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        PRV定量PCR檢測方法的建立及其在豬精液檢測中的初步應用

        2017-01-13 06:35:58王婕敏張居作蔡文杰袁安文薛立群
        湖南畜牧獸醫(yī) 2016年2期
        關(guān)鍵詞:公豬精液定量

        聶 昂,王婕敏,張居作,蔡文杰,袁安文※,薛立群※

        (1.湖南農(nóng)業(yè)大學動物醫(yī)學院,湖南長沙410128;2.湖南省畜牧獸醫(yī)研究所,湖南長沙410131)

        PRV定量PCR檢測方法的建立及其在豬精液檢測中的初步應用

        聶 昂1,王婕敏1,張居作1,蔡文杰2,袁安文1※,薛立群1※

        (1.湖南農(nóng)業(yè)大學動物醫(yī)學院,湖南長沙410128;2.湖南省畜牧獸醫(yī)研究所,湖南長沙410131)

        文章根據(jù)PRV基因序列,設計特異性引物擴增gH基因,構(gòu)建重組質(zhì)粒;優(yōu)化實驗條件,建立PRV SYBR Green I熒光定量PCR檢測方法。結(jié)果表明該方法的標準曲線線性關(guān)系良好,R 2=0.998,E=103.854%;特異性強,檢測豬細小病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬圓環(huán)2型病毒、豬乙腦病毒和豬瘟兔化弱毒疫苗等均無擴增曲線;靈敏度高,最低可檢測到的27.9拷貝;在公豬精液中最低可檢測到病毒量為16TCID50/100μL,可重復驗證,變異系數(shù)均低于3.5%;利用該方法對湖南省109份公豬精液樣品進行了檢測,發(fā)現(xiàn)20份陽性樣品,陽性率為18.35%,比國標普通PCR法檢出率高。該方法的建立將為PRV的流行病學調(diào)查提供可靠的技術(shù)支持。

        PRV;熒光定量PCR;公豬精液;流行病學

        豬偽狂犬病病毒(Pseudorabies virus,PRV)又稱豬皰疹病毒Ⅰ型,是危害養(yǎng)豬業(yè)的主要病原之一,主要引起仔豬死亡,母豬繁殖障礙(早產(chǎn),流產(chǎn),死胎,木乃伊胎);而成年豬多為潛伏感染[1]。豬偽狂犬病毒可以在豬群中水平傳播,也能夠通過公豬精液垂直傳播[2,3]。隨著人工授精技術(shù)在養(yǎng)豬業(yè)的推廣使用,病毒在豬群中的廣泛傳播的風險增加。為了掌握公豬精液中攜帶偽狂犬病毒的情況,有必要建立一種能夠在公豬精液中檢測出豬偽狂犬病毒的方法。熒光定量PCR技術(shù)是在普通PCR技術(shù)上發(fā)展起來的一種新的檢測技術(shù)。具有操作簡單快速、重復性好、特異性強、靈敏度高,可以準確定量檢測,能夠有效檢出早期感染和潛伏感染病毒的特點,現(xiàn)已在動物疫病檢測上廣泛應用[4]。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 病毒和疫苗

        豬偽狂犬病毒(PRV)分離株和豬細小病毒(PPV)分離株由湖南農(nóng)業(yè)大學動物醫(yī)學院臨床分子實驗室保存;豬圓環(huán)病毒2型(PCV2)毒株由湖南農(nóng)業(yè)大學動物醫(yī)學院功能蛋白組學實驗中心饋贈,豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV),豬瘟病毒(CSFV)和豬乙型腦炎病毒(JEV)均為疫苗株。

        1.1.2 主要試劑和儀器

        1.1.3 公豬精液樣品

        公豬精液樣品于2015年~2016年間采自湖南省內(nèi)15個豬場和人工授精站的公豬精液樣品共計109份,其中包括8個散養(yǎng)戶豬場的34份精液;5個規(guī)模化豬場的68份精液;2個人工授精站的7份精液。

        1.2 方法

        1.2.1 引物的設計

        比對GenBank中的多株P(guān)RV病毒gH基因序列,選取保守序列,參照PRV毒株(GenBank:NC_006151. 1)的gH基因,應用PrimerPremier5.0生物軟件設計了上游引物(PRV-F)和下游引物(PRV-R)由北京六合華大基因科技股份有限公司合成。

        1.2.2 標準品的制備

        運用PRV-F和PRV-R引物對提取的PRV DNA模板進行PCR擴增,反應程序為:94℃3min;94℃15s,62℃15s,72℃20s,35個循環(huán);72℃10min。PCR產(chǎn)物1.5%瓊脂糖凝膠電泳,切膠回收純化目的基因片段,與pMD-18T載體連接構(gòu)建重組質(zhì)粒,轉(zhuǎn)化進感受態(tài)細菌中,經(jīng)過藍白斑篩選,確定陽性菌落,大量培養(yǎng),提取陽性重組質(zhì)粒。對陽性重組質(zhì)粒進行PCR驗證和Eco I和HindⅢ雙酶切驗證,對驗證正確的陽性重組質(zhì)粒進行測序鑒定。用Nanodrop2000核酸分析儀對測序正確的重組質(zhì)粒進行濃度測定,計算拷貝數(shù)。

        1.2.3 PRV SYBRGreen I熒光定量PCR標準曲線的建立

        將PRV重組質(zhì)粒標準品進行10倍倍比系列稀釋,選取各稀釋梯度重組質(zhì)粒作模板進行熒光定量PCR反應;其20μL體系為:SYBR Premix ExTaq (2×)20μL;PRV-F(20μM)和PRV-R(20μM)各0.2μL;ROX Reference Dye(50×)0.4μL;DNA模板2μL;ddH2O 7.2μL。反應程序為:95℃1min;95℃5s,62℃30s,共40個循環(huán)。溶解曲線反應程序為:95℃15s,60℃1min,95℃15s。進行數(shù)據(jù)分析,確定標準曲線。

        1.2.4 PRVSYBRGreen I熒光定量PCR的特異性實驗

        用PCV2、PRV、PPV的DNA,PRRSV、CSFV及JEV的cDNA作為模板,同時設立空白對照,每個樣品3個復孔,用建立的PRV SYBRGreen I熒光定量PCR方法進行檢測。用以檢測其特異性。

        1.2.5 PRVSYBRGreen I熒光定量PCR的敏感性實驗

        將已測濃度的PRV陽性重組質(zhì)粒進行10倍梯度系列稀釋,用所建立的熒光定量PCR方法進行檢測,得出所構(gòu)建方法的重組質(zhì)粒模板的最低檢出拷貝數(shù)。同時選取PRV病毒液(105.405TCID50/100μL)經(jīng)PBS 5倍梯度系列稀釋,將各稀釋度PRV病毒液混入陰性公豬精液中,提取DNA作模板,進行熒光定量PCR檢測,測定該方法在精液中的最低檢出病毒量。同時進行國標(GB/T 18641-2002)常規(guī)PCR[5]檢測,對比兩種方法的靈敏度。

        1.2.6 PRVSYBRGreen I熒光定量PCR的重復性實驗

        選取濃度為2.79×106copies/μL、2.79×105copies/μL、2.79×104copies/μL的陽性重組質(zhì)粒稀釋品和選取混入PRV病毒50819 TCID50/100μ L、407 TCID50/100μL、16 TCID50/100μL的精液樣品,用建立的PRV SYBRGreen I rea1-time PCR進行3次批內(nèi)重復試驗和3次批間重復試驗,實驗結(jié)束后對擴增曲線及Ct值進行分析。

        1.2.7 臨床樣品檢測

        對湖南省內(nèi)15個豬場和人工授精站采集的109份公豬精液樣品,應用構(gòu)建的PRV SYBRGreen Irea1-time PCR方法進行檢測,同時根據(jù)國家標準GB/T 18641-2002中的檢測方法[5]進行常規(guī)PCR檢測,對比檢測結(jié)果。

        2 結(jié)果

        2.1 PRV陽性標準品的制備

        運用設計的引物經(jīng)梯度PCR擴增和1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果如圖1所示,擴增出與預期大小相符的片段(146 bp),最佳退火溫度為62℃。構(gòu)建的PRV重組質(zhì)粒送華大測序,測序結(jié)果與參考序列進行比對,同源性為100%。用Nanodrop2000核酸分析儀測得PRV重組質(zhì)粒濃度為86.7ng/μL,計算得出拷貝數(shù)為2.79×1010copies/μL。

        (M:DL2000DNAMarker;1:52℃;2:54℃;3:56℃;4:58℃;5:60℃;6:62℃)圖1 PRV目的基因PCR擴增結(jié)果

        將制備的標準質(zhì)粒10倍倍比稀釋,選取2.79×1010copies/μL濃度的標準質(zhì)粒做模板,進行熒光定量PCR反應,根據(jù)結(jié)果系統(tǒng)繪制出標準曲線,結(jié)果顯示在2.79×106~2.79×101copies/μL濃度有良好的線性關(guān)系,得到的標準曲線較為理想(圖2)。標準曲線的相關(guān)系數(shù)為:R2:0.998;E=103. 854%。PRV的拷貝數(shù)與Ct值之間的線性關(guān)系表達式為:Ct=-3.233×1gDNA拷貝數(shù)+19.696。進行溶解曲線分析發(fā)現(xiàn)溶解峰單一,溶解溫度在88.8℃左右。

        圖2 FQ-PRV熒光定量PCR標準曲線

        圖3 FQ-PRV熒光定量特異性實驗結(jié)果

        2.2.2 特異性實驗

        特異性實驗結(jié)果(圖3)表明,PRV有特異性擴增,對照組PPV、PCV2、PRRSV、CSFV、JEV和陰性對照組均無特異性擴增。

        2.2.3 敏感性實驗

        構(gòu)建的PRV熒光定量PCR方法擴增2.79× 101copies/μL濃度重組質(zhì)粒模板和在公豬精液中檢測到16 TCID50/100μL仍然有S型曲線,低于該濃度不能檢測出,表明最低可以檢測到2.79×101拷貝數(shù)量級(圖4)和在公豬精液中最低可以檢測到16 TCID50/100μL(圖5)。國標普通PCR法[5]檢測結(jié)果顯示在81 TCID50/100μL時仍可見單一明顯條帶,低于該濃度后出現(xiàn)雜帶,結(jié)果不能準確判定,說明國標普通PCR法[5]最低可檢測到81 TCID50/100μL的病毒含量(圖6)。結(jié)果表明構(gòu)建的熒光定量PCR法的靈敏度比國標普通PCR法靈敏度高5倍。

        (1~6:2.79×106copies/μL~2.79×101 copies/μL;7.陰性對照)圖4 FQ-PRV敏感性實驗結(jié)果

        (1.50819TCID50/100μL;2.10164TCID50/100μL;3.2033TCID50/100μL; 4.407TCID50/100μL;5.81TCID50/100μL;6.16 TCID50/100μL;7.3.3 TCID50/100μL;8.陰性對照)圖5 FQ-PCR檢測公豬精液中PRV敏感性實驗結(jié)果

        2.2.4 PRV重復性實驗

        3次批內(nèi)重復實驗和3次批間重復實驗結(jié)果表明:在重組質(zhì)粒檢測中其批內(nèi)實驗變異系數(shù)為0.10%~0.77%,批間實驗變異系數(shù)為1.88%~2.48%;在帶毒精液中批內(nèi)實驗變異系數(shù)為0.17%~0.50%,批間實驗變異系數(shù)為0.50%~3.46%。表明該方法有較高的重復性,保證了檢測結(jié)果的穩(wěn)定性與可靠性。

        (1.50819TCID50/100μL;2.10164TCID50/100μL;3.2033TCID50/100μL;4. 407 TCID50/100μL;5.81 TCID50/100μL;6.16 TCID50/100μL;7.3.3 TCID50/100μL;8.0.66 TCID50/100μL;+:陽性對照;-:陰性對照;M. DL2000DNAM arker)圖6 PCR檢測公豬精液中PRV敏感性實驗

        表1 熒光定量PCR的重復性試驗

        2.3 臨床樣品檢測結(jié)果

        采集的109份臨床精液樣品進行熒光定量PCR和國標GB/T 18641-2002普通PCR法[5]檢測。結(jié)果表明,國標普通PCR檢測出15份陽性樣品,檢出率13.76%;構(gòu)建的PRV SYBR Green I rea1-time PCR方法檢出20份陽性樣品,陽性率18.35%。說明構(gòu)建的PRV熒光定量PCR方法比國標普通PCR法靈敏度高。

        3 討論

        gH基因是偽狂犬病毒復制的必須基因,較為保守[6]。本實驗對多株偽狂犬病毒毒株進行了同源性比較,選取gH基因的保守性序列,應用Primer Premier5.0生物軟件設計了1對特異性引物。構(gòu)建的SYBRGreen Irea1-time PCR方法標準曲線線性關(guān)系良好,R2=0.998,E=103.854%;特異性強,溶解曲線峰值單一,檢測豬細小病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬圓環(huán)2型病毒、豬乙腦病毒和豬瘟兔化弱毒疫苗等均無擴增曲線;靈敏度高,最低可檢測到的27.9拷貝的陽性質(zhì)粒,在公豬精液中最低可檢測到的病毒量為16TCID50/100μL,靈敏度與楊紅杰等[7]和李雪明等[8]建立的PRV SYBRGreen I熒光定量PCR方法的檢測靈敏度(86拷貝/μL和69拷貝/μL)相當;重復性檢測結(jié)果良好,批內(nèi)和批間實驗的變異系數(shù)均低于3.5%。

        PCR技術(shù)已被用于檢測精液中豬偽狂犬病毒。2006年4月~10月間孫泉云等對上海及其周邊地區(qū)30個豬場和人工授精站的355份精液進行了檢測,結(jié)果表明,PRV陽性率為2.54%,且存在PRV和PPV混合感染[9];黃夏等應用PCR技術(shù)對廣西6市12個種豬場441份精液進行檢測發(fā)現(xiàn),PRV精液樣品陽性率為0.45%[10]。2006年黃夏等應用PCR技術(shù)對廣西11個種豬場235份精液進行檢測,PRV陽性率為5.53%[11],并且發(fā)現(xiàn)PRV和PPV、PCV2混合感染嚴重。2009年馮迎春等對四川各地區(qū)豬場76份精液進行了檢測,檢測結(jié)果表明PRV帶毒率較高為19.7%[12]。王軍一等對2007~2009年山東部分地區(qū)727份精液樣品進行5種主要病原檢測,結(jié)果顯示PRV陽性率為0.96%[13]。雷湘蘭等于2010年~2012年對海南省部分種豬的精液進行調(diào)查發(fā)現(xiàn)PRV感染率為4.80%[14]。本研究運用構(gòu)建的熒光定量PCR方法和國標普通PCR法[5]對109份精液樣品進行檢測,結(jié)果發(fā)現(xiàn)構(gòu)建的熒光定量PCR方法檢出20份陽性樣品,陽性率18.35%。而國標普通PCR法檢出15份陽性樣品,陽性率為13.76%。結(jié)果表明構(gòu)建的熒光定量PCR檢出率比普通PCR要高,有利于種公豬精液中PRV在潛伏感染期和早期感染的檢出。

        人工授精技術(shù)的廣泛應用為PRV通過種豬精液傳播提供了可能。因此,加強種公豬精液病原生物的監(jiān)測對于控制疫病的傳播有重要意義。本研究構(gòu)建的PRV SYBRGreen Irea1-time PCR方法具有穩(wěn)定性強、靈敏度高、特異性好等特點,為檢測種公豬精液中PRV感染情況提供了有效的檢測手段,有較高的應用價值。

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        S852.65

        A

        1006-4907(2016)02-0031-05

        10.3969/j.issn.1006-4907.2016.02.016

        2016-03-01

        聶昂(1991~),男,臨床獸醫(yī)碩士研究生。

        ※通訊作者:袁安文(1967~),男,教授,研究方向:動物生殖醫(yī)學,yuananweng@163.com。

        ※通訊作者:薛立群(1955~),男,教授,研究方向:動物生殖醫(yī)學,liqun_xue@aliyun.com。

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