閔凡貴,郭 羽,羅 挺,潘金春,劉助紅,黃樹(shù)武,張 鈺
(1. 廣東省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物監(jiān)測(cè)所,廣東省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東廣州 510663;2. 北京天壇生物制品股份有限公司,北京 100176)
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基于牛分枝桿菌PPD的獼猴全血IFN-γ釋放試驗(yàn)觀察
閔凡貴1,郭 羽2,羅 挺1,潘金春1,劉助紅1,黃樹(shù)武1,張 鈺1
(1. 廣東省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物監(jiān)測(cè)所,廣東省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東廣州 510663;2. 北京天壇生物制品股份有限公司,北京 100176)
目的 分析全血IFN-γ釋放試驗(yàn)在獼猴分枝桿菌檢測(cè)中的應(yīng)用價(jià)值。方法 首先測(cè)定結(jié)核菌素試驗(yàn)(TST)陽(yáng)性、陰性獼猴血清樣本的基礎(chǔ)IFN-γ含量。然后以PBS為對(duì)照,200 IU bovine-PPD為刺激抗原,分別與TST陰性和陽(yáng)性獼猴肝素抗凝血共培養(yǎng)約24 h,收集血漿,測(cè)定IFN-γ含量。通過(guò)分析抗原刺激前后血漿IFN-γ含量變化和刺激指數(shù)探討全血IFN-γ釋放試驗(yàn)的診斷效能。結(jié)果 TST陽(yáng)性獼猴血清基礎(chǔ)IFN-γ含量明顯高于TST陰性獼猴,但離散度都較大。PPD刺激前后,TST陰性獼猴血漿IFN-γ含量無(wú)明顯變化,而TST陽(yáng)性獼猴血漿IFN-γ含量明顯升高(P<0.01)。刺激指數(shù)結(jié)果顯示,TST陽(yáng)性獼猴明顯高于TST陰性猴(P<0.01)。ROC曲線分析表明,血漿IFN-γ含量和刺激指數(shù)均可作為全血IFN-γ釋放試驗(yàn)的評(píng)價(jià)指標(biāo)。結(jié)論 本研究基于小樣本量的實(shí)驗(yàn)結(jié)果證實(shí),全血IFN-γ釋放試驗(yàn)是獼猴分枝桿菌快速診斷的有益補(bǔ)充方法。
獼猴,全血IFN-γ釋放試驗(yàn),PPD,分枝桿菌
獼猴是目前用量最大的實(shí)驗(yàn)非人靈長(zhǎng)類動(dòng)物,已實(shí)現(xiàn)了人工規(guī)?;蜆?biāo)準(zhǔn)化的生產(chǎn)繁育。然而,獼猴的生產(chǎn)繁育卻長(zhǎng)期遭受到多種病原的威脅,其中,分枝桿菌病對(duì)獼猴飼養(yǎng)的影響巨大,以結(jié)核分枝桿菌病最為嚴(yán)重,由于其病原具有強(qiáng)烈的人獸共患性,并且群內(nèi)傳播和種間傳播速度快,傳播途徑多樣,控制其傳播顯得尤為重要,而早期篩查與及時(shí)隔離感染猴為當(dāng)前最有效的控制手段[1]。
目前,實(shí)驗(yàn)猴結(jié)核診斷的金標(biāo)方法是結(jié)核菌素試驗(yàn)(tuberculin skin test,TST),其次是病原學(xué)診斷,病理學(xué)(活體病理學(xué))診斷應(yīng)用相對(duì)較少。血清學(xué)診斷和分子生物學(xué)診斷方法也被用于獼猴結(jié)核診斷中,但多數(shù)仍處于研究階段[2-4]。鑒于目前常用的診斷方法缺乏足夠的準(zhǔn)確性以及不能實(shí)現(xiàn)快速診斷,本研究將探討全血IFN-γ釋放試驗(yàn)的可行性。全血IFN-γ釋放試驗(yàn)是基于外周血單核細(xì)胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMC)對(duì)分支桿菌抗原刺激的記憶功能而實(shí)現(xiàn)的,體外抗原刺激活化的PBMC可誘導(dǎo)產(chǎn)生IFN-γ,通過(guò)測(cè)定血漿IFN-γ的增量來(lái)初步判斷機(jī)體是否感染病原。在醫(yī)學(xué)領(lǐng)域,全血IFN-γ釋放試驗(yàn)被證實(shí)具有快速、簡(jiǎn)便等特點(diǎn),降低了成本要求,成為較好的輔助診斷方法。如能將該技術(shù)充分用于實(shí)驗(yàn)猴的檢測(cè)中,則有望大大提高結(jié)核病的診斷效能。
1.1 血清
近年來(lái),在日常檢疫和監(jiān)督檢測(cè)中收集到TST陽(yáng)性獼猴血清30份,TST陰性獼猴血清70份。上述血清用于測(cè)定基礎(chǔ) IFN-γ含量。
1.2 抗凝血
廣東某獼猴飼養(yǎng)場(chǎng)曾多次檢出TST陽(yáng)性病例,本研究收集到14例陽(yáng)性獼猴肝素抗凝血,參照此前建立的方法進(jìn)一步測(cè)定了PPD抗體[5-6],結(jié)果全部為陽(yáng)性(A450值為1.62±0.70,cutoff值為0.217)。 在其他獼猴飼養(yǎng)場(chǎng)采集TST陰性且PPD抗體陰性獼猴的肝素抗凝血37頭份。上述抗凝血用于全血IFN-γ釋放試驗(yàn)。
1.3 抗原
Bovituber-PPD,2 mL/瓶,源于Synbiotics Corp.,批號(hào): Lot 142574。
1.4 全血PPD刺激培養(yǎng)
取24 h內(nèi)的抗凝血2 mL,分別加入24孔細(xì)胞培養(yǎng)板孔內(nèi),1 mL/孔,每個(gè)樣本2孔,然后依次加入0.1 mL PBS和0.1 mL PPD(200 IU),置37℃、5% CO2培養(yǎng)箱孵育過(guò)夜,約24 h,收集血漿300 μL以上,-20℃保存。
1.5 血漿IFN-γ含量測(cè)定
通過(guò)流式細(xì)胞儀,采用luminex?液相芯片技術(shù)測(cè)定血漿中 IFN-γ含量,檢測(cè)試劑盒源于默克密理博(Merck Millipore)。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
測(cè)得的數(shù)據(jù)用Excel和SAS 8.01軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,分析方法包括隨機(jī)、成對(duì)Student′sttest和ROC曲線分析等。
2.1 血清基礎(chǔ)IFN-γ含量
分別測(cè)定TST陰性和陽(yáng)性獼猴血清樣本的IFN-γ含量,檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖1,分別為: 3.08±5.67 pg/mL(n=70,CV=184%)和31.88±85.46 pg/mL(n=30,CV=268%)。與TST陰性獼猴比較,TST陽(yáng)性獼猴血清IFN-γ水平顯著升高(unpairedt-test,P<0.01)。
圖1 TST陽(yáng)性和陰性實(shí)驗(yàn)猴血清IFN-γ含量Fig.1 Basic serum IFN-γ concentrations of TST-positive and -negative macaques
2.2 體外抗原刺激全血誘導(dǎo)IFN-γ產(chǎn)生情況
圖2 PPD刺激前后血漿IFN-γ含量變化Fig.2 Changes in plasma IFN-γ pre- and post-stimulation by PPD
圖3 PPD全血IFN-γ釋放試驗(yàn)的刺激指數(shù)Fig.3 Stimulation indexes of PPD-based whole blood IFN-γ assay
以等體積PBS為陰性對(duì)照,分析PPD體外刺激全血誘導(dǎo)IFN-γ產(chǎn)生的情況,結(jié)果見(jiàn)圖2。對(duì)于TST陰性獼猴,PPD刺激全血不會(huì)誘導(dǎo)PBMC產(chǎn)生IFN-γ,血漿IFN-γ含量不會(huì)顯著升高(pairedt-test,P>0.05);而對(duì)于TST陽(yáng)性獼猴,PPD能顯著刺激PBMC產(chǎn)生IFN-γ,血漿IFN-γ含量顯著升高(pairedt-test,P<0.01)。
圖4 ROC曲線分析Fig.4 Results of ROC curves analysis
2.3 刺激指數(shù)
鑒于TST陰性獼猴基礎(chǔ)血清IFN-γ含量分布離散度較大,通過(guò)分析抗原刺激后的絕對(duì)IFN-γ含量來(lái)判定感染狀態(tài)存在一定的風(fēng)險(xiǎn)。本研究進(jìn)一步探討了全血IFN-γ釋放試驗(yàn)的刺激指數(shù)(stimulation index,SI),即抗原刺激后和刺激前(PBS對(duì)照)血漿IFN-γ含量的比值。對(duì)TST陰性和陽(yáng)性獼猴SI進(jìn)行比較,結(jié)果顯示,TST陽(yáng)性獼猴SI明顯高于TST陰性獼猴(unpairedt-test,P<0.01)。
2.4 ROC曲線分析
對(duì)TST陰性和陽(yáng)性獼猴PPD刺激后血漿IFN-γ含量做ROC曲線分析,以陽(yáng)性似然比最大時(shí)對(duì)應(yīng)的IFN-γ含量為cutoff值,結(jié)果顯示,最佳cutoff值為10.19 pg/mL,敏感性為100%,特異性為97.3%,ROC曲線下面積為0.9981(圖4, A)。同樣,對(duì)TST陰性和陽(yáng)性獼猴的刺激指數(shù)做ROC曲線分析,顯示最佳cutoff值為2.230,敏感性為100%,特異性為97.3%,ROC曲線下面積為1.0(圖4, B)。以上述兩種cutoff值判定,本研究選擇的TST陽(yáng)性獼猴均為分支桿菌感染。
IFN-γ體外釋放試驗(yàn)包括全血IFN-γ釋放試驗(yàn)和ELISPOT,與TST相比,具有敏感性和特異性高,不受TST操作上的主觀因素的影響,結(jié)果更為客觀可靠,檢測(cè)快速,并且單次TST對(duì)IFN-γ檢測(cè)對(duì)結(jié)果影響不大等優(yōu)點(diǎn),且該方法只需接觸動(dòng)物一次,有效減少了對(duì)動(dòng)物的應(yīng)激,具有很大的優(yōu)越性;因此,IFN-γ體外釋放實(shí)驗(yàn)被認(rèn)為是TST理想的補(bǔ)充方法[7]。全血IFN-γ釋放試驗(yàn)相比ELISPOT,進(jìn)一步優(yōu)化了試驗(yàn)程序,不需要分離PBMC,并且降低了對(duì)儀器和試劑的需求。
在結(jié)核病人全血IFN-γ檢測(cè)方面已有商品化試劑盒(QuantiFERON-TB Gold),并得到了美國(guó)FDA和歐盟CE Mark的雙重認(rèn)可;在牛方面,澳大利亞于1989年率先推出商品化檢測(cè)試劑盒(BovigamTM),此后被澳大利亞政府確認(rèn)為根除牛結(jié)核計(jì)劃的普檢方法。盡管全血IFN-γ釋放試驗(yàn)在人和牛結(jié)核檢測(cè)中應(yīng)用廣泛,但是,其敏感性和特異性穩(wěn)定性差,相關(guān)Meta分析的合并敏感性(低于80%)和特異性(低于75%)僅為中等水平[8-10],尚不能替代TST成為結(jié)核診斷的金標(biāo)準(zhǔn),可以成為T(mén)ST的有益補(bǔ)充。全血IFN-γ釋放試驗(yàn)在非人靈長(zhǎng)類動(dòng)物結(jié)核診斷方面應(yīng)用不多,主要原因在于試劑盒用量小,而且非人靈長(zhǎng)類動(dòng)物IFN-γ與人和牛IFN-γ不同,具有種屬特異性,導(dǎo)致試劑盒成本增高。國(guó)外現(xiàn)有的少量研究和病例報(bào)道顯示,全血IFN-γ釋放試驗(yàn)在診斷非人靈長(zhǎng)類分枝桿菌感染方面具有較高的效能[11-13];目前,國(guó)內(nèi)僅有的1項(xiàng)初步應(yīng)用報(bào)道只顯示出中等的敏感性[14]。由此可見(jiàn),全血IFN-γ釋放試驗(yàn)在獼猴中的應(yīng)用仍需進(jìn)一步驗(yàn)證。我國(guó)是獼猴生產(chǎn)繁育大國(guó),開(kāi)展這方面研究具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。
本研究首先分析了獼猴的血清基礎(chǔ)IFN-γ水平,盡管TST陽(yáng)性獼猴血清基礎(chǔ)IFN-γ水平升高,但是離散度大,不足以成為診斷分枝桿菌感染的依據(jù)。然后,分析了PPD體外刺激對(duì)獼猴PBMC誘導(dǎo)產(chǎn)生IFN-γ的情況,結(jié)果表明,PPD刺激TST陰性獼猴不會(huì)誘導(dǎo)PBMC產(chǎn)生IFN-γ,血漿IFN-γ含量刺激前后無(wú)顯著性變化;PPD刺激則可以誘導(dǎo)TST陽(yáng)性獼猴PBMC產(chǎn)生大量的IFN-γ,導(dǎo)致血漿IFN-γ含量顯著高于刺激前的測(cè)定值。進(jìn)一步分析顯示,PPD刺激后的IFN-γ絕對(duì)含量和SI均可作為判定分枝桿菌感染的依據(jù),其中SI的準(zhǔn)確性稍高(ROC曲線下面積比較)。本研究結(jié)果初步證實(shí),全血IFN-γ釋放試驗(yàn)是適于獼猴分枝桿菌感染診斷的有效補(bǔ)充手段,可以彌補(bǔ)TST的不足。
在刺激抗原用量方面,國(guó)外文獻(xiàn)多數(shù)未提供PPD濃度,國(guó)內(nèi)報(bào)道的PPD終濃度基本不超過(guò)20 μg/mL[15-16]。影響全血IFN-γ釋放試驗(yàn)的因素很多,除了動(dòng)物個(gè)體差異外,還包括PPD來(lái)源、用量、批次和生產(chǎn)廠家等[16]。本研究選擇了Synbiotics Corp.生產(chǎn)的牛分枝桿菌PPD,純度很高,預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示200 IU/孔和400 IU/孔無(wú)顯著性差異,故選擇200 IU/孔開(kāi)展實(shí)驗(yàn),相比國(guó)產(chǎn)PPD用量偏低。
本研究基于小樣本量取得了較理想的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,但仍處于初級(jí)研究階段,尚需要大量臨床樣本來(lái)驗(yàn)證該方法的敏感性與特異性,尤其是TST檢測(cè)假陰性樣本的驗(yàn)證。
[1] Lerche NW, Yee JL, Capuano SV, et al. New approaches to tuberculosis surveillance in nonhuman primates [J]. ILAR J, 2008, 49(2): 170-178.
[2] 罕園園, 高家紅, 羅志武, 等. 獼猴結(jié)核分枝桿菌PCR檢測(cè)方法的建立與初步應(yīng)用 [J]. 中國(guó)比較醫(yī)學(xué)雜志, 2008, 18(9) :78-82.
[3] Centers for Disease Control and Prevention (CDC), Department of Health and Human Services (HHS). Control of communicable disease; foreign—requirements for importers of nonhuman primates (NHP). Final rule [J]. Fed Reqist, 2013, 78(32): 11521-11545.
[4] Rosenbaum M, Mendoza P, Ghersi BM, et al. Detection ofMycobacteriumtuberculosiscomplex in new world monkeys in Peru [J]. Ecohealth, 2015, 12(2): 288-297.
[5] 張鈺, 黃韌, 劉香梅, 等. 猴結(jié)核病血清抗體檢測(cè)方法的建立 [J]. 中國(guó)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物學(xué)報(bào), 2006, 14(1): 63-66.
[6] Min FG, Zhang Y, Huang R, et al. Serum antibody responses to 10Mycobacteriumtuberculosisproteins, purified protein derivative, and old tuberculin in natural and experimental tuberculosis in rhesus monkeys [J]. Clin Vaccine Immunol, 2011.18(12): 2154-2160.
[7] Ryan TJ, Buddle BM, DeLisle GW. An evaluation of the gamma interferon test for detecting bovine tuberculosis in cattle 8 to 28 days after tuberculin skin testing [J]. Res Ver Sci, 2000, 69: 57-61.
[8] Aggarwal AN, Agarwal R, Gupta D, et al. Interferon gamma release assays for diagnosis of pleural tuberculosis: a systematic review and meta-analysis [J]. J Clin Microbiol, 2015, 53(8): 2451-2459.[9] Yu J, Wang ZJ, Chen LH, et al. Diagnostic accuracy of interferon-gamma release assays for tuberculous meningitis: a meta-analysis [J]. Int J Tuberc Lung Dis, 2016, 20(4): 494-499.
[10] Lahuerta-Marin A, Gallagher M, McBride S, et al. Should they stay, or should they go? Relative future risk of bovine tuberculosis for interferon-gamma test-positive cattle left on farms [J]. Vet Res, 2015, 46: 90.
[11] Vervenne RA, Jones SL, van Soolingen D, et al. TB diagnosis in non-human primates: comparison of two interferon-gamma assays and the skin test for identification ofMycobacteriumtuberculosisinfection [J]. Vet Immunol Immunopathol, 2004, 100(1-2): 61-71.
[12] Garcia MA, Yee J, Bouley DM, et al. Diagnosis of tuberculosis in macaques, using whole-blood in vitro interferon-gamma (PRIMAGAM) testing [J]. Comp Med, 2004, 54(1): 86-92.
[13] Parsons SD, de Villiers C, Gey van Pittius NC, et al. Detection ofMycobacteriumkansasiiinfection in a rhesus macaque (Macacamulatta) using a modified QuantiFERON-TB Gold assay [J]. Vet Immunol Immunopathol, 2010, 136(3-4): 330-334.
[14] 汪乾坤, 姜勇, 童勝濤, 等. 獼猴結(jié)核IFN-γ體外釋放檢測(cè)法的建立與初步應(yīng)用 [J]. 中國(guó)獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2015, 35(9): 1488-1494.
[15] 廖娟紅. 新型牛結(jié)核IFN-γ體外釋放檢測(cè)法的建立和應(yīng)用 [D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學(xué), 2010: 38-44.
[16] 楊新婷, 楊揚(yáng), 杜鳳嬌, 等. 肺結(jié)核患者全血γ干擾素釋放試驗(yàn)影響因素的探討 [J]. 中國(guó)防癆雜志, 2013 ,35, (12 ): 1007-1012.
Performance of bovine-PPD based whole blood IFN-γ assay for rhesus macaques
MIN Fan-gui1, GUO Yu2, LUO Ting1, PAN Jin-chun1, LIU Zhu-hong1, HUANG Shu-wu1, ZHANG Yu1
(1. Guangdong Laboratory Animals Monitoring Institute, Guangdong Provincial Key Laboratory of Laboratory Animals, Guangzhou 510663, China; 2. Beijing Tiantan Biological Product Co. Ltd., Beijing 100176)
Objective To assess the potential of whole blood IFN-γ assay for diagnosing mycobacterium in rhesus macaques. Methods Firstly, basic serum IFN-γ concentrations of TST-negative and -positive rhesus macaques were detected. Then, heparinized whole blood from TST-negative and -positive rhesus macaques was incubated with PBS and 200 IU bovine-PPD (tuberculin purified protein derivative) for about 24 h, respectively. The supernatant plasma were harvested and used to determine the concentrations of IFN-γ. The results of plasma IFN-γ concentrations and stimulation index (SI) were used to analyze the diagnostic potential of the whole blood IFN-γ assay. Results The basic serum concentrations of IFN-γ for the TST-positive monkeys were significantly higher than that of the TST-negative macaques, showing a high coefficient of variation. There was no significant effect on the production of IFN-γ in the TST-negative macaques. While significantly elevation of IFN-γ concentrations was found in stimulated plasma of TST-positive macaques (P<0.01). The SI of TST-positive macaques was significantly higher than the TST-negative ones. ROC curve analysis revealed that IFN-γ concentrations and SI could be used as evaluation index of whole blood IFN-γ assay. Conclusions Based on a small sample experiment we have demonstrated that whole blood IFN-γ assay may be one possible auxiliary diagnostic method for tuberculin skin test.
Rhesus macaques;Whole blood IFN-γ assay;Tuberculin purified protein derivative, PPD;Mycobacterium; Diagnosis
廣東省科技計(jì)劃項(xiàng)目(2013B020307005;2015A030302029;2016A030303023);國(guó)家科技支撐計(jì)劃(2013BAK11B01)。
閔凡貴(1980 - ),男,副研究員,碩士,研究方向: 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與比較醫(yī)學(xué)研究。
張鈺(1970 - ),女,研究員,E-mail: zhangyugzh@hotmail.com。
R-33
A
1671-7856(2016)10-0005-04
10.3969.j.issn.1671-7856.2016.10.002
2016-03-19