELISA試劑盒購自上海晶抗生物工程有限公司;caspase-3活性檢測試劑盒購自碧云天生物技術公司;其余試劑均為化學分析純。
1.1.3儀器 LS-50B型熒光分光光度計(日本Shimadu公司);IX-70型熒光顯微鏡(日本Olympus公司)。
1.2馬栗種子提取物混懸液的制備AH為德國威瑪舒培博士藥廠生產,生產批號:0780117。每片含馬栗種子干燥提取物263.2 mg,標定含有50 mg七葉素。將AH粉碎溶解于蒸餾水,以其中七葉素含量為標定,制備成濃度為2.5 g·L-1的混懸液,不同劑量給藥組以含七葉素量標定分別為12.5、25、50 mg·kg-1。
1.3肝損傷模型的制備[14]將96只昆明小鼠隨機分為正常組、模型組、醋酸潑尼松組(PNS)、AH低、中、高劑量保護組,每組16只。適應性飼養(yǎng)3 d后,分別給予PNS(7.8 mg·kg-1)、AH (12.5、25、50 mg·kg-1)灌胃,正常組與模型組分別灌胃等體積生理鹽水,共計20 d。末次灌胃給藥后,正常對照組小鼠尾靜脈注射生理鹽水10 mL·kg-1,其余各組小鼠均一次性按體質量20 mg·kg-1尾靜脈注射ConA,8 h后所有小鼠進行采血、取材后處死。本研究中動物實驗遵循的所有程序均符合國家及甘肅省人民醫(yī)院制訂的有關實驗動物的規(guī)則和制度。
1.4肝臟組織HE染色及病理學改變的評價取小鼠肝右葉條形組織塊(約0.2 g),4%中性多聚甲醛固定、石蠟包埋、制成4 μm連續(xù)切片后,固定在玻片上,行常規(guī)HE染色,光鏡下觀察各組肝組織結構的病理變化。由3位病理科主治醫(yī)師進行雙盲讀片,并對觀察到的每張病理切片所顯示肝臟損傷程度進行分級。本實驗中,鏡下見肝臟損傷程度評分標準如下,0級:正常肝組織細胞;Ⅰ級:輕度肝細胞腫脹,散發(fā)炎性細胞,個別肝細胞壞死;Ⅱ級:少于肝小葉1/3的局灶或斑塊性肝細胞壞死,聚集炎性細胞浸潤;Ⅲ級:廣泛的肝細胞壞死,約占1/3至1/2的肝小葉,大量炎性細胞浸潤;IV級:肝細胞壞死多于肝小葉的1/2,廣泛炎性細胞浸潤[14]。
1.5血清指標檢測模型制備成功后,所有小鼠進行眼眶采血,將采集好的全血置于低速自動平衡離心機內離心,2 000 r·min-1,15 min。離心后上清采用全自動生化分析儀檢測AST、ALT、TP、Alb 及A/G比。血清IFN-γ、TNF-α采用ELISA試劑盒按說明書進行檢測。
1.6肝組織MDA、SOD、GSH檢測切取左前葉肝組織0.5 g左右,冷生理鹽水沖洗,濾紙吸干,稱重,冰浴中制成10%肝勻漿,3 500 r·min-1低溫離心15 min, 取上清液。按說明書采用硫代巴比妥酸比色法檢測MDA含量,TNB法檢測GSH水平,黃嘌呤氧化酶法測定SOD活性。
1.7caspase-3活性檢測按照每3~10 mg組織加入100 μL裂解液的比例加入專用裂解液,在冰浴上用玻璃勻漿器勻漿,然后把勻漿液轉移到1.5 mL離心管中,冰浴再裂解5 min后, 4 ℃、16 000×g離心15 min,將上清轉移到冰浴預冷的離心管中,立即測定caspase-3的酶活性,酶標儀于405 nm處讀取相應值。
1.8Westernblot提取總蛋白后,用BCA試劑盒測定蛋白濃度,并將樣品的濃度均調整為5 g·L-1,溶解在10 g·L-1十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate, SDS)中,上樣體積8 μL,制作轉膜“三明治”,0.4 A恒流轉膜60 min,5%的脫脂奶粉室溫封閉1 h。倒掉封閉液, 用5%的脫脂奶粉按一定比例稀釋一抗,將膜置于一抗孵育液中,4℃搖動過夜,用TBST洗膜3次,每次5 min。用5%的脫脂奶粉按一定比例稀釋羊抗兔二抗,將膜置于二抗孵育液中,室溫孵育1 h,TBST洗膜4次,每次5 min,ODYSSEY Fc imaging system顯色,拍照。數(shù)據(jù)用樣品與β-actin的比值表示。
2.1AH對ConA誘導急性肝損傷小鼠血清ALT、AST、TP、Alb、A/G比的影響Tab 1結果顯示,與正常對照組相比,ConA模型組小鼠的血清ALT、AST水平明顯增高,同時血清TP、Alb、A/G比明顯降低;陽性對照藥PNS(7.8 mg·kg-1)及AH(12.5、25、50 mg·kg-1)可以濃度依賴性地抑制ConA所致小鼠血清ALT、AST水平的增高及TP、Alb、A/G比的降低(P<0.05)。
Tab 1 Protective effects of AH on serum ALT, AST, TP and Alb levels and A/G ratio in ConA-induced liver injury model (±s, n=16)
*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsConA
2.2AH對ConA誘導急性肝損傷小鼠肝臟病理組織學的影響Fig 1 HE染色結果顯示,正常組小鼠肝臟未見明顯異常,在染色中肝細胞胞質均勻紅染,細胞核大小正常,核質淡染,肝竇清晰可見,肝索排列整齊。ConA模型組肝組織內大量淋巴細胞浸潤,匯管區(qū)少量淋巴細胞、粒細胞存在,肝竇內大量紅細胞淤積,肝板消失、凋亡小體散在、肝細胞脂肪變性。AH及PNS組均明顯減輕肝臟炎癥壞死的程度,病理損傷分級降低(Tab 2)。
Fig 1 Histopathological analysis of protective effect of AH on ConA-induced liver injury(×400)
A: Control; B: ConA; C: ConA+12.5 mg·kg-1AH; D: ConA+25 mg·kg-1AH; E: ConA+50 mg·kg-1AH; F: ConA+PNS. Blue arrow: Normal hepatocyte; Yellow arrow: Hepatocellular necrosis
2.3AH對ConA誘導急性肝損傷小鼠血清IFN-γ、TNF-α的影響Tab 3結果顯示,與正常對照組相比,ConA模型組小鼠的血清IFN-γ、TNF-α水平明顯增高;PNS及AH (12.5、25、50 mg·kg-1)可以明顯抑制ConA所致小鼠血清IFN-γ、TNF-α水平的增高。
Tab 2 Histopathological analysis of protective effect of AH on ConA-induced liver injury(n=16)
*P<0.05 vs control; #P<0.05 vs ConA
*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsConA
2.4AH對ConA誘導急性肝損傷小鼠肝臟組織MDA、SOD、GSH的影響與正常對照組相比,ConA模型組小鼠肝組織MDA水平明顯增高,同時GSH、SOD水平明顯降低;PNS及AH(12.5、25、50 mg·kg-1)均可明顯抑制ConA所致小鼠肝組織MDA水平的增高及GSH、SOD的降低(Tab 4)。
2.5AH對ConA誘導急性肝損傷小鼠的肝細胞凋亡相關指標的影響如Fig 2所示,與正常對照組相比,ConA損傷組小鼠肝組織細胞色素C、caspase-3、Bax/Bcl-2比值明顯增高;PNS及AH(12.5、25、50 mg·kg-1)組細胞色素C、caspase-3、Bax/Bcl-2比值較ConA組明顯降低(P<0.05)。
Fig 2 Effect of AH on cell apoptosis-related markers in ConA-induced liver injury model (±s, n=3)
A: Expression of cytochrome C detected by Western blot; B: Caspase-3 activity; C: Bax and Bcl-2 expression.*P<0.05vscontrol group;#P<0.05vsConA group
Tab 4 Effects of AH on MDA, SOD, GSH levels of liver tissues in ConA-induced liver injury model (±s, n=16)
*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsConA
2.6AH對ConA誘導急性肝損傷小鼠肝組織JNK、Akt表達的影響如Fig 3所示,與正常對照組相比,ConA模型組小鼠的肝組織p-JNK表達明顯增高,p-Akt表達明顯降低;PNS及AH(12.5、25、50 mg·kg-1)組相比ConA損傷組,p-JNK表達明顯降低,同時p-Akt明顯增高。
本研究在小鼠體內實驗中證實AH對ConA誘導的急性肝損傷具有一定的保護作用。 AH可明顯改善ConA誘導的急性肝損傷的病理分級,降低ConA所致血清ALT、AST水平的增高,相關研究顯示其機制與AH保護抗氧化酶體系,抑制ROS產生,進而抑制JNK及其介導的線粒體細胞凋亡損傷途徑相關。
AH具有強抗氧化作用,為了探究其是否對肝損傷具有保護作用,本研究首先檢測了各組小鼠血清ALT、AST、TP、Alb 水平及A/G比值這5個主要反映肝功能的指標。結果顯示,不同濃度AH可以明顯降低ConA誘導的ALT、AST水平的增高,同時保護TP、Alb 水平及A/G比的降低。各組肝損傷的病理改變及分級情況與血清學改變結果相一致,AH可以明顯改善ConA誘導的肝臟病理學改變,同時AH可以明顯抑制ConA誘導的TNF-α、IFN-γ的釋放。上述結果提示,AH對ConA誘導的急性肝損傷具有一定的保護作用。
本研究進一步進行了相關機制研究。我們前期研究顯示,AH的抗氧化作用主要與其保護體內的抗氧化酶及抑制脂質過氧化物MDA的產生有關。正常機體內的氧化與抗氧化系統(tǒng)處于相對平衡狀態(tài),ROS包括O2-、OH-、H2O2等,體內的抗氧化酶主要有GSH、SOD等,其中GSH在肝內含量最高,主要由肝細胞合成。GSH可直接通過供H+拮抗氧自由基毒性,其本身則被氧化為GSSG;而SOD可以催化O2-生成H2O2,從而減少O2-與NO的反應。另外,氧自由基能攻擊生物膜中的多元不飽和脂肪酸,形成脂質過氧化代謝終產物MDA,其含量反映體內脂質過氧化的程度。與我們以往在CCl4誘導肝損傷模型中的研究結果相一致,本研究結果顯示,AH可以明顯升高ConA誘導的GSH、SOD水平,同時降低MDA水平,這間接反映了AH可明顯抑制ConA誘導的氧化應激。
Fig 3 Effect of AH on p-JNK(A) and p-Akt(B) expression in ConA-induced liver injury model (±s, n=3)
*P<0.05vscontrol group;#P<0.05vsConA group
目前研究表明,ROS通過下游一系列信號轉導途徑誘導肝損傷,其中重要途徑之一為其介導的JNK途徑[3]。JNK活化后,在細胞周期、增殖、凋亡、細胞應激等多種生理和病理過程中起重要作用。JNK被細胞因子或ROS激活而磷酸化為p-JNK,作用于線粒體通路,通過影響B(tài)ax/Bcl-2比值導致線粒體凋亡,細胞色素C釋放增多,同時激活caspase家族級聯(lián)反應,誘導caspase-3活化,最終導致細胞凋亡[3,15]。我們的結果顯示,AH可以濃度依賴性抑制ConA所致小鼠肝組織細胞色素C水平、caspase-3活力及Bax/Bcl-2比值增高,這初步提示JNK途徑可能介導了AH對ConA誘導的肝損傷的保護作用。進而我們直接檢測各組小鼠肝組織的p-JNK蛋白表達情況,結果顯示,ConA可以明顯誘導肝組織p-JNK蛋白表達增多,而AH保護組p-JNK蛋白表達明顯被抑制;同時檢測了p-Akt蛋白表達情況。Akt信號通路被生長和存活因子激活而磷酸化,誘導Bcl-2表達的增加及Bax表達的降低,從而抑制線粒體途徑的凋亡,同時p-Akt也可以直接阻礙JNK的磷酸化,從而抑制caspase的活化,減輕細胞凋亡[16]。與p-JNK的表達相反,ConA可以明顯誘導肝組織p-Akt蛋白表達減少,而AH可以明顯升高p-Akt表達,該結果進一步證實了JNK途徑在AH保護ConA誘導的肝損傷中的作用。本研究在動物模型中未能徹底驗證AH抑制的JNK途徑是否為ROS所介導,本課題組將在體外肝細胞培養(yǎng)模型中,運用ROS抑制劑、JNK siRNA及JNK的特異性阻斷劑等,通過檢測AH+ siRNA JNK處理后相關肝損傷指標變化、抗氧化劑處理后JNK的表達變化等,進一步探討AH、ROS、JNK三者作用的上下游關系。
本研究在體內實驗初步證實了AH對ConA誘導的急性肝損傷具有一定的保護作用,其機制可能與AH抑制ROS及其介導的JNK途徑有關。本研究結果將為肝損傷靶向藥物的開發(fā)及聯(lián)合用藥提供一定的實驗及理論依據(jù)。
(致謝:本研究主要在甘肅省中醫(yī)藥大學動物實驗中心及甘肅省人民醫(yī)院科研中心完成,感謝課題組成員在整個實驗中所付出的勞動。)
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