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        干旱脅迫下雜草稻和栽培稻根系基因表達(dá)差異研究

        2016-10-25 03:00:02丁國華孫健楊光張鳳鳴白良明孫世臣姜樹坤王彤彤鄭洪亮夏天舒沈希宏馬殿榮陳溫福
        中國水稻科學(xué) 2016年5期
        關(guān)鍵詞:抗旱雜草巴西

        丁國華 孫健 楊光 張鳳鳴 白良明 孫世臣 姜樹坤 王彤彤 鄭洪亮夏天舒 沈希宏 馬殿榮 陳溫福

        (1 黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院博士后科研工作站/黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 耕作栽培研究所/中國科學(xué)院 北方粳稻分子育種聯(lián)合研究中心, 哈爾濱 155086;2 沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué) 水稻研究所, 沈陽110866; 3 遼寧省經(jīng)濟(jì)作物研究所, 遼寧 遼陽 111000; 4中國水稻研究所, 杭州 310006;#共同第一作者;*通訊聯(lián)系人, E-mail: madianrong@163.com; wfchen5512@126.com)

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        干旱脅迫下雜草稻和栽培稻根系基因表達(dá)差異研究

        丁國華1,2,#孫健2,#楊光3張鳳鳴1白良明1孫世臣1姜樹坤1王彤彤1鄭洪亮1夏天舒1沈希宏4馬殿榮2,*陳溫福2,*

        (1黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院博士后科研工作站/黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 耕作栽培研究所/中國科學(xué)院 北方粳稻分子育種聯(lián)合研究中心, 哈爾濱 155086;2沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué) 水稻研究所, 沈陽110866;3遼寧省經(jīng)濟(jì)作物研究所, 遼寧 遼陽 111000;4中國水稻研究所, 杭州 310006;#共同第一作者;*通訊聯(lián)系人, E-mail: madianrong@163.com; wfchen5512@126.com)

        DING Guohua, SUN Jian, YANG Guang, et al. Global genome expression analysis of root genes under drought stress in weedy rice and up-land rice. Chin J Rice Sci, 2016, 30(5): 458-468.

        利用Affymetrix水稻表達(dá)譜芯片(GeneChip Rice Genome Array)研究抗旱雜草稻HEB07-2與巴西陸稻(IAPAR9)在PEG模擬干旱脅迫下根系基因表達(dá)變化。結(jié)果表明,雜草稻HEB07-2轉(zhuǎn)錄組對(duì)干旱信號(hào)的響應(yīng)程度與方向均與巴西陸稻存在很大差異,HEB07-2以正向調(diào)控為主,而巴西陸稻以負(fù)調(diào)控為主。干旱脅迫下雜草稻HEB07-2與巴西陸稻分別有6878個(gè)和2923個(gè)基因表達(dá),其中HEB07-2受干旱脅迫誘導(dǎo)上調(diào)的基因有4693個(gè),下調(diào)的基因有2185個(gè);而巴西陸稻則分別有983個(gè)和1940個(gè)。在差異基因表達(dá)的倍數(shù)上也是HEB07-2高于巴西陸稻。進(jìn)一步的GO分析表明,在干旱脅迫下,HEB07-2和IAPAR9根系基因響應(yīng)途徑的差異表現(xiàn)為HEB07-2在鉀離子轉(zhuǎn)運(yùn)(GO:0006813)、次生物質(zhì)代謝(GO:0019748)、細(xì)胞生長(zhǎng)(GO:0016049)、葡萄糖代謝(GO:0006006)、跨膜離子轉(zhuǎn)運(yùn)器活性(GO:0015075)、亞鐵血紅素結(jié)合體(GO:0020037)、氧化還原酶活性(GO:0016491)等方面基因顯著上調(diào),這與生理數(shù)據(jù)和表型數(shù)據(jù)一致。

        雜草稻; 根系; 表達(dá)譜芯片; 耐旱

        水稻(Oryzasativa)是重要的糧食作物,全世界一半以上的人口都將稻米作為主食[1]。我國是水稻生產(chǎn)大國,稻谷總產(chǎn)量世界第一,水稻生產(chǎn)耗水量大,占農(nóng)業(yè)用水的60%左右,水資源已經(jīng)成為限制水稻發(fā)展的一個(gè)潛在因素[2]。因此,培育抗旱節(jié)水的水稻新品種是本領(lǐng)域亟待解決的問題之一,而植物的耐旱性是典型的數(shù)量性狀,由眾多基因控制,十分復(fù)雜。關(guān)于作物耐旱的QTL研究較多[3-6],但到目前為止沒有克隆一個(gè)與作物耐旱性相關(guān)的QTL,而基于耐旱性QTL進(jìn)行的分子輔助育種效果并不能令人滿意。

        基因芯片使研究人員能夠快速、高通量地了解植物在特定環(huán) 境條件下的基因表達(dá)水平及變化[7-11]。Thomas等[9]利用芯片技術(shù)進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)耐旱性不同的水稻品種干旱脅迫下基因表達(dá)模式不同,長(zhǎng)期干旱脅迫下干旱敏感品種表達(dá)發(fā)生變化的基因數(shù)量較多。李永春等[10]用Affymetrix基因芯片研究小麥在模擬干旱脅迫(20% PEG-6000溶液)下根系基因表達(dá)譜,結(jié)果表明干旱脅迫后下調(diào)表達(dá)的基因4573個(gè)(5043個(gè)探針組),上調(diào)表達(dá)的基因3743個(gè)(4074個(gè)探針組)。Zhang 等[11]利用表達(dá)譜芯片研究了干旱脅迫下巴豆苗期根系和葉片中基因表達(dá)狀況,干旱脅迫下有關(guān)生物合成、轉(zhuǎn)運(yùn)、細(xì)胞蛋白修飾、脫落酸合成、脫落酸信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、棉籽糖合成、海藻糖合成相關(guān)基因顯著上調(diào)。

        雜草稻是亞洲栽培稻的一級(jí)基因源,具有較強(qiáng)的抗逆性,是改良栽培稻的優(yōu)良基因庫[12-13]。利用基因芯片技術(shù)檢測(cè)雜草稻與栽培稻全基因組基因在干旱脅迫下的表達(dá)變化情況,并進(jìn)一步分析數(shù)據(jù),對(duì)比雜草稻與栽培稻全基因組在特定條件下對(duì)外界環(huán)境的響應(yīng)狀況,從轉(zhuǎn)錄和表達(dá)的層面揭示雜草稻和栽培稻在干旱脅迫下的基因組差異,進(jìn)一步發(fā)掘雜草稻可能存在的特殊抗旱機(jī)理,對(duì)于拓寬水稻耐旱遺傳基礎(chǔ),培育節(jié)水抗旱水稻新品種具有重要意義。以往關(guān)于抗旱表達(dá)譜的研究往往基于抗旱樣本與干旱敏感樣本的相互比較。本研究將極抗旱種質(zhì)資源雜草稻HEB07-2與抗旱的陸稻樣本進(jìn)行表達(dá)譜差異分析,試圖從一個(gè)新的高度進(jìn)一步理解稻屬植物抗旱的機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1植物材料與試驗(yàn)設(shè)計(jì)

        供試材料為北方雜草稻HEB07-2和巴西陸稻。選取飽滿的種子,經(jīng)10%次氯酸鈉消毒后,于30℃下恒溫催芽3 d,之后選取長(zhǎng)勢(shì)一致的種子播于96孔PVP板中,并置于培養(yǎng)容器(長(zhǎng)24 cm×寬24 cm×高10 cm)中。在RXZ-500C人工氣候箱中進(jìn)行幼苗培養(yǎng)。培養(yǎng)前2周放入水中培養(yǎng),于第3周時(shí)置于木村B半營養(yǎng)液中,于第4周開始時(shí)放入木村B全營養(yǎng)液中,將生長(zhǎng)4周的幼苗置于20%PEG-6000中模擬干旱脅迫,處理24 h,以不進(jìn)行干旱脅迫營養(yǎng)液培養(yǎng)的幼苗為對(duì)照(CK)。人工氣候箱白天溫度設(shè)定為29℃,夜間設(shè)定為24℃,14 h光照/12 h黑暗,光強(qiáng)為22 000 lx。脅迫結(jié)束后馬上取樣,取幼苗所有根,用鋁箔紙包好,放入液氮中迅速冷凍,然后于-80℃超低溫冰箱中保存,用于提取總RNA和測(cè)定相關(guān)生理指標(biāo)。試驗(yàn)設(shè)置3次重復(fù),取樣時(shí)每個(gè)品種取一盤,每20株為一次重復(fù)。

        本研究采用Affymetrix水稻表達(dá)譜芯片(GeneChip Rice Genome Array)分析干旱脅迫24 h后HEB07-2與巴西陸稻表達(dá)譜差異。芯片覆蓋了約51 279個(gè)轉(zhuǎn)錄本,代表兩個(gè)水稻亞種,48 564個(gè)粳稻亞種轉(zhuǎn)錄本和1260個(gè)秈稻亞種轉(zhuǎn)錄本。序列信息來源于GenBank mRNAs,TIGR基因預(yù)測(cè)和國際水稻基因組序列計(jì)劃。分析干旱脅迫24 h后雜草稻HEB07-2與巴西陸稻根系轉(zhuǎn)錄豐度的差異,通過計(jì)算雜交信號(hào)的比值和統(tǒng)計(jì)分析,獲得差異表達(dá)基因的信息,研究在功能或表達(dá)調(diào)控上具有相關(guān)性的基因。

        1.2項(xiàng)目測(cè)定

        1.2.1 葉片總RNA的提取

        按Trizol試劑盒(康為公司,中國)說明書提取總RNA。用紫外分光光度計(jì)測(cè)定所抽RNA樣品的A260、A280值,根據(jù)測(cè)定的濃度,每個(gè)RNA樣品稀釋成相同濃度,取1 μg RNA用0.8%變性瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。

        1.2.2生理指標(biāo)測(cè)定

        1.2.3實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析

        將HEB07-2和IAPAR9各樣品RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,以反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物為模板,以水稻Actin為內(nèi)參基因,采用QIAGEN公司的SYBR Green RT-PCR 試劑盒及ABI7500熒光定量PCR儀進(jìn)行檢測(cè)。隨機(jī)選擇在HEB07-2和IAPAR9基因芯片檢測(cè)表現(xiàn)為差異表達(dá)的4個(gè)基因(LOC_Os03g37840,LOC_Os04g52390,LOC_Os08g32840,LOC_Os02g02400),用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)引物,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析,以驗(yàn)證基因芯片的分析結(jié)果。

        表1實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析所用的引物

        Table 1. Primers used for real-time quantitative PCR.

        基因Gene正向引物Forwardprimer(5'-3')反向引物Reverseprimer(5'-3')LOC_Os03g37840CGAAATAAGAAGGACGGATGGTGATGGGAGCAAGACAAAGGTALOC_Os04g52390TCAAGAACCAAAGTCAGATAGGAAGAAAGCACAATAAAGGTGACAACTAGLOC_Os08g32840CTCAACTACACCTACCGAAACGCTCCAACTTGTGCAGGAACTCATLOC_Os02g02400GAGGCAGAAGGCGACGATAGAGGTAGTTGACCCAGATGGCActinGGAACTGGTATGGTCAAGGCAGTCTCATGGATACCCGCAG

        1.3數(shù)據(jù)處理

        1.3.1芯片數(shù)據(jù)分析

        本研究應(yīng)用MAS 5.0軟件(Affymetrix MicroArray Suite 5.0 software)分析掃描芯片上的每一基因的信號(hào)強(qiáng)度,之后利用GCOS(Affymetrix GeneChip Operating Software 4.0)建立每個(gè)樣品生物學(xué)重復(fù)內(nèi)擴(kuò)增樣品的信號(hào)數(shù)據(jù)庫,進(jìn)行信號(hào)的背景校正與數(shù)據(jù)的標(biāo)準(zhǔn)化分析。進(jìn)而比較雜草稻與巴西陸稻干旱脅迫下兩種背景的基因表達(dá)譜的變化。進(jìn)一步采用Gene Spring 7.1進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化芯片數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)分析。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)化后的均值來計(jì)算每個(gè)探針的表達(dá)變化。用t檢驗(yàn)(one-way)篩選差異顯著基因,篩選標(biāo)準(zhǔn)為差異兩倍的探針位點(diǎn),方差分析的顯著性差異為0.005。

        1.3.2生理數(shù)據(jù)分析

        試驗(yàn)數(shù)據(jù)用SPSS 19.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。試驗(yàn)數(shù)據(jù)均為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(n=3)。每個(gè)供試材料不同處理間進(jìn)行方差分析(ANOVA),采用Duncan法(P<0.05,0.01)以0 h數(shù)據(jù)為對(duì)照。利用GraphPad Prism 6作圖。

        1.3.3實(shí)時(shí)熒光定量PCR數(shù)據(jù)分析

        各樣品每個(gè)基因重復(fù)3次,按相對(duì)定量法進(jìn)行定量計(jì)算,目的基因相對(duì)定量計(jì)算公式為Rel.Exp=2-△△Ct,其中△△Ct=△Ct未知樣品-△CtCalibrator,△Ct未知樣品=Ct內(nèi)參基因-Ct目的基因,△CtCalibrator=Ct參比樣內(nèi)參基因-Ct參比樣目的基因。

        2 結(jié)果與分析

        2.1HEB07-2和巴西陸稻差異基因倍數(shù)變化及表達(dá)模式

        雜草稻HEB07-2與巴西陸稻分別有6878個(gè)和2923個(gè)基因表達(dá),根據(jù)RICE芯片的詮釋可知,在干旱脅迫下HEB07-2表達(dá)的基因中5410個(gè)基因有明確功能注釋,1468個(gè)基因無確定功能,占21.3%;巴西陸稻干旱脅迫下表達(dá)的基因中,2076個(gè)基因有確定功能,847個(gè)基因無明確功能注釋,占表達(dá)基因總數(shù)的29.0%;2個(gè)供試材料差異表達(dá)基因有6579個(gè),其中4799個(gè)基因功能已知,1780個(gè)表達(dá)基因無明確注釋,占總數(shù)的27.1%。

        HEB07-2和巴西陸稻表達(dá)重疊的基因有1329個(gè)。其中HEB07-2受干旱脅迫誘導(dǎo)上調(diào)的基因有4693個(gè),下調(diào)的基因有2185個(gè)。而巴西陸稻受干旱脅迫誘導(dǎo)上調(diào)基因遠(yuǎn)小于HEB07-2,有983個(gè),受干旱脅迫下調(diào)的基因與HEB07-2相當(dāng),有1940個(gè)。上調(diào)的最大倍數(shù)在44.2到58.4倍之間,平均變化2.9~3.4倍;下調(diào)最大倍數(shù)在20.6~167.5倍,平均下調(diào)2.9~5.3倍。干旱脅迫下HEB07-2和巴西陸稻相比有差異表達(dá)的基因數(shù)量為6579個(gè),無差異的基因有48 246個(gè),其中有2546個(gè)基因下調(diào),4033個(gè)基因上調(diào)。

        2.2干旱脅迫下HEB07-2根系差異表達(dá)基因GO分析

        對(duì)差異表達(dá)基因進(jìn)行GO (GENE ONTOLOGY)分析,按照GO分類法則,對(duì)差異基因進(jìn)行功能分類。干旱脅迫處理下,HEB07-2與對(duì)照比發(fā)生變化的基因,經(jīng)過GO分析后按分子功能、生物過程和細(xì)胞組成進(jìn)行詮釋(詳見在線輔助性表S1,http://www.ricesci.cn/),涉及分子功能基因有2841個(gè),這些基因涉及陽離子結(jié)合、離子結(jié)合、金屬離子結(jié)合、DNA結(jié)合、鐵離子結(jié)合、鈣離子結(jié)合、四吡咯結(jié)合亞鐵血紅素結(jié)合、碳水化合物結(jié)合、維生素結(jié)合、糖結(jié)合、磷酸吡哆醛結(jié)合、維生素B6結(jié)合、糖脂類結(jié)合,分別占14.5%、14.5%、13.3%、7.2%、3.6%、2.8%、2.4%、2.4%、1.0%、0.9%、0.8%、0.8%、0.8%、0.12%;此外,還有蛋白激酶活性、蛋白組氨酸/絲氨酸激酶活性、轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子活性、電子載體活性、轉(zhuǎn)錄因子活性、氧化還原酶活性、幾丁質(zhì)酶活性、脂氧合酶活性、半胱氨酸活性、谷氨酸脫羧酶活性、糖脂轉(zhuǎn)運(yùn)器活性,各占5.5%、4.8%、4.2%、3.6%、3.1%、1.0%、0.3%、0.2%、0.2%、0.1%、0.1%。

        圖1HEB07-2和IAPAR9響應(yīng)干旱脅迫基因比較的韋恩圖

        Fig. 1. Ven figure of HEB07-2 and IAPAR9 regulated genes under drought.

        圖2HEB07-2和IAPAR9干旱脅迫誘導(dǎo)和抑制的基因

        Fig. 2. Gene numbers of HEB07-2 and IAPAR9 induced and repressed by drought.

        按生物過程分有1286個(gè)基因表達(dá)發(fā)生了變化,這些基因的功能包括代謝過程(RNA代謝調(diào)節(jié)過程、脂質(zhì)合成過程、氨基酸衍生物代謝等)、轉(zhuǎn)錄(轉(zhuǎn)錄調(diào)控等)、蛋白氨基酸磷酸化、氧化還原、轉(zhuǎn)運(yùn)(金屬離子轉(zhuǎn)運(yùn)、無機(jī)離子轉(zhuǎn)運(yùn)等)、光合捕光、細(xì)胞運(yùn)動(dòng)及定位、響應(yīng)(水響應(yīng)等),分別占總數(shù)的12.2%、14.1%、5.5%、5.0%、1.7%、0.2%、0.7%、0.5%。

        按細(xì)胞組成分有1283個(gè)基因表達(dá)發(fā)生了變化,主要是細(xì)胞器(膜結(jié)合細(xì)胞器、非膜結(jié)合細(xì)胞器)、細(xì)胞、蛋白復(fù)合體(泛素連接酶復(fù)合體)、細(xì)胞外區(qū)域(胞外區(qū)域和質(zhì)外體),分別占24.1%、13.1%、0.5%、2.3%。

        2.3干旱脅迫下巴西陸稻根系差異基因GO分析

        干旱脅迫下,巴西陸稻根系與對(duì)照比基因組發(fā)生表達(dá)變化,經(jīng)GO分析后,涉及分子功能的基因共有1059個(gè),包括離子結(jié)合(陽離子結(jié)合、金屬離子結(jié)合等)、DNA結(jié)合、轉(zhuǎn)錄因子活性、激酶活性、轉(zhuǎn)運(yùn)載體活性、氧化還原酶活性,所占比例分別為46.1%、12.2%、10.4%、6.0%、3.0%、1.2%。干旱脅迫期間和生物過程相關(guān)的基因共有505個(gè)基因表達(dá)發(fā)生變化,這些基因涉及轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)、代謝過程、離子轉(zhuǎn)運(yùn)、響應(yīng)反應(yīng),所占比例分別為18.9%、8.9%、8.7%、1.2%。按細(xì)胞組成分,發(fā)生表達(dá)的基因有512個(gè),基因功能涉及細(xì)胞組成(細(xì)胞膜、細(xì)胞壁)、細(xì)胞器(膜結(jié)合細(xì)胞器,非膜結(jié)合細(xì)胞器)、細(xì)胞外區(qū)域,所占比例分別為13.6%、23.2%、1.3%(詳見在線輔助性表S2,http://www.ricesci.cn/)。

        表 2HEB07-2和IAPAR9差異表達(dá)基因數(shù)及倍數(shù)變化

        Table 2. Up- and down-regulated fold of genes in HEB07-2 and IAPAR9.

        材料Material下調(diào)表達(dá)基因Down-regulatedgene下調(diào)個(gè)數(shù)No.ofdown-regulatedgene最大Max平均Average上調(diào)表達(dá)基因Up-regulatedgene上調(diào)個(gè)數(shù)No.ofup-regulatedgenes最大Max平均Average未變個(gè)數(shù)Nochange樣品19/樣品1Sample19/Sample1218584.64.3469358.43.447947樣品20/樣品2Sample20/Sample2194020.62.998344.22.951902

        樣品1為HEB07-2正常條件下樣品,樣品19為HEB07-2干旱處理后樣品;樣品2為巴西陸稻正常條件下樣品,樣品20為巴西陸稻干旱處理后樣品。

        Sample 1 is from HEB07-2 under normal condition, sample 19 is collected from HEB07-2 under drought, Sample 2 is from IAPAR9 under normal condition, sample 20 is collected from IAPAR9 under drought treatment.

        圖3干旱脅迫下HEB07-2和IAPAR9差異表達(dá)倍數(shù)分布

        Fig. 3. Change folds of HEB07-2 and IAPAR9 under drought condition.

        2.4干旱脅迫下HEB07-2和巴西陸稻根系差異表達(dá)基因GO分析

        干旱脅迫下,對(duì)HEB07-2與巴西陸稻根系差異表達(dá)基因進(jìn)行GO分析后可知(詳見在線輔助性表S3,http://www.ricesci.cn/),共有4799個(gè)已知功能基因表達(dá),其中涉及分子功能的基因共有2248個(gè),包括離子結(jié)合 、DNA連接、血紅素結(jié)合、葉綠體結(jié)合、轉(zhuǎn)錄調(diào)控子活性、電子載體活性及酶活性,分別占46.7%、7.4%、5.9%、2.0%、12.0%、3.9%、1.1%。

        生物過程方面已知功能的差異基因有974個(gè),涉及轉(zhuǎn)錄、氧化還原、防御反應(yīng)、光合作用、蛋白質(zhì)泛素化、胞外分泌、代謝過程、植物型細(xì)胞壁組織、蛋白質(zhì)發(fā)色團(tuán)、細(xì)胞運(yùn)動(dòng)及定位,分別占18.1%、5.3%、2.2%、2.5%、0.6%、0.4%、3.7%、0.3%、0.2%、0.8%。

        涉及細(xì)胞組成有功能的差異基因有1577,功能涉及細(xì)胞器(囊泡、質(zhì)體、葉綠體等)、細(xì)胞組成(細(xì)胞膜、細(xì)胞壁)、胞外區(qū)域、光合系統(tǒng)(光系統(tǒng)Ⅰ、光系統(tǒng)Ⅱ)、泛素連接酶復(fù)合體、細(xì)胞皮層及鞭毛,所占比例分別為23.7%、24.2%、2.4%、2.8%、0.5%、1.8%。

        2.5干旱脅迫下HEB07-2和巴西陸稻根系響應(yīng)基因的染色體定位

        為了分析干旱脅迫下HEB07-2和巴西陸稻根系響應(yīng)基因在水稻染色體上的分布,我們比較了供試材料在干旱脅迫下總響應(yīng)基因及誘導(dǎo)、抑制基因在各染色體上的分布個(gè)數(shù)(圖4)。結(jié)果表明,HEB07-2總響應(yīng)基因在各染色體上分布個(gè)數(shù)從多到少排序依次為第1、3、2、5、6、4、7、8、11、12、10和9染色體。其中,第1、3、2、5、4染色體上受干旱脅迫抑制基因多于受脅迫誘導(dǎo)基因,而這幾條染色體也是總響應(yīng)基因最多的幾條染色體;其余染色體上受干旱脅迫誘導(dǎo)基因數(shù)量大于受干旱脅迫抑制基因的數(shù)量,這幾條染色體上總響應(yīng)基因數(shù)量小于其他染色體。而巴西陸稻在干旱脅迫下染色體上總響應(yīng)基因數(shù)量在各染色體上分布個(gè)數(shù)從多到少排序依次是第1、3、2、5、6、4、7、11、8、9、12、10染色體。除第6、11染色體外,巴西陸稻其他染色體上均是受干旱抑制的基因數(shù)量多于誘導(dǎo)基因數(shù)量。在未知功能基因中HEB07-2受干旱脅迫誘導(dǎo)的基因遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于受干旱脅迫抑制的基因數(shù)量,而巴西陸稻則是受抑制的基因數(shù)量遠(yuǎn)大于受誘導(dǎo)的數(shù)量(圖5)。

        2.6干旱脅迫下HEB07-2和巴西陸稻表型和根系生理變化

        由圖6-A~B可知,干旱脅迫下IAPAR9根系超氧陰子產(chǎn)生速率和丙二醛含量顯著提高,與對(duì)照比達(dá)到極顯著水平,而HEB07-2上升幅度小,說明根系受傷害程度輕。干旱脅迫下HEB07-2根系可溶性糖含量顯著增高,與對(duì)照差異極顯著。

        由圖6-D~F可知干旱脅迫下HEB07-2根系超氧化物歧化酶、過氧化氫酶活性顯著增高,而IAPAR9只有過氧化物酶活性顯著增大。

        圖6-G~I(xiàn)顯示干旱脅迫下HEB07-2根系抗壞血酸過氧化物酶、谷胱甘肽還原酶、脫氧抗壞血酸還原酶活性均顯著增高,且抗壞血酸過氧化物酶、谷胱甘肽還原酶增高幅度都大于IAPAR9。

        A, HEB07-2; B, IAPAR9.

        圖4HEB07-2和IAPAR9干旱脅迫下響應(yīng)基因染色體分布

        Fig. 4. Distribution of regulated genes on rice chromosome under drought stress.

        圖5HEB07-2和IAPAR9響應(yīng)干旱脅迫的未知基因數(shù)

        Fig. 5. Unknow genes of HEB07-2 and IAPAR9 under drought stress.

        2.7實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析

        為驗(yàn)證芯片數(shù)據(jù)準(zhǔn)確與否,隨機(jī)選取HEB07-2和IAPAR9中表達(dá)發(fā)生變化的4個(gè)基因設(shè)計(jì)引物,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析。其中,2個(gè)基因與抗氧化物酶相關(guān),為L(zhǎng)OC_Os08g32840、LOC_Os02g02400;2個(gè)基因與鉀離子轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān),為L(zhǎng)OC_Os03g37840、LOC_Os04g52390。結(jié)果如圖8-A~B所示,在HEB07-2的實(shí)時(shí)熒光定量分析結(jié)果中,LOC_Os03g37840和LOC_Os04g52390略低于芯片分析的結(jié)果,LOC_Os08g32840和LOC_Os02g02400結(jié)果高于芯片分析的結(jié)果;在IAPAR9中,LOC_Os08g32840、LOC_Os02g02400的實(shí)時(shí)熒光定量分析結(jié)果略高于芯片分析的結(jié)果,LOC_Os03g37840、LOC_Os04g52390結(jié)果低于芯片分析的結(jié)果。從幾個(gè)基因的表達(dá)趨勢(shì)來看,實(shí)時(shí)熒光定量分析結(jié)果與基因芯片分析結(jié)果基因的表達(dá)趨勢(shì)基本一致。證明芯片分析結(jié)果是可靠的。

        3 討論

        近年來研究人員利用表達(dá)譜技術(shù)、轉(zhuǎn)基因技術(shù)等在鑒定植物耐旱基因方面做了大量工作[10,11, 14-18]。侯欣等[17]利用基因芯片篩選到了一個(gè)候選基因OsSKIP,轉(zhuǎn)入該基因的水稻幼苗在缺水條件下生存能力明顯增強(qiáng)。熊立仲等[18]在水稻中鑒定了一個(gè)控制水稻葉片蠟質(zhì)積累的基因DWA1,缺失該基因的dwa1突變體對(duì)干旱十分敏感。在本研究中,雜草稻以基因表達(dá)量上調(diào)這種主動(dòng)的調(diào)控形式來避害,而巴西陸稻的負(fù)調(diào)控水平高于正向的調(diào)控則表明其避害的方式與雜草稻可能存在本質(zhì)的區(qū)別。從脅迫后的兩種類型水稻生理指標(biāo)與生長(zhǎng)指標(biāo)角度分析,雜草稻HEB07-2對(duì)于干旱脅迫有更強(qiáng)的耐受程度,其響應(yīng)程度體現(xiàn)出了生物學(xué)效應(yīng)與遺傳學(xué)效應(yīng),是一類可以應(yīng)用于抗旱遺傳改良的優(yōu)異種質(zhì)資源。干旱脅迫下兩種抗旱類型水稻重疊的轉(zhuǎn)錄本的比例較小,表明稻屬植物應(yīng)對(duì)干旱脅迫的機(jī)制十分復(fù)雜。值得一提的是,從遺傳背景角度分析,雜草稻HEB07-2具有古老粳稻的基因組遺傳組成,而巴西陸稻屬于具有較高秈稻血緣的外來粳稻品種。因此,這種遺傳背景的差異同樣可以在表達(dá)譜中體現(xiàn)出來。

        圖6干旱脅迫下HEB07-2和IAPAR9根系生理指標(biāo)變化

        Fig. 6. The physiological index change in HEB07-2 and IAPAR9 under drought condition.

        干旱脅迫下HEB07-2生物過程相關(guān)基因中表達(dá)數(shù)量最多的幾類基因涉及轉(zhuǎn)錄調(diào)控(215個(gè))、轉(zhuǎn)錄(116個(gè))、依據(jù)DNA轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)(122個(gè))、RNA代謝(122個(gè))、金屬離子轉(zhuǎn)運(yùn)(40個(gè))。當(dāng)外界環(huán)境發(fā)生變化時(shí),由轉(zhuǎn)錄因子控制的基因會(huì)對(duì)環(huán)境做出應(yīng)答。Ali Moumeni等[19]研究表明在干旱脅迫中有2336個(gè)基因表達(dá)發(fā)生變化,其中1461個(gè)基因來自于轉(zhuǎn)錄因子基因家族,占變化基因總數(shù)的62.5%。本研究發(fā)現(xiàn)干旱脅迫下雜草稻差異表達(dá)基因中,轉(zhuǎn)錄家族基因也占很大比例,這有利于提高植物的耐旱性[20]。本研究中,離子轉(zhuǎn)運(yùn)基因表達(dá)數(shù)量也較多,其中鉀離子轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)基因上調(diào)表達(dá)幅度較大,LOC_Os03g37840上調(diào)表達(dá)8.3倍、LOC_Os04g52390上調(diào)表達(dá)3.8倍,鉀是植物體內(nèi)活細(xì)胞進(jìn)行新陳代謝的重要陽離子,一切生理生化反應(yīng)差不多都有鉀參加,是植物需要最多的陽離子,它能夠促進(jìn)根系吸水,提高植物水分利用效率,并能夠活化多種酶,促進(jìn)蛋白質(zhì)的合成,從而提高氮素的利用率,所以干旱脅迫下鉀離子轉(zhuǎn)運(yùn)活性相關(guān)基因上調(diào)表達(dá),有利于植物體內(nèi)鉀離子的積累,提高水分利用效率,促進(jìn)功能蛋白合成,提高肥料利用效率,從而幫助植物渡過逆境脅迫[21-24]。除此以外,涉及細(xì)胞過程相關(guān)基因上調(diào)表達(dá)的還有幾丁質(zhì)代謝相關(guān)基因、次生代謝過程相關(guān)基因、細(xì)胞氨基酸衍生物合成相關(guān)基因。這些基因的表達(dá)與HEB07-2和巴西陸稻相應(yīng)的抗旱生理指標(biāo)可以很好地印證。因此,這些生物過程相關(guān)基因?qū)τ陔s草稻抗旱具有重要的貢獻(xiàn)。

        圖7干旱脅迫下HEB07-2和IAPAR9表型變化

        Fig. 7. Phenotype of HEB07-2 and IAPAR9 under drought condition.

        A, HEB07-2; B, IAPAR9; 1, LOC_Os03g37840; 2, LOC_Os04g52390; 3, LOC_Os08g32840; 4, LOC_Os02g02400.

        圖8HEB07-2和IAPAR9實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)果與芯片數(shù)據(jù)的比較

        Fig. 8. Comparison of microarray data with real-time PCR results in HEB07-2 and IAPAR9.

        干旱脅迫下雜草稻HEB07-2涉及最多的細(xì)胞組成差異表達(dá)基因?yàn)槟は到y(tǒng)組成相關(guān)基因(184個(gè))、內(nèi)在膜蛋白(187個(gè))、細(xì)胞質(zhì)囊泡(193個(gè))以及細(xì)胞質(zhì)膜結(jié)合囊泡(193個(gè))等。本研究發(fā)現(xiàn),雜草稻之所以能很好地抵御干旱脅迫,保持膜系統(tǒng)的完整性是其中最重要的原因之一。這與基因組表達(dá)譜高度吻合,這種吻合性也同樣體現(xiàn)在細(xì)胞壁的合成上。研究表明幾丁質(zhì)是植物細(xì)胞壁重要組成部分,干旱脅迫可以通過影響幾丁質(zhì)代謝進(jìn)而影響植物細(xì)胞壁的合成,而在幾丁質(zhì)代謝相關(guān)基因的表達(dá)上雜草稻HEB07-2同樣體現(xiàn)出很高的正向調(diào)控水平。因此,這些細(xì)胞組成相關(guān)基因?qū)τ陔s草稻出眾的抗旱能力有著很好的解釋。

        干旱脅迫期間,HEB07-2有關(guān)分子功能差異基因,主要有離子結(jié)合(466個(gè))、金屬離子結(jié)合(428個(gè))、蛋白激酶活性(178個(gè))、蛋白質(zhì)絲氨酸/組氨酸激酶活性(154個(gè))、轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子活性(136個(gè))、電子載體活性等。其中,金屬離子結(jié)合、電子載體活性與氧化還原酶合成有關(guān),這些基因的表達(dá)有利于提高擬南芥耐旱和耐高溫的能力[25],以及水稻對(duì)長(zhǎng)期干旱脅迫的適應(yīng)[26]。本研究表明,質(zhì)膜較高的抗氧化能力是雜草稻耐旱的重要原因,這一過程中相關(guān)的酶活性提高是關(guān)鍵所在,干旱脅迫促使HEB07-2超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)、抗壞血酸過氧化物酶(APX)、谷胱甘肽還原酶(GR)、脫氫抗壞血酸還原酶(DHAR)的活性上升,維持活性氧代謝平衡,提高抗旱能力,同樣在表達(dá)譜中與氧化還原相關(guān)基因的表達(dá)水平處于非常突出的地位。

        巴西陸稻在干旱脅迫下涉及生物過程的基因主要包括轉(zhuǎn)錄調(diào)控(126個(gè))、依賴DNA的轉(zhuǎn)錄控制(74個(gè))、RNA代謝調(diào)控過程(74個(gè))、轉(zhuǎn)錄(53個(gè))、離子轉(zhuǎn)運(yùn)(34個(gè))。其下調(diào)表達(dá)基因主要有鉀離子轉(zhuǎn)運(yùn)、谷氨酸家族氨基酸代謝過程、細(xì)胞氨基酸合成過程。干旱脅迫下鉀離子通道蛋白基因表達(dá)受抑,說明干旱脅迫在一定程度上影響了巴西陸稻細(xì)胞內(nèi)鉀離子轉(zhuǎn)運(yùn),加劇了細(xì)胞的滲透脅迫,導(dǎo)致干旱損傷。同時(shí)干旱脅迫導(dǎo)致細(xì)胞氨基酸合成減少,進(jìn)而影響蛋白質(zhì)的功能,這也是干旱損傷的表現(xiàn)。生物過程中上調(diào)表達(dá)的主要與抵抗細(xì)菌的基因相關(guān),屬于OsPR4家族,受干旱脅迫等非生物脅迫誘導(dǎo),過表達(dá)OsPR4家族基因有利于植物提高耐旱性[27]。巴西陸稻細(xì)胞組成相關(guān)基因發(fā)生表達(dá)變化的主要涉及內(nèi)在膜蛋白(81個(gè))、膜完整性(79個(gè))、細(xì)胞質(zhì)膜結(jié)合囊泡(78個(gè))等。其中上調(diào)表達(dá)涉及的基因有胞外區(qū)域調(diào)節(jié)基因,下調(diào)表達(dá)的基因主要有細(xì)胞壁。有研究表明輕度干旱脅迫下根系仍能維持生長(zhǎng)[28],在本研究中涉及細(xì)胞壁合成的幾個(gè)基因中,CSLC-1(LOC_Os01g56130)、XG_FTase(LOC_Os06g10980)上調(diào)表達(dá),而CSLE-6(LOC_Os09g30130)、XG_FTase(LOC_Os02g52640)、CSLA-9(LOC_Os06g42020)、CSLC2(LOC_Os09g25900)均下調(diào)表達(dá)。眾多研究表明CslA亞家族編碼(1,4)-β-D-甘露聚糖合成酶,而CslC-1家族編碼(1,4)-β-D-葡聚糖合成,其是木葡聚糖的骨架組成部分[29-31]。較低的細(xì)胞水勢(shì)使玉米根系木葡聚糖活性上升,是為維持根系在脅迫條件下的生長(zhǎng)。本研究結(jié)果表明,干旱脅迫下巴西陸稻根系與細(xì)胞壁合成相關(guān)基因既有上調(diào)表達(dá)又有下調(diào)表達(dá),但以下調(diào)表達(dá)為主,說明干旱已經(jīng)影響了其細(xì)胞壁的合成,是遭受干旱脅迫傷害的一種表現(xiàn)。巴西陸稻涉及分子功能的基因發(fā)生表達(dá)變化的主要有離子結(jié)合(203個(gè))、DNA結(jié)合(123個(gè))、轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子活性(80個(gè))、轉(zhuǎn)錄因子活性(59個(gè))、特異序列DNA結(jié)合(41個(gè))等。大多以下調(diào)表達(dá)為主,涉及碳水化合物激酶活性、鉀離子跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)體活性、金屬離子跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)體活性、氧化還原酶活性等。這些都說明與雜草稻相比巴西陸稻易受干旱脅迫的危害。

        HEB07-2與巴西陸稻干旱脅迫下響應(yīng)途徑的差異表現(xiàn)為HEB07-2在鉀離子轉(zhuǎn)運(yùn)、次生物質(zhì)代謝、細(xì)胞生長(zhǎng)、葡萄糖代謝、跨膜離子轉(zhuǎn)運(yùn)器活性、亞鐵血紅素結(jié)合體、氧化還原酶活性等方面基因顯著上調(diào)。研究結(jié)果表明控制SOD(LOC_Os07g46990)、POD(LOC_Os01g18970)、CAT(LOC_Os02g02400)、APX(LOC_Os07g49400)、MDHAR(LOC_Os08g32840)、GR(LOC_Os02g56850)酶活性的基因與巴西陸稻比分別上調(diào)表達(dá)1.9倍、6.43倍、5.20倍、2.39倍、6.07倍、1.14倍,這與生理研究結(jié)果一致,即干旱脅迫下雜草稻抗氧化酶活性更高,能夠及時(shí)清除ROS,保持細(xì)胞內(nèi)ROS代謝平衡,減輕干旱脅迫對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生的傷害,表明HEB07-2與巴西陸稻比在生理生化代謝方面更適應(yīng)干旱脅迫。前人研究表明干旱脅迫下耐旱品種抗氧化酶系基因表達(dá)顯著上調(diào)[19],與本研究結(jié)果一致。維持植物根系在干旱脅迫下的生長(zhǎng)十分重要,這需要協(xié)調(diào)細(xì)胞內(nèi)眾多過程[32]。本研究結(jié)果表明HEB07-2和巴西陸稻比關(guān)于細(xì)胞生長(zhǎng)(cell growth)的差異表達(dá)基因有29個(gè),平均上調(diào)4.1倍,這說明在干旱脅迫下HEB07-2根系受到脅迫較輕,有更強(qiáng)的生長(zhǎng)勢(shì),耐旱性強(qiáng)于巴西陸稻,這與Bartels研究[28]結(jié)果一致。此外,HEB07-2與鉀離子轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)基因表達(dá)活性也顯著高于巴西陸稻,這有利于提高HEB07-2的水分利用率及滲透調(diào)節(jié)能力,進(jìn)而提高耐旱能力。

        本研究通過對(duì)干旱脅迫后北方雜草稻HEB07-2與巴西陸稻表達(dá)譜的比較研究,對(duì)不同稻屬植物的抗旱分子機(jī)制有了進(jìn)一步的認(rèn)識(shí)。另外,本研究雖然對(duì)差異表達(dá)基因進(jìn)行了GO分析,但仍然缺乏系統(tǒng)解析不同基因家族對(duì)于雜草稻在更高抗旱水平上的表達(dá)調(diào)控的特點(diǎn),這有待于進(jìn)一步研究。

        水稻抗旱的分子機(jī)制被普遍認(rèn)為是所有非生物脅迫中最復(fù)雜的,雖然前人有過許多正向遺傳學(xué)研究的嘗試,也取得了一定的進(jìn)展,然而并沒有克隆到主效的抗旱相關(guān)基因。關(guān)于水稻耐旱反向遺傳學(xué)的研究也有一定的進(jìn)展,但鑒定到的抗旱位點(diǎn)很難確定遺傳效應(yīng),在不同的遺傳背景或不同的生物學(xué)重復(fù)中很難重復(fù)。鑒于抗旱稻屬植物分子遺傳機(jī)制的復(fù)雜性,在今后的研究中將正向遺傳學(xué)與反向遺傳學(xué)相互結(jié)合,即對(duì)可以定位到數(shù)量性狀基因座中具有大的遺傳貢獻(xiàn)的表達(dá)差異位點(diǎn)進(jìn)行著重分析,有望大大簡(jiǎn)化抗旱分子遺傳機(jī)制的復(fù)雜程度,定位、克隆到可以在育種中應(yīng)用的具有遺傳效應(yīng)的主效基因。

        在線輔助信息:有3個(gè)在線輔助性表S1、S2和S3放在中國水稻科學(xué)網(wǎng)站上,網(wǎng)址為http://www.ricesci.cn/。

        [1]Miura K, Ikeda M, Matsubara A, et al. OsSPL14 promotes panicle branching and higher grain productivity in rice.NatGenet, 2010, 42(6): 545-549.

        [2]Lafitte H R, Li Z K, Vijayakumar C H M. Improvement of rice drought tolerance through backcross breeding: Evaluation of donors and selection in drought nurseries.FieldCropsRes, 2006, 97: 77-86.

        [3]Lilley J M, Ludow T J, McCouch S R, et al. Locating QTL for osmotic adjustment and dehydration tolerance in rice.ExpBot, 1996, 47(302): 1427-1436.

        [4]Courtois G M, Shinha P K, Prasad K, et al. Mapping QTLs associated with drought avoidance in up lands rice.MolBreeding, 2000, 6: 55-66.

        [5]徐吉臣, 李晶昭, 鄭先武, 等. 苗期水稻根部性狀的QTL定位. 遺傳學(xué)報(bào), 2001, 28(5): 433-438.

        Xu J C, Li J Z, Zheng X W, et al. QTL mapping of the root traits in rice seeding.ActaGenetSin, 2001, 28(5): 433-438.(in Chinese with English abstract)

        [6]Kumar R, Venuprasad R, Atlin G N. Genetic analysis of rainfed lowland rice drought tolerance under naturally-occurring stress in eastern India: Heritability and QTL effects.FieldCropsRes, 2007, 103: 42-52.

        [7]趙寶存, 趙芊, 葛榮朝, 等. 利用基因芯片研究小麥耐鹽突變體鹽脅迫條件下基因的表達(dá)圖譜. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué), 2007, 40(10): 2355-2360.

        Zhao B C, Zhao Q, Ge R C, et al. Study on the expression profile of salt-tolerance mutant under salt-stress in wheat using gene microarray.SciAgricSin, 2007, 40(10): 2355-2360. (in Chinese with English abstract)

        [8]Jung C, Lyou S H, Yeu S Y, et al. Microarray-based screening of jasmonate responsive genes inArabidopsisthaliana.PlantCellRep, 2007, 26: 1053-1063.

        [9]Degenkolbe T, Do P T, Zuther E, et al. Expression profiling of rice cultivars differing in their tolerance to long-term drought stress.PlantMolBiol, 2009, 69: 133-153.

        [10]李永春, 孟凡榮, 王瀟, 等. 干旱脅迫條件下“洛旱2號(hào)”小麥根系的基因表達(dá)譜. 作物學(xué)報(bào), 2008, 34(12): 2126-2133.

        Li Y C, Meng F R, Wang X, et al. Gene expression profiling in roots of wheat cultivar “Luohan 2” under water stress.ActaAgronSin, 2008, 34(12): 2126-2133.(in Chinese with English abstract)

        [11]Zhang C, Zhang L, Zhang S, et al. Global analysis of gene expression profiles in physic nut (JatrophacurcasL.) seedlings exposed to drought stress.BMCPlantBiol, 2015, 15(1): 17.

        [12]Wang G J, Miao W, Wang J Y, et al. Effects of exogenous abscisic acid on antioxidant system in weedy and cultivated rice with different chilling sensitivity under chilling stress.JAgronCropSci, 2013, 199(3): 200-208.

        [13]Tang L, Ma D R, Xu Z J. Utilization of weedy rice for development of japonica hybrid rice(OryzasativaL.).PlantSci, 2011, 180: 733-740.

        [14]Huang D, Wu W, Abrams S R, et al. The relationship of drought-related gene expression inArabidopsisthalianato hormonal and environmental factors.JExpBot, 2008, 59: 2991-3007.

        [15]Manavalan L P, Guttikonda S K, Tran L S, et al. Physiological and molecular approaches to improve drought resistance in soybean.PlantCellPhysiol, 2009, 50: 126-127.

        [16]Gong P, Zhang J, Li H, et al. Transcriptional profiles of drought-responsive genes in modulating transcription signal transduction, and biochemical pathways into tomato.JExpBot, 2010, 61: 3563-3575.

        [17]Hou X, Xie K, Yao J, et al. A homolog of human ski-interacting protein in rice positively regulates cell viability and stress tolerance.PNAS, 2009, 106(15): 6410-6415.

        [18]Zhu X, Xiong L. Putative megaenzyme DWA1 plays essential roles in drought resistance by regulating stress-induced wax deposition in rice.PNAS, 2013, 110(44): 17790-17795.

        [19]Moumeni A, Satoh K , Kondoh H, et al. Comparative analysis of root transcriptome profiles of two pairs of drought-tolerance and susceptible rice near-isogenic lines under different drought stress.BMCPlantBiol, 2011, 11: 174-191.

        [20]Wang H G, Zhang H L, Li Z C. Analysis of gene expression profile induced by water stress in upland rice (OryzasativaL.var.IRAT109) seedlings using subtractive expressed sequence tags library.JIntegrPlantBiol, 2007, 49(10): 1455-1463.

        [21]Maathuis F J M, Sanders D. Energization of potassium uptake inArabidopsisthaliana.Planta, 1993, 191: 302-307.

        [22]Walker D J, Leigh R A, Miller A J. Potassium homeostasis in vacuolate plant cells.PNAS, 1996, 93: 10510-10514.

        [23]Britto D T, Kronzucker H J. Cellular mechanisms of potassium transport in plants.PhysiolPlant, 2008, 133: 637-650.

        [24]Mahouachi J, Socorro A R, Talon M. Responses of papaya seedlings (CaricapapayaL.) to water stress and rehydration: growth, photosynthesis and mineral nutrient imbalance.PlantSoil, 2006, 281: 137-146.

        [25]Rizhsky L, Liang H, Shuman J, et al. When defense pathways collide: The response ofArabidopsisto a combination of drought and heat stress.PlantPhysiol, 2004, 134: 1683-1696.

        [26]Degenkolbe T, Do P T, Zuther E, et al. Expression profiling of rice cultivars differing in their tolerance to long-term drought stress.PlantMolBiol, 2009, l69: 133-153.

        [27]Wang N L, Xiao B Z, Xiong L Z. Identification of a cluster ofPR4-like genes involved in stress responses in rice.JPlantPhysiol, 2011, 168(18): 2212-2224.

        [28]Bartels D, Sunkar R. Drought and salt tolerance in plants.CritRevPlantSci, 2005, 24: 23-58.

        [29]Liepman A H, Nairn C J, Willats W G, et al. Functional genomic analysis supports conservation of function among cellulose synthase-like a gene family members and suggests diverse roles of mannans in plants.PlantPhysiol, 2007, 143: 1881-1893.

        [30]Cocuron J C, Lerouxel O, Drakakaki G, et al. A gene from the cellulose synthase like C family encodes a beta-1, 4 glucan synthase.PNAS, 2007, 104: 8550-8555.

        [31]Burton R A, Jobling S A, Shirley N J, et al. The genetics and transcriptional profiles of the cellulose synthase-like HvCsIF gene family in barley.PlantPhysiol, 2008, 146: 1821-1833.

        [32]Dolan L, Davies J. Cell expansion in roots.CurrOpinPlantBiol, 2004, 7: 33-39.

        Global Genome Expression Analysis of Root Genes under Drought Stress in Weedy Rice and Up-land Rice

        DING Guo-hua1,2,#, SUN Jian2,#, YANG Guang3, ZHANG Feng-ming1, BAI Liang-ming1, SUN Shi-chen1, JIANG Shu-kun1, WANG Tong-tong1, ZHENG Hong-liang1, XIA Tian-shu1, SHEN Xi-hong4, MA Dian-rong2, *, CHEN Wen-fu2,*

        (1Postdoctoral Scientific Research Station of HAAS/Cultivation and Farming Research Institute of HASS/ Northern Japonica Rice Molecular Breeding Joint Research Center, Harbin 150086, China;2Shenyang Agricultural University, Shenyang 110866, China;3Institute of Economic Crop of Liaoning, Liaoyang 111000, China;4China National Rice Research Institute,Hangzhou 310006,China;#These authors contributed equally to this work;*Corresponding author, E-mail: madianrong@163.com, wfchen5512@126.com)

        The expression changes of root genes in drought-resistance weedy rice HEB07-2 (Oryzasativaf.spontanea) and up-land rice IAPAR9 (Oryzasativa) were analyzed under polyethylene glycol(PEG)-simulated with drought stress condition with Affymetrix GeneChip rice genome array. The results indicated that the extent and direction of transcriptome response of HEB07-2 and IAPAR9 to drought differed greatly. For HEB07-2, among 6878 expressed genes, 4693 were up-regulated and 2185 were down-regulated under drought condition. For IAPAR9, among 2923 expressed genes,983 were up-regulated and 1940 were down-regulated. Analysis of differentially expressed genes in HEB07-2 and IAPAR9 showed that the weedy rice HEB07-2 had a higher changing fold than the up-land rice IAPAR9. Gene ontology analysis revealed that genes of HEB07-2 in potassium ion transporting(GO: 0006813), secondary metabolite(GO: 0019748), cell growth(GO: 0016049), glucose metabolism(GO:0006006), transmembrane ion transporter activity(GO:0015075), ferroheme coalition(GO:0020037), oxidordeuctase activity(GO:0016491)were significantly up-regulated in comparing with IAPAR9. These were consistent with the physiological and phenotypic data.

        weedy rice; root; gene expression profiling; drought resistance

        2015-12-09; 修改稿收到日期: 2016-01-23。

        黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院博士后工作站;哈爾濱市科技局項(xiàng)目(2014RFQYJ125);黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院創(chuàng)新工程項(xiàng)目(2014QN006);黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院博士人員科研啟動(dòng)金項(xiàng)目(201507-16);國家水稻產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系項(xiàng)目(CARS-01-43); 北方寒地粳稻資源研究與新品種選育項(xiàng)目(2014BAD01B03-02)。

        Q786; Q945.78

        A

        1001-7216(2016)05-0458-11

        丁國華, 孫健, 楊光, 等. 干旱脅迫下雜草稻和栽培稻根系基因表達(dá)差異研究. 中國水稻科學(xué), 2016, 30(5): 458-468.

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