王發(fā)祥,張付蘭,劉永樂,俞 健,王建輝,李向紅,陳 奇(長沙理工大學化學與生物工程學院,湖南省水生資源食品加工工程技術(shù)研究中心,湖南長沙410114)
草魚冷藏過程中肌原纖維蛋白的變化
王發(fā)祥,張付蘭,劉永樂*,俞健,王建輝,李向紅,陳奇
(長沙理工大學化學與生物工程學院,湖南省水生資源食品加工工程技術(shù)研究中心,湖南長沙410114)
通過亞基組成、熱力學性質(zhì)、表面疏水性和Ca2+-ATPase活性的變化分析,評價了草魚(Ctenopharyngodon idellus)肌原纖維蛋白在冷藏過程中的變化。結(jié)果表明:冷藏前期草魚肌原纖維表面疏水性增加,說明蛋白逐漸變性導致更多的疏水性基團暴露出來,而第6 d后又大幅降低,可能與其部分降解為小分子并聚合有關(guān);而Ca2+-ATPase活性在冷藏前6 d顯著下降,進一步說明冷藏前期肌原纖維蛋白變性程度增加;SDS-PAGE分析表明草魚肌原纖維蛋白的亞基組成變化不大,但其蛋白含量在冷藏過程中呈先增加后下降的趨勢,同時部分蛋白條帶信號時有時無,也說明冷藏過程中既存在大分子亞基一定程度的降解,也存在小分子亞基聚合的情況;冷藏過程中草魚肌原纖維蛋白的熱力學性質(zhì)沒有明顯的變化,表明冷藏對其熱穩(wěn)定性影響不大。
草魚,肌原纖維蛋白,表面疏水性,差示掃描量熱法,冷藏
草魚(Ctenopharyngodon idellus)肉質(zhì)鮮美,價格適中,深受消費者喜愛,是我國產(chǎn)量和消費量最大的淡水魚之一。然而,草魚肉水分含量高,組織酶活性強,很難保鮮和貯藏,即使在冷藏條件下,肌肉也極易軟化、汁液流失甚至腐敗。蛋白質(zhì)為草魚肌肉組織的最重要組成部分,其冷藏過程中的降解和變性均會導致其功能喪失,從而直接決定了魚肉質(zhì)量的好壞[1-3]。肌原纖維蛋白是組成肌肉中肌原纖維的蛋白質(zhì),不溶于水,僅溶于高鹽溶液,種類包括肌球蛋白、肌動蛋白、原肌球蛋白、肌鈣蛋白、輔肌動蛋白等15種以上的蛋白質(zhì)。草魚肌肉蛋白質(zhì)中60%~75%為肌原纖維蛋白,其不僅與魚體死后僵硬和肌肉的收縮有關(guān),還與魚肉加工、儲運過程中的蛋白質(zhì)變性和凝膠形成能力及其穩(wěn)定性有密切關(guān)系[4-5]。已有研究關(guān)注到草魚冷藏過程中肌肉蛋白質(zhì)的變化[3],但尚未具體到肌原纖維蛋白變化規(guī)律的研究。因此,研究冷藏過程中草魚肌原纖維蛋白理化性質(zhì)和結(jié)構(gòu)變化規(guī)律,對研究淡水魚肌肉質(zhì)量的變化及品質(zhì)劣化機制具有重要意義。
目前,聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)和差示掃描量熱(DSC)等方法已被用作評估肌肉蛋白質(zhì)在貯藏過程中變化和穩(wěn)定性的有力工具。冷藏過程中,肌原纖維蛋白的Ca2+-ATPase活性、表面疏水性和熱力學性質(zhì)等作為判定肌肉蛋白質(zhì)變性的重要指標,其隨時間延長的改變也能直接反映肌肉蛋白質(zhì)理化性質(zhì)和微結(jié)構(gòu)的變化情況。本文通過SDS-PAGE、DSC、反相高效液相色譜(RP-HPLC)和Ca2+-ATPase活性測定等方法,研究了冷藏過程中草魚肌原纖維蛋白的變性特征及其亞基、熱力學性質(zhì)的變化規(guī)律,旨在從肌原纖維蛋白變化角度闡述冷藏對草魚肉的影響,為草魚的保鮮或加工提供參考。
1.1材料與儀器
新鮮草魚購于當?shù)剞r(nóng)貿(mào)市場,每尾約1.5 kg;甘氨酸、SDS、三羥甲基氨基甲烷、聚乙二醇6000、鹽酸胍、尿素、對苯二酚、亞硫酸鈉、鉬酸銨分析純,國藥集團化學試劑有限公司;5,5’-二硫代-2-硝基苯甲酸分析純,濰坊華實藥業(yè)有限公司。
Centrifuge 5430R型高速冷凍離心機德國eppendorf公司;AUY120分析天平日本島津公司;DTS系列雙頻超聲波清洗機、微波光波超聲波萃取儀寧波新芝生物科技股份有限公司;THX-05低溫恒溫循環(huán)泵寧波天恒儀器廠;STA449PC型綜合熱分析儀德國耐馳公司;LC20高效液相色譜日本島津公司。
1.2實驗方法
1.2.1不同冷藏時間肌原纖維蛋白樣品的制備新鮮草魚致死后去頭、尾、鱗,洗凈后去骨,將肌肉分割成10 g左右的小塊,自封袋包裝(100 g)后于2~4℃冰箱冷藏,分別在0、2、4、6、8和10 d的同一時間點取出,參考Chen[6]方法制備肌原纖維蛋白樣品。
1.2.2肌原纖維蛋白SDS-PAGE分析在1.2.1中所收集的上清液中吸取肌原纖維蛋白上清液400 μL于1.5 mL Eppendorf管中,1∶1加入2倍還原上樣緩沖液(Tris-HCl,pH6.8,100 mmol/L;SDS,4%;溴酚蘭,0.2%;甘油,20%;β-巰基乙醇,200 mmol/L),混勻煮沸3 min,12000 r/min離心5 min,吸取上清液,上清液即為電泳樣品。電泳條件:分離膠濃度為12%,濃縮膠濃度5%,恒壓電壓120 V,考馬斯亮藍G250染色,Gel-Pro 4.5軟件分析電泳圖,比較其光密度(IOD)和蛋白條帶。
1.2.3蛋白質(zhì)表面疏水性分析各個貯藏時間的魚肉肌原纖維蛋白溶液樣品用磷酸鹽緩沖液(15.6 mmol/L Na2HPO4,3.5 mmol/L KH2PO4,0.5 mol/L NaCl,pH7.5)做50倍稀釋,12000 r/min離心5 min,上清液用0.45 μm的微孔濾膜過濾備用。樣品以高效液相色譜進行反相色譜(PRLC)分析,根據(jù)出峰時間、峰面積判斷蛋白質(zhì)的疏水性[7-8]。色譜條件:Symmetry-C18色譜柱,柱溫為30℃,SPD-M20A二級管陣列檢測器,檢測波長為280 nm,進樣量為20 μL。流動相為甲醇—水溶液,以水為流動相A,以甲醇為流動相B,洗脫梯度:0 min,5%B;0~30 min,5%~90%B;30~33 min,90%~5%B;33~40 min,5%B。根據(jù)出峰時間和特征以8.5 min為分界點,可將8.5~30 min的峰面積與總峰面積的比值作為疏水性系數(shù)用于判斷其表面疏水性強弱的依據(jù)。
1.2.4熱力學性質(zhì)變化分析采用示差掃描量熱(DSC)分析,間接反映蛋白結(jié)構(gòu)的變化。配對好鋁坩堝,在鋁坩堝中加入2.5 mg的草魚肌原纖維蛋白質(zhì)樣品,壓蓋密封,以綜合熱分析儀掃描曲線。溫度掃描范圍:30~120℃;掃描速率:10℃/min。
1.2.5Ca2+-ATPase活性的變化分析參考Benjakul[9-10]關(guān)于Ca2+-ATPase活性的測定方法。
1.2.6數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析每組實驗進行3個平行,實驗數(shù)據(jù)采用DPS數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)進行統(tǒng)計分析。
2.1SDS-PAGE電泳分析
不同冷藏時間草魚肌原纖維蛋白的SDS-PAGE圖譜如圖1所示。可見,草魚肌原纖維蛋白主要由分子量約為215 ku的肌球蛋白重鏈、43 ku的肌動蛋白和33~36 ku的原肌球蛋白等組成[11];而且,除了從第2 d開始新增了一條98 ku的新條帶外,所有樣品的蛋白條帶分布模式幾乎無肉眼可辨的差別,說明冷藏過程中,組成肌原纖維蛋白的亞基變化不大。
圖1 草魚冷藏過程中肌原纖維蛋白SDS-PAGE圖譜Fig.1 SDS-PAGE pattern of myofibrillar protein of Ctenopharyngodon idellus during refrigerated storage
用Gel-Pro Analyzer 4.0凝膠分析軟件對圖1進行分析,得到各個泳道中蛋白質(zhì)條帶與其相應(yīng)的分子量和光密度,如表1所示。可見從第2 d新增的98 ku的蛋白質(zhì)條帶隨著冷藏時間的延長,光密度不斷降低;與此同時,第0 d樣品中分子質(zhì)量為88 ku的蛋白條帶在第2 d未檢測出信號,表明冷藏過程中存在部分蛋白亞基持續(xù)降解過程;另外,分子質(zhì)量為73 ku和41 ku的蛋白條帶IOD值呈先增加后降低的趨勢,至第8 d已檢測不到信號;而且,每個樣品檢測到蛋白條帶的總IOD值也呈現(xiàn)先升高,第4 d到達峰值,然后再降低的趨勢。由于蛋白樣品從提取到上樣都嚴格保證了一致性,因此,表1結(jié)果可說明冷藏過程中草魚肌原纖維蛋白的含量呈先增加后下降的趨勢,可能是因為前期蛋白質(zhì)變性引起肌球蛋白聚合體解開,溶解性增加,而后期下降則可能與蛋白質(zhì)的降解有關(guān)。這一趨勢也與Wang等[12]報道的大西洋鮭魚的變化趨勢基本相似。此外,分子量在122~147 ku的蛋白條帶信號時有時無,表明冷藏過程中不僅存在大分子亞基逐漸降解,也可能存在小分子亞基聚合的情況。
表1 各個蛋白帶的光密度分子量分析表Table 1 Analysis of optical density of each protein band with molecular weight
2.2熱力學性質(zhì)變化分析
DSC方法是分析蛋白質(zhì)的熱穩(wěn)定性最有力的工具,蛋白質(zhì)變性過程中的起始溫度T0,峰值溫度Tg,結(jié)束溫度Te和熱焓ΔH,可以間接反映蛋白質(zhì)在冷藏過程中結(jié)構(gòu)的變化[13-14]。冷藏過程中草魚肌原纖維蛋白的熱力學性質(zhì)的變化如表2所示。由表2可知,在本實驗中,隨著冷藏時間的延長,熱變性的結(jié)束溫度Te在小幅度的降低,熱焓ΔH呈現(xiàn)先降低再增加,而后繼續(xù)降低的趨勢,峰值溫度Tg則沒有明顯的變化規(guī)律。總體而言,冷藏過程中草魚肌原纖維蛋白的熱力學性質(zhì)變化不大。
表2 不同冷藏時間的草魚肌原纖維蛋白熱特性表Table 2 Time-dependent changes of thermal characteristics of Ctenopharyngodon idellus myofibrillar protein during different refrigerated storage time
2.3表面疏水性的變化分析
蛋白質(zhì)表面疏水性不僅反映其表面疏水性氨基酸的相對含量,也可反映蛋白質(zhì)的變性程度,表面疏水性的增加表明其變性程度增加[15]。反相高效液相色譜是根據(jù)樣品疏水性的不同而進行的分離,樣品的出峰時間、出峰面積和峰強度反映出樣品疏水性的強弱,出峰時間越短,峰面積越大,峰強度越強,說明蛋白質(zhì)的疏水性越弱[16]。
圖2 草魚肌原纖維蛋白不同冷藏時期的凝膠色譜圖Fig.2 Gel chromatogram of myofibrillar proteins of Ctenopharyngodon idellus during different refrigerated storage ice protein
圖2為草魚肌原纖維蛋白不同冷藏時期的凝膠色譜圖,草魚肌原纖維蛋白不同冷藏時間點的表面疏水性變化規(guī)律如圖3所示??梢姡S著冷藏時間的延長,反相色譜的第一個洗脫峰的面積逐漸減小,根據(jù)色譜的雙保留機理,有機相為低濃度時,蛋白質(zhì)保留主要受疏水作用影響,因此,在反相色譜中先洗脫出來的部分親水性強,說明冷藏過程中草魚肌原纖維蛋白的親水性組分逐漸減少;然而,蛋白質(zhì)的疏水性系數(shù)并沒有呈現(xiàn)出一直上升的規(guī)律,在冷藏前4 d,草魚肌原纖維蛋白的疏水性系數(shù)逐漸增加,印證了冷藏過程中蛋白質(zhì)變性伸展,埋藏在分子內(nèi)部的部分疏水性氨基酸暴露出來,從而導致表面疏水性的增加;但從第4 d開始,疏水性系數(shù)有所下降,這可能是因為冷藏后期部分蛋白質(zhì)降解為更小的蛋白質(zhì)分子后,又因為疏水相互作用締合,其疏水性氨基酸又被包埋在更大的蛋白質(zhì)聚集體內(nèi)部,從而導致表面疏水性基團減少。這與Soottawat等[17]報道的凍藏過程中比大目狗母魚肌肉蛋白表面疏水性變化規(guī)律類似。
圖3 冷藏過程中草魚肌原纖維蛋白表面疏水性變化Fig.3 Changes in surface hydrophobicity of grass carp myofibrillar protein during cold storage
2.4Ca2+-ATPase活性的變化分析
肌球蛋白是肌原纖維蛋白的主要部分,ATPase位于肌球蛋白的頭部,當肌球蛋白在冷藏過程中發(fā)生變性時,ATPase活性已因受到影響而隨之變化,從而失去活性[18]。因此Ca2+-ATPase活性是評定蛋白質(zhì)品質(zhì)的重要指標,測定ATPase活性的變化可以反映出肌球蛋白的變化情況,繼而反映出肌肉的變化情況[19]。圖4為不同冷藏時間草魚肌動球蛋白Ca2+-ATPase的活性測定結(jié)果??梢?,隨著草魚肌肉冷藏時間的延長,其肌原纖維蛋白的Ca2+-ATPase活性呈下降趨勢,尤其是前6 d內(nèi)下降非常顯著(p<0.01)。
圖4 不同冷藏溫度下草魚肌原纖維蛋白Ca2+-ATPase活性的變化Fig.4 Changes of Ca2+-ATPase activities in Ctenopharyngodon idellus muscle at different temperatures
對冷藏條件下草魚肌原纖維蛋白的亞基分布、熱力學性質(zhì)、表面疏水性和Ca2+-ATPase活性等理化性質(zhì)的變化進行了分析。結(jié)果表明:冷藏前期,草魚肌原纖維蛋白逐漸變性導致更多的疏水性基團暴露出來,表面疏水性增加,第6 d后開始大幅降低,可能與其部分降解為小分子并聚合有關(guān);而Ca2+-ATPase活性在冷藏前6 d顯著下降,進一步說明冷藏前期肌原纖維蛋白變性程度增加;SDS-PAGE分析表明草魚肌原纖維蛋白的亞基組成變化不大,但其蛋白含量在冷藏過程中呈先增加后下降的趨勢,同時部分蛋白條帶信號時有時無,也說明冷藏過程中既存在大分子亞基一定程度的降解,也存在小分子亞基聚合的情況;另外,冷藏過程中草魚肌原纖維蛋白的熱力學性質(zhì)沒有明顯的變化,表明冷藏對肌原纖維蛋白的熱穩(wěn)定性影響不大。以上結(jié)果說明,草魚冷藏前期,原有維持肌原纖維蛋白穩(wěn)定的作用力被破壞,導致其空間構(gòu)象改變而發(fā)生變性,表面疏水性和Ca2+-ATPase活性均下降;同時變性引起部分聚合體解開,溶解性增加,表現(xiàn)為光密度(IOD)總和增加。冷藏后期,肌原纖維蛋白逐漸降解,總IOD值降低,降解成的小分子蛋白質(zhì)重新聚合,導致表面疏水性重新下降。
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Changes in myofibrillar proteins of grass carp during chilling storage
WANG Fa-xiang,ZHANG Fu-lan,LIU Yong-le*,YU Jian,WANG Jian-hui,LI Xiang-hong,CHEN Qi
(Hunan Provincial Engineering Research Center for Food Processing of Aquatic Biotic Resources,College of Chemisty and Biology Engineering,Changsha University of Science and Technology,Changsha 410114,China)
Through analyzing the variation of protein subunit composition,thermodynamic properties,surface hydrophobicity and Ca2+-ATPase activity of myosin,the changes in myofibrillar proteins of grass carp during chilling storage were investigated.The results showed that with the extension of chilling storage time,the surface hydrophobicity of myofibrillar proteins was increased at first and then descended sharply and the Ca2+-ATPase activity of myosin was declined significantly,indicating that the degree of myofibrillar protein denaturation was augmented gradually.SDS-PAGE analysis revealed that there was little change in subunits composition of myofibrillar protein,but its total content increased at first but later decreased,and at the same time,part of the protein band signal was occasionally detected,suggesting some degree of degradation with macromolecular subunits and polymerization with small molecular subunit might coexist during cold storage period.Besides,there was no apparent change in thermodynamic properties of the myofibrillar protein of different storage time,indicating that cold storage had little effect on its thermal stability.
grass carp;myofibrillar proteins;hydrophobicity;differential scanning calorimetry;chilling storage
TS201.1
A
1002-0306(2015)18-0082-05
10.13386/j.issn1002-0306.2015.18.008
2015-01-16
王發(fā)祥(1978-),男,博士,副教授,研究方向:食品生物技術(shù),E-mail:wfaxiang@163.com。
劉永樂(1962-),男,博士,教授,研究方向:食品生物技術(shù)與大宗農(nóng)產(chǎn)品加工,E-mail:lyle19@163.com。
國家自然科學基金項目(31201427,31301564);國家科技支撐計劃項目(2012BAD31B08);湖南省自然科學基金項目(12JJ6028)。