白成松,盧紅梅,楊新,任勰珂,安家靜,陳莉*
(1.貴州大學(xué)釀酒與食品工程學(xué)院,貴州貴陽(yáng)550025;2.貴州省發(fā)酵工程與生物制藥重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,貴州貴陽(yáng)550025)
赤水曬醋一株產(chǎn)氣微生物的分離鑒定
白成松1,盧紅梅2,楊新2,任勰珂2,安家靜2,陳莉1*
(1.貴州大學(xué)釀酒與食品工程學(xué)院,貴州貴陽(yáng)550025;2.貴州省發(fā)酵工程與生物制藥重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,貴州貴陽(yáng)550025)
為了解赤水曬醋產(chǎn)氣原因,采用多種培養(yǎng)基分離和計(jì)數(shù)產(chǎn)氣微生物,并檢測(cè)其生理生化特征,生長(zhǎng)特性以及16S rDNA基因序列分析。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,從變質(zhì)曬醋中分離到一株產(chǎn)氣微生物,編號(hào)為N9,革蘭氏陽(yáng)性,有芽孢,最適生長(zhǎng)溫度為45℃,最適生長(zhǎng)pH值為5.5,最適生長(zhǎng)鹽度(氯化鈉含量)為1%,繁殖能力強(qiáng)。經(jīng)過(guò)16S rDNA基因序列以及系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)分析可以鑒定該菌為產(chǎn)堿普羅威登斯菌(Providencia alcalifaciens)。
赤水曬醋;產(chǎn)氣微生物;分離鑒定;特性研究
食醋是一種酸味調(diào)味劑,深受人們的喜愛(ài),根據(jù)研究表明食醋具有抗菌殺菌、增強(qiáng)免疫力、預(yù)防骨質(zhì)疏松等功能[1-2]。食醋按生產(chǎn)方法的不同有釀造食醋和人工合成食醋。赤水曬醋作為傳統(tǒng)釀造食醋中的一種,獨(dú)具特色。赤水曬醋采用固態(tài)發(fā)酵繁殖產(chǎn)生天然醋酸菌,醋坯和成品醋均經(jīng)日光暴曬,因此而得名“曬醋”。原料以麩皮為主,百余種名貴中草藥配方制作醋曲;優(yōu)質(zhì)大米、糯米的精選、蒸煮;麥麩、小麥及醋曲與大米粥拌醅;醋醅室內(nèi)發(fā)酵;醋醅裝壇;日光曝曬;醋醅浸淋;產(chǎn)品精釀;滅菌等三十六道工序。整個(gè)生產(chǎn)周期要經(jīng)過(guò)兩、三年以上才能成形。曬醋具有香、酸、醇、濃等特點(diǎn),色呈紅棕色,味酸柔和,稍有甜口,不澀口,不霉變,香氣濃郁。雖然赤水曬醋的酸度達(dá)到6°T,不需要添加其他防腐劑,但由于赤水曬醋是傳統(tǒng)釀造食醋,受天時(shí)地利、人工操作的影響很大,僅依賴(lài)高酸度,其安全性并非絕對(duì)能得到保障[3]。
2015年上半年,某曬醋公司的食醋出現(xiàn)嚴(yán)重的產(chǎn)氣現(xiàn)象明顯,導(dǎo)致食醋脹袋、脹瓶,甚至爆瓶,這不僅影響了曬醋在消費(fèi)者中的形象,還給公司帶來(lái)了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。近年來(lái),國(guó)內(nèi)已有關(guān)于釀造食醋出現(xiàn)產(chǎn)氣現(xiàn)象的相關(guān)的研究,張懷敏等[4]研究了導(dǎo)致山西老陳醋脹袋的原因,其研究結(jié)果顯示,導(dǎo)致老陳醋產(chǎn)氣的主要原因是產(chǎn)氣芽孢桿菌。鄭宇等[5]比較分析了正常食醋和脹氣食醋樣品的理化指標(biāo)和活菌數(shù)的差異,并分析了脹氣食醋樣品中主要的氣體成分,分離鑒定了食醋中潛在的污染微生物。本研究從赤水產(chǎn)氣曬醋中分離一株產(chǎn)氣的微生物,進(jìn)行分子生物學(xué)鑒定,并研究其生長(zhǎng)特性,為防治赤水曬醋產(chǎn)氣提供重要的參考。
1.1 材料與試劑
赤水食醋樣品:某曬醋公司提供產(chǎn)氣食醋(問(wèn)題食醋)和正常食醋;碘化鉀、碘(均為分析純):貴州賽蘭博科學(xué)儀器有限公司;無(wú)水乙醇、體積分?jǐn)?shù)為95%乙醇(均為分析純):天津市富宇精細(xì)化工有限公司;氯化鈉(分析純):成都臨江化工廠;剛果紅:天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;脫氧核糖核苷三磷酸(deoxy-ribonucleoside,dNTP)、Taq DNA聚合酶、MgCl2:上海生工生物工程公司。
平板計(jì)數(shù)瓊脂、馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基、孟加拉紅培養(yǎng)基、改良高氏一號(hào)、麥芽浸粉肉湯培養(yǎng)基:北京陸橋技術(shù)股份有限公司;乳酸細(xì)菌培養(yǎng)基:英國(guó)Oxoid公司;LB液體培養(yǎng)基(pH3.5):按相關(guān)文獻(xiàn)進(jìn)行配制。
1.2 儀器與設(shè)備
DMS-653廣西生物數(shù)碼顯微鏡:深圳市博宇儀器有限公司;∑IGMA電子掃描顯微鏡:北京普瑞賽司儀器有限公司;SPX-250B智能型生化培養(yǎng)箱、DHG-9140B(101-2B)智能型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱:上?,槴\實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;YXQ-LS-5DS11立式壓力蒸汽滅菌器:上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;NDJ-1旋轉(zhuǎn)粘度計(jì):上海天平儀器廠;SITA-t15動(dòng)態(tài)表面張力儀:桂寧(上海)實(shí)驗(yàn)器材有限公司;752N紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):上海元析儀器有限公司;5531型PCR擴(kuò)增儀:上海珂淮儀器有限公司;DYY-2C雙穩(wěn)定時(shí)電泳儀:上海六一生物科技有限公司。
1.3 實(shí)驗(yàn)方法
1.3.1 微生物的分離、純化
無(wú)菌條件下吸取混勻的問(wèn)題食醋0.2 mL,分別加入裝有不同培養(yǎng)基(平板計(jì)數(shù)瓊脂/馬鈴薯葡萄糖瓊脂/孟加拉紅/改良高氏一號(hào)/麥芽浸粉肉湯/乳酸細(xì)菌培養(yǎng)基)的培養(yǎng)皿中,用無(wú)菌涂布棒在培養(yǎng)基表面輕輕涂布均勻,再用無(wú)菌膜封培養(yǎng)皿,然后分別倒置于普通恒溫培養(yǎng)箱和厭氧培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3~5d,培養(yǎng)溫度30℃。同時(shí)以正常食醋作為對(duì)照。食醋中微生物菌落總數(shù)、大腸菌群的測(cè)定分別參照國(guó)標(biāo)GB 4789.2—2010《食品微生物學(xué)檢驗(yàn)菌落總數(shù)測(cè)定》和GB 4789.38—2012《食品微生物學(xué)檢驗(yàn)大腸埃希氏菌計(jì)數(shù)》中的方法執(zhí)行[6-7]。
將分離到的微生物用相應(yīng)的固體培養(yǎng)基進(jìn)行劃線分離純化,傳代3次。并用相應(yīng)的斜面培養(yǎng)基在4℃條件下保存?zhèn)溆谩14娴木昝總€(gè)月轉(zhuǎn)接1次。
1.3.2 產(chǎn)氣和黏度檢測(cè)實(shí)驗(yàn)
配制LB培養(yǎng)基,調(diào)節(jié)pH至3.5,分裝到試管中,并加入杜氏小管,然后進(jìn)行121℃、20min濕熱滅菌。選擇正常的赤水曬醋,分裝到試管中,并加入杜氏小管,然后進(jìn)行121℃、20 min濕熱滅菌。
將分離出的微生物接種到上述培養(yǎng)基和正常的赤水曬醋中,30℃培養(yǎng)3~5 d,觀察小導(dǎo)管中是否有氣泡以及檢測(cè)培養(yǎng)基的黏度變化[8-9]。同時(shí),以不接種作為對(duì)照。
1.3.3 微生物形態(tài)觀察以及生理生化測(cè)定
將分離出來(lái)的主要微生物進(jìn)行菌落形態(tài)觀察(形態(tài)、顏色、邊緣、透明度等特征)以及個(gè)體形態(tài)觀察(染色顯微鏡觀察)。按文獻(xiàn)《伯杰細(xì)菌鑒定手冊(cè)》[10]和《常見(jiàn)細(xì)菌鑒定手冊(cè)》[11]分別對(duì)獲得的微生物進(jìn)行生理生化實(shí)驗(yàn)。
1.3.4 16S rDNA基因序列分析
微生物總DNA的提?。豪肊zup柱式細(xì)菌基因組DNA抽提試劑盒提取實(shí)驗(yàn)菌株的DNA,其具體步驟參見(jiàn)試劑盒的說(shuō)明書(shū)。DNA提取產(chǎn)物保存于-20℃冰箱中。
聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增16S rDNA:以提取的基因組DNA為模板,利用通用引物正向引物27F和反向引物1492R進(jìn)行PCR擴(kuò)增。通用引物ITS1和ITS4被用于rDNA ITS區(qū)段的PCR擴(kuò)增。它們的序列是:ITS1:TCCGTAGGTGAACCTGCGG,ITS4:TCCTCCGCTTATTGATATGC。PCR反應(yīng)在標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)體系中完成。PCR擴(kuò)增條件為:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性50 s,56℃復(fù)性50s,72℃延伸90s,30個(gè)循環(huán);最后于72℃延伸10min。采用1%的瓊脂糖凝膠電泳對(duì)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行檢測(cè)。
DNA測(cè)序:純化后的目的基因送上海生工公司進(jìn)行測(cè)序。測(cè)序結(jié)果用Chromas軟件參照正反序列圖譜進(jìn)行人工校正。
系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)的構(gòu)建:用BLAST將測(cè)序結(jié)果在美國(guó)國(guó)家生物技術(shù)信息中心(national center of biotechnology information,NCBI)中與已知細(xì)菌的16S rDNA基因序列進(jìn)行同源性分析,并用MEGA5.10軟件的鄰接法(neighborjoining,N-J)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),具體確定菌株的種屬。
1.3.5 微生物生長(zhǎng)特性研究[12-15]
活化菌種:將分離的主要的菌株接種在裝液量為100mL/ 250mLLB液體培養(yǎng)基中,在30℃條件下培養(yǎng)24 h。
培養(yǎng)溫度的影響:接入10%活化菌株于裝液量為100mL/ 250mLLB液體培養(yǎng)基中,分別置于30℃、35℃、40℃、45℃、50℃、55℃、60℃條件下,靜置培養(yǎng)24 h,搖勻后測(cè)定各菌液的OD600nm值,并繪制溫度對(duì)菌株生長(zhǎng)影響的曲線。
鹽度對(duì)微生物生長(zhǎng)的影響:分別配制含有0、0.5%、1%、2%、3%、4%、5%、6%、7%、8%NaCl的LB液體培養(yǎng)基,然后進(jìn)行121℃、20min濕熱滅菌。再接入10%的活化菌種,靜置培養(yǎng)24 h,搖勻后測(cè)定各菌液的OD600nm值,并繪制鹽度對(duì)菌株生長(zhǎng)影響的曲線。
pH對(duì)微生物生長(zhǎng)的影響:配制LB培養(yǎng)基,分裝于250mL的三角瓶中,并調(diào)節(jié)pH值至2.5、3.5、4.5、5.5、6.5、7.5、8.5、9.5、10.5,然后進(jìn)行121℃、20 min濕熱滅菌,以滅菌后實(shí)際測(cè)得的pH為準(zhǔn)。然后接入10%活化菌種,靜置培養(yǎng)24 h,搖勻后測(cè)定各菌液的OD600nm值,并繪制pH對(duì)菌株生長(zhǎng)影響的曲線。
微生物生長(zhǎng)曲線繪制:將活化的菌種接種到LB培養(yǎng)基最適生長(zhǎng)鹽度、最適生長(zhǎng)pH中,置于其最適生長(zhǎng)溫度下,靜置培養(yǎng),培養(yǎng)前的16 h,每隔4 h測(cè)量1次OD600nm值,培養(yǎng)16 h后,每隔8 h測(cè)1次OD600nm值,連續(xù)測(cè)5 d。
2.1 問(wèn)題食醋中產(chǎn)氣微生物形態(tài)學(xué)觀察
采用不同培養(yǎng)基(平板計(jì)數(shù)瓊脂、馬鈴薯葡萄糖瓊脂、孟加拉紅、改良高氏一號(hào)、麥芽浸粉肉湯、乳酸細(xì)菌培養(yǎng)基)在好氧和厭氧條件下培養(yǎng)變質(zhì)食醋。研究發(fā)現(xiàn),只有用平板計(jì)數(shù)瓊脂培養(yǎng)基在厭氧條件下才長(zhǎng)出微生物,并且數(shù)量不多,其他的培養(yǎng)基無(wú)論是在好氧還是厭氧條件下都不能長(zhǎng)出微生物。分離出的微生物經(jīng)過(guò)產(chǎn)氣和黏稠增加實(shí)驗(yàn),得到主要的1株微生物,編號(hào)為N9,其在LB液體培養(yǎng)基中產(chǎn)氣明顯,在正常的赤水曬醋中產(chǎn)氣緩慢,菌株N9菌落形態(tài)及電鏡圖見(jiàn)圖1。
由圖1(A)可知,菌株N9菌落呈黃色,表面濕潤(rùn)光滑,邊緣整齊,易挑起,透明;菌株N11菌落呈淺黃色,表面濕潤(rùn)光滑,邊緣不整齊,易挑起,不透明。由圖1(B)可知,該株菌為桿狀,長(zhǎng)約1.423 6 μm,直徑約0.694 4 μm。
2.2 菌株N9生理生化測(cè)定結(jié)果
按文獻(xiàn)《伯杰細(xì)菌鑒定手冊(cè)》和《常見(jiàn)細(xì)菌鑒定手冊(cè)》對(duì)菌株N9進(jìn)行生理生化測(cè)定,測(cè)定結(jié)果見(jiàn)表1。
2.3 菌株N9分子生物學(xué)鑒定
采用16S rDNA測(cè)序方法對(duì)菌株N9進(jìn)行分子生物學(xué)鑒定,對(duì)DNA進(jìn)行序列擴(kuò)增,擴(kuò)增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),將所得測(cè)序結(jié)果輸入NCBI進(jìn)行BLAST對(duì)比,采用N-J法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),結(jié)果見(jiàn)圖2。
圖2 菌株N9基于16S rDNA基因序列建立的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)Fig.2 Phylogenetic tree of strain N9 based on 16S rDNA sequence
由圖2可知,菌株N9的16S rDNA基因序列比對(duì)結(jié)果與為產(chǎn)堿普羅威登斯菌(Providencia alcalifaciens)相似度為98%,與Providencia alcalifaciens最為接近。結(jié)合菌株N9的細(xì)胞形態(tài)、菌落形態(tài)、生理生化特征,可以鑒定菌株N9為產(chǎn)堿普羅威登斯菌(Providencia alcalifaciens)。
2.4 菌株N9生長(zhǎng)特性的研究
2.4.1 培養(yǎng)溫度對(duì)菌株N9生長(zhǎng)的影響
圖3 培養(yǎng)溫度對(duì)菌株N9生長(zhǎng)的影響Fig.3 Effects of culture temperature on the growth of strain N9
由圖3可知,菌株N9在培養(yǎng)溫度30~40℃范圍內(nèi),OD600nm值上升比較緩慢;在培養(yǎng)溫度40~45℃范圍內(nèi),OD600nm值上升較快;在培養(yǎng)溫度45℃時(shí),OD600nm值達(dá)到最大值;培養(yǎng)溫度>45℃之后,OD600nm值先快速下降,再緩慢下降,最后OD600nm值接近為0。因此,菌株N9的最適生長(zhǎng)溫度為45℃。2.4.2 pH對(duì)菌株N9生長(zhǎng)的影響
由圖4可知,菌株N9在pH 2.5~5.5,OD600nm值逐漸增加;菌株N9在pH值為5.5時(shí),OD600nm值達(dá)到最大值;菌株N9在pH>5.5之后,OD600nm值快速的下降。因此,菌株N9最適生長(zhǎng)pH值為5.5。
圖4pH對(duì)菌株N9生長(zhǎng)的影響Fig.4 Effects of pH on the growth of strain N9
2.4.3 鹽度對(duì)菌株N9生長(zhǎng)的影響
圖5 鹽度對(duì)菌株N9生長(zhǎng)的影響Fig.5 Effects of salinity on the growth of strain N9
由圖5可知,菌株N9在鹽度為0~1%時(shí),OD600nm值逐漸增加;菌株N9在鹽度為1%時(shí),OD600nm值達(dá)到最大值;菌株N9在鹽度>1%之后,OD600nm值逐漸下降。因此,菌株N9的最適生長(zhǎng)鹽度為1%。
2.4.4 菌株N9生長(zhǎng)曲線
圖6 菌株N9的生長(zhǎng)曲線Fig.6 Growth curves of strain N9
由圖6可知,在0~16 h之間,菌株N9處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,菌體快速繁殖,OD600nm值變化最大,隨后由于營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的大量消耗,在16~24 h之間,菌株N9生長(zhǎng)開(kāi)始變緩,24~64 h之間菌株N9進(jìn)入穩(wěn)定期,細(xì)菌數(shù)目和代謝產(chǎn)物達(dá)到最高水平,菌體OD600nm值較穩(wěn)定,64 h后菌株N9進(jìn)入衰亡期,菌體開(kāi)始死亡,OD600nm值開(kāi)始下降,從OD600nm值變化趨勢(shì)來(lái)看,菌株N9具有較快的生長(zhǎng)速度,對(duì)數(shù)期開(kāi)始比較早。
通過(guò)用不同培養(yǎng)基在好氧和厭氧條件下培養(yǎng)變質(zhì)食醋,結(jié)果發(fā)現(xiàn),只有用平板計(jì)數(shù)瓊脂在厭氧條件下才長(zhǎng)出微生物,并且數(shù)量不多,其他的培養(yǎng)基無(wú)論是在好氧還是厭氧條件下微生物都不生長(zhǎng)。分離出的微生物經(jīng)過(guò)產(chǎn)氣驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),得到主要的一株產(chǎn)氣微生物。通過(guò)檢測(cè)其生理生化特征,以及16S rDNA基因序列分析,鑒定出該菌為產(chǎn)堿普羅威登斯菌(Providencia alcalifaciens)。通過(guò)對(duì)該株菌做生長(zhǎng)特性實(shí)驗(yàn)得知,該株菌的最適生長(zhǎng)溫度為45℃,最適生長(zhǎng)pH為5.5,最適生長(zhǎng)鹽度為1%,具有較快的生長(zhǎng)速度,對(duì)數(shù)期開(kāi)始比較早。充分了解菌株N9的生長(zhǎng)特性,為防治曬醋產(chǎn)氣提供一定的理論基礎(chǔ)。
[1]徐根娣,冷云偉.食醋的功能性[J].江蘇調(diào)味副食品,2008,26(1):27-29.
[2]聶志強(qiáng),汪越男,鄭宇,等.傳統(tǒng)食醋釀造過(guò)程中微生物群落的多樣性及功能研究進(jìn)展[J].中國(guó)釀造,2012,31(7):1-5.
[3]李盈穎,高雯,周幗萍.山西老陳醋樣品的污染微生物分析[J].食品科學(xué),2016,37(12):226-231.
[4]張懷敏,段國(guó)鋒,李江涌,等.導(dǎo)致老陳醋產(chǎn)氣微生物的分離和鑒定[J].山西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2016,36(8):594-598.
[5]鄭宇,劉紀(jì)偉,張祥龍,等.傳統(tǒng)食醋中潛在污染微生物的分離鑒定[J].現(xiàn)代食品科技,2016,32(11):334-340.
[6]中華人民共和國(guó)衛(wèi)生部.GB 4789.2—2010食品微生物學(xué)檢驗(yàn)菌落總數(shù)測(cè)定[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2010.
[7]中華人民共和國(guó)衛(wèi)生部.GB 4789.38—2012食品微生物學(xué)檢驗(yàn)大腸埃希氏菌計(jì)數(shù)[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2012.
[8]劉慧,張紅星.現(xiàn)代食品微生物實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M].北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社,2006:262-265.
[9]周德慶.微生物學(xué)教程[M].北京:高等教育出版社,2011:99-103.
[10]東秀珠,蔡妙英.常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)[M].北京:科學(xué)出版社,2001:199-203.
[11]布坎南.伯杰細(xì)菌鑒定手冊(cè)[M].北京:科學(xué)出版社,1984:57-63.
[12]崔云,盧紅梅,張義明,等.食醋中微生物的分離與鑒定[J].中國(guó)釀造,2008,27(22):33-35.
[13]周蓮,陳莉,盧紅梅.茅臺(tái)地區(qū)醬香型酒糟中高溫細(xì)菌的分離鑒定[J].中國(guó)釀造,2015,34(3):61-65.
[14]王玉梅,盧紅梅,崔云.預(yù)防食醋返渾的初步研究[J].中國(guó)釀造,2009,28(5):131-133.
[15]崔云.食醋返渾機(jī)理的研究[D].貴陽(yáng):貴州大學(xué),2009.
Isolation and identification of a gas-producing bacterium from Chishui sun vinegar
BAI Chengsong1,LU Hongmei2,YANG Xin2,REN Xieke2,AN Jiajing2,CHEN Li1*
(1.School of Liquor and Food Engineering,Guizhou University,Guiyang 550025,China; 2.Guizhou Province Key Laboratory of Fermentation Engineering and Biopharmacy,Guiyang 550025,China)
In order to figure out the aerogenesis reason of Chishui sun vinegar,using a variety of culture mediums to isolate and count gas-producing microorganism,and the physiological-biochemical characteristics of strains were detected and 16S rDNA gene sequence were analyzed.The results showed that one gram-positive bacterium with spore,coded as N9,was isolated from the samples of Chishui sun vinegar.The optimum growth temperature of the strain was 45℃,pH was 5.5 and the optimum growth salinity(NaCl content)was 1%.The strain had strong reproduction ability. Through the analysis of 16S rDNA gene sequences and phylogenetic tree analysis,the strain N9 was identified asProvidencia alcalifaciens.
Chishui sun vinegar;gas-producing microorganisms;isolation and identification;characteristic research
TS264.2
0254-5071(2017)06-0072-04
10.11882/j.issn.0254-5071.2017.06.015
2017-04-07
貴州大學(xué)研究生創(chuàng)新基金(2016055)
白成松(1991-),男,碩士研究生,研究方向發(fā)酵工程。
*通訊作者:陳莉(1981-),女,副教授,碩士,研究方向應(yīng)用微生物。