劉建英,劉代順,劉振峰,韓冰
(遵義市第一人民醫(yī)院,貴州遵義563000)
支氣管哮喘是由多種細(xì)胞(如肥大細(xì)胞、T淋巴細(xì)胞、嗜酸性粒細(xì)胞、中性粒細(xì)胞)和細(xì)胞組分參與的氣道慢性炎癥疾病,其特征是可逆的氣流受限。過去的研究主要集中在支氣管哮喘的氣道炎癥。近年大量研究發(fā)現(xiàn)哮喘患者經(jīng)常出現(xiàn)不可逆或部分不可逆性氣流阻塞及持續(xù)的氣道高反應(yīng)性,即使給予積極的抗炎和擴(kuò)張支氣管治療仍無效,認(rèn)為其原因與長(zhǎng)期氣道慢性炎癥直接或間接引起氣道壁結(jié)構(gòu)改變有關(guān),氣道壁的這種結(jié)構(gòu)改變稱為氣道重構(gòu),被認(rèn)為是除氣道慢性炎癥之外哮喘的另一個(gè)重要特征[1]。2010年6月~2011年12月,本實(shí)驗(yàn)通過探討前列腺素D2(PGD2)對(duì)小鼠肺成纖維細(xì)胞TGF-β1/Smads信號(hào)通路的影響,為支氣管哮喘氣道重塑提供分子研究基礎(chǔ)。
1.1 材料 L-929小鼠肺成纖維細(xì)胞(第四軍醫(yī)大學(xué)提供),胎牛血清、TGF-β2細(xì)胞因子、PGD2受體抑制劑Laropiprant(均購買于 Gibco公司,USA),TRIzol、PCR試劑盒(均購買于大連寶生物公司),多克隆兔 TGF-β1抗、多克隆兔 Smad3抗、多克隆兔Smad4抗(美國(guó)CsT公司),單克隆鼠β-actin(碧云天),辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記的羊抗兔二抗、HRP標(biāo)記的兔抗鼠二抗、BCA蛋白定量試劑盒、PVDF膜、彩色預(yù)染蛋白相對(duì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)(均購于碧云天),瓊脂糖(Biowest公司)。
1.2 方法
1.2.1 MTT比色法檢測(cè)細(xì)胞活力 參照中國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)GB/T1688615-1997“醫(yī)療器械生物學(xué)評(píng)價(jià)第五部分:細(xì)胞毒性試驗(yàn)體外法”進(jìn)行。將生長(zhǎng)狀態(tài)良好的L-929細(xì)胞于實(shí)驗(yàn)前1 d傳代,第2天用0.25%胰酶消化,1 000 r/min離心5 min,用10%小牛血清的DMEM培養(yǎng)基重懸,調(diào)整細(xì)胞為2×105/mL,鋪于96孔平底板中37℃、5%CO2孵箱中孵育4 h,待細(xì)胞貼壁后,即將實(shí)驗(yàn)細(xì)胞按照時(shí)間梯度分為12 h組、24 h組、48 h 組、72 h、96 h 組,分別用 10%胎牛血清DMEM高糖培養(yǎng)基稀釋Laropiprant(稀釋濃度為 0.3、1、3、10、30 μmol/mL),同時(shí)設(shè)正常細(xì)胞對(duì)照,每孔加入100 μL試液,每個(gè)稀釋度設(shè)5個(gè)復(fù)孔,置于37℃、5%CO2孵箱中孵育24 h,加入5 mg/mL MTT 20 μL/孔(每毫升 PBS 中溶解 5 mg MTT,經(jīng)0.22 μL濾膜濾過以除菌和去不溶物質(zhì),低溫、避光保存),37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)孵育4 h后,用預(yù)溫的PBS清洗2遍,棄去上清,加入溶解液DMSO 100 μL/孔,于微型振蕩器上振蕩5 min,使結(jié)晶物充分溶解,使用酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀在波長(zhǎng)490 nm處測(cè)定各孔吸光度(OD)值。根據(jù)測(cè)定的OD值計(jì)算其相對(duì)的細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率。抑制率=[(對(duì)照組OD值-給藥組OD值)/對(duì)照組OD值]×100%。
1.2.2 RT-PCR 法檢測(cè) TGF-β1、Smad3、Smad4 的mRNA 將對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的L-929細(xì)胞以5×104/mL接種于25 mL培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),接種24 h,按Laropiprant濃度梯度將細(xì)胞分為空白對(duì)照組、0 μmol/mL 組、0.3 μmol/mL 組、1 μmol/mL 組、3 μmol/mL 組、10 μmol/mL組,除空白對(duì)照組外,每組分別加入2.5 ng/mL TGF-β2,繼續(xù)培養(yǎng) 24 h,用 TRIzol 法提取細(xì)胞總RNA,根據(jù)PCR試劑盒將RNA逆轉(zhuǎn)錄為互補(bǔ)DNA(cDNA)進(jìn)行PCR。逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系:10×RNA PCR buffer 5 μL,25 mmol/L MgCl24 μL,10 mmol/L dNTP 1 μL,Oligo dT 50 pmol,Rnasin 20 U,逆轉(zhuǎn)錄酶 5 U,cDNA 10 μL,補(bǔ)加 DEPC 處理水至 20 μL。于熱循環(huán)儀中95℃預(yù)變性5 min,再進(jìn)行95℃變性1 min、57℃退火1 min、72℃延伸1 min,共35個(gè)循環(huán)。最后將PCR產(chǎn)物進(jìn)行溴化乙錠染色,并通過2%瓊脂糖凝膠電泳,紫外燈下觀察。用凝膠圖像分析系統(tǒng)采集圖像。LABWORKS分析軟件對(duì)擴(kuò)充基因的電泳條帶進(jìn)行灰度分析。光密度表示為實(shí)驗(yàn)值/β-actin,分別進(jìn)行3次取平均值。各檢測(cè)指標(biāo)引物序列:TGF-β1:上游 5'-CGGAATTCATGGTCCACAGCATTCCGCTG-3',下游5'-CGGGATCCCTAATTGATCCCGCTGCTCA-3';Smad3:上游 5'-TGAACACCAAGTGCATTACCA-3',下游5'-GGAGGTAGAACTGGCGTCTCT-3';Smad4:上游5'-ACATTGGATGGACGACTTCAG-3',下游 5'-TCAATTCCAGGTGAGACAACC-3'。
1.2.3 Western blotting 法 檢 測(cè) TGF-β1、Smad3、Smad4蛋白表達(dá)量 按Laropiprant濃度梯度將細(xì)胞分為空白對(duì)照組、0 μmol/mL 組、0.3 μmol/mL 組、1 μmol/mL組、3 μmol/mL組,除空白對(duì)照組外每組分別加入2.5 ng/mL TGF-β2,繼續(xù)培養(yǎng)24 h。提取總蛋白,BCA法測(cè)定濃度。以每孔40 mg上樣,用10%的聚丙烯酸胺凝膠電泳分離蛋白,半干法轉(zhuǎn)移至PVDF膜,稀釋多克隆兔 TGF-β1抗(1∶500)、多克隆兔Smad3 抗(1∶500)、多克隆兔 Smad4 抗(1∶500),單克隆鼠β-actin(1∶500)4℃孵育過夜,洗膜后,HRP標(biāo)記的羊抗兔二抗(1∶1 000)、HRP標(biāo)記的兔抗鼠二抗(1∶1 000)孵育6 h,用發(fā)光試劑盒顯示蛋白條帶,使用Gensnap凝膠成像系統(tǒng)拍照。光密度=實(shí)驗(yàn)值/βactin,分別進(jìn)行3次取平均值。
1.2.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS19.0統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量數(shù)據(jù)以±s表示,組間比較采用單因素方差分析。以P≤0.05為有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。
2.1 Laropiprant對(duì)小鼠肺成纖維細(xì)胞活力的影響細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率隨Laropiprant濃度增高和作用時(shí)間延長(zhǎng)呈上升趨勢(shì),Laropiprant在濃度達(dá)到1 μmol/mL,作用時(shí)間為24~96 h時(shí),細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率明顯提高(見圖1)。
圖1 Laropiprant對(duì)小鼠肺成纖維細(xì)胞活力的影響
2.2 PGD2對(duì)小鼠肺成纖維細(xì)胞 TGF-β1的影響 如圖2A、2B所示,當(dāng)加入PGD2刺激劑TGF-β2后在小鼠成纖維細(xì)胞中TGF-β1mRNA及蛋白表達(dá)增加;但加入Laropiprant后,隨著其濃度增加,細(xì)胞TGF-β1mRNA及蛋白表達(dá)逐漸降低,與 Laropiprant 0 μmol/mL 組相比,Laropiprant 1、3、10 μmol/mL 組TGF-β1mRNA 及蛋白降低(P 均 <0.05)。
圖2 PGD2對(duì)小鼠肺成纖維細(xì)胞TGF-β1的影響
2.3 PGD2對(duì)小鼠肺成纖維細(xì)胞Smad3的影響 如圖3A、3B所示,當(dāng)加入TGF-β2后,小鼠肺成纖維細(xì)胞Smad3 mRNA及蛋白表達(dá)增加,但加入Laropiprant后,隨著其濃度增加,細(xì)胞Smad3 mRNA及蛋白表達(dá)逐漸降低,與 Laropiprant 0 μmol/mL組相比,Laropiprant對(duì)Smad3 mRNA及蛋白的抑制在Laropipratnt 0.3、3 μmol/mL 組增強(qiáng)(P 均 <0.05)。
圖3 PGD2對(duì)小鼠肺成纖維細(xì)胞Smad3的影響
2.4 PGD2對(duì)小鼠肺成纖維細(xì)胞Smad4的影響如圖4A、4B所示,當(dāng)加入TGF-β2后,小鼠肺成纖維細(xì)胞Smad4 mRNA及蛋白表達(dá)增加,但加入Laropiprant后,隨著其濃度增加,細(xì)胞Smad4 mRNA及蛋白表達(dá)逐漸降低,與Laropiprant 0 μmol/mL組相比,Laropiprant對(duì)Smad4 mRNA及蛋白的抑制在Laropiprant 3、10 μmol/mL 組增強(qiáng)(P 均 <0.05)。
近年來,支氣管哮喘氣道重構(gòu)越來越受到重視,但引起和加重哮喘氣道重構(gòu)的因素還不完全了解。目前研究表明,PGD2對(duì)哮喘免疫反應(yīng)起著雙向調(diào)控作用,可作為炎癥介質(zhì)產(chǎn)生致炎作用。Song等[2]在支氣管哮喘患者吸入塵螨后,對(duì)其支氣管肺泡灌洗液進(jìn)行檢測(cè),發(fā)現(xiàn)其中的PGD2濃度可增加15倍。PGD2不僅誘導(dǎo)了支氣管收縮,并且促使支氣管收縮的效應(yīng)強(qiáng)于組胺30倍。在支氣管哮喘患者受到抗原的刺激后,其氣道內(nèi)存在大量PGD2。Sedej等[3]通過培養(yǎng)人胎兒肺成纖維細(xì)胞(HFL-1)進(jìn)行體外實(shí)驗(yàn),證明了PGD2不僅抑制HFL-1對(duì)人纖連蛋白起趨化作用的因子,而且還可以減緩成纖維細(xì)胞的遷移,主要是通過Ca2+依賴的蛋白激酶A信號(hào)通路來發(fā)揮作用。在氣道炎癥損傷后修復(fù)過程中,成纖維細(xì)胞太少不利于損傷的修復(fù),而成纖維細(xì)胞過多則會(huì)使組織結(jié)構(gòu)發(fā)生改變,從而使氣道相應(yīng)功能喪失。
圖4 PGD2對(duì)小鼠肺成纖維細(xì)胞Smad4的影響
Murata 等[4]的研究表明,TGF-β1在氣道炎癥和纖維化中發(fā)揮了重要作用,其是刺激成纖維細(xì)胞增殖及膠原分泌的主要細(xì)胞因子。有學(xué)者在支氣管哮喘患者支氣管肺泡灌洗液中發(fā)現(xiàn)TGF-β1水平顯著高于健康對(duì)照組,變應(yīng)原刺激24 h后的TGF-β1水平更高;同時(shí)采用原位雜交和免疫細(xì)胞化學(xué)方法檢測(cè)患者的哮喘氣道黏膜,發(fā)現(xiàn)其TGF-β1表達(dá)顯著增加和免疫反應(yīng)顯著增強(qiáng),增加的量和疾病的嚴(yán)重程度直接相關(guān)。Schwartz等[5]在研究PGD2/DP信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)對(duì)支氣管哮喘發(fā)生的作用時(shí)發(fā)現(xiàn),PGD2/DP信號(hào)不僅能抑制成纖維細(xì)胞的遷移,也可以調(diào)整成纖維細(xì)胞介導(dǎo)前膠原纖維的收縮反應(yīng)。本實(shí)驗(yàn)以小鼠肺成纖維細(xì)胞為研究對(duì)象,通過應(yīng)用PGD2特異性刺激劑TGF-β2刺激細(xì)胞,運(yùn)用RT-PCR和Western blotting來檢測(cè) TGF-β1、Smad3、Smad4 的表達(dá),結(jié)果發(fā)現(xiàn)隨著刺激劑 TGF-β2的濃度增加,細(xì)胞TGF-β1、Smad3、Smad4 的表達(dá)升高;但加入 Laropiprant后,隨著其濃度增加,細(xì)胞 TGF-β1、Smad3、Smad4 mRNA及蛋白表達(dá)逐漸降低;與Laropiprant 0 μmol/mL組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。提示在小鼠氣道慢性炎癥過程中,PGD2可能對(duì)細(xì)胞TGF-β1、Smad3、Smad4的表達(dá)具有調(diào)控作用,這種機(jī)制在慢性氣道炎癥引起的氣道重構(gòu)中可能發(fā)揮了至關(guān)重要的作用。但是本實(shí)驗(yàn)仍未涉及其具體調(diào)控機(jī)制的研究,此外,在活體復(fù)雜環(huán)境下,PGD2對(duì) TGF-β1/Smads的調(diào)控規(guī)律也有待進(jìn)一步研究。
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