李力 汪峰
【摘要】 目的:觀察左卡尼汀能否作為代謝復(fù)蘇藥物改善膿毒癥患者線粒體功能,并觀察其治療效果。方法:選取2014年2月-2017年2月本院就診的膿毒癥患者86例,采用隨機(jī)數(shù)字表法分為常規(guī)治療組(對(duì)照組)和左卡尼汀組(治療組),每組43例,觀察兩組治療前后血小板線粒體功能、乳酸清除率、SOFA評(píng)分、呼吸機(jī)輔助時(shí)間、ICU住院時(shí)間及短期(28 d)病死率。結(jié)果:治療組治療后血小板粒體跨膜電位和線粒體內(nèi)ATP含量均優(yōu)于治療前且優(yōu)于對(duì)照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);兩組治療后SOFA評(píng)分均下降,治療組乳酸清除率高于對(duì)照組,SOFA評(píng)分低于對(duì)照組,呼吸機(jī)輔助時(shí)間、ICU住院時(shí)間明顯縮短,短期病死率均低于對(duì)照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)論:左卡尼汀通過(guò)改善線粒體功能,可以增加膿毒癥患者乳酸清除率,提高組織器官能量供應(yīng),阻止器官衰竭,縮短呼吸機(jī)輔助時(shí)間及ICU住院時(shí)間,降低患者短期(28 d)死亡率。
【關(guān)鍵詞】 膿毒癥; 線粒體; 左卡尼??; 代謝復(fù)蘇
Effect Study of L-carnitine for Sepsis Mitochondrial Targeting Therapeutic/LI Li,WANG Feng.//Medical Innovation of China,2017,14(26):021-024
【Abstract】 Objective:To observe whether L-carnitine can improve the mitochondrial function of sepsis as a metabolic resuscitation drug and its therapeutic effect.Method:From February 2014 to February 2017,86 patients with sepsis treated in our hospital were selected and divided into routine treatment group(the control group) and L-carnitine group(the treatment group) according to the random number table method,43 patients in each group.The platelet mitochondrial function,lactate clearance and SOFA scores before and after treatment,ventilator-assisted time,ICU hospitalization time and short-term(28 d) mortality of two groups were observed.Result:The levels of mitochondrial transmembrane potential and mitochondrial ATP content of the treatment group were improved compared with those before treatment and the control group,the differences were statistically significant(P<0.05).SOFA levels of two groups were decreased,and SOFA levels of the treatment group were lower than that of the control group,the duration of ventilator assisted,ICU hospitalization time and short-term mortality of the treatment group were were lower than those of the control group,the differences were statistically significant(P<0.05).Conclusion:L-carnitine can increase the lactic acid clearance rate for sepsis patients by improving the mitochondrial function,which can increase energy supply of tissues and organs,also can prevent organ failure,shorten the ventilator-assist time and ICU hospitalization time,reduce the short-term (28 d) mortality.
【Key words】 Sepsis; Mitochondrial; L-carnitine; Metabolic recovery
First-authors address:Jiujiang University Affiliated Hospital,Jiujiang 332000,China
doi:10.3969/j.issn.1674-4985.2017.26.006
膿毒癥導(dǎo)致器官功能衰竭的發(fā)病機(jī)制尚不明確。有研究認(rèn)為,感染所引起的全身炎癥反應(yīng)可抑制線粒體功能,以至于組織器官?zèng)]有足夠的能量來(lái)維持正常的功能,機(jī)體處于低代謝狀態(tài)甚至器官衰竭。在最近的臨床和實(shí)驗(yàn)研究,對(duì)膿毒癥線粒體靶向治療已明顯降低多器官功能障礙(Multiple organ dysfunction syndrome,MODS)的嚴(yán)重程度和死亡率,這種干預(yù)被命名為“代謝復(fù)蘇”[1]。左卡尼汀對(duì)穩(wěn)定線粒體結(jié)構(gòu)形態(tài)、膜的通透性及維持正常的線粒體功能有重要作用[2-3]。從人體臟器獲取線粒體很難實(shí)現(xiàn),但是循環(huán)血液中的血小板線粒體含量豐富,甚至在危重患者中很容易獲得,并且血小板線粒體功能可以用不同技術(shù)方法進(jìn)行檢測(cè),也可作為線粒體靶向治療藥物效果的評(píng)估[4]。本研究觀察左卡尼汀能否作為代謝復(fù)蘇藥物改善膿毒癥患者的預(yù)后,現(xiàn)報(bào)道如下。endprint
1 資料與方法
1.1 一般資料 選擇2014年2月-2017年2月本院ICU住院的膿毒癥患者86例,其中男47例,女39例,年齡27~76歲。納入標(biāo)準(zhǔn):所有患者均符合2014年《中國(guó)嚴(yán)重膿毒癥/膿毒性休克治療指南》關(guān)于膿毒癥診斷標(biāo)準(zhǔn),ICU住院時(shí)間>7 d[5]。排除標(biāo)準(zhǔn):(1)既往有器官功能嚴(yán)重不足或免疫力低下患者(參照APACHEII評(píng)分中的慢性健康評(píng)分);(2)用藥劑量不足或療程不足7 d、檢測(cè)指標(biāo)不全者;(3)對(duì)治療藥物明確過(guò)敏者;(4)近2周用過(guò)影響血小板的藥物,如阿司匹林、血寧片等。將其按照隨機(jī)數(shù)字表法分為治療組和對(duì)照組,每組43例,兩組患者一般資料比較,差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),具有可比性,見(jiàn)表1。本研究經(jīng)醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn),所有患者及家屬簽署知情同意書(shū)。
1.2 方法 對(duì)照組參考《中國(guó)嚴(yán)重膿毒癥/膿毒性休克治療指南》采取常規(guī)集束化治療方案[6](即6 h復(fù)蘇集束化治療,是指在疑診或確診嚴(yán)重感染后立即開(kāi)始并在6 h內(nèi)完成的治療措施。包括血乳酸水平測(cè)定,使用抗生素前留取病原學(xué)標(biāo)本,急診在接診3 h內(nèi)、ICU在收治1 h內(nèi)開(kāi)始使用廣譜抗生素。如有低血壓或血乳酸水平>4 mmol/L,應(yīng)立即給予液體復(fù)蘇(20~40 mL/kg);適當(dāng)?shù)囊后w復(fù)蘇后低血壓仍不能糾正者,應(yīng)加用血管活性藥物,以維持平均動(dòng)脈壓≥65 mm Hg,CVP≥8 mm Hg,ScvO2≥70%)。治療組在常規(guī)集束化治療方案基礎(chǔ)上,加用左卡尼汀注射液(常州蘭陵制藥有限公司生產(chǎn))4 g靜滴,1次/d,持續(xù)7 d。
1.3 樣本處理 為減少血小板線粒體激活,本研究采用Percoll密度梯度離心法分離純化血小板。將兩組患者分別于入院時(shí)及入院3、7 d用真空采血管綠頭管(肝素鈉)2支抽取新鮮靜脈血8 mL。將9份Percoll原液加入1份2.5M蔗糖溶液混勻配置等滲Percoll溶液,再用0.25 M蔗糖溶液稀釋等滲Percoll溶液至濃度1.06 g/mL,然后取肝素抗凝靜脈血與等量Percoll溶液充分混合,(常溫,1000次/min×20 min)取F1白色云霧層,PBS緩沖液洗滌3遍即得到分離純化的血小板備用。
1.4 觀察指標(biāo) (1)血小板線粒體跨膜電位檢測(cè):JC-1是一種廣泛用于檢測(cè)線粒體膜電位(mitochondrial transmembrane potential,ΔΨm)的理想熒光探針。通過(guò)JC-1從紅色熒光到綠色熒光的轉(zhuǎn)變檢測(cè)細(xì)胞膜電位的下降。以JC-1孵育血小板15 min后,PBS緩沖液洗滌,采用流式細(xì)胞儀(BD FACS CotoⅡTM)進(jìn)行定量檢測(cè),線粒體去極化的比例由綠熒光的百分比來(lái)衡量。(2)血小板線粒體內(nèi)三磷酸腺苷(ATP)含量檢測(cè):以熒光素-熒光素酶法檢測(cè)血小板線粒體ATP水平,原理:熒光素在熒光素酶、ATP等物質(zhì)參與下,進(jìn)行反應(yīng)發(fā)出熒光;用分光光度計(jì)可測(cè)定發(fā)光強(qiáng)度;當(dāng)熒光素和熒光素酶都足量時(shí),在一定范圍內(nèi),ATP的含量與發(fā)光強(qiáng)度成正比。血小板懸液與檢測(cè)試劑等比混合,室溫孵育15 min,采用寶特800酶標(biāo)儀檢測(cè)熒光強(qiáng)度。(3)乳酸清除率:所有患者檢測(cè)入院時(shí)及入院6、12、24 h動(dòng)脈血?dú)庥涗浫樗嶂?,并?jì)算6、12、24 h乳酸清除率。(4)SOFA評(píng)分:所有患者在入院時(shí)及入院3、7 d抽取靜脈血檢測(cè)血常規(guī)、生化檢查、記錄24 h尿量及動(dòng)脈血?dú)庥?jì)算PaO2/FiO2值、GCS評(píng)分等計(jì)算SOFA評(píng)分。(5)臨床觀察指標(biāo):觀察兩組左卡尼汀治療對(duì)呼吸機(jī)輔助時(shí)間、ICU住院時(shí)間及短期(28 d)病死率。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS 22.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)量資料用(x±s)表示,比較采用t檢驗(yàn);計(jì)數(shù)資料以率(%)表示,比較采用 字2檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1 兩組血小板線粒體膜電位變化 兩組治療前低ΔΨm細(xì)胞百分比比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),入院7 d兩組患者低ΔΨm細(xì)胞百分比均低于治療前,入院3、7 d治療組患者低ΔΨm細(xì)胞百分比均低于對(duì)照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表2。
2.2 兩組血小板線粒體內(nèi)ATP水平的變化 兩組治療前血小板內(nèi)ATP相對(duì)含量比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),入院3、7 d治療組患者血小板內(nèi)ATP水平均高于治療前且高于對(duì)照組同期,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表3。
2.3 兩組乳酸清除率比較 兩組患者在入院時(shí)乳酸值比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。治療組入院6、12、24 h的乳酸值均低于對(duì)照組,治療組乳酸清除率高于對(duì)照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)表4。
2.4 兩組SOFA評(píng)分比較 兩組患者入院時(shí)SOFA評(píng)分比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),治療組入院3、7 d SOFA評(píng)分均低于對(duì)照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表5。
2.5 兩組呼吸機(jī)輔助時(shí)間、ICU住院時(shí)間、短期(28 d)病死率比較 治療組呼吸機(jī)輔助時(shí)間、ICU住院時(shí)間、短期病死率均低于對(duì)照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表6。
3 討論
膿毒癥是宿主對(duì)感染的反應(yīng)失控導(dǎo)致危及生命的器官功能衰竭[7]。其主要特征是線粒體功能障礙[8],而線粒體功能降低在器官功能障礙的發(fā)生、發(fā)展及功能恢復(fù)中起關(guān)鍵性作用[9-10]。在膿毒癥早期在脂多糖作用下細(xì)胞內(nèi)脂?;D(zhuǎn)移酶去乙酰化增加,線粒體功能及完整性遭到破壞,并且出現(xiàn)線粒體自噬現(xiàn)象[11-12]。隨著膿毒癥病情的進(jìn)展,線粒體功能及數(shù)量均下降,組織器官為了適應(yīng)線粒體能量供應(yīng),只能降低或關(guān)閉細(xì)胞功能來(lái)減少能量需求,從而達(dá)到能量供需平衡即MODS[13]。如果膿毒癥不能得到有效控制,病情持續(xù)時(shí)間過(guò)長(zhǎng),線粒體結(jié)構(gòu)和功能將呈現(xiàn)不可逆性的改變,最終導(dǎo)致線粒體功能衰竭,細(xì)胞能量枯竭,引起多器官功能衰竭而死亡[14]。endprint
左卡尼汀即左旋肉堿是脂肪代謝過(guò)程中的一種關(guān)鍵物質(zhì),能作為載體把脂肪酸從線粒體外運(yùn)入線粒體內(nèi),使其氧化分解。左卡尼汀用于感染性休克患者是安全有效的,能明顯降低短期(28 d)死亡率,并能提高低酮體類膿毒癥患者遠(yuǎn)期(1年)生存率[15-16]。其機(jī)制可能是左卡尼汀通過(guò)乙酰肉堿轉(zhuǎn)移酶的活動(dòng),參與在脂酰肉堿和脂酰-CoA酯之間平衡的建立,能有效維持線粒體功能[17];并且能改善受損線粒體超微結(jié)構(gòu)、維持線粒體長(zhǎng)度、減少線粒體損傷的數(shù)量,從而阻止細(xì)胞凋亡[2];左卡尼汀對(duì)于線粒體功能損傷的保護(hù)也有抗氧化和抗炎的機(jī)制參與[18-19]。在代謝應(yīng)激時(shí),線粒體積累脂酰-CoA,是為了保持機(jī)體卡尼汀穩(wěn)態(tài)[20]。足夠量的游離卡尼汀可促使堆積的脂酰-CoA進(jìn)入線粒體內(nèi),使氧化磷酸化得以順利進(jìn)行,從而提高組織細(xì)胞能量供應(yīng),阻止器官功能衰竭[21]。
筆者通過(guò)對(duì)在醫(yī)院ICU住院的86例膿毒血癥患者研究顯示,加用左卡尼汀治療3 d即出現(xiàn)細(xì)胞內(nèi)ATP水平較對(duì)照組高,且高于入院時(shí)水平,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而低ΔΨm細(xì)胞百分比及SOFA評(píng)分均低于對(duì)照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。說(shuō)明早期加用左卡尼汀能減少線粒體氧化應(yīng)激損害、維持線粒體功能作用。從乳酸清除率也提示早期加用左卡尼汀對(duì)預(yù)后有積極作用。加用左卡尼汀治療7 d細(xì)胞內(nèi)ATP水平高于對(duì)照組,且高于入院時(shí),低ΔΨm細(xì)胞百分比及SOFA評(píng)分低于對(duì)照組,且低于入院時(shí),差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。說(shuō)明左卡尼汀改善受損線粒體結(jié)構(gòu)和功能,提高組織器官能量供應(yīng),阻止器官衰竭,對(duì)膿毒癥患者的治療有積極作用。
本研究結(jié)果顯示,加用左卡尼汀治療后患者呼吸機(jī)輔助時(shí)間明顯縮短、在ICU住院時(shí)間也明顯減少,并且降低短期(28 d)病死率差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。這不僅提高了膿毒癥患者的生存率,還大大節(jié)省了醫(yī)療費(fèi)用支出。
綜上所述,左卡尼汀注射液可能是通過(guò)改善線粒體膜電位,恢復(fù)線粒體氧化磷酸化功能,提高組織細(xì)胞能量供應(yīng),有效增加膿毒癥患者乳酸清除率,提高組織器官能量供應(yīng),阻止器官衰竭,縮短呼吸機(jī)輔助時(shí)間及ICU住院時(shí)間,降低患者短期(28 d)死亡率。左卡尼汀對(duì)膿毒癥治療效果明顯,可作為代謝復(fù)蘇藥物用于集束化治療。
參考文獻(xiàn)
[1] Leite H P,de Lima L F.Metabolic resuscitation in sepsis: a necessary step beyond the hemodynamic[J].J Thorac Dis,2016,8(7):552-557.
[2] Li X,Zhang C,Zhang X,et al.An acetyl-L-carnitine switch on mitochondrial dysfunction and rescue in the metabolomics study on aluminum oxide nanoparticles[J].Part Fibre Toxicol,2015,13(1):4-23.
[3] Zhang Z Y,F(xiàn)an Z K,Cao Y,et al.Acetyl-L-carnitine ameliorates mitochondrial damage and apoptosis following spinal cord injury in rats[J].Neurosci Lett,2015,604(14):18-23.
[4] Protti A,F(xiàn)ortunato F,Artoni A,et al.Platelet mitochondrial dysfunction in critically ill patients:comparison between sepsis and cardiogenic shock[J].Crit Care,2015,19(1):39.
[5]中華醫(yī)學(xué)會(huì)重癥醫(yī)學(xué)分會(huì).中國(guó)嚴(yán)重膿毒癥/膿毒性休克治療指南(2014)[J].Chin Crit Care Med,2015,6(27):401-426.
[6]王海彥,廖品琥.膿毒癥集束化治療的臨床研究進(jìn)展[J].天津醫(yī)藥,2013,4(41):392-395.
[7] Singer M,Deutschman C S,Seymour C W,et al.The Third International Consensus Defi-nitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3)[J].JAMA,2016,315(8):801-810.
[8] Fink M P.Cytopathic hypoxia and sepsis:is mitochondrial dysfunction pathophysiologically important or just an epiphenomenon[J].Pediatr Crit Care Med,2015,16(1):89-91.
[9] Arulkumaran N,Deutschman C S,Pinsky M R,et al.Mitochondrial function in sepsis[J].Shock,2016,45(3):271-281.
[10] Singer M.The role of mitochondrial dysfunction in sepsis-induced multi-organ failure[J].Virulence,2014,5(1):66-72.
[11] Zhao P,Gao J,Jiang J,et al.Myocardial cells and mitochondrial autophagy in sepsis mice induced by lipopolysaccharide[J].Chinese Journal of Cellular and Molecular Immunology,2016,32(2):177-181.endprint
[12] Zou C,Synan M J,Li J,et al.LPS impairs oxygen utilization in epithelia by triggering degradation of the mitochondrial enzyme Alcatl[J].J Cell Sci,2016,129(1):51-64.
[13] Duran-Bedolla J,Montes de Oca-Sandoval M A,Salda?a-Navor V,et al.Sepsis,mitochondrial failure and multiple organ dysfunction[J].Clin Invest Med,2014,37(2):58-69.
[14] Lee I,Hüttemann M.Energy crisis:the role of oxidative phosphorylation in acute inflammation and sepsis[J].Biochim Biophys Acta,2014,1842(9):1579-1586.
[15] Puskarich M A,Kline J A,Krabill V,et al.Preliminary safety and efficacy of L-carnitine infusion for the treatment of vasopressor-dependent septic shock: a randomized control trial[J].JPEN J Parenter Enteral Nutr,2014,38(6):736-743.
[16] Puskarich M A,F(xiàn)inkel M A,Karnovsky A,et al.
Pharmacometabolomics of l-Carnitine Treatment Response Phenotypes in Patients with Septic Shock[J].Ann Am Thorac Soc,2015,12(1):46-56.
[17] Tonazzi A,Giangregorio N,Console L,et al.Mitochondrial carnitine/acy-lcarnitine transloase:insights in structure/function relationship[J].Mini Reviews in Medicinal Chemistry,2015,15(5):396-405.
[18] Le Borgne F,Ravaut G,Bernard A,et al.L-carnitine protects C2C12 cells against mitochondrial superoxide overproduction and cell death[J].World Journal of Biological Chemistry,2017,8(1):86-94.
[19] Khalatbari-Soltani S,Tabibi H.Inflammation and L-carnitine therapy in hemodialysis patients:a review[J].Clinical and Experimental Nephrology,2015,19(3):331-335.
[20] Marcovina S M,Sirtori C,Peracino A,et al.Translating the basic knowledge of mitochondrial functions to metabolic therapy:role of L-carnitine[J].Transl Res,2013,161(2):73-84.
[21] Longo N,F(xiàn)rigeni M,Pasquali M.Carnitine transport and fatty acid oxidation[J].Biochimica Et Biophysica Acta,2016,1863(10):2422-2435.
(收稿日期:2017-05-22) (本文編輯:康玥)endprint