亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        姜黃素對人巨細胞病毒感染人胚肺成纖維細胞后細胞凋亡的影響

        2018-02-24 13:50:24賈陽杰呂亞麗劉麗宏
        中國醫(yī)藥導報 2018年34期
        關(guān)鍵詞:姜黃素細胞凋亡細胞周期

        賈陽杰 呂亞麗 劉麗宏

        [摘要] 目的 探討人巨細胞病毒(HCMV)感染人胚肺成纖維細胞后細胞凋亡情況,以及姜黃素對HCMV感染細胞后細胞凋亡的影響。 方法 將細胞分為細胞對照組(細胞維持液),病毒模型組(細胞維持液+HCMV),姜黃素大(細胞維持液+HCMV+姜黃素0.8 μg/mL)、中(細胞維持液+HCMV+姜黃素0.4 μg/mL)、?。毎S持液+HCMV+姜黃素0.2 μg/mL)劑量組,更昔洛韋組(細胞維持液+HCMV+更昔洛韋50 μg/mL),運用線粒體膜電位檢測試劑盒(JC-1)和熒光染料碘化丙啶(PI)法檢測姜黃素對HCMV感染的細胞凋亡的影響。 結(jié)果 JC-1法實驗結(jié)果顯示:HCMV感染早期,病毒模型組細胞凋亡情況與細胞對照組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P > 0.05);與病毒模型組比較,更昔洛韋組和姜黃素大、中、小劑量組細胞凋亡顯著增加(P < 0.05)。HCMV感染晚期,與細胞對照組比較,病毒模型組細胞凋亡顯著增加(P < 0.05);與病毒模型組比較,姜黃素大、中、小劑量組細胞凋亡均有不同程度降低,其中姜黃素大劑量組與病毒模型組比較差異有統(tǒng)計學意義(P < 0.05)。熒光染料PI法實驗結(jié)果顯示:在HCMV感染早期及晚期,與細胞對照組比較,病毒模型組S期細胞顯著增多(P < 0.01);與病毒模型組比較,姜黃素大、中、小劑量組S期細胞均明顯減少(P < 0.05)。 結(jié)論 姜黃素能夠?qū)笻CMV感染引起的細胞凋亡作用,可使HCMV感染早期誘導的抗凋亡作用和HCMV感染晚期誘導的促凋亡作用減弱。

        [關(guān)鍵詞] 姜黃素;人巨細胞病毒;細胞周期;細胞凋亡

        [中圖分類號] R285.5 [文獻標識碼] A [文章編號] 1673-7210(2018)12(a)-0004-07

        細胞凋亡(apoptosis),又稱程序性細胞死亡(programmed cell death,PCD)是指細胞主動死亡的現(xiàn)象。機體出現(xiàn)細胞凋亡主要是為了能夠保持組織、器官的正常形態(tài)、功能和內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)態(tài)[1]。大量實驗研究發(fā)現(xiàn),機體感染人巨細胞病毒(HCMV)后產(chǎn)生的臨床表現(xiàn),跟PCD的發(fā)生密切相關(guān)[2]。

        HCMV是β皰疹病毒亞科的雙鏈線狀DNA病毒。在大多數(shù)發(fā)達國家,大約50%的成年人既往感染HCMV,在世界發(fā)展中地區(qū),HCMV感染在大齡兒童和成年人群中甚至高達90%~100%[3]。HCMV一旦侵入人體將長期或終身存在于體內(nèi),正常人一般為潛伏感染或無癥狀的亞臨床感染,而在放化療后、器官移植術(shù)后的腫瘤患者等免疫功能不全或低下的易感人群中,感染HCMV后常常引起多系統(tǒng)的病變,甚至造成致死性的危險[4]。

        研究發(fā)現(xiàn),HCMV感染后,機體的免疫系統(tǒng)并不能將其全部消滅清除,并且HCMV還可以潛伏于細胞中[5]。HCMV與PCD密切相關(guān)且兩者之間的聯(lián)系較為復雜,研究者發(fā)現(xiàn),HCMV感染后,在不同的條件下,既可表現(xiàn)為抑制細胞的凋亡,也可表現(xiàn)為加快細胞的凋亡[6]。姜黃素是從姜黃屬中提取出的一種酚性色素,具有抗炎、抗氧化、抗腫瘤、抗病毒等藥理作用。故本研究擬通過運用線粒體膜電位檢測試劑盒(JC-1)和熒光染料碘化丙啶(PI)的方法來探討HCMV感染人胚肺成纖維細胞后細胞凋亡情況,以及姜黃素對HCMV感染細胞后細胞凋亡的影響。

        1 材料與方法

        1.1 病毒及細胞

        HCMV AD169株由華中科技大學同濟醫(yī)學院附屬同濟醫(yī)院婦科和兒科臨床病毒研究室提供。人胚肺成纖維細胞(HELF株)購自國家實驗細胞資源中心,實驗所用細胞為20~25代細胞。

        1.2 藥物

        注射用更昔洛韋(GCV)(美國Sigma公司,貨號:Y0001129);姜黃素單體(批號:062-20170321,含量99.116%)由首都醫(yī)科大學附屬北京朝陽醫(yī)院(以下簡稱“我院”)藥事部自制;姜黃飲片來自江西江中中藥飲片有限公司,由我院中草藥房藥師鑒定為真品,批號:160801,GMP證號:贛JX20120017。

        1.3 主要試劑及儀器

        MEM培養(yǎng)基購自美國HyClone公司;二甲基亞砜(DMSO)、胎牛血清(FBS)、胰蛋白酶、青霉素G(Penicillin G)、Hank′s液、鏈霉素(Streptomycin)、羥乙基哌嗪乙硫磺酸(HEPES)均購自美國Sigma-Aldrich公司;JC-1購自北京泛博生物化學有限公司;PI染色液購自美國Sigma公司;流式細胞儀購自美國BD公司。細胞培養(yǎng)液為MEM培養(yǎng)基+Penicillin G(100 U/mL)+Streptomycin(100 μg/mL)+10%FBS。細胞維持液為MEM培養(yǎng)基+Penicillin G(100 U/mL)+Streptomycin(100 μg/mL)+2%FBS。

        1.4 JC-1法檢測細胞凋亡

        將HELF細胞在96孔板中培養(yǎng)成單層細胞,將細胞分為六組,分別為細胞對照組(細胞維持液),病毒模型組(細胞維持液+HCMV),姜黃素大劑量組(細胞維持液+HCMV+姜黃素0.8 μg/mL)、中劑量組(細胞維持液+HCMV+姜黃素0.4 μg/mL)和小劑量組(細胞維持液+HCMV+姜黃素0.2 μg/mL)、更昔洛韋組(細胞維持液+HCMV+GCV 50 μg/mL),更昔洛韋為陽性對照藥。病毒感染滴度為100 TCID50/孔,細胞孵育箱中培養(yǎng)1 h后去棄去病毒液。將以上六組細胞置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),分別于感染早期(≤12 h)和感染晚期(≥48 h)收集細胞,依據(jù)試劑盒說明書操作,進行細胞凋亡檢測。實驗過程至少進行3次。

        1.5 流式細胞術(shù)檢測細胞周期

        將HELF細胞在96孔板中培養(yǎng)成單層細胞后,同步化培養(yǎng)12 h;約100 TCID50/孔病毒滴度感染細胞,于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中吸附1~2 h,棄上清;細胞對照組和病毒模型組更換維持液繼續(xù)培養(yǎng);姜黃素各組終濃度分別為大劑量組(細胞維持液+HCMV+姜黃素0.8 μg/mL)、中劑量組(細胞維持液+HCMV+姜黃素0.4 μg/mL)和小劑量組(細胞維持液+HCMV+姜黃素0.2 μg/mL);更昔洛韋組(細胞維持液+HCMV+GCV 50 μg/mL)。置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),分別于感染早期(≤12 h)和感染晚期(≥48 h)收集細胞。將收集的細胞制成單層細胞懸液,用預冷的PBS漂洗2次,1000 r/min離心5 min,加入預冷的70%乙醇,于4℃固定過夜后,PBS洗滌,離心后去除固定液,加PI染色液(含50 μg/mL PI、100 μg/mL RNase A、0.2% Triton X-100)置于4℃避光孵育30 min后即可進行細胞周期分析。實驗過程至少進行3次。

        1.6 統(tǒng)計學方法

        應用SPSS 21.0統(tǒng)計軟件處理數(shù)據(jù),計量資料以均數(shù)±標準差(x±s)表示,采用單因素方差分析(One-way ANOVA),兩兩比較采用LSD-t法和Dunnett-t法。以P < 0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        2.1 各組細胞凋亡情況比較

        HCMV感染早期,病毒模型組與細胞對照組的細胞凋亡情況比較,差異無統(tǒng)計學意義(P > 0.05);與病毒模型組比較,更昔洛韋組和姜黃素大、中、小劑量組細胞凋亡明顯增加(P < 0.05)。HCMV感染晚期,與細胞對照組比較,病毒模型組細胞凋亡明顯增加(P < 0.05);與病毒模型組比較,姜黃素大、中、小劑量組細胞凋亡均有不同程度降低,其中姜黃素大劑量組與病毒模型組比較差異有統(tǒng)計學意義(P < 0.05)。見圖1。

        2.2 不同感染時期各組細胞周期情況比較

        在HCMV感染早期及晚期,與細胞對照組比較,病毒模型組S期細胞顯著增多(P < 0.01);與病毒模型組比較,姜黃素大、中、小劑量組S期細胞均明顯減少,而更昔洛韋組S期細胞明顯增多,G0/G1期細胞明顯減少(P < 0.05)。見圖2~3、表1。

        3 討論

        HCMV感染機體后,感染的細胞一般都處于不同的細胞周期。如果HCMV感染了處于G0/G1期的細胞,則細胞只能進入到G1/S期;如果HCMV感染了處于S期的細胞,則細胞會一直處于S期,表現(xiàn)為停滯狀態(tài),最終導致細胞的有絲分裂停止[7]。本研究結(jié)果顯示在HCMV感染早期,病毒模型組S期細胞較細胞對照組明顯增多,而處于G0/G1期的細胞較細胞對照組有所減少。隨著感染時間延長,宿主細胞均表現(xiàn)為G2/M期細胞有所減少。經(jīng)過姜黃素干預治療后,姜黃素各劑量組處于S期細胞均明顯少于病毒對照組,G0/G1期細胞均有所增多,細胞凋亡沒有增加。

        HCMV感染機體后,機體細胞發(fā)生凋亡,細胞死亡后機體會清除這些細胞,這是機體抵抗病毒感染對機體造成損傷的一種機制。有研究發(fā)現(xiàn)在HCMV感染初期,HCMV為了阻止機體細胞凋亡,會轉(zhuǎn)錄表達某些蛋白以阻止細胞凋亡[8],從而保證病毒復制增殖能夠順利進行,病毒的這種適應性為其持續(xù)感染創(chuàng)建了有利的環(huán)境。機體感染HCMV后,病毒可能是通過作用于一些調(diào)節(jié)細胞周期的細胞因子從而造成細胞正常周期的改變,比如感染后使細胞內(nèi)細胞周期蛋白E(cyclin E)的表達上調(diào),使細胞周期蛋白依賴性激酶(CDK)和周期蛋白依賴性激酶抑制因子(CKIs)活性均發(fā)生改變等[9]。有研究發(fā)現(xiàn)處于S期的二倍體纖維母細胞感染HCMV后細胞表現(xiàn)出周期停滯,并且還出現(xiàn)病理性有絲分裂[10]。Murphy等[11]的實驗結(jié)果與上述研究結(jié)果一致。Lunaldi等[12]研究證實抗HCMV抗體與內(nèi)皮細胞激活和凋亡有關(guān)的分子基因程序的表達有關(guān),可以促進熱休克蛋白60(HSP60)的釋放,這可能是抗HCMV抗體促凋亡的另一分子機制。黃晨等[13]研究發(fā)現(xiàn),HCMV可以導致人臍靜脈血管內(nèi)皮細胞增殖并且使宿主細胞處于G1期的細胞減少,進而推測HCMV感染可能促進了G0/Gl期細胞進入S期和G2/M期,細胞最終表現(xiàn)為增殖。有研究者發(fā)現(xiàn)HCMV感染后,抗凋亡蛋白Bcl-2表達明顯增多,運用更昔洛韋進行治療后,Bcl-2含量明顯減少,并且HCMV引起的抗凋作用明顯下降[14]。在HCMV病毒感染晚期,病毒對細胞凋亡的抑制作用解除,反而促進細胞發(fā)生凋亡,以便病毒釋放。細胞感染后HCMV可以潛伏于細胞中,造成免疫系統(tǒng)的長期激活,改變免疫狀態(tài),從而引發(fā)機體產(chǎn)生多種慢性炎癥性疾病[15-16]。HCMV感染機體后患者會表現(xiàn)出視網(wǎng)膜炎,用更昔洛韋治療此類患者后,視網(wǎng)膜上皮細胞凋亡明顯受到抑制。Zhou等[17]發(fā)現(xiàn),與感染前比較,感染HCMV的平滑肌細胞(SMCs)的增殖明顯提高。2005年,Reinhardt課題組[18]也得到了相同的實驗結(jié)果。有研究發(fā)現(xiàn),HCMV感染SMCs后,細胞內(nèi)p53的含量減少,SMCs的凋亡受到抑制[19]。同時Epstein等[20]也證實了這一點,即HCMV可以調(diào)控SMCs p53的基因表達,從而減少SMCs細胞的凋亡。Liao等[21]研究結(jié)果進一步表明HCMV感染可以影響內(nèi)皮細胞和平滑肌細胞的自然凋亡過程。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),姜黃素具有顯著抗HCMV的作用[22-23],但具體機制不清。本研究發(fā)現(xiàn)姜黃素能夠?qū)笻CMV感染引起的細胞凋亡作用,可使HCMV感染早期誘導的抗凋亡作用和HCMV感染晚期誘導的促凋亡作用減弱。

        [參考文獻]

        [1] Wyllie AH,Kerr JF,Currie AR. Cell death:the significance of apoptosis [J]. Int Rev Cytol,1980,68:251-306.

        [2] Cinatl J Jr,Scholz M,Doerr HW. Role of tumor cell immune escape mechanisms in cytomegalovirus-mediated oncomodulation [J]. Med Res Rev,2005,25(2):167-185.

        [3] 郭麗麗,許紅梅.人巨細胞病毒感染的流行病學研究進展[J].國際檢驗醫(yī)學雜志,2010,31(10):1131-1133.

        [4] Ritter JT,Tang-Feldman YJ,Lochhead GR,et al. In vivo characterization of cytokine profiles and viral load during murine cytomegalovirus-induced acute myocarditis [J]. Cardiovasc Pathol,2010,19(2):83-93.

        [5] Frantzeskaki FG,Karampi ES,Kottaridi C,et al. Cytomeg-alovirus reactivation in a general,nonimmunosuppressed intensive care unit population:Incidence,risk factors,associations with organ dysfunction,and inflammatory biomarkers [J]. J Crit Care,2015,30(2):276-281.

        [6] Reuter JD. Cytomegalovirus induces T-cell independent apoptosis in brain during immunodeficiency [J]. J Clin Virol,2005,32(3):218-223.

        [7] 劉志峰.巨細胞病毒對細胞周期的影響及其機制[J].國外醫(yī)學病毒學分冊,2002,9(4):104-107.

        [8] Sedger LM,Shows DM,Blanton RA,et al. IFN-gamma mediates a novel antiviral activity through dynamic modulation of TRAIL and TRAIL receptor expression [J]. J Immunol,1999,163(2):920-926.

        [9] Salvant BS,F(xiàn)ortunato EA,Spector DH. Cell cycle dysregulation by human cytomegalovirus influence of the cell cycle phase at the time of infection and effects on cyclin transcription [J]. J Virol,1998,72(5):3729-3741.

        [10] Barsukova AS,F(xiàn)edorova NE,Medzhidova AA,et al. Effect of cytomegalovirus on cell cycle progression and formation of pathological mitoses in cultured human diploid fibroblasts [J]. Ontogenez,2001,32(1):29-34.

        [11] Murphy EA,Streblow DN,Nelson JA,et al. The Human Cytomegalovirus IE86 Protein Can Block Cell Cycle Progression after Inducing Transition into the S Phase of Permissive Cells [J]. J Virol,2000,74(15):7108-7118.

        [12] Lunardi C,Dolcino M,Peterlana D,et al. Endothelial Cells Activation and Apoptosis Induced by a Subset of Antibodies against Human Cytomegalovirus:Relevance to the Pathogenesis of Atherosclerosis [J]. PLoS One,2007,2(5):e473.

        [13] 黃晨,張榮懷,王曉明,等.人巨細胞病毒感染對人臍靜脈內(nèi)皮細胞凋亡和周期的影響[J].中國臨床康復,2005,9(27):56-58.

        [14] Brice?觡o J,de la Torre-Cisneros J,Alvarez-Kindelan A,et al. Antiviral drigs can inhibit lymphocyte apoptosis induced by cytomegalovirus antigens [J]. Transplant Proc,2001,33(1-2):1799-1800.

        [15] Popovic M,Smiljanic K,Dobutovic B,et al. Humancytomegalovirus infection and atherothrombosis [J]. J Thromb Thrombolysis,2012,33(2):160-172.

        [16] Soderberg-Naucler C. HCMV microinfections in inflammatory diseases and cancer [J]. J Clin Virol,2008,41(3):218-223.

        [17] Zhou YF,Yu ZX,Wanishsawad C,et al. The immediate early gene products of human cytomegalovirus increase vascular smooth muscle cell migration,proliferation,and expression of PDGF beta-receptor [J]. Biochem Biophys Res Commun,1999,256(3):608-613.

        [18] Reinhardt B,Mertens T,Mayr-Beyrle U,et al. HCMV infection of human vascular smooth muscle cells leads to enhanced expression of functionally intact PDGF beta -receptor [J]. Cardiovasc Res,2005,67(1):151-160.

        [19] Speir E,Shibutani T,Yu ZX,et al. Role of reactive oxygen intermediates in cytomegalovirus gene expression and in the response of human smooth muscle cells to viral infection [J]. Circ Res,1996,79(6):1143-1152.

        [20] Epstein SE,Speir E,Zhou YF,et al. The role of infection in restenosis and atherosclerosis:focus on cytomegalovirus [J]. Lancet,1996,348(s1):s13-s17.

        [21] Liao XH,Dong X,Wu C,et al. Human cytomegalovirus immediate early protein 2 enhances myocardin-mediated survival of rat aortic smooth muscle cells [J]. Virus Res,2014,192:85-91.

        [22] Lv Y,An Z,Chen H,et al. Mechanism of Gxe062 resistance to human cytomegalovirus in HELF cells [J]. BMC complement Altern Med,2014,14:284.

        [23] Lv Y,Lei N,Wang D,et al. Protective effect of Gxe062 againstcytomegalovirus infection in Balb/c mice [J]. Environ Toxicol Pharmacol,2014,37(3):1140-1147.

        (收稿日期:2018-04-24 本文編輯:羅喬荔)

        猜你喜歡
        姜黃素細胞凋亡細胞周期
        紅霉素聯(lián)合順鉑對A549細胞的細胞周期和凋亡的影響
        姜黃素干預耐吉非替尼肺腺癌細胞上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化的影響及相關(guān)機制的研究
        木犀草素對對乙酰氨基酚誘導的L02肝細胞損傷的保護作用
        云南山地仿野生撫育姜黃后姜黃素的含量變化研究
        傳染性法氏囊病致病機理研究
        科技視界(2016年15期)2016-06-30 12:27:37
        G—RH2誘導人肺腺癌A549細胞凋亡的實驗研究
        NSCLC survivin表達特點及其與細胞周期的關(guān)系研究
        X線照射劑量率對A549肺癌細胞周期的影響
        癌癥進展(2016年10期)2016-03-20 13:15:43
        益氣養(yǎng)血補腎方對長期大強度運動大鼠海馬JAK/STAT信號轉(zhuǎn)導通路的影響
        姜黃素對胰腺癌細胞PANC—1體外侵襲轉(zhuǎn)移的影響
        久久久久亚洲av无码专区首| 久久久婷婷综合五月天| 麻豆av在线免费观看精品| 亚洲av毛片在线免费观看| 无码人妻丰满熟妇啪啪网站| 亚洲av成人无码网天堂| 亚洲国产AⅤ精品一区二区不卡| 成人自拍三级在线观看| 男女18禁啪啪无遮挡激烈网站| 久久精品国产亚洲av蜜臀| 国产精品每日更新在线观看| 国产精品老女人亚洲av无| 亚洲国产精品日本无码网站| 在线亚洲欧美日韩精品专区| 女高中生自慰污免费网站| 亚洲综合av一区在线| 中文字幕久久波多野结衣av不卡| 国产免费av片在线观看| 亚洲中文欧美日韩在线人| 国产一区二区三区精品成人爱| 性高朝久久久久久久3小时| 亚洲乱码日产精品bd| 亚洲AV日韩Av无码久久| 亚洲在线精品一区二区三区| 天天摸夜夜摸摸到高潮| 欧美人与动牲交片免费| 亚洲精品一区二区三区av| 最新中文字幕一区二区| 麻豆精品久久久久久久99蜜桃| 五月婷婷激情六月| 懂色av一区二区三区网久久| 蜜臀亚洲av无码精品国产午夜.| 亚洲精品永久在线观看| 日本一区二区三区看片 | 在线观看av网站永久| 秋霞午夜无码鲁丝片午夜精品| 99国产精品无码专区| 久久老熟女一区二区三区福利 | 亚洲最大av资源站无码av网址 | 一本之道高清无码视频| 一区二区三无码|