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        國標(biāo)試管法與試劑盒微孔法檢測嬰幼兒奶粉中葉酸含量的結(jié)果比較

        2017-11-14 12:30:19嚴(yán)燁,鄒力,舒靜,王瑛,唐欣,樊
        農(nóng)產(chǎn)品加工 2017年19期
        關(guān)鍵詞:國標(biāo)微孔葉酸

        嚴(yán) 燁,鄒 力,舒 靜,王 瑛,唐 欣,樊 成

        (1. 西安悟空檢測科技有限公司,陜西西安 710065;2. 陜西省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)研究院,陜西西安 710048)

        國標(biāo)試管法與試劑盒微孔法檢測嬰幼兒奶粉中葉酸含量的結(jié)果比較

        嚴(yán) 燁1,鄒 力2,舒 靜2,王 瑛2,唐 欣1,樊 成2

        (1. 西安悟空檢測科技有限公司,陜西西安 710065;2. 陜西省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)研究院,陜西西安 710048)

        采用國標(biāo)試管法GB 5413.16和微孔板形式的微生物法,定量檢測6罐嬰幼兒配方羊奶粉中的葉酸含量。國標(biāo)試管法檢測YNF1-1,YNF1-2,YNF2-1,YNF2-2,YNF3-1及YNF3-2的葉酸結(jié)果分別為118.5,112.3,105.9,97.5,89.5,97.6 μg/100 g;試劑盒微孔法檢測6個(gè)樣品的葉酸含量分別為129.9,125.8,101.4,102.3,99.0,100.4 μg/100 g。結(jié)果表明,同一產(chǎn)品不同個(gè)體之間的葉酸含量存在差異,國標(biāo)試管法的穩(wěn)定性低于試劑盒微孔法??稍谝欢〞r(shí)間內(nèi)用試劑盒微孔法對(duì)國標(biāo)試管法進(jìn)行驗(yàn)證和偏差值評(píng)定,確保檢測結(jié)果真實(shí)反映樣品中葉酸含量。

        GB 5413.16;微孔板;葉酸

        (1. Xi'an Wukong Testing Technology Co., Ltd., Xi'an, Shaanxi 710065, China;2. Shaanxi Product Quality Supervision and Inspection Research Institute,Xi'an,Shaanxi 710048,China)

        葉酸(Folic acid),即通常所說的VB9,是微生物B復(fù)合體之一,是嬰幼兒乳粉中規(guī)定添加的營養(yǎng)成分[1-3]。葉酸具有促進(jìn)骨髓中幼細(xì)胞成熟的作用,人體缺乏葉酸可引起巨紅細(xì)胞性貧血癥或白細(xì)胞減少癥[4]、腦卒中[5]、血管性癡呆[6]等。所以,對(duì)于嬰幼兒奶粉中葉酸含量的檢測監(jiān)測非常重要。

        葉酸的測定方法有間接熒光定量法[7-8]、高效液相色譜法[9-10]、微生物濁度法[11-12]、差示脈沖溶出法[13]。國家標(biāo)準(zhǔn)參考微生物濁度法進(jìn)行制定,原理是利用干酪乳桿菌 (Lactobacillus casei) ATCC 7469 對(duì)葉酸的特異性,通過其在含有葉酸的樣品中生長產(chǎn)生形成的光密度來測定葉酸含量[14]。葉酸檢測試劑盒同樣利用微生物方法,將樣品提取液和葉酸檢測用培養(yǎng)基加入包被有鼠李糖桿菌(Lactobacillus rhamnosus)的微孔板中,該菌的生長情況取決于葉酸的含量。

        采用2種不同的微生物方法對(duì)6罐某品牌嬰幼兒配方羊奶粉中葉酸含量檢測,對(duì)比2種方法的差異性。

        1 材料與方法

        市場市售嬰幼兒配方羊奶粉,某品牌金裝嬰兒配方羊奶粉、金裝較大嬰兒配方羊奶粉及金裝幼兒配方羊奶粉,每種各購買2罐,分別編號(hào)為YNF1-1, YNF1-2, YNF2-1, YNF2-2, YNF3-1, YNF3-2。

        SPX-80SH-Ⅱ型生化培養(yǎng)箱,上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司產(chǎn)品;SM800型酶標(biāo)儀,上海永創(chuàng)醫(yī)療器械有限公司產(chǎn)品。

        乳酸桿菌肉湯培養(yǎng)基(生化級(jí),批號(hào)1610171)、乳酸桿菌瓊脂培養(yǎng)基(生化級(jí),批號(hào)1611161),購自北京陸橋技術(shù)股份有限公司;葉酸檢測培養(yǎng)基(生化級(jí),批號(hào):4020410),購自美國BD醫(yī)療器械有限公司;干酪乳桿菌(生化級(jí),批號(hào)233-25-1),購自美國ATCC標(biāo)準(zhǔn)菌株保存庫;葉酸標(biāo)準(zhǔn)品(分析純,批號(hào):30717),購自德國Dr. Ehrenstorfer Gmbh公司;葉酸檢測試劑盒(生化級(jí),批號(hào)KF42724),購自德國拜發(fā)R-Biopharm公司。

        1.3.1 國標(biāo)試管法[13]

        (1) 樣品待測液制備。稱取2.000 g左右樣品置于50 mL燒杯中,加入20 mL蒸餾水復(fù)溶,轉(zhuǎn)移定容至100 mL容量瓶中,量取5 mL定容至250 mL容量瓶中,加水定容,再從250 mL容量瓶中吸取10 mL溶液加入100 mL容量瓶中,用50 mmol/L的磷酸鹽緩沖液(稱取5.85 g磷酸二氫鉀,1.22 g磷酸氫二鉀,用1 000 mL水溶解;使用前按0.5 g/100 mL 加入抗壞血酸)定容,即為樣品待測液,稀釋倍數(shù)為50 000。

        (2) 接種菌懸液制備。標(biāo)準(zhǔn)菌株活化后保藏于乳酸桿菌瓊脂斜面上備用;試管用活性洗潔劑清洗干凈,烘干,分裝10 mL乳酸桿菌肉湯培養(yǎng)基,于121 ℃條件下滅菌15 min;冷卻后接種干酪乳桿菌,于36±1 ℃條件下培養(yǎng)18 h,然后將菌懸液移至無菌離心管中,以轉(zhuǎn)速4 000 r/min離心5 min,傾倒上清液,加入10 mL 0.85%滅菌生理鹽水,振蕩混勻,再以轉(zhuǎn)速4 000 r/min離心5 min,傾倒上清液,重復(fù)清洗菌體3次后,加入10 mL 滅菌生理鹽水復(fù)懸菌體。吸取1 mL菌懸液加入10 mL滅菌生理鹽水中混勻,調(diào)整透光率至60%~80%,即為接種菌懸液。

        (3) 葉酸標(biāo)準(zhǔn)工作液最終質(zhì)量濃度為0.05 ng/mL及0.1 ng/mL。葉酸檢測用培養(yǎng)基制備按照標(biāo)簽說明配制備用。

        (4) 檢測管制備。采用9個(gè)梯度,3個(gè)平行。按國標(biāo)試管法中順序加入蒸餾水、標(biāo)準(zhǔn)工作液和葉酸測定用培養(yǎng)基于培養(yǎng)管中。試管S2~S10中,相當(dāng)于葉酸含量為 0, 0.05, 0.10, 0.15, 0.20, 0.25, 0.30,0.40,0.50 ng/100 g。按試劑盒微孔法中順序在測定用培養(yǎng)基試管中加入蒸餾水、試樣和葉酸。

        (5) 滅菌。將標(biāo)準(zhǔn)曲線管和試樣管于121 ℃條件下滅菌5 min,迅速冷卻到室溫。

        (6) 接種。無菌條件下每管中均加入1滴(約50 μL) 接種菌懸液,加蓋,充分振蕩混勻所有試管(標(biāo)準(zhǔn)曲線未接種空白管S1除外)。

        (7) 培養(yǎng)。在36±1 ℃條件下培養(yǎng)16~24 h。對(duì)每支試管進(jìn)行目測檢查,未接種管內(nèi)培養(yǎng)液應(yīng)是澄清的,標(biāo)準(zhǔn)曲線管和試樣管中培養(yǎng)液的濁度應(yīng)有梯度。

        (8) 測定。以接種空白管(國標(biāo)試管法中試管號(hào)S2) 作對(duì)照,取出最高濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線管S7,振蕩5 s,于波長550 nm處讀取光密度,放回重新培養(yǎng)。2 h 后同等條件重新測該管的光密度,如果2次光密度的絕對(duì)差結(jié)果≤2%,則取出全部檢驗(yàn)管測定標(biāo)準(zhǔn)溶液和試樣的光密度。

        (9) 以標(biāo)準(zhǔn)曲線管葉酸含量作橫坐標(biāo)、光密度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線[15]。用樣品吸光度查圖得到數(shù)值,按照公式進(jìn)行計(jì)算。

        式中:X——樣品中葉酸含量,μg/100 g;

        Cx——樣品4個(gè)梯度總平均值,ng;

        f——稀釋倍數(shù),50 000;

        m——稱樣量。

        1.3.2 試劑盒微孔法

        (1) 樣品待測液制備。秤取1.000 g左右樣品置于50 mL具塞離心管中,加入20 mL左右磷酸鹽緩沖液(7.8 g 磷酸二氫鈉和1 g 抗壞血酸鈉溶解于1 L蒸餾水中,校正pH值至7.2;每天新配緩沖液) 復(fù)溶混勻,再添加磷酸鹽緩沖液至40 mL刻度。蓋塞后于95 ℃水浴中保存30 min,期間振蕩3次;迅速冷卻后以轉(zhuǎn)速8 000 r/min離心5 min;吸取上清液在1.5 mL離心管中梯度稀釋至300倍。

        (2) 培養(yǎng)基制備。將10 mL無菌水和1 mL試劑盒中緩沖液加入自帶培養(yǎng)基瓶中,渦旋振蕩混勻,置于95 mL水浴中保溫5 min;迅速冷卻,過0.22 μm無菌膜備用。

        (3) 標(biāo)準(zhǔn)溶液制備。用自帶標(biāo)準(zhǔn)溶液配制6個(gè)梯度, 即 0, 160, 320, 640, 960, 1 280 ng/100 g。

        (4) 加樣。按照需要取適量孔板,移取150 μL葉酸培養(yǎng)基至微孔中,移取150 μL標(biāo)準(zhǔn)品或稀釋樣品至指定的微孔中,用黏合箔蓋住板條或微孔(除去黏合箔上的保護(hù)層,將其平放在微孔條上,用手將黏合箔平壓,使其充分封閉微孔板條)。

        (5) 培養(yǎng)。在37±1 ℃黑暗條件下孵育48 h。(6) 測量。用酶標(biāo)儀于波長550 nm處讀取吸光度。

        (7) 以標(biāo)準(zhǔn)曲線管葉酸含量作橫坐標(biāo)、光密度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        2 結(jié)果分析

        國標(biāo)試管法標(biāo)準(zhǔn)曲線結(jié)果見表1,國標(biāo)試管法標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖1。

        由表1可知,國標(biāo)試管法測得吸光度逐漸增大,同時(shí)標(biāo)準(zhǔn)差隨著葉酸含量的增大而增加,說明隨著菌體的不斷增加,培養(yǎng)液中營養(yǎng)成分變化更加明顯,導(dǎo)致細(xì)胞數(shù)量差異性增大。同時(shí)也發(fā)現(xiàn),在培養(yǎng)時(shí)間相對(duì)較長(24 h) 的情況下,S10試管中吸光度也不斷增加,不能滿足≤2%的情況。

        表1 國標(biāo)試管法標(biāo)準(zhǔn)曲線結(jié)果

        圖1 國標(biāo)試管法標(biāo)準(zhǔn)曲線

        由圖1可知,標(biāo)準(zhǔn)曲線的增長趨勢符合微生物生長曲線趨勢,包含對(duì)數(shù)增長期和穩(wěn)定期,說明國標(biāo)試管法可以滿足測定樣品中葉酸含量的要求。在曲線處理方面采取了手繪曲線的方式,同時(shí)在大量的檢測試驗(yàn)過程中發(fā)現(xiàn),在曲線點(diǎn)分散比較均勻的條件下,可以采用Origin等數(shù)據(jù)處理軟件擬合多元曲線,進(jìn)行單變量求解,便于計(jì)算最終的結(jié)果。一般情況下,不能擬合一次曲線,防止產(chǎn)生較大的誤差。

        試劑盒微孔法標(biāo)準(zhǔn)曲線結(jié)果見表2,試劑盒微孔法標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖2。

        表2 試劑盒微孔法標(biāo)準(zhǔn)曲線結(jié)果

        由表2可知,試劑盒微孔法吸光度增加趨勢明顯,測定標(biāo)準(zhǔn)曲線吸光度的標(biāo)準(zhǔn)偏差保持在1%左右。同一批次試劑盒,培養(yǎng)時(shí)間固定,重現(xiàn)性良好。

        由圖2可知,標(biāo)準(zhǔn)曲線的Origin擬合結(jié)果符合微生物生長曲線,對(duì)數(shù)期明顯。

        國標(biāo)試管法和試劑盒微孔法測定結(jié)果見表3。

        圖2 試劑盒微孔法標(biāo)準(zhǔn)曲線

        表3 國標(biāo)試管法和試劑盒微孔法測定結(jié)果

        由表3可知,國標(biāo)試管法測得結(jié)果各梯度之間呈增加趨勢,各平行之間偏離度較微孔法測量結(jié)果大,21組數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)差大于1%、3組數(shù)據(jù)大于2%,這是由于大體積菌液增長的不穩(wěn)定性造成的。微孔法各樣品測定值之間偏差較小,標(biāo)準(zhǔn)差均小于1%。說明試劑盒微孔法的穩(wěn)定性強(qiáng)于國標(biāo)法。

        國標(biāo)試管法和試劑盒微孔法計(jì)算結(jié)果比較見表4。

        表4 國標(biāo)試管法和試劑盒微孔法計(jì)算結(jié)果比較/ μg·(100 g)-1

        由表4可知,國標(biāo)試管法檢測結(jié)果和試劑盒微孔法檢測結(jié)果之間存在差異,3組對(duì)比標(biāo)準(zhǔn)差大于5%,小于10%,說明2種方法在一定條件下是可以相互驗(yàn)證的。同時(shí)發(fā)現(xiàn),同一樣品不同個(gè)體之間的葉酸含量存在差異,說明葉酸在樣品中的分布不均勻。

        3 結(jié)論

        采用國標(biāo)試管法和試劑盒微孔法分別對(duì)6罐嬰幼兒配方羊奶粉中的葉酸含量進(jìn)行檢測,其中標(biāo)準(zhǔn)曲線趨勢相近,符合一般微生物生長曲線趨勢;國標(biāo)試管法檢測結(jié)果各吸光度梯度平行間偏差大于試劑盒微孔法檢測結(jié)果間偏差,國標(biāo)試管法的穩(wěn)定性弱于試劑盒微孔法;國標(biāo)試管法檢測所得葉酸含量同試劑盒微孔法檢測所得值有差異,但在允許范圍內(nèi);同一樣品不同個(gè)體之間的葉酸含量存在差異,表明葉酸在樣品中的分布存在不均勻性。說明在試劑盒微孔法原理同國標(biāo)試管法原理相同的條件下,試劑盒微孔法的穩(wěn)定性和重現(xiàn)性強(qiáng)于國標(biāo)試管法。因此可在規(guī)定時(shí)間間隔內(nèi)采用試劑盒微孔法對(duì)國標(biāo)試管法進(jìn)行驗(yàn)證,評(píng)判檢測結(jié)果偏差值,確保測得葉酸含量結(jié)果能準(zhǔn)確反映樣品中葉酸實(shí)際含量。

        [1]楊玉柱,王儲(chǔ)炎,焦必寧.葉酸的研究進(jìn)展 [J].農(nóng)產(chǎn)品加工 (學(xué)刊), 2006(5): 31-35, 39.

        [2]黑龍江省乳品研究所,內(nèi)蒙古輕工科研所,上海食品研究所.GB 10765—2010食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)嬰兒配方食品 [S].北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社,2011.

        [3]上海食品研究所.GB 10767—2010食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)較大嬰兒和幼兒配方食品 [S].北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社,2011.

        [4]吳定,高云.食品營養(yǎng)與衛(wèi)生保健 [M].北京:中國計(jì)量出版社,2008:84-85.

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        [7]蘇耀東,于娟,秦立俊.間接熒光法測定奶粉中葉酸[J].理化檢驗(yàn),2007,43(2):105-107.

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        [14]國家乳制品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)中心.GB 5413.16—2010食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)嬰幼兒食品和乳品中葉酸(葉酸鹽活性)的測定 [S].北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社,2010.

        [15]唐靚,李躍中,王晗,等.國標(biāo)《食品中葉酸的測定》的標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制與計(jì)算 [J].中國衛(wèi)生檢驗(yàn)雜志,2009,19(7): 1 682-1 683.◇

        TS252.7

        A

        10.16693/j.cnki.1671-9646(X).2017.10.016

        1671-9646(2017) 10a-0054-04

        2017-08-25

        嚴(yán) 燁(1986— ),男,碩士,工程師,研究方向?yàn)槲⑸餀z驗(yàn)。

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